Norme · Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor

Normele din 10 iunie 2004

ce stabileste metode naționale de analiza pentru determinarea produselor amprolium, diclazuril și carbadox din furaje

prezumat în vigoare

Data actului
10 iunie 2004
Emitent
Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor
Publicat în
Monitorul Oficial nr. 1020 bis din 4 noiembrie 2004
Citează
14 acte
Structură
35 de articole · 314.292 caractere
Sursă
legislatie.just.ro

Legături cu alte acte

Ce face acest act

Are ca temei 1

  • OG nr. 42/2004 29 ianuarie 2004 (prevederi anume) privind organizarea activității veterinare

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

privind metode naționale de analiză

pentru controlul oficial al furajelor cu referire la conținutul în aflatoxină

ANEXĂ

la norma veterinară

3.2 Cloroform, stabilizat cu

o

.

s

până la

1

.

o%

de

96%

etanol (v/v).

3.3.

1\I-hexane.

3.4.

Metanol

3.5.

Eter etilic anhidru, liber de peroxid

3.6.

Amestec de benzen și acetonitril: 98/2 (v/v).

3.7.

Amesteic de cloroform (3.2) și metanol (3.4): 97/3 (v/v)

3.8

Silicagel,

pentru

coloana

cromatografică,

măsura particulei

o

-

os până

la

0-20

mm.

3.9. Vată de bumbac absorbantă, degresată anterior cu cloroform, sau vat i de sticlă,

3.1O. Sulfat de sodiu, anhidru, granular

3.11. Gaz inert, de ex. nitrogen

3 . 12 Acid clorhidric 1 N

3.13.

acid sulfuric 50% ( v/v)

3.14.

Diaton1it (hyflosupercel), spălat în acid.

3.15.

Silicage l

G-HH sau echivalent, pentru CSS

3.16.

Soluție standard cu aproximativ

o

.1

µg de aflatoxină 8 1

per ml în cloroforrn ( 3.2) sau amestHc de benzen/acetonitril (3.6) 1 preparat

ș i verificat așa cum s-a indicat la Secțiunea 7.

3.17.

Soluție standard pentru scopuri de testare calitativă ce conține aproximativ

0 - 1

µg

de aflatoxină B·1 și 82 per ml în cloroform (3.2) sau amestec de benzen/acetonitril (3.6). Aceste concentrații sunt prezentate ca un ghid. Acestea trebuie să fie ajustate

astfel

încf:1t

se

obțină

aceeași

intensitate

de fluorescență pentru ambele aflatoxine

.

3.18.

Solvenți de developare:

3.18.1.

Cloroform (3.2)/acetonă (:3.1) : 9/1 (v/v), soluție mamă nesaturată· I

3.18.2.

Eter etilic (3.5)/metanol ( : 3.4)/apă : 96/3/1 (v/v/v, soluție mamă nesaturată);

3.18.3.

Eter etilic

(3.5)/metanol (3.4)/apă : 94/4.5/1.5 (v/v/v), soluție man1ă nesaturată;

3.18.4 Cloroform (3,.2)/metanol (3.4) : 94/6 (v/v), soluție mamă saturată;

3.18.5. Cloroform (3.2)/metanol (3.4) : 97/3 (v/v), soluție mamă saturată;

4.

Aparatură.

4.1.

Râșnițăt ...rnixer

4.2.

Se scutură1 aparatul sau se agită ,nagnetic

4.3.

Hârtie de filtru canelată, Schleicher și SchOII nr 588 sau echivalent, diametru : 24 cm

4.4 Tub de sticlă pentru cromatografie (diametru intern :

22

mmj lungime : 300 mm), cu un robinet PTFE și un rezervor de 250 ml.

4.5.

Evapoirator rotativ în vacuurr1, cu un balon cu fund rotund de 500 rr1I

4.6.

balon conic de 500 ml, cu bușon de sticlă rodat.

4.7.

Aparatura pentru CSS

4.8.

Plăci de sticlă pentru CSS, 200 x 200 mm, preparate după cun, urmează (cantitățile indicate sunt suficiente pentru a acoperi cinci pli ci). Se pun 30 g de silicagel G-HR (3.15) într-un balon conic. Se adaugă 60 n1I apă, sei astupă și se agită timp de un minut. Se în1prăștie suspensia pe plăci astfel încât să se obțină un strat uniforrn de grosirne

o.

2s

mm. Se lasă să se usuce la aer și apoi se depozitează într-un exicator ce conține silicagel. În rnornentul utilizăriij se activează plăcile prin ținerea acestora în cuptor la 11O °C timp de o oră.

Gata

de

utilizare,

plăcile

sunt

corespunzătoare

dacă acestea dau rezultate similare celor obținute cu plăci preparate așa cum s-a indicat mai sus.

4.9.

l..arnpă UV de iungirne de undă (360 nm). Intensitatea iradierii trebuie

:SEl

facă posibil, pentru un spot de 1 ng de

aflatoxină 81 să fie distins cu claritate pe o placă CSS

la o distanță de 1 O

cm de lampă.

4.1 O.

Tuburi gradate de 1 O

ml cu dopuri de polietilenă.

4.11.

Spectrofotometru UV.

4.12.

Fluorodensitometru (opțional)

5.

Procedură.

5.1.

Prepararea probei (vezi ăObservații", Partea C, punctul

1).

Se râșnește proba astfel încât întreaga cantitate să treacă

printr-o

sită

cu

ochiuri

de

1

mm

(în

concordanță

cu recomandarea ISO R 565).

5.2.

Extractie

'

Se pun 50 g de probă râșnită, omogenizată într-un tub conic

de 500 ml. Se adaugă 25 g de diatomit (3.14), 25 ml de apă și 250 ml de cloroform (3.2). Se astupă balonul, se scutură sau se agită pentru 30 de minute cu aparatul (4.2) și se filtrează printr­ o hârtie de filtru canelată (4.3). Se înlătură primii 1 O

ml din filtrat și apoi se colectează 50 ml.

5.3.

Curătarea coloanei

'

Se insereaza în capătul inferior al unui tub de cromatografie

(4.4)

un dop de vată de bumbac sau de sticlă (3.9), se umple două treimi din tub cu cloroform (3.2) și se adaugă 5 g de sulfat de sodiu (3.1

O).

Se verifică dacă suprafața superioară a stratului de sulfat de sodiu este netedă, apoi se adaugă 1O g de silicagel (3.8) în porțiuni mici. Se agită cu atenție după fiecare adiție, pentru a elimina bulele de aer. Se lasă în repaos timp de 15.minute și apoi se adaugă cu atenție 15 g de sulfat de sodiu (3.1 O).

Se lasă lichidul să cadă până când acesta este tocmai deasupra suprafeței superioare a stratului de sulfat de sodiu.

Se amestecă 50 ml de extract colectat la 5.2 cu 100 ml de n-hexan (3.3) și se transferă cantitatea din amestecul coloanei. Se

lasă

lichidul

cadă

până

când

acesta

este

tocmai

deasupra suprafeței superioare a stratului de sulfat de sodiu. Se elimină această spălare.

Apoi se adaugă 100 ml de eter etilic (3.5) și se lasă din nou să cadă până la suprafața superioară a stratului de sulfat de sodiu. în timpul acestor operațiunii se observă că debitul este 8 până la 12 ml per minut și coloana nu devine uscată. Se elimină lichidul care iese. Se eluează apoi cu 150 ml de amestec de cloroform/metanol (3.7) și se colectează întregul eluat.

Se evaporă cel din urmă până aproape de uscare la o temperatură ce nu depășește 50 °C și sub un jet de gaz inert (3.11) cu evaporator rotativ (4.5). Se transferă în mod cantitativ reziduul, utilizând cloroform (3.2) sau amestec de benzen - acetonitril

(3.6),

într-un

tub

gradat

de

1O

ml {4. _ 1O).

Se concentrează soluția sub un jet de gaz inert (3.11) și apoi se ajustează volumul până la 2 ml cu cloroform (3 2) sau amestec de benzen/acetonitril (3.6).

5.4.

Cromatografie în strat subțire

Se efectuează un spot pe o placă pentru cromatografie în strat subțire (4.8), 2 cm de la marginea inferioară și la distanțe de 2 cm, cu volume indicate mai jos din soluția standard și din extract:

- 1O, 15, 20, 30 și 40 µI din soluția standard de aflatoxină

81 (3.16);

-

1O µI din extractul obținut la 5.3 și, suprapus pe același punct,

-

20 µI de soluție standard (3.16);

-

1O și 20 µI de extras obținut la 5. .

Se developează cromatograma la întuneric cu unul din solvenții de developare (3.18).

Alegerea solventului trebuie să fie efectuată în prealabil, prin depozitare de 25 µI de soluție standard calitativă (3.17}' pe placă și verificând ca atunci când se developează, aflatoxinele 81 și 82 sunt complet separate.

,

Se lasă solvenții să se evapore la întuneric și apoi se iradiază cu lumină UV, plasând placa la 1O cm de lampă (4.9). Spoturile de aflatoxină 81 dau o fluorescență albastră.

5.5.

Determinări cantitative

Se determină fie vizual, fie prin fluorodensitometrie,

așa cum s-a indicat mai jos.

5.5.1.

Măsurări vizuale

Se determină cantitatea de aflatoxină 81 din extract, prin compararea intensității fluorescenței din spoturile de extract cu cea a unuia din spoturile soluției standard. Se interpolează dacă este necesar. Fluorescența obținută prin suprapunerea extractului din solutia standard trebuie să fie mai intensă decât

cea a cantității de 1 ' O µI de extract și nu trebuie să fie mai mare

decât un spot vizibil. Dacă intensitatea fluorescenței dată de cantitatea de 1O µI de extras este mai mare decât cea de 40 µI din solutia standard, se diluează extractul de 1O sau 100 de ori

cu cloro '

form (3.2) sau amestec de benzen/acetonitril (3.6)

înainte să fie supus din nou cromatografiei în strat subțire.

5.5.2.

Măsurări prin fluorodensitometrie

Se

măsoară

intensitatea

fluorescenței

spoturilor

de aflatoxină

8 1

cu fluorodensitometru (4.12) la o excitație

a lungimii de undă de 365 nm și o emisie a lungimii de undă de 443 nm. Se determină cantitatea de aflatoxină 8 1

din spoturile de extract, prin compararea intensităților fluorescenței acestora cu cea a spoturilor de aflatoxină 8 1

standard.

5.6.

Confirmarea identitătii aflatoxinei 8 1

'

Confirmarea

identitătii

aflatoxinei

81

din

extract

se efectuează prin procesele

' indicate mai jos.

5.6.1.

Tratare cu acid sulfuric

Se pulverizează

acid sulfuric

(3.13) pe cromatograma obținută la 5.4. Fluorescența spoturilor de aflatoxină 81 trebuie să devină, sub iradierea UV din albastră, galbenă.

5.6.2.

Cromatografie bidimensională implicând formarea de aflatoxină 8 1 -hemiacetat (aflatoxină 8 2 a)

N8: Operațiunile descrise mai jos trebuie să fie efectuate urmând cu atenție diagrama din figura 3. ·

5.6.2.1.

Aplicarea soluțiilor

Se trasează pe o placă (4.8) două linii drepte paralele la două părți marginale (6 cm de fiecare parte) până la limita migrației

fronturilor

de

solvent.

Se

marchează

soluțiile următoare

pe

placă

utilizându-se

pipete

capilare

sau microseringi :

-

în punctul A: un volum al probei de extract purificat, obținută la 5.3, conținând aproximativ

2.

s

ng de aflatoxină 81;

-

în punctele 8 și C: soluție standard de 25 µI

5.6.2.2.

Developare

Se developează cromatograma în direcția I, la întuneric, utilizând solvent de developare (3.18.1)(un strat de 1 cm dintr-o soluție mamă nesaturată) până când frontul de solvent atinge linia limită a solventului. Se îndepărtează soluția mamă de pe placă și se lasă să se usuce la întuneric, la temperatura ambiantă, timp de cinci minute. Se pulverizează apoi cu acid clorhidric (3.12) de a lungul unei bande de

2.

s

cm înălțime ce acoperă punctele A și 8 (indicată prin zona hașurată în figura 3.) până când se întunecă, protejând restul plăcii cu o foaie de sticlă. Se lasă să reacționeze timp de 1 O

minute la întuneric și se usucă cu un curent de aer la temperatură ambiantă. Se developează

apoi cromatograma

în direcția

li,

la întuneric, utilizând solvent de developare (3.18.1) (un strat de 1 cm dintr-o soluție mamă nesaturată) până când frontul de solvent ajunge la linia limită a solventului. Se îndepărtează soluția mamă de pe placă și se lasă să se usuce la temperatura ambiantă.

5.6.2.3.

Interpretarea cromatogramei.

Se examinează cromatograma sub lumină UV (4.9) și se verifică următoarele caracteristici

(a) Apariția unui spot albastru de aflatoxină 81 ce provine de la soluția standard aplicată în punctul C (migrare în direcția I).

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește metode de analiză pentru controlul oficial

al furajelor privind umiditatea, bazele azotate volatile, fosforul total și uleiurile și grăsimile brute*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.452 din 28 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

*) Aprobata prin

Ordinul nr. 25 din 10 iunie 2004 , publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1020 din 4 noiembrie 2004.

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește metode de analiză pentru controlul oficial al furajelor privind umiditatea, bazele azotate volatile, fosforul total și uleiurile

și grăsimile brute, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 15.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 15/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește metode de analiză pentru controlul oficial al furajelor

privind umiditatea, bazele azotate volatile, fosforul total și uleiurile și grăsimile brute

ANEXĂ

la norma veterinară

3.3.

Fiole uscate din metal necorosiv sau din sticlă cu capace ce asigură o închidere etanșă; suprafață de lucru ce permite ca proba test să fie difuzată la vreo 0,3g/cm 2

.

3.4.

Etuva termoreglabila

(±1°C),

cu ventilatie și care asigură reglarea rapidă a temperaturii

C

).

3.5.

Etuva cu vacuum încălzita electric dotata cu o pompă de ulei sau un mecanism pentru introducerea de aer uscat fierbinte sau a unui agent de uscare (de ex. oxid de calciu).

3.6.

Desicator

cu

placă

confecționată

dintr-un

metal perforat gol sau

din porțelan ce conține un agent de uscare eficient.

4.

Procedură

N.B.: Operațiunile descrise de această secțiune trebuie să fie efectuate imediat după deschiderea pachetelor de probe. Analiza trebuie să fie efectuată în cel puțin un duplicat.

4.1.

Preparare

4.1.1.

Furaje, altele decât cele ce sunt sub incidența punctelor 4.1.2. și 4.1.3. Se iau cel puțin 50 de grame din probă. Dacă este necesar, se macină și se împarte în așa fel, încât să de evite orice variație în conținutul de umiditate(vezi 6).

4.1.2.

Cereale și ovăz

Se iau cel puțin 50 de grame din probă. Se macină în particule din care cel puțin 50°/c,

trec printr-o sită cu plasă de

O, 75mm și nu se permite să fie retinute mai mult de 10% particule pe un ochi de plasă de 1mm

2

.

4.1.3.

Furaje sub formă lichidă sau de pastă, furaje

compuse predominant din uleiuri și grăsimi.

Se iau circa

25 de g din probă, se cântăresc cu o aproximație de 1 O

mg, se adaugă o cantitate corespunzătoare de nisip anhidros, cântărit cu o aproximație de 1 O

mg și se amestecă până este obținut un produs omogen.

(1)

Pentru uscarea cerealelor, a făinii, a ovăzului și a crupelor de ovăz, etuva trebuie să aibă o astfel de capacitate termică, încât atunci când este pre-fixat la 131°C acesta să revină la acea temperatură în mai puțin de 45 de minute după numărul maxim de probe test ce au fost plasate simultan în interior să se usuce. Ventilatia trebuie să fie astfel ca, atunci când sunt mai multe probe de grâu obișnuit decât le poate conține și sunt uscate timp de două ore, rezultatele diferă de cele obținute după patru ore de uscare cu mai puțin de 0,715%.

4.2.

Uscare

4.2.1.

Furaje, altele decât cele ce sunt reglementate de

4.2.2.

și 4.2.3.

Se cântărește o fiola (3.3) împreună cu capacul acestuia cu o aproximație de 0,5 mg. Se cântăresc în fiola cântărita cu o aproximație de 1 mg, aproximativ 5 g din probă și chiar se difuzează. Se plasează containerul, fără capacul acestuia, în etuva preîncălzita la 103°C. Se introduce fiola cât mai repede posibil, pentru a se preveni ca temperatura cuptorului să scadă nejustificat. Se lasă să se usuce timp de patru ore, calculate din momentul în care temperatura

etuvei revine la 103°C. Se înlocuiește capacul de pe fiola, se înlătură acesta din urmă de pe cuptor, se lasă să se răcească timp de 30-45 de minute în desicator(3.6) și se cântărește cu o aproximație de 1 mg.

Pentru furaje combinate compuse predominant din uleiuri și grăsimi, se usucă în etuva timp de încă 30 de minute la 130°C. Diferența dintre două cântăriri nu trebuie să depășească 0,1% umiditate.

4.2.2. Cereale, făină, ovăz și făină

Se cântărește o fiola (3.3) împreună cu capacul acesteia, cu o aproximație de 0,75mg. Se cântărește în fiola cântărita cu o aproximație de 1mg, aproximativ 5g din proba măcinată și chiar se difuzează. Se plasează fiola, fără capacul acesteia, în etuva preîncălzita la 130°C. Se introduce containerul cât mai repede posibil, pentru a se preveni ca temperatura cuptorului să scadă nejustificat. Se lasă să se usuce timp de patru ore calculate din momentul în care temperatura cuptorului revine la 103°C. Se înlocuiește capacul de pe container, se înlătură acesta din urmă de pe cuptor, se lasă se răcească timp de 30- 45 de minute în desicator(3.6) și se cântărește cu o marjă de 1mg.

4.2.3. Furaje combinate ce conțin mai mult de 4% sucroză sau lactoză: furaje simple precum păstăi de fasole, produse cereale hidrolizate, semințe de malț, cartofi și sfeclă uscată, pește și zahăr solubil; furaje combinate ce conțin mai mult de 25% săruri minerale, incluzând apă de cristalizare.

Se cântărește o fiola (3.3) împreună cu capacul acestuia, cu o aproximație

de 0,75mg. Se cântăresc în containerul cântărit cu o marjă de 1mg, aproximativ 5g din proba măcinată și chiar se difuzează. Se plasează containerul, fără capacul acesteia, în etuva cu vacuum preîncălzit între 80-85°C. Se introduce fiola cât mai repede posibil, pentru a se preveni ca temperatura etuvei să scadă nejustificat.

Se aduce presiunea până la 100 Torr și se lasă să se usuce timp de patru ore la această temperatură, fie într-un curent de aer fierbinte, uscat fie utilizându-se un agent de uscare (aproximativ

300 g pentru 20 de probe).

În ultimă instanță, se deconectează pompa de vacuum, atunci când a fost atinsă presiunea prescrisă.

Timpul

de

uscare

se

calculează

din

momentul

când temperatura cuptorului revine la 80-85°C. Se aduce etuva cu grijă înapoi la presiunea atmosferică. Se deschide etuva, se plasează imediat capacul pe fiola, se îndepărtează fiola din etuva, se lasă să se răcească timp de 30-45 în desicator(3.6) și se cântărește cu o aproximație de 1 mg. Se usucă timp de încă 30 de minute în etuva cu vacuum la 80-85°C și se recântărește. Diferența dintre două cântăriri nu trebuie să depășească 0,71 °/o

umiditate.

4.3.

Uscare preliminară

4.3.1.

Furaje, altele decât cele ce sunt reglementate de 4.3.2.

Furaje solide cu un conținut ridicat de umiditate ce face ca măcinarea să fie supusă uscării preliminare după cum urmează: Se cântăresc 50g de probă nemăcinată cu o aproximație de 10mg (furajele comprimate și aglomerate pot fi împărțite după duritate , dacă este necesar) într-un container potrivit (de ex. o placă de aluminiu de 20x12 cm cu o ramă de 0,75cm). Se lasă să se usuce într-o etuva de la 60-70°C până când conținutul de umiditate s-a redus la 8-12%. Se îndepărtează din etuva, se lasă descoperit ca să se răcească în laborator pentru o oră și se cântărește cu o aproximație de 1O mg. Se zdrobește imediat, așa cum s-a indicat la punctul 4.1.1. și se usucă așa cum s-a indicat la punctul 4.2.1. sau 4.2.3., în conformitate cu natura furajului.

,

4.3.2.

Cereale

Boabele cu un conținut de umiditate · de peste 17%, trebuie să fie supuse unei uscări preliminarii după cum urmează:

Se cântăresc 50g de boabe neîncolțite, cu o aproximație de 10mg într-un container corespunzător (de ex. o placă de aluminiu de 20x12 cm cu o ramă de 0,5cm). Se lasă să se usuce timp de 5-7 minute într-o etuva, la 130°C. Se scoate din etuva, se lasă să se răcească descoperit în laborator, timp de două ore și se cântăresc cu o aproximație de 1 O

mg. Se macină așa cum s-a indicat la 4.1.2. și se usucă, așa cum s-a indicat la punctul 4.2.2.

5.

Calcularea rezultatelor

Conținutul de umiditate, ca procent din probă, este calculat utilizând următoarea formulă:

5.1.

Uscare fără uscare preliminară (E-m)x

ioo

E

unde:

E=masă inițială a probei test, în grame, m=masa probei test uscate, în grame,

5.2.

Uscare cu uscare preliminară

[(M'-m)M

+

E-M]xlOO=

100 ( 1 -

Mm)

M'

E

EM'

unde:

E=masă inițială a probei test, în grame,

M= masa a probei test după uscare preliminară, în

grame,

M'= masa probei test după zdrobire, în grame, m=masa probei test uscate, în grame.

5.3. Repetabilitate

Diferența dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe aceeași probă nu trebuie să depășească 0,2°/c, de umiditate.

6.

Observatie

Dacă măcin '

area se dovedește a fi necesară și dacă

l

aceasta este estimată că alterează continutul în umiditate al produsului, rezultatele analizei componenților furajului trebuie să fie corectate pe baza conținutului probei în starea inițială a acesteia.

li. DETERMINAREA BAZELOR AZOTATE VOLATILE

A.

MICRODIFUZIE

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibil să se determine conținutul de baze azotate în furaje, exprimate ca amoniac.

2.

Principiu

Proba este extrasă cu apă și soluție clarificată și filtrată. Bazele

azotate

volatile

sunt

dislocate

prin

micro-difuzie, utilizându-se o soluție de carbonat de potasiu, colectată într-o soluție de acid boric și titrată cu acid sulfuric.

3.

Reactivi

3.1.

20% (w/v) soluție de tricloracetic.

3.2.

Indicator: se dizolvă 33 de mg de verde bromcrezol și 65 de mg de roșu metil în 100ml de etanol 95-96%(v/v).

'

3.3.

Solutie de acid boric:

'

Într-un cilindru gradat de 1litru se dizolvă 1O g de acid boric A.R. în 200ml de etanol 95-96%(v/v) și 700ml de apă. Se adaugă

1O ml de indicator(3.2.). Se amestecă

și dacă e necesar, se ajustează

culoarea soluției spre roșu deschis, adăugând o soluție de hidroxid de sodiu. 1 ml din această soluție va fixa un maxim de 300 Dg de NH 3

.

3.4.

Soluție saturată de carbonat de potasiu:

Se dizolvă 1OOg de carbonat de potasiu A.R. în 100 ml de apă fiartă. Se lasă să se răcească, se filtrează.

3.5.

Acid sulfuric 0,02 N.

4.

Aparatură

4.1.

Mixer (tip pahar): aproximativ 35-40 r.p.m.

4.2.

Celule

Conway

de

plastic

sau

de

sticlă

(vezi diagrama).

4.3.

Microbiurete gradate în 1/100ml.

5.

Procedură

Se cântăresc 1Og de probă,

cu o aproximație de 1mg și se plasează cu 100ml de apă într-un pahar gradat de 200 ml. Se amestecă în pahar timp de 30 de minute. Se adaugă 50 ml de soluție de acid tricloracetic (3.1), se completează volumul cu apă, se agită cu vigoare și se filtrează printr-un filtru plisat.

Utilizând o pipetă, se introduce 1 ml de soluție de acid boric(3.3) în partea centrală a celulei Conway și 1 ml din filtratul probei în coroana celulei. Se acoperă parțial cu un capac lubrifiat. Se lasă să cadă rapid 1 ml de soluție de carbonat de potasiu saturat (3.4) în coroană și se închide capacul, astfel încât celula să nu primească aer. Se întoarce celula cu grijă, rotind-o

în plan orizontal, astfel încât cei doi reactivi să fie amestecati.

Se la '

să incubat fie cel puțin patru ore la temperatura

camerei fie pentru o oră la 40°C.

Utilizând o microbiuretă(4.3), se titrează bazele volatile în soluție de acid boric cu acid sulfuric 0,02N(3.5).

Se efectuează un test steril, utilizând aceeași procedură, dar fără ca proba să fie analizată.

6.

Calcularea rezultatelor

1ml de H2SO4 0,02N corespunde la 0,34 mg de amoniac. Se exprimă rezultatul ca procentaj al probei.

Repetabilitate

Diferența între rezultatele a două determinări paralele efectuate pe aceeași probă nu trebuie să depășească:

-

10% în valoare relativă, pentru conținut de amoniac mai puțin de 1,0%;

-

O,1%

în

valoare

absolută,

pentru

conținut

de amoniac de 1,0% sau mai mult.

7.

Observatie

Se diluează '

filtratul initial, dacă continutul de amoniac al

probei depășește 0,76%.

'

'

B.

PRIN DISTILARE

1.

Scopul și domeniul de aplicare

Această metodă face posibilă determinarea conținutului de baze azotate volatile, exprimate ca amoniac, în faina de pește ce nu conține practic uree. Aceasta este aplicabilă numai pentru un conținut de mai puțin de 0,25%.

2.

Principiu

Proba este extrasă cu apă și soluție de clarificare. Bazele azotate

volatile

sunt

dislocate

la

punctul

de

fierbere, adăugându-se oxid de magneziu și colectate într-o cantitate

specifică de acid sulfuric, al cărui exces este titrat apoi cu o solutie de hidroxid de sodiu.

'

3. Reactivi

3.1.

20% (w/v) soluție de acid tricloracetic.

3.2.

Oxid de magneziu

3.3.

Emulsie anti-spumă (de ex. silicon).

3.4 Acid sulfuric O,1N.

l

3.5.

Solutie de hidroxid de sodiu O,1 N.

3.6.

0,3%, (m/v) soluție de metil roșu în etanol 95-96%(v/v).

4.

Aparatură

4.1.

Mixer (tip pahar): aproximativ 35-40 r.p.m.

4.2.

Aparat de distilare de tip Kjeldahl.

5.

Procedură

Se cântăresc 10g de probă cu o aproximație de 1mg și se plasează cu 100ml de apă într-un balon cotat de 200ml. Se omogenizeaza timp de 30 de minute. Se adaugă 50ml de soluție de acid tricloracetic(3.1), se completează volumul cu apă, se agită energic și se filtrează printr-un filtru cutat.

Se ia o cantitate de filtrat clar corespunzător

pentru

A

I

conținutul estimat de baze azotate volatile(100ml sunt de obicei potrivite). Se diluează până la 200ml și se adaugă 2g de oxid de

magneziu

(3.2.)

și

câteva

picături

de

emulsie

anti­ spumă(3.3). Soluția trebuie să fie alcalină față de hârtia de turnesol, altfel se adaugă puțin oxid de magneziu (3.2.). Se distila aproximativ 150 ml de soluție în aparatul Kjeldahl și se colectează distilatul într-un pahar Erlenmeyer ce conține un volum

măsurat

cu

acuratete

(25-50ml)

de

acid

sulfuric O,1 N(3.4). ln timp ce se distila, se evită supraîncălzirea pe părțile laterale. Se fierbe soluția de acid sulfuric timp de 2 minute, se răcește și se titrează apoi excesul de acid sulfuric cu soluție de hidroxid de sodiu O,1N(3,5) în prezența indicatorului de roșu metil (3.6).

Se

efectuează

o

proba

martor

utilizand

aceeași procedură.

6.

Calcularea rezultatelor -

1ml de H2SO4 O,1N corespunde la 1,7 mg de amoniac. Se exprimă rezultatul ca procent din probă.

Repetabilitate

Diferența între rezultatele a două determinări paralele, efectuate pe aceeași probă, nu trebuie să depășească, în valoare relativă, 10°/o amoniac.

III.

DETERMINAREA FOSFORULUI TOTAL METODA FOTOMETRICĂ

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibilă determinarea conținutului de fosfor total din furaje. Este corespunzătoare, în mod particular, pentru analiza produselor cu nivel scăzut de fosfor. În unele cazuri poate fi utilizată o metodă gravimetrică, (produs bogat în fosfor).

2.

Principiu

Proba este mineralizată, fie prin combustie uscată(în cazul furajelor organice) sau prin digestie acidă (în cazul compușilor minerali și a furajelor lichide) și plasată într-o soluție de acid.

Soluția este tratată cu reagent molibdovanadiu. Densitatea optică a soluției galbene astfel formate este măsurată într-un spectrometru la o lungime de undă de 430nm.

3.

Reactivi

3.1.

Carbonat de calciu p.a

3.2.

Acid clorhidric p.a d:1,1 (aproximativ 6N).

3.3.

Acid azotic p.a, d: 1,045.

3.4.

Acid azotic p.a., d: 1,38-1,42.

3.5.

Acid sulfuric p.a., d: 1,84.

3.6.

Reactiv molibdovanadat:

Se

amestecă

200ml

de soluție

de heptamolibdat

de amoniu(3.6.1. ),

200ml

de

soluție

de

monovanadat

de amoniu(3.6.2) și 134ml de acid azotic, într-un balon cotat de un litru. Se completează volumul cu apă distilata.

3.6.1.

Soluție de heptamolibdat de amoniu:

Se

dizolvă

în

apă

distilata

fierbinte

100g

de heptamolibdat de amoniu p.a. (NH4)6Mo7O24_ 4H2O. Se adaugă 10ml de amoniac(d:0,91) și se completează cu apă distilata până la un litru.

3.6.2.

Solutie de monovanadat de amoniu:

'

2,735g

de monovanadat

de amoniu

p.a. NH4VO3

se dizolvă în 400ml de apă distilata fierbinte · . Agitând constant, se adaugă lent 20ml de acid azotic p.a diluat (7ml de HNO 3 (3.4)

+

13ml de H 2 O) și se completează cu apă distilata până la un litru.

3.7.

Soluție standard de 1mg de fosfor per ml: se dizolvă 4,387g de fosfat dihidrogenat de potasiu p.a. KH2PO4 în apă. Se completează cu apă până la un litru.

4.

Aparatură

4.1.

Creuzete pentru cenușă din porțelan sau siliciu.

4.2.

Cuptor electric cu termostat stabilit la 550°C.

4.3.

Balon Kjeldahl de 250ml.

4.4.

Baloane gradate și pipete de precizie.

4.5.

Spectrofotometru.

4.6.

Eprubete gradate:25-30ml.

5.

Procedură

-

5.1.

Prepararea solutiei

ln conformitate cu na ' tura probei se prepară o soluție așa cum a indicat punctul 5.1.1 sau 5.1.2.

5.1.1.

Procedura uzuală

Se cântărește 1g sau mai mult din probă cu o aproximație de 1mg. Se plasează proba test într-un balon Kjeldahl, se adaugă 20ml de acid sulfuric (3.5), se agită pentru a impregna substanța complet cu acid și pentru a se preveni ca aceasta să nu

se

lipească

de

pereții

balonului,

se

încălzește

și

se păstrează la punctul de fierbere timp de 1O minute. Se lasă să se răcească puțin, se adaugă

puțin acid azotic (3.4) și se aduce apoi la punctul de fierbere. Se repetă această procedură până când este obținută o soluție incoloră. Se răcește, se adaugă puțină apă, se decantează lichidul într-un balon cotat de 500 de ml, clătind cu apă fierbinte balonul Kjeldahl. Se lasă să

se

răcească,

se

completează

volumul

cu

apă,

se omogenizează și se filtrează.

5.1.2.

Probe ce conțin substanțe organice și libere de calciu și fosfați de magneziu

Se cântăresc aproximativ 2,5 g din probă, cu o aproximație de 1mg într-un creuzet de calcinare. Se amestecă proba test până când se omogenizeaza complet cu 1g de carbonat de

calciu(3.1). Se calcinează în cuptor la

550°C+5°C

până când este obținută o cenușă albă sau gri (nu contează puțin mangal). Se transferă cenușa într-o capsula de portelan de 250ml. Se adaugă 20ml de apă și acid clorhidric(3.2) până încetează efervescența .

Se adaugă încă 10ml de acid clorhidric (3.2). Se plasează capsula de portelan pe o baie de nisip și se evaporă până se usucă pentru a face silicatul insolubil. Se redizolvă reziduul în 10ml de acid azotic(3.3) și se fierbe pe baia de nisip timp de

5 minute, fără să se evaporeze, până se usucă. Se decantează

lichidul

într-un

balon

cotat

de

500ml,

clătind capsula de portelan de câteva ori cu apă fierbinte. Se lasă să se răcească, se completează volumul cu apă, se omogenizează și se filtrează.

5.2.

Dezvoltarea colorației și măsurarea densității optice Se diluează o parte a picăturii filtrate obținută la 5.1.1. sau

5.1.2., pentru a obține o concentrație în fosfor de cel mult 40µg/ml.

Se

plasează

10ml

din

această

soluție

într-o eprubetă(4.6)

și

se

adaugă

10ml

de

reactiv molibdovanadat(3.6). Se omogenizează și se lasă să stea cel puțin 1O minute, la 20°C. Se măsoară densitatea optică într-un spectrometru la lungimea de undă de 430nm fata de o soluție obținuta prin adăugare de 10ml de reactiv molibdovanadat (3.6) în 10ml de apă.

5.3.

Curba de calibrare

Din soluția standard(3.7.) se prepară soluții ce conțin respectiv 5,10,20,30 și 40 µg de fosfor per ml. Se iau 10ml din fiecare

din

aceste

soluții

și se

adaugă

10ml

de reactiv molibdovanadat (3.6). Se omogenizează și se lasă să stea cel puțin 1O minute la 20°c. Se măsoară densitatea optică , așa cum a indicat punctul 5.2.

Se trasează curba de calibrare prin împărțirea densităților optice față de cantitățile corespunzătoare de fosfor. Curba va fi

liniară pentru concentrații între O și 40 µg/ml.

6.

Calcularea rezultatelor

Se determină cantitatea de fosfor din proba test pnn utilizarea curbei de calibrare.

Se exprimă rezultatul ca procent din probă.

Repetabilitate

Diferența între rezultatele a două determinări paralele efectuate pe aceeași probă nu trebuie să depășească:

3% în valoare relativă, pentru conținut de fosfor de mai puțin de 5%;

O,15% în valoare absolută, pentru conținut de fosfor de 5% sau mai mult.

IV. DETERMINARE DE ULEIURI ȘI GRĂSIMI BRUTE

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această

metodă

este

utilizată

pentru

determinarea uleiurilor și grăsimilor brute din furaje. Aceasta nu se referă la analiza semințelor uleioase și a fructelor oleaginoase definite de legislația comunitară specifică.

Utilizarea celor două proceduri descrise mai jos depinde de natura și compoziția furajului și motivul pentru efectuarea analizei.

1.1.

Procedura

A

-

Uleiuri

și

grăsimi

brute

direct

extractibile

Această metodă este aplicabilă materiilor furajere din plante, cu excepția celor incluse în scopul Procedurii B.

1.2.

Procedura B - Uleiuri și grăsimi brute totale

Această procedură este aplicabilă materiilor furajere de origine animală și tuturor furajelor combinate. Aceasta trebuie să fie utilizată pentru toate materiile din care grăsimile și uleiurile nu pot fi extrase complet fără o hidroliză anterioară (ex. gluten,

drojdie,

proteine

din

cartofi

și

produse

supuse proceselor precum extrudarea, floconarea și încălzirea).

1.3.

Interpretarea rezultatelor

În toate cazurile în care este obtinut un rezultat mai ridicat prin utilizarea Procedurii B, decât pr ' in Procedura A, rezultatul

obținut prin Procedura B va fi acceptat ca valoare adevărată.

2.

Principiu

2.1

Procedura A

Proba este extrasă cu eter etilic. Solventul este distilat, iar reziduul este uscat și cântărit.

2.2

Procedura B

Proba este tratată la cald cu acid clorhidric. Amestecul este răcit și filtrat. Reziduul este spălat, uscat și supus determinării, în conformitate cu Procedura A.

3.

Reactivi

3.1.

Eter etilic, punct de fierbere: 40-60°C. Valoarea de bromin trebuie să fie mai puțin de 1, iar reziduul din evaporare mai puțin de 2mg/100ml.

3.2.

Sulfat de sodiu, anhidru

3.3.

Acid clorhidric, c=3moli HCI/I

3.4.

Cu ajutorul filtrării, Kieselguhr, supercelula Hyflo.

4.

Aparatură

4.1.

Aparatură de extracție. Dacă a fost dotată cu un sifon (aparat Soxhlet), rata refluxului trebuie să fie astfel încât să producă aproximativ 10cicluri/oră; dacă este utilizat tipul non­ sifon, rata refluxului trebuie să fie de aproximativ 10ml per minut.

4.2.

Canule de extractie, libere de materie solubilă în eter

etilic și care să aibă o po '

rozitate în conformitate cu cerințele punctului 4.1.

4.3.

Etuva de uscare, fie o etuva cu vacuum fixat la

75°C+3°C

fie o etuva cu aer fixat la 1 oo°C+3°C.

5.

Procedură

5.1.

Procedura A(vezi punctul 8.1)

Se cântăresc 5g din probă, cu o aproximație de 1mg, acestea se transferă

într-un cartuș de extracție(4.2) și se acoperă cu un tampon de vată degresat.

Se plasează un cartuș într-un extractor(4.1) și se extrage timp de șase ore cu eter etilic(3.1). Se colectează extractul din eter etilic într-o retortă uscată, cântărită ce conține fragmente de piatră ponce (1).

Se distila solventul. Se usucă reziduul, menținând retorta timp de o oră și jumătate în etuva de uscare(4.3) .

Se lasă să se răcească într-un desicator și se cântărește. Se usucă din nou timp de 30 de minute pentru a se asigura că greutatea uleiurilor și grăsimilor rămâne constantă (pierderea în greutate între două cântăriri succesive trebuie să fie de mai puțin de 1 mg).

5.2.

Procedura B

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor cu referire la conținutul în zinc-bacitracină, flavofosfolipol, fier,

cupru, mangan și zinc*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.355 din 27 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește metode

naționale

de

analiză

pentru

controlul

oficial

al furajelor

cu

referire

la

conținutul

în

zinc-bacitracină, flavofosfolipol, fier, cupru, mangan și zinc, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 16.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 16/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește metode naționale de analiză

pentru controlul oficial al furajelor cu referire la conținutul în zinc-bacitracină, flavofosfolipol, fier, cupru, mangan și zinc

ANEXĂ

la norma veterinară

suspensia la diluția 1/1O cu soluție de clorură de sodiu (4.3). Transmisia luminoasă a suspensiei trebuie să fie de aproximativ 75%, măsurată la o lungime de undă de 650 nm într-un cm de celulă

față de soluția

de clorură

de sodiu (4.3). Această suspensie poate fi menținută pentru o săptămână la cca. 4

QC

4.

Mediu de cultură și reactanți

4.1.

mediu de cultură (b) Carne peptonată

6,0 g

Triptone

4,0

g

Extract de drojdie Extract de carne Glucoză

Agar Apă

3,0 g

1,5 g

1,0 g

10,0 la 20,0 g

1 OOO

ml

ph 6,5 la 6,6 (după sterilizare)

4.2.

Mediu de probă (b) Triptone

10,0 g Extract de drojdie

3,0 g

Extract de carne Glucoză

Agar Tween 80 Apă

1,5 g

1,0

g

10,0 la 20,0 g

1

ml

1 OOO

ml

pH 6,5 (după sterilizare)

4.3.

Soluție de clorură de sodiu 0,8% (w/v): se dizolvă 8 g clorură de sodiu în apă și se diluează până la 1OOO ml; se steriIizează.

4.4.

Amestec de metanol/apă șI acid clorhidric (4.6): 80/17,5/2,5 (v/v/v)

4.5.

Tampon fosfat c , pH 6,5:

Fosfat hidrogenat de potasiu K2HPO4

22,15 g Fosfat dihidrogenat de potasiu KH2PO4

27,85 g. Apă până la

1

OOO ml

4.6.

Acid clorhidric (d: 1,18 la 1,19).

4.7 Acid clorhidric (O,1 M).

4.8.

Hidroxid de sodiu solutie 1 M.

'

4.9.

Sulfit de sodiu solutie cca. 0,5 M

'

4.1O. Soluție roșu de bromcrezol 0,04

%

(w/v): se dizolvă

O,1 g de roșu de bromcrezol în 18,5 ml din soluția de hidroxid de sodiu 0,01 M. Se aduce volumul la 250 ml cu apă și se amestecă.

4.11. Substantă standard: zinc-bacitracină de activitate

cunoscută (în u. i.).

'

5.

Solutii standard

'

Se cântărește o cantitate de zinc-bacitracină standard

(4.11) ce corespunde la 1050 u.i (conform activității indicate). Se adaugă 5 ml de acid clorhidric 0,1 M (4.7) și se lasă 15 minute. Se adaugă 30 ml de apă, se ajustează pH-ul la 4,5 cu tampon fosfat (4.5) (cca. 4 ml}, se aduce la un volum de 50 ml cu apă și se amestecă bine (1 ml = 21 u.i.).

Din această soluție se prepară, prin diluție succesivă cu tampon fosfat (4.5), următoarele soluții:

sa O, 42 u.i./ml S4 0,221 u.i./ml s2 O,105 u.i./ml s1 0,0525 u.i./ml

6.

Prepararea soluțiilor de extract și de probă

6.1

Extract , ie

6.1.1

Premixuri și furaje minerale

Se cântărește o cantitate de probă de 2,0 până la 5,0 g, se adaugă 29,0 ml de amestec (4.4) și 1,0 ml de soluție de sulfit de

sodiu (4.9) și se agită ușor. Se verifică dacă pH-ul este cca. 2. Se agită

1O

minute și se centrifughează. Se prelevează o picătură

corespunzătoare din soluția

de supernatant

și se ajustează pH-ul la 6,5 prin intermediul unei soluții de hidroxid 1 M (4.8) cu un pH-metru sau cu soluție roșu de bromcrezol (4.1 O)

ca indicator. Se diluează cu tampon fosfat (4.5) se obține un conținut dorit de zinc-bacitracină de 0,42 u.i./ml (=u8)

6.1.2.

Concentrate proteice

Se cântărește o cantitate de probă de 10,0 g, se adaugă 49,

O

ml de amestec (4.4) și 1,0 ml de soluție de sulfit de sodiu (4.9) și se agită ușor. Se verifică dacă pH-ul este aproximativ 2. Se agită 1 O

minute. Se adaugă 50 ml de tampon fosfat (4.5), se agită timp de 15 minute și se centrifughează. Se prelevează un volum corespunzător de soluție de supernatant și se ajustează pH-ul la 6,5 prin intermediul soluției de hidroxid de sodiu - 1 M (4.8) cu un pH-metru sau cu soluție roșu de bromcrezol (4.1 O)

ca indicator. Se evaporă până la aproximativ jumătate de volum într-un evaporator rotund la o temperatură ce nu depășește 35QC.

Se diluează cu tampon fosfat (4.5) până se

obține un conținut dorit de zinc-bacitracină de 0,42 u.i./ml (= u8).

6.1.3.

Alte furaje

Se cântărește o cantitate de probă de 10,0 g (20,0 g pentru un conținut dorit de zinc-bacitracină de 5 mg/kg). Se adaugă un amestec de 24,0 ml de amestec (4.4) și 1,0 ml de soluție de sulfit de sodiu (4.9) și se omogenizează timp de

1O

minute. Se adaugă 25 ml tampon fosfat (4,5), se agită timp de

15 minute și se centrifughează. Se iau 20 ml de soluție de supernatant și se ajustează pH-ul până la 6.5 prin intermediul soluției de hidroxid de sodiu - 1 M (4.8) cu un pH-metru sau cu soluție roșu de bromcrezol (4.1O) ca indicator. Se evaporă până la 4 ml într-un evaporator rotund, la o temperatură ce nu depășește 35 °C. Se diluează reziduul cu tampon fosfat (4.5) până se obține un conținut dorit de zinc-bacitracină de 0,42 u i../ml (= u8).

6.2. Soluții probă

Din soluția u8 se prepară soluții u4 (conținut așteptat: 0,21u i./ml), u2 (conținut așteptat: O,105 u.i./ml) și u1 (conținut așteptat: 0,0525 u.i./ml) prin intermediul diluției succesive (1-1) cu tampon fosfat (4.5).

7.

Procedura de testare

7.1.

Însământarea mediului de testare

'

Se însămânțează mediul de testare (4.2) cu o suspensie bacteriană

(3.2)

la aproximativ

50

°e.

Prin

experimentări preliminare pe plăci cu mediu de testare (4.2) se determină

cantitatea

de

suspensie

bacteriană

necesară

pentru

a determina cele mai mari și mai curate zone de inhibiție cu diferite concentratii de zinc-bacitracină.

'

7.2.

Prepararea plăcilor de însămânțare

Difuziunea pe agar este efectuată în plăci utilizându-se patru concentrații din soluția standard (s 8 ,s 4 ,s2,Și s1) și patru concentrații din soluția de testare (u 8

,

u 4

,u 2

și u1). Aceste patru concentrații de extract și standard trebuie, în mod necesar, să fie plasate în fiecare placă. Pentru acest scop, se aleg plăci destul de mari pentru a se permite să fie făcute cel puțin opt godeuri cu un diametru de 1O la 13 mm și la nu mai puțin de 30

mm de centru în mediul agar. Testul poate fi efectuat pe plăci ce constau într-o placă de sticlă cu o față din aluminiu sau un inel din plastic plasat în vârf, 200 mm în diametru și 20 mm înăltime.

'

Se toarnă în plăci o cantitate din mediul însămânțat (4.2)

ca la punctul 7.1. , pentru a se obține un strat gros de aproximativ 2 mm (60 ml pentru o placă de 200 mm diametru), se lasă să se solidifice, se formează godeuri și se pun în acestea volume de probă măsurate cu exactitate și soluții standard (între O,1O și O,15 ml per goden, conform diametrului). Se utilizează fiecare concentrație de cel puțin patru ori astfel

încât fiecare determinare să fie supusă unei evaluări a 32 zone de inhibitie.

'

'

7.3.

lncubatie

Se incubează plăcile timp de 16 până la 18 ore la 30 ± 2

°e

8.

Evaluare

Se măsoară diametrul zonelor de inhibiție cu o aproximație de O, 1

mm. Se înregistrează

valorile medii pentru fiecare concentrație

pe

hârtie

grafică

semilogaritmică

ce

indică logaritmul concentrațiilor în relație cu diametrele zonelor de inhibitie.

'

Se trasează liniile cele mai potrivite, atât pentru soluția

standard cât și pentru extract ca în exemplu de mai jos:

Se determină punctul ăcel mai potrivit" pentru cel mai scăzut nivel standard (SL) utilizând formula:

(a) SL

=

7s1 + 4s2 +S4 - 2sa

10

Se determină punctul ăcel mai potrivit" pentru nivelul standard cel mai ridicat (SH) utilizând formula:

(a)

SH

=

7sa + 4S4 +s2 - 2s1

10

Se calculează în mod similar punctele ăcele mai potrivite " pentru nivelul cel mai scăzut de extract (UL) și nivelul cel mai înalt de extract (UH), prin substituirea u1, u2, U4 și ua cu s1, s2, s 4 și s 8

din formula menționată mai sus.

Se înregistrează valorile calculate ale SL și SH pe aceeași hârtie grafică și se unesc pentru a da linia ăcea mai potrivită" pentru soluția standard. Se înregistrează în mod similar UL și UH și se unesc pentru a da linia ăcea mai potrivită" pentru extract.

În

absenta

oricărei

interferente

liniile

trebuie

fie

paralele. Pentr ' u scopuri practice,

' liniile pot fi considerate

paralele dacă valorile (SH-SL) și (UH-UL) nu diferă mai mult de 10% ca valoare medie a acestora.

Dacă liniile nu sunt paralele fie u1 și s1 fie u8 și s8 pot fi înlăturate și SL, SH, UL și UH calculate, utilizând formula alternativă, pentru a da liniile alternative ăcele mai potrivite":

5S 1

+

2S 2

-

S 4

5s

2

+

2s

4

-

s

8

(a') SL

=

sau

-----sau----

6

6

(b)

SH

=

5S

4

+

2S

2

-S 1

sau

5S

8

+

2S

4

-sS2

6

6

și în mod similar pentru UL și UH. Trebuie să fie întrunite aceleași criterii de paralelism. Faptul că rezultatul a fost calculat pe baza celor trei nivele trebuie să fie notat în raportul final (buletinul de analiză). Atunci când liniile sunt considerate ca fiind paralele, se calculează logaritmul (log a) activității relative

(A)

prin

intermediul

uneia

din

următoarele

formule,

ce

depinzând de faptul dacă au fost utilizate trei sau patru nivele pentru evaluarea paralelismului.

Pentru patru nivele

(c)

log A=

(ul

+u2 +u4 +ug

-s1

-s2 -S4

-s8 )x0,602

u 4

+u

8

+s 4

+s

8

-u 1 -u 2 -s 1 -s 2

Pentru trei nivele

(d)

log A=

(u

1

+u2+u4-s1-s2

-sJx0,401

U4 +s4 -u1 -s1

sau

(d'} log A=

(u2+u4

+u8

-s1-s4

-s8)x0,401

u 8 +s 8 -u 2 -s 2

Activitatea extractului de probă = activitatea standardului relevant x

A

(u8 =

sa

x A)

Dacă activitatea relativă este în afara zonei de variatie de

la

0,5

la

2,0,

atunci

se

repetă

proba

făcând

aju '

stări

corespunzătoare

ale

concentrațiilor

extractului

sau,

dacă

aceasta nu este posibil, ale soluțiilor standard. Atunci când activitatea relativă nu poate fi adusă în gama de valori solicitată, orice rezultat obținut trebuie să fie considerat ca aproximativ și acesta trebuie notat în raportul final (buletinul de analiză).

Atunci când liniile sunt considerate ca nefiind paralele, se repetă determinarea. Dacă paralelismul nu este încă realizat, înseamnă că nu a fost obtinută o determinare satisfăcătoare.

'

Se exprimă rezultatul în miligrame de zinc-bacitracină per

kilogram de furaj.

Pentru patru nivele

Diferenta între rezultatele celor două determinări efectuate

pe

aceeași '

probă

prin

aceeași

analiză

nu

trebuie

să depășească:

2 mg/kg, în valoare absolută, pentru niveluri de zinc-bacitracină până la 1O mg/kg,

20% să fie corelată cu valoarea cea mai mare pentru niveluri de la 10 la 25 mg/kg,

5 mg/kg, în valoare absolută, pentru niveluri de la 25 la 50 mg/kg,

10% din valoarea cea mai mare pentru niveluri mai mari de 50 mg/kg

(1)

1 mg grade de zinc-bacitracină în furaj este echivalent cu 42 unități internaționale (u.i.).

(a)

Pot fi utilizate alte metode, cu condiția să se fi stabilit că acestea utilizează suspensii bacteriene similare.

(b)

Poate fi utilizat orice mediu de cultură comercială de compoziție similară și care dă aceleași rezultate .

2.

Determinarea de flavofosfolipol prin difuziune in mediu de agar

1.

Domeniu și scop

Metoda

este

utilizată

pentru

determinarea flavofosfolipolului din furaje, concentrate și premixuri. Limita inferioară de determinare este 1 mg/kg (1 ppm).

2.

Principiu

Proba este extrasă cu metanol diluat prin încălzire sub reflux.

După

centrifugare,

extractul

este

purificat

(unde

este necesar) prin tratarea cu rășini schimbătoare și prin schimb de ioni și diluat. Activitatea antibiotică a acestuia este determinată prin măsurarea difuziei de flavofosfolipol într-un mediu de agar însămânțat cu Staphyilococcus aureus. Difuzia este indicată prin formarea de zone de inhibiție a creșterii microorganismului. Diametrul acestor zone este considerat a fi direct proporțional cu

logaritmul

concentrației

de

antibiotic

peste

gama

de

concentratii de antibiotic utilizate.

'

3.

Micro-organism: Staphylococcus aureus ATCC 6538 p

3.1.

Mentinerea culturii stoc

'

Se însămânțează mediul de cultură (4.1) în tuburi înclinate

cu Staphylococcus aureus , se incubează timp de 24 de ore la 37

°e,

se depozitează într-un frigider la aproximativ 4

°e

și se reînsământează în fiecare lună în tuburi înclinate.

'

3.2 Prepararea suspensiei bacteriene (pot fi utilizate alte

metode, cu condiția să se fi stabilit că acestea dau suspensii bacteriene similare)

Se pun deoparte două tuburi ce conțin cultura stoc (3.1) și se însămânțează săptămânal. Se incubează timp de 24 de ore la 37

°e

și se depozitează întru-un frigider la aproximativ 4 QC.

Cu 24 de ore înainte de testare, se însămânțează cu această cultură

două până la patru tuburi înclinate ce conțin mediul de cultură (4.1). Se incubează timp de 16 până la 18 ore la 37 °C. Se efectuează o suspensie de cultură în soluție de clorură de sodiu (4.3). Transmisia

luminoasă a suspensiei trebuie să fie de aproximativ 40%, măsurată la la lungimea de undă de 578 nm, într-o celulă de 1 cm în comparație cu soluția de clorură de sodiu. (4.3)

4.

Mediu de cultură și reactivi

4.1

Mediu de cultură

(poate fi utilizat orice mediu de cultură comercial, de compoziție similară și care dă aceleași rezultate, de ex. mediu antibiotic oxoid 1 (cm 327) cu un adaos de agar oxoid n 3 (L 13)).

Carne peptonată

6,0 g

Triptone

4,0 g

Extract de drojdie

3,0 g

Extract de carne

1,5 g

Glucoză

1,0 g

Agar

15.0 g

Apă

1 OOO ml

ph 6,5 (după sterilizare)

4.2

Mediu de probă

4.2.1.

Strat de bază (poate fi utilizat orice mediu de cultură comercial, de compoziție similară și care dă aceleași rezultate, de ex. mediu antibiotic oxoid 2 (cm 335) cu un adaos de agar oxoid n 3 (L 13)).

Carne peptonată

6,0 g Extract de drojdie

3,0 g Extract de carne

1,5 g Agar

10.0 g

Apă

1 OOO ml

ph 6,5 (după sterilizare)

I

4.2.2.

Strat de însământare

Ca pentru punctul 4.1, cu adăugarea a 2.0 g de emulsie siliconată anti-spumantă (de ex. SE 2 din Wacker Chemie Gmnh, Munchen).

4.3. Soluție de clorură de sodiu 0.4% (w/v): se dizolvă 4 g de clorură de sodiu a. p. în apă și se diluează până la 1OOO ml apă sterilă.

4.4

Metanol pur

4.5

Metanol 50 % (v/v): se diluează 500 ml de metanol (4.4) cu 500 ml de apă.

4.6.

Metanol 80% (v/v): se diluează 800 ml de metanol (4.4) cu 200 ml de apă.

4.7.

Tris (hidroximetil) aminometan a.p.

4.8.

Soluție metanolică de clorură de potasiu 1.5 % (w / v): se dizolvă 1.5 g de clorură de potasiu a.p. în 20 ml de apă, se aduce volumul la 100 ml cu metanol (4.4)

4.9.

Schimbător de cationi: sub formă de Dowex 50W x 8, 20 la 50 mesh, sodiu (cat. Serva Nr 41 600) sau echivalent.

4.1O Schimbător de anioni: sub formă de Dowex 1 la 2, 50 la 100 mesh, ci (cat. Serva n 4101O) sau echivalent. Înainte de utilizare, se ține timp de 12 la 14 ore în metanol 80% (4.6.)

4.11

Vată de sticlă

4.12

Hârtie indicatoare de Ph (ph 6.6 până la 8.1).

4.13.

Acid ascorbic

4.14.

Substanță standard: flavofosfolipol de activitate cunoscută

5.

Aparatură

5.1 Tub de sticlă pentru cromatografie, diametru intern: 9 mm, lungime: 150 la 200 mm, dotat cu un dop la partea îngustă a capătului inferior și o legătură de sticlă-cauciuc (porțelan) pentru a se conecta cu pâlnia de scurgere (5.2). la capătul superior

5.2 Pâlnie de scurgere de 250ml, dotată cu un dop și cu o legătură sticlă - cauciuc (sau porțelan)

5.3.

balon conic de 250 ml cu legătură sticlă - cauciuc (sau porțelan)

5.4.

Condensator de reflux cu legătură sticlă - cauciuc (sau porțelan)

6.

Solutii standard

'

Se dizolvă o cantitate

cântărită corect din substanta standard (4.14) în metanol 50°/c, (4.5) și se diluează pentru a s ' e

obține o soluție stoc ce conține 100 ug flavofosfolipol per

mililitru. Se depozitează în baloane cu bușon la 4 QC unde această soluție este stabilă pentru mai mult de două luni.

Din această soluție stoc se prepară, prin diluție succesivă cu metanol 50% (4.5), următoarele soluții:

Sa

0.2 ug/ml

S4

0.1 ug/ml

S2

0.05 ug/ml

S1

0.025 ug/ml

7.

Prepararea extractului

7.1.

Extractie

'

7.1.1.

Concentrate, premixuri și furaje minerale

Se cântărește

o cantitate de probă de 2.O la 5.O g și se adaugă

aproximativ

150

mg

de

acid

ascorbic

(4.13).

Se omogenizează cu 150 ml de metanol 50% (4.5) într-un balon conic

(5.3)

și se ajustează

ph-ul

la 8.1

până

la 8.2, cu aproximativ 400 mg de tris (hidroximetil) aminometan (4.7). Se verifică ph-ul cu hârtie indicatoare (4.12). Se lasă să stea 15 minute, apoi se reajustează

ph-ul de la 8.1 la 8.2 cu tris (hidroximetil) aminometan (4.7) și se fierbe timp de 1O minute sub reflux

(5.4) cu amestecare

constantă.

Se lasă să se răcească,

se

centrifughează

amestecul

și

se

decantează extractul.

7.1.2.

Alte furaje

7.2.

Purificarea

(acest

pas

poate

fi

omis

pentru concentrate, premixuri și furaje minerale)

Se amestecă 11O ml de extract cu 11 g de schimbător de cation (4.9), se fierbe timp de un minut sub reflux (5.4) cu amestecare constantă. Se separă schimbătorul de cation prin centrifugare sau filtrare. Se amestecă 100 ml de extract cu 150 ml de metanol

(4.4)

și se depozitează soluția timp de 12 până la 15 ore la 4 °C. Se filtrează și se îndepărtează masa de flacoane în timpul răcirii.

Se inserează un dop de vată de sticlă (4.11) la capătul unui tub de sticlă (5.1), se toarnă în tub 5ml de schimbător de anioni (4.1O) și se spală coloana cu 100 ml de metanol 80 % (4.6). Utilizând pâlnia (5.2), se transferă în coloană un volum filtrat de cel puțin 100 ml ce este de așteptat să conțină 16 ug de flavofosfolipol (200 ml pentru o probă de 30 g de furaj la 1 ppm). Atunci când se consideră necesar, înainte de utilizarea coloanei, se diluează filtratul cu metanol 80

%

(4.6) pentru a se obține un conținut dorit de flavofosfolipol de 16 ug/100ml. Se ajustează rata de curgere la aproximativ 2 ml / minut. Se înlătură filtratul. Apoi se spală coloana cu 50 ml de metanol 80

%

(4.6) și se înlătură filtratul. Se elutează flavofospfolipolul cu soluție metanolică de clorură de potasiu (4.8) menținând rata de curgere la aproximativ 2 ml / minut. Se colectează 50 ml de

eluat într-un balon gradat, se adaugă 30 ml de apă și se amestecă. Această solutie ar trebui să aibă un continut de

flavofosfolipol de O; 2ug / ' ml (= u8).

'

7.3.

Solutii de testare

'

Atunci când ce consideră necesar (de ex. când etapa de purificare a fost omisă), se diluează extractul obținut ca la punctul 7.1. cu metanol 50

%

(4.5) pentru a

se obține un conținut dorit de flavofosfolipol de 0.2 ug/ml (=Ua).

Din soluția U 8

se prepară soluții U4 (conținut așteptat: 0.1 ug

I

ml), U 2

(conținut așteptat: 0.05 ug / ml) și U1 (conținut așteptat: 0.025 ug / ml) prin intermediul

diluției succesive (1/1) cu metanol 50% (4.5).

8.

Procedura de efectuare a testării

8.1.

Însăn,ânțarea mediului de probă

Se însămânțE ază rnediul de testare (4.2.2) cu suspensie bacteriană (3.2) la aproximativ fiO °C. Prin testări preliminare pe plăci

cu

mediu de testare (4.2.2.)

se

determină cantitatea de suspensie bacteriană necesară pentru a indica cele mai mari și

mai curate zone de inhibitie obtinute cu diferite concentratii de

flavofosfolipol (aproximativ '

30 m ' l/ litru).

'

8.2

Pregătirea placilor

Difuzia pe agar este efectuată în plăci utilizându-se patru concentrații

din s.oluția

standard (S 8

,

84, S2, S1) și patru concentrații din so l uția de testare (U 8

,

IU4, U2, U1). Aceste patru concentrații

de

extract

șl

cele

standard

trebuie,

în

mod obligatoriu, să fie plasate în fiecare placă. Pentru acest scop, se aleg pliîci destul de mari pentru a permite să se efectueze cel puțin opt godeuri în rnediu de agar cu un diametru de 1O până la 13 mrn și n u

n1ai puțin de 30 mn, de centru. Testul poate fi efectuat pe plăci ce constau într-o placă de sticlă cu o fațadă din aluminiu sau un inel din plastic plasat în vârf, 200 mm în dian1etru și 20 mm înălț:ime.

Se toarnă în plăci o cantitate din rnediu (4.2.1) pentru a se obține un strat gros ele aproximativ 1,5 mm (45 ml pentru o placă de 200 rnrn diametru) .

Se lasă să se solidifice și apoi peste st.rat cu o cantitate i

din mediu (4.

- 2) ,se însămânțează ca la punc t ul 8. 1 , pentru a se obține un s t rat gros de 1 mm (30 ml pentru o placă d• 3! 2'.00 mrn d i a nn etru). Se lasă să se solidifice din nou 1

se efectuează godeuri și se pun în acestea volume de probă, măsurate cu exactitate și soluții standard (între

O,1 O

și O,15 ml per gaură )

conform diametrului).

Se utilizează fiecare concentrație de cel puțin patru ori, astfel încât fiecare

d etermina r e să fie supusă unei evaluări

a 32

zone

ele inhibiti

r

1.

'

8.3. Incubare

Se incubează plăcile timp de 16 p ină la 18 ore, la 28 până la 30 QCă

9.

Evaluare

Se măsoară diametrul zonelor de inhibiție cu o aproximație de 0-1 mm. Se înregistrează

valorile •medii pentru fiecare concentrație

pe

hârtie

grafică

semi-logaritmică

ce

indică logaritmul concentrațiilor în relație cu diametrele zonelor de

inhibitie.

'

Se trasează liniile cele mai potrivite, atât pentru soluția

standard cât și pentru extract , ca în exemplu de mai jos:

Se determină punctul ăcel mai potrivit" pentru cel mai scăzut nivel standard (SL) utilizând formula:

(a)

SL=

1s

1

+4s2+s4-2s

3

10

(b)

SH =

7S8 +4S4

+S2

-2S1

10

Se calculează în mod similar punctele ăcele mai potrivite " pentru nivelul cel mai scăzut de extract (UL) și nivelul cel mai înalt de extract (UH), prin substituirea u1, u2,

U4

și ua cu s1, s2,

S4

și s 8

din formula menționată mai sus.

Se înregistrează valorile calculate ale SL și SH pe aceeași hârtie grafică și se unesc pentru a da linia ăcea mai potrivită" pentru soluția standard. Se înregistrează în mod similar UL și UH și se unesc pentru a da linia ăcea mai potrivită" pentru extract.

În

absenta

oricărei

interferente,

liniile

trebuie

fie

paralele. Pentr ' u scopuri practice,

' liniile pot fi considerate

paralele dacă valorile (SH-SL) și (UH-UL) nu diferă mai mult de 10% ca valoare medie a acestora.

Dacă liniile nu sunt paralele fie u1 și s1 fie u8 și s8 pot fi înlăturate și SL, SH, UL și UH calculate, utilizând formula alternativă, pentru a da liniile alternative ăcele mai potrivite":

(

a

') SL

=

- 5 - S -- 1 - + -" 2 - S -- 2 -- - ' S -- 4 ------' 5 -S S

2 a + U 2 - S -" 4 '- - - S -- 8 '-

6

6

(b') SH=

5S4 + 2S2 -sl

sau

5S8 + 2S4 -S2

6 .,...

6

și în mod similar pentru UL și UH. Liniile alternative cele mai potrivite

trebuie să fie verificate pentru paralelism ca mai

înainte. Faptul că rezultatul a fost calculat pe baza celor trei nivele, trebuie să fie notat în raportul final·(buletinul de analiză).

Atunci când liniile sunt considerate ca fiind paralele, se calculează logaritmul activității relative (log A) prin intermediul uneia din următoarele formule

(c)

log A=

(u

,

+u

2

+u4

+U

8

-s, -s

2

-S

4

-S

8

)xo,602

U

4

+U 8

+S 4

+S 8

-u

1

-u

2

-s,-s

2

Pentru trei nivele

(d)

log A=

(u, +U2 +U4

-S\

-S2 -SJx0,401

U

4

+S 4

-U 1

-S 1

sau

(d') log A=

(U

2

+U4 +U

g

-s, -s

4

-S

s

)x0,401

U 8 +S 8 -U 2 -S 2

Activitate reală = activitate presupusă X activitate relativă Atunci când liniile sunt considerate ca nefiind paralele, se

repetă determinarea. Dacă paralelismul nu este încă realizat, se

calculează logaritmul activității relative (log. A) prin intermediul formulei (c). Rezultatul obținut trebuie totuși să fie considerat ca aproximativ

și acesta trebuie să fie notat în raportul final (buletinul de analiză).

1 o.

Repetabilitate

Diferenta între rezultatele celor două determinări efectuate

pe

aceeași

'

probă

prin

aceeași

analiză

nu

trebuie

să depășească:

-

0,5

mg/kg,

în

valoare

absolută,

pentru

conținutul

de flavofosfolipol de la 1 până la 2 mg /kg

-

25% să fie corelată cu valoarea cea mai mare pentru un conținut mai mare de 2 și până la 1O mg/kg

-

20% să fie corelată cu valoarea cea mai mare pentru un conținut mai mare de 1O și până la 25 mg/kg,

-

5 mg/kg, în valoare absolută, pentru un conținut mai mare de 25 mg/kg și până la 50 mg/kg, 10% fiind corelată cu valoarea cea mai mare pentru un conținut de aproximativ 50 mg/kg

3.

Determinarea oligoelementelor: fier, cupru, mangan și zinc

1.

Domeniu și scop

Metoda face posibil să se determine oligoelementele fier, cupru,

mangan

și

zinc

din

furaje.

Limitele

inferioare

de determinare sunt:

Fier (fe): 20 mg/kg Cupru (cu): 1O mg/KG Mangan (mn): 20mg/kg Zinc (zn): 20 mg/kg

2.

Principiu

Proba este introdusă în soluție de acid clorhidric după distrugerea materiilor organice, dacă este cazul. Elementele fier, cupru, mangan și zinc sunt determinate după o diluare corespunzătoare, prin spectrometrie de absorbție atomică.

3.

Reactivi

Comentarii introductive

Pentru

prepararea

reactivilor

și

soluțiilor

analitice

se utilizează

apă liberă de cationii

ce trebuie,

în consecință, determinați, obținută fie prin distilare dublă a apei într-o sticlă de borosilicat

sau

cuarț

sau

prin

tratament

dublu

pe

rășină schimbătoare de ioni.

Reactivii

trebuie

fie

de

același

grad

analitic(p.a). Eliberarea elementului ce trebuie determinat trebuie să fie determinată

printr-un experiment ăorb". Dacă este necesar, reactivii trebuie să fie purificați ulterior.

în locul soluțiilor standard, descrise mai jos, pot fi utilizate solutii comerciale

standard, cu conditia ca acestea să fie

gara ' ntate și verificate înainte de utilizare. '

3.1 Acid clorhidric p.a.(d: 1.19}

3.2.

Acid clorhidirc p.a. (6N).

3.3.

Acid clorhidric p.a. (0.5 N)

3.4.

Acid fluorhidric 38 la 40

%,

(v/v) având un conținut de fier mai mic de 1

mg Fe/litru și un reziduu după evaporare mai mic de 1O mg (ca sulfat)/litru.

3.5.

Acid sulfuric p.a. (d: 1.84.)

3.6.

Peroxid de hidrogen p.a. 30%

3.7.

Soluție de fier standard (1OOOug Fe/ml) preparată după cum urmează: se dizolvă 1g de sârmă de fier p.a. în 200 ml de acid clorhidric 6 n (3.2), se adaugă 16 ml de peroxid de hidrogen (3.6) și se aduce la un litru cu apă

3.7.1.

Soluția de fier standard de lucru (1OO □ g Fe / ml) preparată prin diluarea soluției standard (3.7) 1/9 cu apă.

3.8.

Soluția de cupru standard (1OOO

□ g Cu / ml) preparată după cum urmează: se dizolvă 1 g de cupru sub formă de pulbere (p.a) în 25 ml de acid clorhidric 6 n (3.2), se adaugă 5 ml de peroxid de hidrogen (3.6) și se aduce la un litru cu apă.

3.8.1.

Soluția standard de cupru de lucru (1O

□ g Cu /ml) preparată prin diluarea soluției standard (3.8) 1/9 cu apă și apoi prin diluarea soluției ce rezultă 1/9 cu apă.

3.9.

Soluție

standard

de mangan

(1 OOO

ug mn/ml) preparată după cum urmează: se dizolvă 1 g de mangan sub formă de pulbere (p.a) în 25 ml de acid clorhidric 6 n (3.2) și se aduce la un litru cu apă.

3.9.1.

Soluția standard de mangan de lucru (1O

□ g Mn /ml) preparată prin diluarea soluției standard (3.9) 1 / 9 cu apă și apoi se diluează soluția ce rezultă 1 / 9 cu apă.

3.1O Soluția standard de zinc (1OOO

□ g Zn / ml) preparată după cum urmează: se dizolvă 1g de zinc sub formă de folie (p.a) în 25 ml de acid clorhidric 6n (3.2) și se aduce la un litru cu apă.

3.10.1 Soluția standard de zinc de lucru (1O

□ g Zn /ml) preparată prin diluarea soluției standard (3.1O) 1/9 cu apă și apoi diluarea soluției ce rezultă 1/ 9 cu apă.

3.11

Soluție de clorură de lantan preparată după cum urmează: se dizolvă 12 g de oxid de lantan în 150 ml de apă,

se adaugă 100 ml de acid clorhidric 6 n (3.2) și se aduce la un litru cu apă.

4.

Aparatură

4.1.

Cuptor

cu

muflă

cu

temperatură

reglabilă

șI înregistrare

4.2.

Sticlăria trebuie să fie rezistentă, de tip borosilicat și se recomandă să se utilizeze aparate ce sunt rezervate în mod exclusiv pentru determinări de oligoelemente.

4.3.

Creuzete de platină și creuzete de cuarț

4.4.

Spectrometru

de

absorbție

atomică

ce

întrunește cerințele metodei cu privire la sensibilitatea și precizia gamei de valori solicitate.

5.

Procedură

5.1.

Probe ce conțin materie organică

5.1.1.

Incinerarea și prepararea soluției pentru analiză

(*)

(i)

se

pun 5 până la 1O g de probă, cântărită cu o aproximație de O ,2 mg, într-un creuzet de cuarț sau platină (4.3) (vezi nota(b)), se sicatează într-un cuptor la 105 °C și se introduce creuzetul în cuptorul cu muflă rece (4.1). Se închide cuptorul (vezi nota (c)) și se ridică în mod gradat temperatura de la 450 la 475

QC

timp de aproximativ 90 minute. Se menține această temperatură timp de 4 până la

16

ore (de ex. peste noapte) pentru a se îndepărta materialul carbonatat și apoi se deschide cuptorul și se lasă să se răcească (vezi nota (d.))

Se spală creuzetul cu un total de aproximativ 5 ml de acid clorhidric (3.1) și acesta din urmă se adaugă încet și cu atenție în capsula (poate surveni o reacție viguroasă datorită formării de CO 2 ). Se adaugă acidul clorhidric

(3.1) sub formă de picătură, cu agitare până când se stopează toată efervescența. Se evaporă la sec, amestecând din când în când cu o bagheta de sticlă.

(*) Este posibil ca furajul verde (proaspăt sau uscat) să conțină o cantitate mare de siliciu vegetal, ce poate reține oligoelemente și trebuie să fie, de aceea, îndepărtat. Pentru probe din aceste furaje, deci, trebuie să fie urmată următoarea procedură modificată

Se efectuează operațiunea 5.1.1 (I) până la filtrare. Se spală hârtia de filtru ce conține reziduul ·insolubil, de două ori, cu apă fiartă și se pune într-un creuzet din platină (4.3.). Se dă foc furnalului cu muflă (4.1) la o temperatură mai mică de 550

°C până când tot materialul carbonatat a dispărut complet. Se lasă să se răcească, se adaugă câteva picături de apă, apoi se adaugă între 1O - 15 ml de acid fluorhidric (3.4) și se evaporă până la uscare, la aproximativ 150 °C. Dacă mai rămâne siliciu în reziduu, se dizolvă în câțiva mililitri de acid fluorhidric (3.4) și se evaporă până la uscare. Se adaugă cinci picături de acid sulfuric (3.5) și se încălzește până când nu mai este degajat nici un vapor alb. După adăugarea a 5 ml de acid clorhidric 6 n (3.2) și aproximativ 30 ml de apă, se încălzește, se filtrează soluția într-un balon gradat de 250 ml și se umple până la semn cu apă (concentrație

de

acid

clorhidric

aproximativ

0,5n).

Se procedează apoi cu determinarea de la punctul 5.1.3.

Apoi se adaugă 15 ml de acid clorhidric 6 n (3.2) la reziduul rezultat urmat de aproximativ

120 ml de apă. Se amestecă cu bagheta de sticlă ce trebuie să fie lăsată în capsula și se acoperă capsula cu o sticlă de ceas. Se aduce ușor la fierbere și se menține la punctul de fierbere până când se observă că nu se mai dizolvă. Se filtrează cenușa cu hârtie de filtrare și se colectează filtratul într-un balon gradat, se spală capsula și se filtrează cu 5 ml de acid clorhidric 6n fierbinte (3.2) și de două ori cu apă fiartă. Se completează balonul gradat până la semn cu apă (concentrație de HCI aproximativ 0.5 N).

(ii)

dacă

reziduul

din filtru apare

negru (particule

de carbon), se pune înapoi în cuptor și se incinerează din nou la 450 până la 475 °C . Această incinerare, ce solicită doar câteva ore (aproximativ trei până la cinci ore), se realizează până când cenușa pare albă sau aproape albă. Se dizolvă reziduul cu aproximativ 2 ml de acid clorhidric (3.1), se evaporă până la sec și se adaugă 5 ml de acid clorhidric 6N (3.2). se încălzește, se filtrează soluția în balonul gradat și se completează până la semn cu apă.

Zinc

µg Zn/ml

o

0.05

0.1

0.2 .

0.4

0.6

0.8

ml solutie standard

d '

e

lucru (3.8.1)

(1 ml

=

1O µg Zn) +ml

6N

HCI

o

7

0.5

7

1

7

2

7

4

7

6

7

8

7

+1O ml de soluție de clor lantan (3.11) și se completează până la 100 ml cu apă.

5.1.2.2.

Prepararea soluției pentru analiză

Pentru determinarea de cupru, soluția preparată ca la punctul 5.1.1. poate fi utilizată, în mod normal, direct. Dacă este necesar să se aducă concentrația în cadrul gamei soluțiilor de calibrare,

o porțiune alicotă poate fi pipetată într-un balon gradat și se completează până la semn cu acid clorhidric 0.5 n. (3.3).

Pentru determinarea de fier, mangan și zinc, se pipetează o porțiune alicotă din soluția preparată la punctul 5.1.1. într-un balon gradat de 100 ml, se adaugă 1O ml de soluție de clor lantan (3.11) și se completează până la semn cu acid clorhidric

11

0.5 n (3.3) (vezi, de asemenea, punctul 8 observație")

5.1.2.3.

Experiment ăorb"

Experimentul

11 orb"

trebuie

includă

toate

etapele prescrise de procedură, cu excepția faptului că materialul de probă este omis.

Solutia de calibrare

11

'

0 11

nu trebuie să fie utilizată ca ăorb".

5.1.2.4.

Măsurarea absorbtiei atomice

'

Se măsoară absorbția atomică a soluțiilor de calibrare și a

solutiei ce trebuie analizată, utilizându-se o flacara oxidantă de aer-a '

cetilenă la următoarele lungimi de undă:

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește metoda de calcul pentru valoarea energetică a furajelor combinate pentru păsări*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.185 din 26 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește metoda de calcul pentru valoarea energetică a furajelor combinate pentru păsări, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 17.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 17/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește metoda de calcul pentru valoarea energetică a furajelor combinate pentru păsări

METODA DE CALCUL

a valorii energetice a furajelor pentru păsări

ANEXĂ

la norma veterinară

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește metode de analiză pentru controlul oficial

al furajelor cu privire la conținutul în acid cianhidric, calciu, carbonați, cenușă brută, cenușă brută insolubilă în acid clorhidric, clor din cloruri, ulei de muștar, lactoză, potasiu, sodiu, zahăr,

uree și estimarea activității ureazice a produselor derivate din soia*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.878 din 27 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește metode de analiză pentru controlul oficial al furajelor cu privire la conținutul în acid cianhidric, calciu, carbonați, cenușă brută, cenușă brută insolubilă în acid clorhidric, clor din cloruri, ulei de muștar, lactoză, potasiu, sodiu, zahăr, uree și estimarea activității ureazice a produselor derivate din soia, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Art.

3.

Agenția

Veterinară

și

pentru

Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prevederilor prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 18.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 18/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește metode de analiză pentru controlul oficial al furajelor

cu privire la conținutul în acid cianhidric, calciu, carbonați, cenușă brută, cenușă brută insolubilă în acid clorhidric, clor din cloruri, ulei de muștar, lactoză, potasiu, sodiu, zahăr, uree și estimarea activității ureazice

a produselor derivate din soia

ANEXĂ

la norma veterinară

controlul oficial al furajelor privind umiditatea, bazele azotate volatile, fosforul total și uleiurile și grăsimile brute"

3.

Procedură

Se amestecă bine proba finală, fie mecanic sau manual. Se împarte proba în două părți egale (poate să fie utilizată metoda de împărțire în patru când este cazul). Se menține una din porțiuni într-un container corespunzător, curat și uscat, echipat cu un dop etanș și se pregătesc din cealaltă porțiune sau dintr-o porțiune reprezentativă a acesteia, cel puțin 100g, așa cum s-a indicat mai jos.

3.1.

Furaje ce pot fi măcinate ca atare

Cu excepția cazului când nu s-a specificat de metodele de analiză, după măcinare, dacă e necesar, se cerne întreaga probă printr-o sită cu ochiuri de 1mm (în conformitate cu Recomandarea ISO R 565). Se evită orice supra-măcinare.

Se amestecă proba măcinată și se colectează într-un container corespunzător, curat și uscat, echipat cu un dop etanș. Se amestecă din nou, imediat înainte de cântărirea cantității pentru analiză.

3.2.

Furaje ce pot fi măcinate după uscare

Cu excepția cazului când nu s-a specificat de metodele de analiză,

se usucă proba

pentru a se aduce conținutul

în umiditate

al

acesteia

la

un

nivel

scăzut

de

8-12%,

în conformitate cu procedura preliminară de uscare descrisă în baza punctului 4.3. al metodei de determinare

a umidității menționată la secțiunea 2 de mai sus. Se procedează apoi așa cum s-a indicat la sectiunea 3.1.

3.3.

Furaje lichide sau '

semi-lichide

Se colectează proba într-un container corespunzător, curat și uscat, echipat cu un dop etanș. Se amestecă bine imediat înainte de cântărirea cantității pentru analiză.

3.4.

Alte furaje

Probele ce nu pot fi preparate în conformitate cu una din procedurile

anterioare

trebuie să fie tratate prin orice altă procedură ce asigură că, în fapt, cantitățile cântărite pentru analiză sunt omogene și reprezentative pentru probele finale.

4.

Depozitarea probelor

Probele trebuie să fie depozitate la o temperatură ce nu va

altera compoziția acestora. Probele destinate pentru analiza vitaminelor sau a substantelor ce sunt sensibile în mod deosebit

la lumină, trebuie să fie

' depozitate în containere cu geamuri

fumurii.

B. Prevederi în legătură cu reactivii și aparatura utilizată la metodele de analiză.

1.

Numai dacă nu s-a specificat la metodele de analiză, toți reactivi analitici trebuie să fie puri din punct de vedere analitic.(a.p.). Când se determină micro-elemente, puritatea reactivilor

trebuie să fie controlată printr-un test martor. În funcție

de

rezultatele

obținute,

poate

fie

necesară

o purificare suplimentară a reactivilor.

2.

Orice

operațiune

ce

implică

pregătirea

soluțiilor, diluarea, clătirea sau spălarea, menționate de metodele de analiză, fără indicație în ceea ce privește natura solventului sau a diluantului întrebuințat, implică faptul, că trebuie să fie utilizată apă. Ca regulă generală, apa trebuie să fie demineralizată sau distilată. În cazuri particulare ce sunt indicate de metodele de analiză, aceasta trebuie să fie supusă unor proceduri speciale de purificare.

3.

În legătură cu echipamentul aflat în mod normal în

laboratoarele de control metodele de analiză fac referire numai la acele instrumente sau aparate ce sunt speciale sau necesită utilizare specifică. Acestea trebuie să fie curate, în special

atunci când trebuie să fie determinate cantităti foarte mici de

substante.

'

'

C. Aplicarea metodelor de analiză și exprimarea rezultatelor

1.

Este stabilită, în general, o singură metodă de analiză pentru determinarea fiecărei substanțe din furaje. Atunci când sunt prezentate câteva metode, trebuie să fie indicată, în raportul de analiză, metoda specifică utilizată de laboratorul de control.

2.

Rezultatul prezentat de raportul de analiză trebuie să fie valoarea medie obținută de la cel puțin două determinări,

efectuate pe porțiuni separate de probă și de o repetabilitate satisfăcătoare.

Acest rezultat trebuie să fie exprimat în maniera stabilită de metoda de analiză, cu un număr corespunzător de cifre semnificative și trebuie să fie corectat, dacă este necesar, în funcție de conținutul

de umiditate

al probei finale anterior preparării.

Pregătirea probei pentru analiză

Este esențial ca analizele chimice să fie efectuate pe o probă omogenă. Este totuși posibil să se efectueze unele determinări macroscopice sau microscopice și de asemenea, determinarea umidității, din probă în starea în care aceasta ajunge la laborator. Pentru a satisface aceste două cerințe, proba va fi divizată în două părți. O parte va fi păstrată așa cum este, iar cealaltă poate va fi preparată pentru analiză chimică, după cum urmează. Se divide proba cu aparatură mecanică sau manual, după amestecarea cu grijă a întregii probe pe o suprafață curată și uscată. În caz extrem este preferabil să se utilizeze metoda de divizare în sferturi ce constă în prelevarea de probe pe rând din două secțiuni opuse. În cele din urmă se delimitează pentru analiză o porțiune ce cântărește aproximativ 100g și dacă e necesar, aceasta se mărunțește, astfel încât întreaga probă trece printr-o

sită cu ochiuri de 1mm. Se transferă imediat această probă într-un container uscat, etanș și se sigilează.

Dacă proba este foarte umedă, aceasta trebuie să fie pre­ uscată, pentru a se aduce conținutul umidității la un nivel scăzut, între 8 și 12%. Pentru a se realiza aceasta, se usucă proba la o temperatură potrivită pentru o perioadă de timp adecvată.

Reactivi și aparatură

La descrierea metodelor de analiză sunt mentionate numai

instrumente

sau

aparate

speciale

sau

cele

'

ce

necesită

standarde speciale. Nu se consideră necesar să se menționeze

toate aparatele sau instrumentele ce fac parte din echipamentul de zi cu zi al laboratoarelor de testare.

De

asemenea,

acolo

unde

este

menționată

apa,

în legătură cu realizarea diluării sau spălării, aceasta înseamnă apă distilată. În mod similar, acolo unde este menționată soluția

unui reactiv, fără orice altă indicatie, aceasta înseamnă o

soluție în apă distilată.

'

E primarea rezultatelor

Rezultatul specificat de certificatul de analiză trebuie să fie valoarea medie obținută pe baza a cel puțin două testări. Supus unor prevederi speciale, acesta trebuie să fie exprimat ca un procentaj din proba originală, așa cum a fost când acesta a ajuns la laborator. Nu trebuie să fie prezentat rezultatul cu cifre mai semnificative decât permite acuratețea metodei de analiză.

2.

Determinarea acidului cianhidric

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această

metodă

face

posibilă

determinarea

nivelului acidului cianhidric, liber și combinat sub forma glicozidelor, în furaje și în particular în produse derivate din semințe de in, din făină de manioc și din unele specii de fasole.

2.

Principiu

Proba este suspendată

în apă. Acidul cianhidric este eliberat prin acțiunea enzimelor, antrenat prin distilare cu aburi și colectat într-un volum specific de soluție acidifiată de nitrat de argint. Cianura de argint este separată prin filtrare, iar excesul de nitrat de argint este titrat cu o soluție de tiocianat de amoniu.

3.

Reactivi

3.1.

O suspensie de migdale dulci: se zdrobesc 20 de migdale

dulci confiate

în 100 ml de apă la 37-40°C.

Se controlează

nu existe

acid cianhidric

în cei

1O ml ai suspensiei, utilizând hârtie de picrat de sodiu sau efectuând un test martor, așa cum este descris la ultimul paragraf al punctului

5.

3.2.

10°/o soluție (w/v) de acetat de sodiu, neutră la fenolftaleină.

3.3.

Emulsie anti-spumă (e.g. Silicon)

3.4.

Acid azotic, d20=1,4Og/ml

3.5.

Soluție de azotat de argint: O,O2N

3.6.

Solutie de tiocianat de amoniu: O,O2N.

3.7.

Solut ' ie saturată de sulfat feric de amoniu.

3.8.

Amon '

iac, d20 = O,958g/ml.

4.

Aparatură

4.1.

Cuptor cu termostat fixat la 38°C.

4.2.

Aparat pentru distilare prin antrenare cu aburi, echipat cu un refrigerent cu o piesă extinsă curbată.

4.3.

Baloane de 1000ml cu fundul plat cu dop de sticlă

4.4.

Baie de ulei

4.5.

Biurete gradate de 1120ml.

5.

Procedură

Se cântăresc 2Og din probă, cu o aproximație de 5mg, se introduc într-un balon cu fund plat de 1000ml și se adaugă 50ml de apă și 10ml de suspensie de migdale dulci (3.1). Se pune dopul la balon și se transferă în cuptor, timp de 16ore la 38°C. Se răcește apoi la temperatura camerei și se adaugă 80ml de apă, 10ml de soluție de acetat de sodiu(3.2) și o picătură din emulsia anti-spumă (3.3).

Se

conectează

balonul

la aparatul

de distilare

și se introduce într-o baie de ulei ce a fost mai întâi adusă la o

temperatură cu puțin peste 1 oo 0 c.

Se distila 200ml până la

300ml de lichid, trecând un puternic curent de aburi prin balon și încălzind ușor baia de ulei. Se colectează distilatul într-un pahar Erlenmeyer protejat de lumină și care conține exact 50ml de soluție de azotat de argint O,O2N (3.5) și 1ml de acid azotic (3.4).

Trebuie

se

asigure

tubul

prelungitor

al refrigerentului este imersat într-o soluție de nitrat de argint.

Se transferă conținutul din paharul Erlenmeyer

într-un balon

cotat

de

500ml,

se

completează

cu

apă,

se omogenizeaza și se filtrează. Se iau 250ml din filtrat, se adaugă aproximativ 1ml de soluție de sulfat feric de amoniu (3.7) și se titrează înapoi excesul de nitrat de argint cu soluție de tiocianat

de amoniu 0,02N (3.6)provenita dintr-o biuretă gradată de 1120ml.

Un test martor poate să fie efectuat, dacă este necesar,

aplicând aceeași procedură la 10ml de suspensie de migdale dulci (3.1), omițând că proba trebuie analizată.

6.

Calcularea rezultatelor

Dacă testul martor indică faptul că soluția de azotat de argint 0,02 n a fost consumată, se scade valoarea acesteia din volumul consumat de distilatul probei. 1ml de AgNO3 0,02 n corespunde

la

0,54

mg

de

HCN.

Se

exprimă

rezultatul procentual.

7.

Observatii

Dacă

' proba conține o cantitate mare de sulfiți (ex. boabe

de fasole}, se formează un precipitat negru de sulfit de argint ce este filtrat

împreună

cu un depozit

de cianură

de argint. Formarea acestui precipitat cauzează o pierdere de soluție de nitrat de argint 0,02n, volum ce trebuie să fie scăzut din volumul utilizat pentru a calcula conținutul de HCN. Pentru a face aceasta, se procedează după cum urmează:

Se tratează

depozitul

rămas pe un filtru cu 50ml de amoniac (3.8), pentru a se dizolva cianura de argint. Se spală reziduul în amoniac diluat și apoi se determină conținutul în argint al acestuia. Se convertește valoarea obținută în ml de soluție de azotat de argint 0,02 N.

Conținutul

în HCN al probei poate fi, de asemenea, determinat prin titrarea filtratului amoniacal acidifiat, cu acid azotic.

3.

Determinarea calciului

1.

Scop și domeniu de aplicare

Metoda face posibilă determinarea calciului total din furaje.

2.

Principiu

Proba de analizat este calcinata, cenușa tratată cu acid clorhidric, iar calciul precipitat sub forma de oxalat de calciu. Se dizolvă precipitatul în acid sulfuric și se titrează acidul oxalic ce se formează cu o solutie de permanganat de potasiu.

'

'

3.

Reactivi

3.1.

Acid clorhidric p.a., d20=1,14g/ml

3.2.

Acid azotic p.a.,d 20= 1,40 g/ml

3.3.

Acid sulfuric p.a., d20= 1,13 g/ml

3.4.

Amoniac p.a., d20=O,89 g/ml

l

3.5.

Solutie saturată la rece de oxalat de amoniu p.a..

3.6.

Soluție 3O°/c, (w/v) de acid citric p.a..

3.7.

Soluție 5°/o (w/v) de clorură de amoniu p.a.

3.8.

Soluție 0,04% (w/v) de verde brom crezol

3.9.

Soluție de permanganat de potasiu O,1n

4.

Aparatură

4.1.

Cuptor electric cu circulație a aerului și termostat.

4.2.

Creuzete

din

platină,

siliciu

sau

porțelan

pentru calcinare.

4.3.

Creuzete filtrante cu frita din sticlă de porozitate

G4.

4.4.

Baie de apa.

5.

Procedura

Se cântăresc aproximativ 5g din probă (sau mai mult dacă este necesar) cu o precizie de 1 mg, se calcinează la 55O°c și se transferă cenușa într-un pahar de laborator de 250ml.

Se adaugă 40ml de acid clorhidric (3.1), 60ml de apă și câteva picături de acid azotic (3.2). Se aduce la fierbere și se menține la punctul de fierbere timp de 30 de minute. Se răcește și se transferă soluția într-un balon cotat de 250ml. Se clătește, se completeaza

la semn cu apa, se omogenizează

și se filtrează.

Utilizând o pipetă, se transferă într-un pahar de laborator de 250ml, o cantitate ce conține 1O până la 40mg de calciu, în conformitate cu conținutul în calciu asumat. Se adaugă 1ml de soluție de acid citric (3.6) și 5ml de soluție de clorură de amoniu (3.7).

5.

Se dilueaza cu apă volumul până la aproximativ 100ml.

Se aduce până la punctul de fierbere, se adaugă 8 până la 1O picături de soluție de verde brom crezol (3.8) și 30ml de soluție fierbinte de oxalat de amoniu (3.5). Dacă se formează un precipitat, acesta se dizolvă adăugând câteva picături de acid clorhidric (3.1).

Se

neutralizează

lent

cu

amoniac

(3.4),

sub

agitare constanta până la obtinerea unui

pH de 4.4 pana la 4.6 (ex.: Atunci când indicatorul

își schimbă culoarea). Se plasează paharul de laborator într-o baie de apă la fierbere și se mentine timp de 30 de minute, pentru a permite precipitatului ce s-a format să se depună. Se scoate paharul de laborator din baia de apă. Se lasă ca acesta să stea timp de o oră și se filtrează printr-un creuzet filtrant tip G4.

Se spală paharul de laborator și creuzetul cu apa pana la eliminarea completa a excesului de oxalat de amoniu, constatat prin absenta ionului clor in apa de spalare

Se dizolvă precipitatul de pe filtru în 50ml de acid sulfuric fierbinte (3.3). Se clătește creuzetul cu apă fierbinte și se

completează filtratul până la aproximativ 100ml. Se aduce temperatura până la 70-ao 0

c

și se titrează picătură cu picătură cu o soluție de permanganat de potasiu (3.9) până când este

obținută o culoare roz ce durează timp de 1 minut.

6.

Calcularea rezultatelor

1ml de permanganat de potasiu O,1 n corespunde la 2,004 mg de calciu. Se exprimă rezultatul obținut procentual.

7.

Observatii

7.1.

P '

entru

un

continut

foarte

scăzut

de

calciu

se

procedează după cum urm '

ează: se filtrează precipitatul de

oxalat de calciu printr-o hârtie de filtru liberă de cenușă. După spălare se usucă filtrul și cenușa la

sso 0 c

într-un creuzet de platină. Se redizolvă reziduul în câteva picături de acid

sulfuric

(3.3), se evaporă până la sec, se calcinează din nou la 550°C și se cântărește.

Dacă w este greutatea

sulfatului

de calciu obținut, conținutul în calciu a cantității luată ca o probă

=

W x 0,2944.

7.2 Dacă proba constă numai din substante minerale,

I

A

aceasta se dizolvă în acid clorhidric fără a o calcina mai întâi. ln

cazul produselor precum fosfatul de aluminocalcic ce este dificil de dizolvat în acid, se dizolvă după cum urmează printr-un proces alcalin înainte de dizolvare: se amestecă bine proba ce trebuie analizată într-un creuzet de platină cu un amestec de cinci ori greutatea acesteia, constând în cantități egale de carbonat de potasiu și carbonat de sodiu. Se încălzește cu grijă

până când amestecul este dizolvat complet. Se răcește și se dizolvă în acid clorhidric.

7.3. Se precipită oxalatul de calciu a doua oară, dacă conținutul în magneziu al probei este ridicat.

4.

Determinarea carbonatilor

'

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibil să se determine cantitatea de carbonați, exprimată convențional ca și carbonat de calciu în majoritatea furajelor.

Totuși, în unele cazuri, trebuie să fie utilizată o metodă specială (de ex.: cu carbonat de fier).

2.

Principiu

Carbonații sunt descompuși în acid clorhidric.

Dioxidul de carbon eliberat este colectat într-un tub gradat, iar volumul acestuia comparat

cu cel eliberat în aceleași condiții, printr-o cantitate cunoscută de carbonat de calciu p.a.

3.

Reactivi

3.1.

Acid clorhidric, d=1,1Og/ml.

3.2.

Carbonat de calciu, p.a

3.3.

Acid sulfuric, aproximativ O,1n, colorat cu roșu metil.

4.

Aparatură

Aparatură

Scheibler

-

Dietrich

(vezi

diagrama)

sau aparatura echivalentă.

5.

Procedura

în conformitate cu conținutul în carbonați al probei, se cântărește o porțiune a probei, așa cum se arata în continuare: 0,5g pentru produse ce conțin de la 50 la 100% carbonați, exprimați ca și carbonat de calciu

1g pentru produse ce conțin de la 40 la 50% carbonați, exprimați ca și carbonat de calciu.

2-3g pentru alte produse.

Se plasează porțiunea probei într-un recipient special (4) a aparaturii, echipată cu un tub mic din material indestructibil ce conține

1O

ml

de

acid

clorhidric

(3.1)

și

se

conectează recipientul la aparatură. Se deschide

robinetul cu trei căi (5), astfel încât tubul(1) se conectează cu exteriorul. Se aduce

nivelul lichidului la nivelul de sus, până la semnul zero, utilizând tubul mobil (2) ce este plin cu acid sulfuric colorat (3.3) și conectat la tubul gradat (1). Se deschide

robinetul pentru a se conecta tuburile (1) și (3) și se verifică dacă nivelul este la zero.

Se dă drumul încet la acid clorhidric (3.1) peste porțiunea

de probă, aplecând recipientul(4). Se egalizează presiunea coborând tubul

(2);

Se agită recipientul (4) până când se oprește complet eliberarea de dioxid de carbon.

Se restaurează presiunea aducând lichidul din tuburile (1) și (2) înapoi la același nivel. Se citește după câteva minute, atunci când volumul de gaz a devenit constant.

Se efectuează un test de control în aceleași condiții pe 0,5g de carbonat de calciu (3.2).

6.

Calcularea rezultatelor

Conținutul de carbonați în grame, exprimat ca și carbonat de calciu, ca procent din probă, este calculat utilizând formula:

Vx100

Tx2W

unde:

V=ml de CO2

T =

greutatea în grame a porțiunii de probă W= greutatea în grame a porțiunii de probă

7.

Observatii

7.1.

At '

unci când porțiunea din probă cântărește mai mult

de 2g,

se plasează

mai

întâi 15ml

de apă

distilată

în recipient(4) și se amestecă înainte de a începe testarea. Se utilizează același volum de apă pentru testul de control.

7.2.

Dacă aparatura utilizată are un volum diferit de cel al aparatului Scheibler - Dietrich, porțiunile prelevate din probă și din substanța de control și calcularea rezultatelor trebuie să fie adaptate în consecință.

5.

Determinarea cenușii brute

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibilă determinarea conținutului de cenușă brută al furajelor.

2.

Principiu

Proba este calcinată la 550°C; este cantarit rezidiul.

3.

Reactivi

Soluție 20°/o (w/v) de azotat de amoniu.

4.

Aparatură

4.1.

Plita încinsă;

4.2.

Cuptor electric cu termostat.

4.3.

Creuzete pentru calcinare confecționate din platină sau dintr-un aliaj din platină și aur (10%Pt, 90% Au), fie rectangular

(60x40x25mm)

fie circular (diametru: 60-75mm, înălțime: 20-25mm).

5.

Procedură

Se cântărește proba cu o marjă de aproximativ 5g (2,5 în cazul produselor ce au tendința de a crește în volum) și se plasează

într-un

creuzet

pentru

calcinare

ce inițial

a fost calcinat și tarat. Se plasează creuzetul pe plita de incalzire

și se încălzește treptat până când substanța se carbonizează. Se pune creuzetul într-un cuptor fixat la

550+5°C.

Se menține la această temperatură până când este obținută o cenușă albă, gri deschis sau roșiatică ce pare a fi liberă de particule de cărbune. Se plasează creuzetul într-un exsicator, se lasă să se răcească și se cântărește imediat.

6.

Calcularea rezultatelor

Se calculează cantitatea de reziduu scazand tara. Se exprimă rezultatul procentual.

7.

Observatii

7.1.

Ce '

nușa substanțelor ce sunt dificil de calcinat trebuie

să fie supusă unei calcinări inițiale de cel puțin trei ore, răcită și apoi se adaugă la aceasta (cu grijă, pentru a se evita dispersia cenușii sau formarea

de bulgări)

câteva picături de soluție 20% de azotat de amoniu. Se continuă calcinarea după uscare în cuptor. Se repetă operațiunea cât este necesar, până când este încheiată calcinarea.

7.2.

în cazul substantelor rezistente la tratamentul descris în baza punctului 7 .1.,

se p ' rocedează după cum urmează: după

o calcinare de trei ore, se plasează cenușa în apă fierbinte și se filtrează printr-un filtru mi , c, liber de cenușă. Se calcinează filtrul și conținutul acestuia în creuzetul inițial. Se plasează filtratul în

creuzetul răcit, se evaporă până la sec, se calcinează și se cântărește.

7.3.

În cazul uleiurilor și al grăsimilor, se cântărește cu acuratețe o probă de aproximativ 25 de g într-un creuzet de mărime potrivită. Se carbonizeaza fixând resturile substanței cu o bucată de hârtie de filtru liberă de cenușă. După ardere, se umezește cu cât de puțină apă este posibil. Se usucă și se calcinează, așa cum s-a descris în baza punctului 5.

6.

Determinarea cenușii, insolubilă

in

acid clorhidric

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibil să se determine nivelul de substante minerale ce sunt insolubile în acid clorhidric din

furaje. P ' ot fi utilizate două metode, depinzând de natura probei.

1.1.

Metoda A : aplicabilă furajelor organice simple și majorității furajelor combinate

1.2.

Metoda

B

aplicabilă

compușilor

minerali

și amestecurilor și furajelor combinate al căror conținut în substanțe insolubile în acid clorhidric, așa cum s-a determinat prin metoda a, este mai mare de 1 %.

2.

Principiu

2.1.

Metoda a: proba este calcinată, cenușa este tratata la cald acid clorhidric si adusa apoi la fierbere, iar reziduul insolubil este filtrat și cântărit.

2.2.

Metoda b: proba este tratată cu acid clorhidric. Soluția este filtrată, reziduul calcinat, iar cenușa astfel obținută tratată în conformitate cu metoda A.

3.

Reactivi

3.1.

Acid clorhidric 3n.

3.2.

20% (w/v) soluție de acid tricloracetic.

3.3.

1% (w/v) soluție de acid tricloracetic.

4.

Aparatură

4.1.

Plita încinsă

4.2.

Cuptor electric cu termostat.

4.3.

Creuzete pentru calcinare din platină sau un aliaj din platină și aur (10% Pt, 90% Au), fie rectangular (60x40x25mm) fie circular (diametru: 60-75mm, înălțime: 20-25mm).

5.

Procedură

5.1.

Metoda A:

Se calcinează proba utilizându-se metoda descrisă pentru determinarea cenușii brute. Poate fi, de asemenea, utilizată cenușa obținută din acea analiză.

Se plasează cenușa într-un pahar de laborator, utilizându­ se 75ml de acid clorhidric (3.1). Se aduce încet si se mentine in fierbere inceata timp de 15 minute. Se filtrează soluția fierbinte printr-o hârtie de filtru liberă de cenușă și se spală reziduul cu apă fierbinte până când nu mai este vizibilă reacția acidă. Se usucă filtrul ce cantine reziduul si cenusa într-un creuzet tarat in prealabil la o temp'eratură de nu mai puțin de 550°C și nu mai mult de 700°C. Se răcește într-un exsicator și se cântărește.

5.2.

Metoda B

Se cântăresc 5g din probă cu o aproximație de 1mg și se plasează într-un pahar de laborator de 250-400ml. Se adaugă succesiv 25ml de apă și 25ml de acid clorhidric 3n (3.1), se amestecă și se așteaptă să înceteze efervescența. Se adaugă încă 50ml de acid clorhidric 3N (3.1). Se așteaptă să înceteze orice eliberare de gaz, apoi se plasează paharul de laborator într-o baie cu apă ce fierbe și acesta se menține acolo timp de 30 de minute sau mai mult, dacă este necesar, pentru a se hidroliza bine amidonul ce poate fi prezent.

Se filtrează, în timp ce se încălzește, printr-un filtru liber de

cenușă

și

se spală

filtrul

cu 50ml

de apă fierbinte

(vezi observația 7). Se plasează filtrul ce conține reziduul într-un creuzet

pentru

calcinare,

se usucă

și se calcinează

la o temperatură nu mai scăzută de 550°C și nu mai mult de 700°C. Se plasează cenușa într-un pahar de 250-400ml, utilizându-se 75ml de acid clorhidric 3n (3.1). Se continuă așa cum s-a descris la al doilea subparagraf al punctului 5.1.

6.

Calcularea rezultatelor

Se calculează cantitatea de cenusa insolubila deducand tara. Se exprimă rezultatul procentual.

7.

Observatii

Dacă

'

filtrarea se dovedește dificilă, se reîncepe analiza,

înlocuind cei 50ml de acid clorhidric 3N (3.1) cu 50ml de acid

tricloracetic (3.2.) și spălând filtrul într-o soluție fierbinte de acid tricloracetic (3.3).

7.

Determinarea clorului din cloruri

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibil să se determine cantitatea de clor din cloruri ce sunt solubile în apă, exprimate convențional ca și clorură de sodiu. Aceasta este aplicabilă tuturor furajelor.

2.

Principiu

Clorurile prezente in proba de analizat sunt dizolvate în apă. Dacă produsul conține materie organică,

acesta este clarificat. Soluția este ușor acidifiată cu acid azotic iar clorurile precipită sub formă de clorură de argint, prin intermediul unei soluții de azotat de argint. Azotatul de argint în exces este titrat cu o soluție de tiocianat de amoniu, prin metoda Volhard.

3.

Reactivi

3.1.

Soluție de tiocianat de amoniu O,1n.

3.2.

Soluție de azotat de argint O,1 n.

l

3.3.

Solutie saturată de sulfat feric de amoniu.

3.4.

Acid azotic, d20= 1,38g/ml.

3.5.

Eter dietilic p.a.

3.6 Acetonă p.a.

3.7.

Soluție Carrez I: se dizolvă în apă 21,9 g de acetat de zinc, Zn(CH 3 COO)2 . 2H2O și 3g de acid acetic glacial. Se completează până la 100ml cu apă.

3.8.

Soluție Carrez li: se dizolvă în apă 10,6g de ferocianat de potasiu K 4 [Fe(CN) 6

]

x3H 2 O. Se completează până la 100ml cu apă.

3.9.

Carbune activ p.a., liber de cloruri și neabsorbant al acestora.

4.

Aparatură

Mixer (amestecator) avand o frecventa de rotatie de cca.

35-40rpm.

5.

Procedură

5.1.

Prepararea soluției

în conformitate cu natura probei, se prepară o soluție, așa cum se specifica la pct. 5.1.1., 5.1.2. sau 5.1.3.

În același timp se efectuează un test martor ce omite proba ce trebuie analizată.

5.1.1.

Probe libere de materie organică. Se cântărește, cu o aproximație de 1mg, o proba de lucu de maxim 10g

si care se presupune a nu cantine mai mult de 3 g cloruri si se introduce

intr-un

balon

cotat

de

500ml

cu

400ml

apa

la temperatura de aproximativ 20°C.Se amestecă timp de 30 de minute în amestecator(4.1), se completeaza la semn cu apa , se omogenizează și se filtrează.

5.1.2.

Probe ce conțin substante

organice,

excluzând produsele listate în baza punctului 5.1.3. Se cântăresc cu o precizie de 1mg, o proba de lucru de cca. 5g și se introduc cu 1 g de carbune activ într-un balon cotat de 500ml. Se adaugă 400ml de apă la aproximativ 20°c și 5ml de soluție Carrez I (3.7), se agită și apoi se adaugă 5ml de soluție Carrez

li

(3.8). Se amestecă timp de 30 de minute în amestecatorul (4.1), se completeaza la semn cu apa, se omogenizează și se filtrează.

5.1.3.

Furaje preparate, sroturi și făină de in, produse bogate în făină de in și alte produse bogate în mucilagii sau în substanțe coloidale (de exemplu amidon dextrinizatt).

Se prepară soluția așa cum s-a descris la punctul 5.1.2., dar nu se filtrează. Se decantează (dacă este necesar se centrifughează), se rețin 100ml din lichidul supernatant

și se transferă într-un balon cotat de 200ml. Se amestecă cu acetonă (3.6) și se aduce la volum cu acest solvent, se omogenizează și se filtrează.

5.2.

Titrare

Utilizând o pipetă, se transferă într-un balon Erlenmayer 25-100ml

din filtrat (în conformitate

cu conținutul

de clor

presupus) obținut, așa cum s-a descris în baza punctelor 5.1.1.,

5.1.2 sau 5.1.3. Portiunea

alicota nu trebuie să cantină mai mult de 150mg de C ' I. Se diluează, dacă este necesa ' r, la cel

puțin 50ml cu apă, se adaugă 5ml de acid azotic (3.4), 20ml de soluție saturată de sulfat feric de amoniu (3.3) și două picături de

soluție

de tiocianat

de

amoniu

(3.1)

transferat

prin intermediul unui biurete umplută până la semnul zero. Utilizând o biuretă, se transferă

oluția de azotat de argint (3.2) în așa mod încât este obținut un exces de 5ml. Se adaugă 5ml de

dietil

eter

(3.5)

și

se

agita

puternic

pentru

formarea precipitatului.

Se titrează excesul de azotat de argint cu soluție de

tiocianat de amoniu (3.1) până la obtinerea unei coloratii roșie­ brună persistenta timp de 1 minut.

6.

Calcularea rezultatelor

Cantitatea de clor (w), exprimată ca și clorură de sodiu, prezentă în volumul de filtrat luat pentru titrare, este calculată utilizându-se următoarea formulă:

W=5,845(V1 -V2)mg

unde:

V1= ml de soluție de azotat de argint

O, 1 N adăugată

V2= ml de soluție de tiocianat de amoniu

O, 1 N utilizată pentru titrare.

Dacă testul martor indică faptul că soluția de azotat de argint

O, 1 N a fost consumată, se scade această valoare din volumul (V1- V2).

7.

Observatii

7.1.

T '

itrarea

poate

fi,

de

asemenea,

efectuată

prin potențiometru;

7.2.

În cazul produselor ce sunt foarte bogate în uleiuri și

grăsimi, se realizează o primă degresare cu dietil eter sau eter de petrol

7.3.

În cazul făinii de pește, titrarea poate fi efectuată prin metoda Mohr.

8.

Determinarea uleiului de muștar

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibil să se determine cantitatea de ulei de muștar conținut în brichete, elaborate de speciile Brassica și Sinapis și din furajele combinate ce conțin brichete obținute de la aceste specii și exprimate ca alil izotiacianat ce poate fi antrenat cu aburi.

2.

Principiu

Proba este suspendată în apă. Uleiul de muștar este eliberat prin acțiunea enzimelor, antrenat prin distilare cu etanol și colectat cu amoniac diluat. Soluția este tratată, în timp ce se

încălzește, cu un volum precis de soluție de azotat de argint, apoi se răcește și se filtrează. Excesul de azotat de argint este

titrat cu o solutie de tiocianat de amoniu.

3.

Reactivi

'

3.1.

Muștar alb (Sinapis alba).

3.2.

Etanol 95-96% (v/v).

3.3.

Emulsie anti-spumă (de ex. silicon).

3.4.

Amoniac, d 20 =958g/ml

3.5.

Soluție de azotat de argint O,1N.

3.6.

Solutie de tiocianat de amoniu O,1N.

3.7.

Acid

' azotic, d20= 1,4Og/ml

3.8.

Solutie saturată de sulfat feric de amoniu.

4.

Aparatură

'

4.1.

Balon cotat cu fund plat de 500ml, cu dop rodat de sticlă.

4.2.

Aparat de distilat, echipat cu un refrigerent

șI cu echipament pentru prevenirea antrenării picăturilor mici.

5.

Procedură

Se cântăresc

1Og de probă cu o aproximație de 1mg, se plasează într-un balon cotat cu fundul plat de 500ml și se adaugă 2g de muștar alb mărunțit fin (3.1) (o sursă de enzimă) și 200ml de apă la 2O°C.Balonul se menține la 2O°C timp de aproximativ 2 ore și se agită frecvent. Se adaugă 40ml de etanol (3.2) și o picătură de emulsie anti-spumă (3.3). Se distila aproximativ 150ml și se colectează distilatul într-un pahar

ce conține 20ml de amoniac (3.4), fiind sigur că tubul prelulungitor al refrigerentului este imersat în lichid. Se adaugă la soluția amoniacală 50ml de soluție de azotat de argint O,1 N (3.5) (sau mai mult dacă e necesar}, se plasează o mică pâlnie peste pahar

și se încălzește amestecul pe o baie de apă fiartă, timp de o oră. Se lasă să se răcească, se completează la semn cu apă, se omogenizeaza și se filtrează. Se rețin 100ml de filtrat clar, se adaugă 5ml de acid azotic (3.7) și aproximativ 5ml de

solutie de sulfat feric de amoniu. Se titrează,

în schimb, exce ' sul de azotat de argint cu o soluție O,1N de tiocianat de

amoniu (3.6).

Se efectuează un test martor, aplicând aceeași procedură la 2g de muștar alb fin, omițând proba pentru analiză.

6.

Calcularea rezultatelor

Se scade volumul de soluție O,1N de azotat de argint consumat în testul martor din cel consumat de probă în soluție. Valoarea obtinută redă numărul de ml de solutie O,1N de azotat

de argint co '

nsumat de uleiul de muștar din '

probă. 1ml de

AgNO3 O,1N corespunde la 4,956 mg de izotiocianat alil. Se exprimă rezultatul procentual.

9.

DETERMINAREA LACTOZEI

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibil să se determine nivelul de lactoză din furaje ce conțin mai mult de 0,5% lactoză.

2.

Principiu

Zaharurile sunt dizolvate în apă. Soluția este supusă fermentației cu drojdie de Saccharomyces cerevisiae ce lasă lactoza intactă. După clarificare și filtrare conținutul de lactoză al filtratului este determinat prin metoda Luff-Schoorl.

3.

Reactivi

3.1.

Suspensie

de

Saccharomyces

cerevisiae:

se suspendă

25g

de

drojdie

proaspătă

în

100ml

de

apă. Suspensia

se

va

ține

pentru

o

perioadă

maximă

de

o săptămână, într-un frigider.

3.2.

Soluție Carrez I: se dizolvă în apă 21,9 g de acetat de zinc Zn(CH 3 COO)2 x2H2O și 3g de acid acetic. Se completează până la 100ml cu apă.

3.3.

Soluție

Carrez

li:

se

dizolvă

în

apă

10,6g

de ferocianură de potasiu K 4 [Fe(CN 6

)

]x3H 2 O. Se completează până la 100ml cu apă.

3.4.

Reactiv Luff-Schoorl

ln soluția de carbonat de sodiu(3.4.3)

se adaugă soluție de acid citric (3.4.2) si se agită cu grijă Se adaugă apoi soluția de sulfat de cupru (3.4.1) și se completează până la un litru cu apa.. Se lasă in repaus peste noapte și se filtrează. Se verifica normalitatea reactivului astfel obținut (Cu O,1N; Na2C03 2N). PH-ul soluției trebuie să fie de aproximativ 9,4.

3.4.1.

Soluție de sulfat de cupru: se dizolvă 25 g de sulfat de cupru p.a. CuSO4 x5H2O, ( fara fier), în 100ml de apă.

3.4.2.

Soluție de acid citric: se dizolvă 50g de acid citric

p.a C6HaO7 xH2O în 50ml de apă.

3.4.3.

Soluția de carbonat de sodiu: se dizolvă 143,Bg de carbonat de sodiu anhidru p.a.

în aproximativ 300ml de apă calda. Se lasă să se răcească.

3.5.

Piatră ponce granulată,

fiartă în acid clorhidric, spălată cu apă și uscată.

3.6.

Soluție 30% de iodură de sodiu (w/v).

3.7.

Acid sulfuric 6N.

3.8.

Solutie de tiosulfat de sodiu O,1N.

3.9.

Solu ' ție de amidon: 5g de amidon solubil dizolvat în

30ml de apă se fierbe într-un litru de apă, timp de trei minute. Se lasă să se răcească și dacă este necesar, se adaugă 10mg de iodură de mercur ca prezervativ.

4.

Aparatură

Baie de apă cu termostat stabilit la 38-40°C.

5.

Procedură

Se cântărește 1g de probă cu o aproximație de 1mg și se intoduce

într-un balon cotat de 100ml. Se adaugă 25-30ml de apă. Se plasează balonul într-o baie de apă la fierbere, timp de

30 de minute dupa care se răcește la aproximativ 35°C. Se adaugă 5ml de suspensie de drojdie (3.1) și se omogenizează. Se lasă balonul să stea timp de două ore într-o baie de apă, la o

temperatură

de

38-40°C.

Se

lasă

se

răcească

la aproximativ 20°c.

Se adaugă 2,5 ml de soluție Carrez I (3.2) și se agită timp de 30 de secunde, apoi se adaugă

2,5ml de soluție Carrez

li

(3.3)

și

se

agită

din

nou,

timp

de

30

de

secunde.

Se completează până la 100ml cu apă, se omogenizeaza și se filtrează. Utilizând o pipetă, se reține o cantitate de filtrat ce nu depășește

25ml și care conține de preferință 40-80mg

de lactoză și aceasta se transferă într-un pahar Erlenmeyer de 300ml. Dacă este necesar se iau mai putin de 25ml si se completează până la 25ml cu apă.

Se efectuează în același mod un test martor cu 5ml de suspensie de drojdie. (3.1).

Se determină continutul în lactoză în conformitate cu metoda Luff-Schoorl, du '

pă cum urmează: se adaugă exact

25ml de reactiv Luff-Schoorl (3.4) și două granule de piatră ponce

(3.5).

Se

agită

mecanic,

în

timp

ce

se

încălzește deasupra unei flăcări libere, la înălțime medie și se aduce lichidul la fierbere în aproximativ două minute. Se plasează paharul

Erlenmayer

pe o sita de azbest

cu o gaură de aproximativ 6cm în diametru sub care a fost aprinsă flacăra. Flacăra trebuie să fie reglată în așa fel incat numai baza Erlenmeyer-ului să fie încălzită. Se ataseaza un refrigerent de reflux la paharul Erlenmeyer. Se

fierbe timp de 1 O

minute. Se răcește imediat în apă rece și după aproximativ 5 minute se titrează după cum urmează:

Se adaugă 10ml de soluție de iodură de potasiu (3.6) și imediat după aceea (cu grijă, datorită riscului de spumare abundentă) se adaugă 25 ml de acid sulfuric 6N (3.7). Se titrează cu soluție de tiosulfat de sodiu

O , 1N (3.8) până când apare o culoare galbuie, se adaugă

solutie

de amidon ca indicator (3.9) și se continua titrarea pana la atingerea virajului.

Se efectuează aceeași titrare pe un amestec măsurat cu acuratețe de 25ml de reactiv Luff-Schoorl (3.4) și 25ml de apă,

după care se adaugă 10ml de iodură de potasiu (3.6) și 25 ml de acid sulfuric 6N (3.7) fără fierbere.

6.

Calcularea rezultatelor

Utilizându-se tabelul atașat, se stabilește cantitatea de lactoză, în mg ce corespunde diferenței dintre rezultatele celor două titrări, exprimată în ml de tiosulfat

O, 1N.

Se

exprimă

rezultatul

(ca

parti

de

lactoza

anhidra) procentual..

7.

Observatie

Pentru '

produse

ce conțin

mai mult

de 40°/o

zahăr

fermentabil, se utilizează mai mult de 5ml de suspensie de drojdie (3.1).

1O. Determinarea potasiului

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibil să se determine nivelul de potasiu din furaje.

2.

Principiu

Proba este calcinată iar cenușa dizolvată în acid clorhidric. Conținutul în sodiu al soluției este determinat prin fotometrie cu flacără, în prezența clorurii de cesiu și a azotatului de aluminiu. Adăugarea

acestor

substanțe

elimină

în

mare

măsură interferența elementelor perturbatoare.

3.

Reactivi

3.1.

Acid clorhidric p.a., d= 1,12g/ml.

3.2.

Clorură de cesiu p.a

3.3.

Azotat de aluminiu Al (NO3)3 x9 H2O, reactiv cu scop general.

3.4.

Clorură de potasiu p.a. , anhidra.

3.5.

Agent de încărcare: se dizolvă 50 g de clorură de cesiu (3.2) și 250g de azotat de aluminiu în apă (3.3), se completează

până la un litru cu apă și se omogenizează. Se depozitează în sticle de plastic.

3.6.

Soluție standard de potasiu: se dizolvă 1,907g de clorură de potasiu în apă (3.4), se adaugă 5ml de acid clorhidric (3.1),

se

completează

până

la

un

litru

cu

apă

și

se omogenizează.

Se depozitează

în sticle de plastic. 1ml al acestei soluții conține 1,00mg de potasiu.

4.

Aparatură

4.1.

Creuzete din platină, siliciu sau porțelan, prevăzute, dacă e necesar, cu capace.

4.2.

Cuptor electric cu termostat.

4.3.

Flamfotometru

5.

Procedură

5.1.

Analiza probei

Ca regulă generală, se cântăresc 1O g din probă, cu o aproximație

de

10mg,

se

plasează

într-un

creuzet

și

se calcinează la 450°C, timp de trei ore. După răcire se transferă cantitatea de cenușă într-un balon gradat de 500ml, utilizându­ se 250-300ml de apă și se adaugă apoi 50ml de acid clorhidric (3.1). Când

a încetat

eliberarea

de dioxid de carbon, se încălzește soluția și se menține temperatura la aproximativ go 0 c, timp de două ore, agitându-se ocazional. După răcire la

temperatura camerei, se completează până la semnul cu apă, se omogenizeaza și se filtrează. Se transferă într-un balon gradat de 100ml o portiune alicota din filtratul ce conține maxim 1,0 mg de potasiu, se adaugă 10,0 ml de agent de încărcare (3.5),

se

completează

până

la

semnul

cu

apă

și

se omogenizează. În cazul unor cantități de potasiu mai mari, se diluează soluția ce trebuie analizată în proporții potrivite, înainte de a se adăuga agentul de încărcare.

Tabelul de mai jos e dat ca un ghid pentru o probă de

aproximativ 1Og.

Continut presupus

de potasiu din proba(% K)

Factor de dilutie

Parte alicota in ml

pana la 0,1

-

50

0.1 pana la 0.5

-

10

0.5 pana la 1.0

-

5

1.0 pana la 5.0

1:1O

10

5.0 pana la 1O.O

1:10

5

1O.O pana la 20.0

1:20

5

Se măsoară prin fotometrie cu flacără la

o lungime de undă de 768nm. Se calculează rezultatul prin intermediul curbei de calibrare.

5.2.

Curbă de calibrare

Se plasează exact 10ml

de soluție standard (3.6) într-un balon gradat de 250ml, se completează până la semn cu apă și se omogenizează. Se plasează în baloane gradate de 100ml exact 5,1O,15, 20 și 25ml din această soluție, corespunzând respectiv la

cantitățile de potasiu de 0,2,

0,4,

0,6, O, 8 și 1,0mg/ml. Se completează seriile cu baloane martor ce nu conține

soluție

standard.

Se adaugă

1O ml de agent

de încărcare (3.5) fiecărui balon, se completează până la semn cu apă și se omogenizează. Se efectuează măsurătorile, așa cum s-a indicat la 5.1. Curba de calibrare este în general aliniată la concentrația de potasiu de 1mg la 100ml de soluție.

6.

Calcularea rezultatelor

Se exprimă rezultatul ca procent din probă.

7.

Observatii

Nu es ' te întotdeauna necesar să se adauge

agentul de

încărcare

(3.5) pentru

a se elimina interferența elementelor perturbatoare.

11. Determinarea sodiului

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibil2i determinarea nivelului de sodiu din furaje.

2.

Principiu

Proba

este

calcinată

iar

cenușa

dizolvată

în

acid clorhidric. Conținutul în sodiu al soluției este determinat prin fotometrie

cu flacără,

în prezența

clorurii

de cesiu

și a azotatului de aluminiu. Aditia acestor substante elimină în mare

măsură interferența elemen ' telor perturbatoare. '

3.

Reactivi

3.1.

Acid clorhidric p.a., d= 1,12g/ml.

3.2.

Clorură de cesiu p.a

3.3.

Azotat de aluminiu Al

(N0

3 )3 x9

H20,

reactiv cu scop general.

3.4.

Clorură de potasiu p.a. , anhidra.

3.5.

Agent de încărcare: se dizolvă 50 g de clorură de cesiu (3.2) și 250g de azotat de aluminiu în apă (3.3),

se completează

până la un litru cu apă și se omogenizează. Se depozitează în sticle de plastic.

3.6.

Soluție standard de sodiu: se dizolvă în apă 2,542g de clorură de sodiu (3.4), se adaugă 5ml de acid clorhidric (3.1), se completează până la un litru cu apă și se omogenizează. Se depozitează în sticle de plastic. 1ml din aceste soluții conține 1,00mg de sodiu.

4.

Aparatură

4.1.

Creuzete din platină, siliciu sau porțelan, prevăzute, dacă e necesar, cu capace.

4.2.

Cuptor electric cu termostat.

4.3.

Flamfotometru

5.

Procedură

5.1.

Analiza probei

Ca regulă generală se cântăresc 1O g din probă, cu o aproximație de 10mg, se plasează într-un creuzet (4.2) și se calcinează

la

450°C

timp

de

trei

ore.

Se

evită supraîncălzirea(aprinderea). După răcire se transferă cantitatea de cenușă

într-un balon gradat de 500ml, utilizându-se 250- 300ml de apă și se adaugă apoi 50ml de acid clorhidric (3.1). Când

a

încetat

toată

eliberarea

de

dioxid

de carbon,

se încălzește soluția și se menține temperatura

la aproximativ 90°C timp de două ore, agitându-se ocazional. După răcire la temperatura camerei, se completează până la semn cu apă, se omogenizeaza și se filtrează. Se transferă într-un balon gradat de 100ml o portiune alicota din filtrat ce conține un maxim de 1,0 mg de potasiu, se adaugă 10,0 ml de agent de încărcare (3.5),

se

completează

până

la

semn

cu

apă

și

se omogenizează.

În cazul unor niveluri de sodiu mai mari se diluează soluția ce trebuie analizată în proporții potrivite, înainte de a se adăuga agentul de încărcare.

Tabelul de mai jos e redat ca ghid pentru o probă de aproximativ 1 Og.

Continut presupus de sodiu din probă

(%

Na)

Factor de dilut , ie

Parte alicota,tn ml

pana la 0.1

-

50

0.1 până la 0.5

-

10

0.5 până la 1.0

-

5

1.0 până la 5.0

1:10

10

5.0 până la 1O.O

1:10

5

1O.O până la 20.0

1:20

5

Se măsoară intensitatea radiatiei emise la o lungime de undă de 589nm. Se calculează rezultatul prin intermediul curbei de calibrare.

5.2.

Curbă de calibrare

Se plasează exact 10ml de soluție standard (3.6) într-un balon gradat de 250ml, se completează până la semn cu apă

și se omogenizează. Se plasează în baloane gradate de 100ml exact 5,1 O, 15,20 și 25ml din această soluție, corespunzând respectiv la

cantități de sodiu de 0,2,

0,4,

0,6,

O,

8 și 1,0mg/ml. Se completează seriile cu balene martor ce nu conțin soluție standard. Se adaugă 1 O

ml de agent de încărcare (3.5) fiecărui balon, se completează până la semn cu apă

și se omogenizează. Se efectuează măsurători, așa cum s-a indicat la

5.1.

Curba

de

calibrare

este

în

general

aliniată

la concentrația de sodiu de 1mg la 100ml de soluție.

6.

Calcularea rezultatelor

Se exprimă rezultatul ca procent din probă.

7.

Observatii

7.1.

Pe '

ntru produse ce conțin mai mult de 4% sodiu este

preferabil să se calcineze substanța timp de două ore într-un creuzet cu capac. După răcire se adaugă apă, se aduce apa în suspensie prin intermediul unui fir de platină, se usucă și se calcinează din nou, timp de două ore, într-un creuzet cu capac.

7.2.

Dacă proba constă numai din substanțe minerale, se dizolvă fără o calcinare prealabilă.

12. Determinarea zahărului

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibil să se determine cantitatea de zaharuri reduse și toate zaharurile după inversie, exprimată ca glucoză sau când este cazul ca sucroză, convertită de factorul 0,95. Această metodă este aplicabilă furajelor combinate. Sunt prevăzute

metode

speciale

pentru

alte

furaje.

Când

este necesar, trebuie să fie măsurată separat lactoza

și trebuie să se tină cont de aceasta atunci când se calculează rezultatele.

2.

P '

rincipiul

Extractia

zaharurilor

dintr-o

probă

cu

un amestec.Clarificarea solutiei obtinute cu solutiile Carrez I si li.Separarea etanolului si determinarea zaharurilor cu reactiv Luff-Schoorl înainte si dupa invertire .

3.

Reactivi

3.1.

Etanol

40%

(v/v)

d 20

=0,948g/ml

neutralizat

m

prezenta de fenolftaleină:

3.2.

Soluție Carrez I: se dizolvă 21,9g de acetat de zinc Zn(CH 3 COO) 2 .2H2O și 3g de acid acetic glacial în apă. Se completează până la 100ml cu apă.

3.3.

Soluție Carrez

li:

se dizolvă 10,6g de ferocianură de potasiu K4Fe(CN6), 3H2O în apă. Se completează până la 100ml cu apă.

3.4.

Soluție O,1% (w/v) de metil oranj.

3.5.

Acid clorhidric 4n.

3.6.

Acid clorhidric O,1n.

3.7.

Solutie de hidroxid de sodiu O,1n.

3.8.

Reac ' tiv Luff-Schoorl

3.8.1

Soluție de cupru: se dizolvă 25g de sulfat de cupru

p.a CuSO4x 5H2O (fara) fier, în 100ml de apă.

3.8.2

Soluție de acid citric: se dizolvă 50g de acid citric A.R., C6HaO7xH2O în 50ml de apă.

3.8.3

Soluție de carbonat de sodiu: se dizolvă 143,8g de

carbonat de sodiu anhidru p . a. în aproximativ 300ml de apă calda. Se lasă sa se raceasca.

Amestecand cu atentie, se pune soluția de acid citric (3.8.2) peste soluția de carbonat de sodiu (3.8.3). Se adaugă soluția de sulfat de cupru (3.8.1) și se completează până la un litru cu apă. Se lasă in repaus peste noapte și apoi se filtrează. Se

verifica

normalitatea

reactivului

astfel

obținut

(Cu O,1 N;Na2CO 3

2N). PH-ul soluției trebuie să fie de aproximativ 9,4.Se lasa sa se raceasca.

3.9.

Soluție de tiosulfat de sodiu O,1n.

3 . 1O .

Soluție de amidon:

Sg de amidon solubil dizolvat în 30ml de apă se fierb intr-un litru de apa, trei minute, se lasă să se răcească și dacă e necesar, se adaugă 10mg de iodură de mercur ca prezervativ.

3.11.

Acid sulfuric 6N.

3.12.

Soluție 30% (w/v) de iodură de potasiu.

3.13.

Piatră ponce granulată, fiartă în acid clorhidric, spălată în apă și uscată.

3.14.

3-metilbutan-1-ol.

4.

Aparatură

Mixer(agitator) cu f ecvență rotatorie de 35-40 rpm.

5.

Procedură

5.1.

Extracția probei

Se cântăresc 2,5g din probă cu o aproximație de 1mg și se introduc într-un balon cotat de 250ml. Se adaugă 200ml de etanol (3.1) și se agita mecanic

timp de o oră. Se adaugă 5ml de soluție Carrez I (3.2) și se agită timp de un minut apoi se mai adaugă 5ml de soluție Carrez li (3.3) agitand din nou, timp de 1 minut.

Se

completează

la

volum

cu

etanol

(3.1),

se omogenizează și se filtrează.

Se rețin 200ml din filtrat și se evaporă la aproximativ jumătate din volum, pentru a se elimina majoritatea

etanolului.

Se

transferă

întreaga

cantitate

din reziduul de evaporare într-un balon cotat de 200ml, utilizându­ se apă fierbinte, se răcește, se aduce la volum cu apă, se omogenizează

și se filtrează,

dacă este necesar.

Această soluție va fi utilizată pentru

a se determina cantitatea de zaharuri reduse și după invertire, a zaharului total.

5.2.

Determinarea zaharurilor reducatoare

Utilizându-se o pipetă, se ia o cota parte din filtrat(5.1) sa nu depaseasca 25ml de soluție si care sa nu conțin mai puțin de 60mg de zaharuri reduse, exprimate ca glucoză. Dacă e necesar se iau mai putin de 25ml si se completează până la 25ml cu apă distilată și se determină conținutul de zaharuri reduse

prin metoda Luff-Schoorl. Rezultatul este exprimat ca procent al glucozei din probă.

5.3.

Determinarea zaharurilor totale după invertire

Utilizându-se

o pipetă,

se iau

50ml de soluție

și se transferă

într-un balon cotat de 100ml. Se adaugă câteva picături de soluție de metil oranj (3.4) apoi, cu grijă și agitând continuu, se adaugă acid clorhidric 4N (3.5), până când lichidul virează spre un roșu accentuat. Se adaugă 15ml de acid clorhidric O,1 N (3.6), se imersează rapid balonul într-o baie de apă la fierbere și se ține acolo timp de 30 de minute. Se răcește rapid la aproximativ 20°c și se adaugă 15ml de soluție de hidroxid de sodiu O,1n. Se completează apoi până la 100ml cu apă și se omogenizează. Se rețin cel mult 25ml ce conțin mai puțin de 60mg de zaharuri reduse exprimate ca glucoză. Dacă e necesar se iau mai putin de 25ml si se completează până la 25ml cu apă distilată și se determină conținutul de zaharuri

reduse prin metoda Luff-Schoorl. Rezultatul este exprimat ca procent de glucoză sau, unde e cazul, sucroză, multiplicându­ se cu factorul 0,95.

5.4.

Titrare prin metoda Luff-Schoorl

Utilizându-se o pipetă, se iau 25ml de reactiv Luff-Schoorl (3.8) și se transferă într-un pahar Erlenmeyer de 300ml.Se adaugă 25ml de soluția clarificată de zahăr. Se adaugă 2 granule de piatră ponce (3.13), se încălzește, se agită manual deasupra unei flăcări libere la înălțime medie și se aduce lichidul la fierbere în aproximativ două minute. Se instaleaza imediat balonul Erlenmeyer pe o sita azbest, cu o gaură de aproximativ 6cm în diametru, sub care a fost aprinsă o flacără. Flacăra

va fi reglată

în așa fel ca numai baza balonului Erlenmeyer să fie încălzită. Se atașează un refrigerent de reflux la paharul Erlenmeyer. Se fierbe timp de exact 1O minute. Se răcește imediat în apă rece iar după aproximativ cinci minute se titrează după cum urmează:

Se adaugă 10ml de soluție iodată de potasiu (3.12) și imediat după aceea (cu grijă, datorită riscului de spumare abundentă), se adaugă 25ml de acid sulfuric 6n (3.11). Se titrează cu o soluție de tiosulfat de sodiu O,1n (3.9) până când apare o culoare galbuie, se adaugă solutie de amidon (3.1O) și se finalizează titrareapana la atingerea virajului.

Se efectuează aceeași titrare pe un amestec măsurat cu acuratețe de 25ml de reactiv Luff-Schoorl (3.8) și 25ml de apă, după ce se adaugă 10ml de soluție de iodură de potasiu (3.12) și 25ml de acid sulfuric 6n (3.11), fără fierbere si se titrează identic

6.

Calcularea rezultatelor

Utilizând tabelul de mai Jos se stabilește cantitatea de glucoză în mg ce corespunde diferenței dintre valorile celor două titrări,

exprimată

în mg de tiosulfat

de sodiu

O,1n; rezultatele se exprima procentuală

7.

Proceduri speciale

7.1.

În cazul furajelor ce sunt bogate în melasă și alte furaje ce nu sunt în particular omogene, se cântăresc 20g și se trec cu 500ml de apă într-un balon cotat de un litru. Se agita timp de o oră apoi se clarifică utilizând reactivii Carrez I (3.2) și

li (3.3), așa cum s-a descris la punctul 5.1. utilizându-se totuși, de data aceasta, de patru ori cantitățile din fiecare reactiv. Se aduce la volum cu etanol 80% (v/v).Se omogenizează și se filtrează. Se elimină etanolul, așa cum s-a descris la punctul

5.1. Dacă nu există amidon dextrinizat,

se aduce la volum cu apă distilată.

7.2.

În cazul melasei și al subproduselor ce sunt bogate în zahăr și aproape libere de amidon (roșcove, brichete de sfeclă etc.), se cântăresc 5g, se trec într-un balon cotat de 250ml, se adaugă 200ml de apă distilată și se agita timp de o oră sau mai mult, dacă e necesar. Se clarifică utilizând reactivii Carrez I (3.2) și li (3.3) așa cum s-a descris la punctul 5.1. Se aduce la volum cu apă rece,

se omogenizează

și se filtrează.

Se continuă așa cum s-a descris la punctul 5.3., pentru a se determina cantitatea de zaharuri totale.

8.

Observatii

8.1.

Pe '

ntru a se preveni spumarea este recomandabil să

se

adauge

(indiferent

de

volum)

aproximativ

1ml

de

3- metilbutan-I-ol (3.14) înainte de fierbere cu reactiv Luff-Schoorl.

8.2.

Diferența

dintre

conținutul

total

de

zahar

după invertire,

exprimat

ca

glucoză

și

conținutul

de

zaharuri reducatoare,

exprimat ca glucoză, multiplicat cu 0,95, redă conținutul procentual de sucroză.

8.3.

Pentru

a

se

determina

continutul

de

zaharuri reducatoare, excluzând lactoza, două metod '

e pot fi adoptate:

8.3.1.

Pentru o calculare aproximativă, se multiplică cu 0,675 conținutul de lactoză stabilit printr-o oarecare metodă de analiză și se scade rezultatul obținut din conținutul zaharurilor reducatoare

8.3.2.

Pentru o calculare precisă a zaharurilor reducatoare,

excluzând lactoza, aceeași probă trebuie să fie utilizată pentru cele două determinări finale. Una din analize este efectuată pe o parte din soluția obținută la punctul 5.1., cealaltă pe partea soluției

obținute

în timpul determinării

lactozei

de metoda stabilită pentru acel scop (după fermentarea celorlalte tipuri de zaharuri și clarificare).

În

ambele

cazuri

cantitatea

de

zahăr

prezentă

este determinată prin metoda Luff-Schoorl și calculată în mg de

glucoză. Una din valori este scăzută din cealaltă, iar diferența este exprimată procentual.

Exemplu:

Cele două volume preluate corespund, pentru fiecare determinare, la o probă de 250mg.

În primul caz sunt consumați 17ml de soluție de tiosulfat

de sodiu O,1N, corespunzând la 44,2mg de glucoză.

În al doilea caz sunt consumați 11ml, corespunzând la 27,6mg de glucoză.

Diferența este de 16,6mg de glucoză.

Conținutul de zahar reducator (excluzând lactoza), calculat ca glucoză, este:

4x16,6

= 6,64%

10

Tabel de valori pentru 25ml de reactiv Luff-Schoorl

ml de Na2S20 3

O,1N, 2 minute de încălzire, 1O minute de fierbere

Na2 S2 Os Glucoză, fructoză

zahar invertit

0,1N

ml

mg

C5H1206

diferentă

mg

diferență

mg

diferent , ă

0,1N

ml

1

2.4

2.4

'

3.6

3.7

3.9

3.9

1

2

4.8

2.4

7.3

3.7

7.8

3.9

2

3

7.2

2.5

11.0

3.7

11.7

3.9

3

4

9.7

2.5

14.7

3.7

15.6

4.0

4

5

12.2

2.5

18.4

3.7

19.6

3.9

5

6

14.7

2.5

22.1

3.7

23.5

4.0

6

7

17.2

2.6

25.8

3.7

27.5

4.0

7

8

19.8

2.6

29.5

3.7

31.5

4.0

8

9

22.4

2.6

33.2

3.8

35.5

4.0

9

10

25.0

2.6

37.0

3.8

39.5

4.0

10

11

27.6

2.7

40.8

3.8

43.5

4.0

11

12

30.3

2.7

44.6

3.8

47.5

4.1

12

13

33.0

2.7

48.4

3.8

51.6

4.1

13

14

35.7

2.8

52.2

3.8

55.7

4.1

14

15

38.5

2.8

56.1

3.9

59.8

4.1

15

16

41.3

2.9

59.9

3.9

63.9

4.1

16

17

44.2

2.9

63.8

3.9

68.0

4.2

17

18

47.1

2.9

67.7

4.0

72.2

4.3

18

19

50.0

3.0

7.1.7

4.0

76.5

4.4

19

20

53.0

3.0

75.7

4.1

80.9

4.5

20

21

56.0

3.1

79.8

4.1

85.4

4.6

21

22

59.1

3.1

83.9

4.1

9Q.O

4.6

22

23

62.2

88.0

94.6

23

14.

Determinarea ureei

1.

Scop și domeniu de aplicare

Această metodă face posibil determinarea nivelului de uree din furaje.

2.

Principiu

Proba

este

suspendată

în

apă

cu

un

agent

de

de clarificare.

Suspensia

este

filtrată.

Conținutul

de

uree

al filtratului

este

determinat

după

adăugarea

a

4- dimetilaminobenzaldehidă

(4-DMAB),

măsurând

densitatea optică la o lungime de undă de 420nm.

3.

Reactivi

3.1. Solutie de 4-dimetilaminobenzaldehidă: de dizolvă 1,6g de 4-DMA '

B p.a. în 100ml de etanol 96°/o și se adaugă

10ml de acid clorhidric p.a.. (d 20 =1,19g/ml). Acest reactiv poate fi folosit pentru o perioadă de maximum două săptămâni.

3.2. Soluție Carrez I: se dizolvă 21,9g de acetat de zinc, Zn (CH 3 C00) 2 x 2H20 și 3g de acid acetic glacial în apă. Se completează până la 100ml cu apă.

3.3. Soluție Carrez li: se dizolvă 10,6g de ferocianură de potasiu în apă, K4Fe(CN) 6

,

3H20. Se completează până la 100ml cu apă.

3.4. Carbune activ p.a. ce nu absoarbe uree (ce trebuie controlată).

3.1.

Soluție O,1%(w/v) de uree p.a.

4.

Aparatură

4.1.

Mixer (agitator) cu frecventa rotatorie de aproximativ 35-4Orpm.

4.2.

Eprubete: 16Ox 16mm cu dop rodat de sticlă.

4.3.

Spectrofotometru.

5.

Procedură

5.1.

Analiza probei

Se cântăresc 2g de probă cu o aproximație de 1mg și se introduc cu 1g carbune activ (3.4) într-un ·balon cotat de 500ml. Se adaugă 400ml de apă și 5ml de soluții Carrez I (3.2) și

11

(3.3). Amestecul se agita timp de 30 de minute cu ajutorul agitatorului rotativ. Se completează la semn cu apă, se agită și se filtrează.

Din filtratul clar si incolor se iau 5ml si se introduc înt-o eprubeta cu dop slefuit. Se adaugă 5ml de soluție 4-DMAB (3.1) și se omogenizeaza. Se pregateste in paralel o solutie martor, procedand conform pct. 5.1 Se introduc eprubetele cu solutia de analizat si respectiv cu solutia martor într-o baie de apă

si se mentin 15 minute

la 20°c.

Apoi se măsoară extinctia solutiei de analizat in raport cu solutia martor, la lungimea de unda de 420nm. Se citeste pe curba de etalonare continutul de uree corespunzator extinctiei masurate.

5.2.

Curba de calibrare

Se rețin volume a 1,2,4,5 și 10ml de soluție de uree (3.5), se introduc în baloane cotate de 100ml și se completează la semn cu apă. Se iau cate 5ml din fiecare balon, in eprubete cu dop slefuit. Se adaugă cate 5ml de soluție 4-DMAB (3.1) în fiecare din acestea si se omogenizeaza.Se introduc eprubetele într-o baie de apa si se mentin timp de 15minute la 20°c .Se masoara

extinctia

acestor

solutii

la lungimea

de unda de 420nm, in raport cu o soluție martor constituita din 5ml de 4- dmab și 5ml de apă liberă de uree. Se traseaza curba de etalonare.

6.

Calcularea rezultatelor

Se determină cantitatea de uree din probă, utilizându-se curba de calibrare.

Se exprimă rezultatul precentual.

7.

Observa - tii

7.1.

ln '

cazul cantităților de uree ce depășesc 3%, se

reduce proba la 1g sau se diluează soluția inițială, astfel încât să nu existe mai mult de 50 de mg de uree în 500ml.

7.2.

în cazul cantităților scăzute de uree, se mărește

proba atât timp cât filtratul rămâne clar si incolor..

7.3.

Dacă proba conține compuși azotați simpli, precum aminoacizi, densitatea optică trebuie să fie măsurată la 435nm.

15.

Estimarea activității ureazice a produselor derivate din soia

1.

Scop și domeniu de ap l icare

Acest test face posibilă estimarea activității ureazice a produselor derivate din soia și arată dacă aceste produse au fost preparate suficient de mult timp.

2.

Principiu

Activitatea ureazică este estin,ată prin cantitatea de azot amoniacal eliberată de 'Ig de produs per minut, la 30°C.

3.

Reactivi

3.1.

Acid clorhidric O,1N.

3.2.

Solutie de hidroxid de sodiu O,1n.

3.3.

Solu ' tie tampon de fosfati: se dizolva 4,45g fosfat

disodic(Na2HPO4x2H2O) si 3,40g fosfat monopotasic(KH2PO4 x 2H2O) in apa; s:e completeaza cu apa la 1000ml.

3.4.

Uree

,solutie

cu pH 6,9-7,0: se dizolva 30g uree in 1000ml solutie tampon de fosfati.

4.

Aparatură

4.1.

Aparat ele titrare potențiometrică sau pH-metru

de înaltă sensibilitate (pH 0,02) cu agitator magnetic.

4.2.

Baie de apă echipată cu termostat stabilit la exact 30°c.

4.3.

Eprubete de 150x18mrn

cu

dop slefuit.

4.4.

Sita cu dimens i unea ochiurilor de 0,2mm

4.5.

Moara de laborator,usor de curatat si care permite macinarea fara a provoca

i ncalzirea produsului

5.

Procedură

Se mărunț : esc aproximativ 10g de probă (de exemplu într­ o râșniț:ă de cafea), astfel ca aceasta să treacă printr-o sită cu ochiuri de 0,2rnm. Se cântăresc 0 , 2g din proba mărunțită cu o aproximație de 1mg, se introduc într-o E prubetă cu dop rodat de sticlă și se adau lă 1 On1I

de solutie de uree (3.4). Se astupa imediat și se agit i cu vigoare. Se introduce eprubeta într-o baie de apă fixată exact la 30°C și se agitii cu vigoare. Se adaugă imediat 10ml de acid clorhidric (3.1), se răcește rapid la 20°c și

se transvazeaza cantitativ conținutul eprubetei într-un vas de titrare, clătindu-se de două ori cu 5ml de· apă. Utilizându-se un electrod de sticlă (4.1), se titrează imediat și rapid la pH 4,7 cu soluție de hidroxid de sodiu

O, 1N .

Se efectuează

o determinare martor după cum urmează: se introduce repede o probă de 0,2g cântărită cu o aproximație de 1mg într-o eprubetă cu dop rodat de sticlă, se adaugă 10ml de acid clorhidric

O, 1n (3.1) și apoi 10ml

solutie de uree (3.4). Se răcește eprubeta imediat în apă cu gheață și se lasă acolo timp de 30 de minute. Se aduce apoi la temperatura de 20°c se transfera cantitativ conținutul eprubetei în paharul in care se face titrarea.Se titreaza imediat si repede cu hidroxid de sodiu solutie

O, 1 npana la pH 4,7 .

6.

Calcul:

Activitatea ureazica se calculeaza cu formula:

1,4

X

(a-b)

[ mg N/gxmin la 30 °c ]

30x E

unde

a = volumul solutiei de hidroxid de sodiu

O, 1n folosit la titrarea probei de analizat, in ml

b = volumul solutiei de hidroxid de sodiu

O, 1n folosit la titrare la determinarea martorului, in ml

1,4 = cantitatea de azot corespunzatoare la 1ml, hidroxid de sodiu

O, 1 n

30 durata tratarii probei cu solutie de uree,in minute

7.

Observatii:

7.1.

Aceasta

metoda

este

aplicabila

pentru

activitate ureazica peste 1 mg de N/g/min. la 30 °C.Pentru produse cu acivitate ureazica mai mare , cantitatea de proba poate fi redusa la 50mg.

7.2.

Produsele cu continut de grasime mai mare de 10% trebuie in prealabil degresate.

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor cu referire la conținutul în avoparcină și monenzin de sodiu*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.453 din 27 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor cu referire la conținutul în avoparcină și monenzin de sodiu, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 19.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 19/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor cu referire la conținutul în avoparcină și monenzin de sodiu

ANEXĂ

la norma veterinară

apă.

Extract de drojdie de bere·.3,0 g Extract de carne 1.5 g Glucoză:1,0 g

Agar 15,0 g

Apă 1000 ml

pH:6,5 (după sterilizare).

4.2.

Etanol 20% (v/v): se diluează 200 ml etanol cu 800 ml

4.3.

Acid clorhidric, d: 1,18 - 1,19.

4.4.

Hidroxid de sodiu, solutie 2 M

4.5.

Tampon fosfat,

O, 1

M:

_

'

Fosfat dihidrogenat de potasiu, KH2 04: 13,6 gă Apă până la 1 OOO

ml.

Se aduce pH-ul la 4.5.

4.6.

Amestec

de

acetonă/apă/acid

clorhidric

(4.3):

65/32.5/2.5 (v/v/v).

4.7.

Substanță

standard:

avoparcină

de

activitate cunoscută.

5.

Solut , ii etalon

Se dizolvă o cantitate precis cântărită de

1O

mg din

°

substanța standard (1-7) în tampon fosfat (4.5) și se diluează cu acest tampon pentru a se obține soluția stoc ce conține 100 µg avoparicină/ml. Se păstrează în flacoane închise la 4

C, această soluție este stabilă timp de maxim șapte zile.

5.1.

Pentru premixuri

Din această soluție stoc se prepară prin diluție succesivă cu ajutorul tamponului, (4.5) următoarele soluții :

Sa

4.0 µg/ml

S4

2.0 µg/ml

S2

1.0 µg/ml

S1

0.5 µg/ml

5.2.

Pentru furaje

Din soluția stoc se prepară prin dilutie succesivă cu ajutorul tamponului, (4.5) următoarele soluții

Sa

2.0 µg/ml

S4

1.0 µg/ml

S2

0.5 µg/ml

S1

0.25 µg/ml

6.

Prepararea soluțiilor de extract și de probă

6.1.

Premixuri

Se

cântărește

cu

o

precizie

de

1O

mg,

o

cantitate suficientă de probă ce conține 10,0 până la100 mg avoparcină. Se transferă într-un balon cotat de 100 ml cu 60 ml amestec (4.6) și se agită timp de 15 minute pe agitatorul mecanic Se controlează pH-ul și se aduce la pH 2 cu acid clorhidric, dacă este necesar (4.3). Se aduce la volum cu amestecul (4.6) și se omogenizează.

O parte se filtrează printr-o hârtie de filtru potrivită (ex. Whatman nr. 1), se elimină primii 5 ml de filtrat. Se ia o parte alicotă și se aduce pH-ul la 5.4 cu soluție de hidroxid de sodiu (4.4). Se diluează această soluție cu tampon (4.5) pentru a se obține o concentrație dorită de avoparicină de 4.0 µg/ml ( = U 8

)

Pentru această soluție se prepară soluțiile U 4

(conținut evaluat: 2.0 µg/ml), U2 (conținut evaluat: 1.0 µg/ml) și U 1

(conținut evaluat: 0.5 µg/ml) prin diluție succesivă (1+1) cu tampon (4.5).

6.2.

Furaje

Se cântărește o cantitate de probă de 50 g și se agită 100 ml din amestec (4.6) timp de 30 minute pe agitatorul mecanic. Se

clarifică

extractul

prin

centrifugare

(utilizând

tuburi

de centrifugă acoperite cu dopuri), se ia o parte alicotă de extract clarificat (vezi tabelul de mai jos) și se aduce pH-ul la 4.5 ,

fU

soluție de hidroxid de sodiu (4.4). Se diluează această parte alicotă cu tampon (4.5) pentru a se obține U 8

(vezi tabelul de mai jos)

Pentru această soluție se prepară soluțiile U 4

(conținut evaluat: 1 µg/ml), U2 (conținut evaluat: 0.5 µg/ml) și U 1

(conținut evaluat: 0.25 µg/ml) prin diluție succesivă (1+1) cu tampon (4.5).

Nivel presupus de avoparcină (mg/kg)

5

7.5

10

15

20

40

Masa probei (g

+

0.1

g)

50

50

50

50

50

50

Volumul amestecului (4.6) (ml)

100

100

100

100

100

100

Volumul extractului clarificat (ml)

20

15

20

15

20

10

Volum final (ml):

Ua

25

25

50

50

100

100

Concentratia dorită

Ua

µg/ml

'

2

aprox.2

2

aprox.2

2

2

7.

Procedura de testare

7.1.

Însământarea mediului de testare

Se însămânțe '

ază mediul de testare (4.1) cu suspensie de spori (3.2) la 50 - 60

°c.

Prin experimente preliminare pe plăci cu mediu de testare (4.1) se determină cantitatea de suspensie

de spori necesară pentru a se determina cele mai întinse și mai clare zone de inhibiție cu diferite concentrații de avoparcină.

7.2.

Prepararea plăcilor de însămânțare

Difuzia pe agar este efectuată în plăci utilizâdu-se patru concentrații din soluția etalon (S 8

S 4

S 2

S 1

)

și patru concentrații din soluția probei

(Ua,

U4,U2, U 1 ). Aceste patru concentrații ale extractului și ale etalonului trebuie, în mod necesar, să fie

plasate în fiecare placă. în acest scop, se aleg plăci destul de mari pentru a se permite să fie realizate în mediu de agar cel puțin opt godeuri cu un diametru de 1O până la 13 mm și la nu mai puțin de 30 mm între centre. Testul poate fi efectuat pe plăci formate dintr-o placă de sticlă cu o față din aluminiu sau un inel din plastic plasat în vârf, 200 mm în diametru și 20 mm înăltime.

'

Se toarnă în plăci o cantitate din mediul (4.1) însămânțat

cum este indicat la punctul 7.1., pentru a se obține un strat de aproximativ 2 mm grosime (60 ml pentru o placă de 200 mm diametru). Se lasă să se solidifice, se realizează godeuri și se pun în acestea volume de probă exact măsurate și soluții standard (între O,1O și O,15 ml/godeu, conform diametrului). Se utilizează fiecare concentrație de cel puțin patru ori astfel încât fiecare determinare să fie supusă unei evaluări a 32 zone de inhibitie.

7 '

.3. lncubatie

Se incubea ă plăcile timp de 16 - 18 ore, la 30

° C.

8.

Evaluare

a)

SL=

1s

1

+4s 2

+S

4

-2S 8

10

Se determină punctul ăcel mai potrivit" pentru nivelul standard cel mai ridicat (SH) utilizând formula:

(b)

SH =

7Sa +4S4 +S2 -2S1

10

Se calculează în mod similar punctele ăcele mai potrivite" pentru nivelul cel mai scăzut de extract (UL) și nivelul cel mai înalt de extract (UH) prin substituirea U1,U4 și Ua cu S1, S2 și S 8

din formula mentionată mai sus.

Se

înregist ' rează

valorile

calculate

ale SL

și SH, pe aceeași hârtie grafică și se unesc pentru a da linia ăcea mai potrivită" pentru soluția etalon. Se înregistrează în mod similar UL și UH și se unesc pentru a da linia ăcea mai potrivită" pentru extract.

În

absenta

oricărei

interferente

liniile

trebuie

fie paralele.

Pentr ' u

scopuri

practice

l ' iniile

pot

fi

considerate paralele dacă valorile (SH-SL) și (UH-UL) nu diferă mai mult de 10% ca valoare medie a acestora.

Dacă liniile nu sunt paralele fie U1 și S 1

fie U 8

și S 8

pot fi eliminate și SL, SH, UL și UH calculate, utilizând formula alternativă, pentru a da liniile alternative ăcele mai potrivite".

(a')

SL

=

5S

1

+ 2S2-2S

4

sau

5S

2

+ 2S4-S

g

6

6

(b')

ss

=

ss

4

+2s

2

-s 1

sau

5S 8

+2s4-s

2

6

6

și în mod similar pentru UL și UH. Trebuie să fie respectate aceleași criterii de paralelism. Faptul că rezultatul a fost calculat pe baza celor trei nivele trebuie să fie notat în raportul final.

Atunci când liniile sunt considerate ca fiind paralele, se calculează logaritmul activității relative (log A) prin intermediul uneia din următoarele formule:

Pentru patru nivele

(c)

LogA

=

(Ul

+U

2

+U

4

+U

g

-Sl -S

2

-S

4

-S

g

)

X

0,602

U 4

+U

g +S 4 +S g -U l

-U

2

-Sl -S 2

Pentru patru nivele

(d)

LogA=

(Ul

+U2 +U

4

-s

l

-S-S24)

X

0,401

U

4

+S 4

-Ul , -Sl

sau

(d')

LogA=

(U 2

+U 4

+U

8

-S

2

-S

4

-S

8

)X0,401

U 8 +S 8 -U 2 -S 2

Activitate reală - activitate presupusă x activitate relativă Dacă activitatea relativă este în afara gamei de valori

cuprinse între 0,5 și 2,0, atunci se repetă proba făcând ajustări corespunzătore ale concentrațiilor extractului sau dacă aceasta nu este posibil, ale soluțiilor etalon. Atunci când activitatea relativă nu poate fi adusă în gama de valori solicitată, orice rezultat

obținut trebuie să fie considerat

ca aproximativ

și acesta trebuie notat în raportul final.

Atunci când liniile sunt considerate ca nefiind paralele, se repetă determinarea .

Dacă paralelismul nu este totuși realizat,

înseamnă că nu a fost obtinută o determinare satisfăcătoare.

9.

Repetabilitate

'

Diferența între rezultatele celor două determinări paralele, efectuate pe aceleași probă prin aceeași analiză, nu trebuie să depășească

-

2 mg/kg, în valoare absolută, pentru niveluri de avoparcină până la 1O mg/kg,

-

20% în raport cu valoarea cea mai mare pentru niveluri de la 1O până la 25 mg/kg,

-

5 mg/kg, în valoare absolută, pentru niveluri de la 25 până la 50 mg/kg,

-

10% în raport cu valoarea cea mai mare pentru niveluri mai mari de 50 mg/kg.

2. Determinarea monenzinului de sodiu prin difuzie in mediu de agar

1.

Scop și aplicabilitate

Această metodă are ca scop determinarea monenzinului de sodiu din furaje și premixuri. Limita minimă a determinării este de 1O mg/kg (1O ppm).(3)

2.

Principiu

Proba este extrasă cu 90°/c> metanol. Extractul este supus procedurilor corespunzătoare conform cu conținutul probei în monenzin de sodiu. Activitatea antibiotică a acestuia este determinată prin măsurarea difuziei monenzinului de sodiu într­ un mediu de agar însămânțat cu Bacillus subtilis. Difuzia este

relevată prin formarea zonelor de inhibiție a microorganismului. Diametrul acestor zone este considerat a fi direct proporțional cu

logaritmul

concentrației

de

antibiotic

peste

gama concentratiilor

de

antibiotic

utilizate.

Sensibilitatea

acestui

sistem de

' testare este redusă în prezența sodiului.

3.

Microorganism: Bacillus subtilis attc 6633 (ncib 8054)

3.1.

întretinerea culturii stoc

Se însăm '

ântează mediul de cultură în tuburi înclinate

(4.1), cu Bacillus ubtilis și se incubează peste noapte la 30

° C. Cultura se păstrează la frigider la 4

°

C. Se reînsămânțează

lunar.

3.2.

Prepararea suspensiei de spori

C)

°

°

Se recoltează o cultură crescută pe agar înclinat preparat recent, (3.1) cu 2-3 ml apă sterilă. Această suspensie se utilizează la însămânțarea a 300 ml mediu de cultură (4.1) conținut într-un flacon tip Roux și se incubează timp de 3 - 5 zile la 30

C. Cultura se recoltează în 15 ml etanol 20% (4.3), după ce

se

controlează

sporularea

la

microscop

.și

se omogenizează. Această suspensie poate fi menținută timp de cel puțin 5 luni, la aproximativ la 4

C.

4.

Mediu de cultură și reactivi

4.1.

Mediu de cultură

(2)

Triptona

10,0 g

Extract de drojdie de bere Extract de carne

1.5 g

3,0 g

Glucoză

1,0 g

Agar (conform cu calitatea)

10,0 - 20,0 g Apă

1000 ml

pH 6,5(după sterilizare).

4.2.

Mediul probei

Glucoză

Extract de drojdie de bere

Fosfat hidrogenat de potasiu, K2HPO4 Fosfat dihidrogenat de potasiu, KH2 PO4

10,0 g

2,5 g

0,69g

0,45 g

Agar (conform cu calitatea)

Apă

pH 6 (după sterilizare).

10,0 - 20,0 g

1000 ml

apă.

4.3.

Etanol 20% (v/v): se diluează 200 ml etanol cu 800 ml

4.4.

Metanol anhidru

4.5.

Metanol 90% (v/v): se diluează 900 ml metanol (4.4)

cu 100 ml apă

4.6.

Metanol 50% (v/v): se diluează 500 ml metanol (4.4) cu 500 ml apă

4.7.

Oxid de aluminiu granulat (Aicea F, 20 mesh Alumină activată UG 1)

4.8.

Substantă standard Monenzin de sodiu de activitate

cunoscută

'

5.

Aparatură

5.1.

Evaporator rotativ în vid, cu balon cu fund rotund de 250 ml.

5.2.

Coloana de sticlă pentru cromatografie, diametru intern: 25 mm, lungime: aproximativ 400 mm cu deschidere efilată de 2 mm diametru la o extremitate.

5.3.

Coloana de sticlă pentru cromatografie, diametru intern: 11 mm, lungime: aproximativ 300 mm deschidere efilată de 2 mm diametru la o extremitate.

6.

Solutii etalon

Se diz ' olvă o cantitate precis cântărită din substanța

°

standard (4.8) în metanol (4.4) și se diluează pentru a se obține soluția stoc ce conține 800 µg /ml monenzin de sodiu. Se păstrează în flacoane închise la 4

C. Această soluție este stabilă timp de maxim două săptămâni.

Din această soluție stoc se prepară, prin diluție succesivă cu 50% metanol, (4.6) următoarele soluții

Sa

-

8.0 µg/ml S4 - 4.0 µg/ml S2 - 2.0 µg/ml S1

---

1.0 µg/ml

7.

Prepararea extractului

7.1.

Extracție

7.1.1.

Premixuri

Se cântărește o cantitate de probă de 2 g, se adaugă 100 ml metanol 90% (4.5), se omogenizează și se centrifughează timp de câteva minute. Se diluează soluția de supernatant cu

metanol 50% (4.6) pentru a se obține ·

un conținut dorit de monenzin de sodiu de 8 µg /ml (

=

U 8

)

7.1.2.

Furaje cu un nivel de monenzin de sodiu maxim de 50pmm

Se cântărește o cantitate de probă de 10-20 g, se adaugă 100 ml metanol 90% (4.5), se omogenizează timp de 15 minute și se lasă să se limpezească.

Se introduce un tampon de vată în deschiderea efilată a tubului de sticlă (5.2) și se adaugă oxid de aluminiu (4.7) și se scutură ușor tubul până când coloana ajunge de la 75 la 80 mm

înăltime.

'

Se decantează extractul pe coloana de oxid de aluminiu și

se colectează filtratul, se diluează 30 ml până la 50 ml filtrat cu apă. Se fac următoarele diluții cu metanol 50% (4.6) până se obține un conținut dorit de monenzin de sodiu de 8 µg /ml (

=

Ua)

7.1.3.

Furaje cu un nivel de monenzin de sodiu mai mic de 50 pmm ( până la limita de 1O ppm)

Se cântărește o cantitate de probă de 10-20 g, se adaugă

100 ml metanol 90% (4.5) și se omogenizează timp de 15 minute. Se centrifughează până devine limpede.

°

Se prelevează 40 ml lichid supernatant pentru o probă ce conține 20 ppm monenzin de sodiu. Se prelevează 80 ml pentru o probă ce conține 1O ppm și se evaporă până la uscare sub vid la un evaporator rotativ (5.1) la maxim 40

C, se dizolvă reziduul în 1O ml metanol 90% (4.5).

Se introduce un tampon de vată în deschiderea efilată a tubului de sticlă (5.3) și se adaugă oxid de aluminiu (4.7) și scutură ușor tubul până când coloana ajunge de la 75 la 80 mm

înăltime.

'

Se

decantează

soluția

metanoică

de reziduu

de pe

coloana de oxid de aluminiu și se colectează filtratul. Se spală coloana cu 1O ml metanol 90% (4.5) și se combină lichidele de spălare cu filtratul.

°

Se evaporă soluția până la uscare sub vid la un evaporator

rotativ (5.1), la maxim 40

C. Se dizolvă reziduul în 1O ml metanol anhidru

(4.4)

și se aduce la semn cu 20 ml apă. Se centrifughează soluția la minim 4000 r/min, timp de cel puțin

cinci minute. Se fac următoarele diluții cu

metanol 50% (4.6) până se obține un conținut dorit de monenzim de sodiu de 8 µg

/ml ( = Ua)

7.2.

Soluții probă

Pentru soluția U 8

se prepară soluțiile U4 (conținut evaluat: 4 µg/ml), U 2 (conținut evaluat: 2 µg/ml) și U 1 (conținut evaluat: 1 µg/ml) prin diluții succesive (1+1) cu metanol 50% (4.6).

8.

Procedura de testare

8.1.

Însământarea mediului de testare

Se însămânțe '

ază mediul de testare

(4.2)

cu suspensie de

spori (3.2) la 50-60 °c. Prin experimente preliminare pe plăci cu mediu de testare (4.2). se determină cantitatea de suspensie de spori necesară pentru a determina cele mai întinse și mai clare

zone de inhibitie cu diferite concentratii în monenzin de sodiu.

8.2.

Prepa '

rarea plăcilor de însăm '

ânțare

Difuzia pe agar este efectuată în plăci, utilizâdu-se patru concentrații din soluția etalon (Sa S4 S2 S1 ) și patru concentrații din soluția probei (Ua, U4,U2, U 1 ). Aceste patru concentrații ale extractului și etalonului trebuie, în mod necesar, să fie plasate

în fiecare placă. În acest scop, se aleg plăci destul de mari pentru a permite să fie realizate în mediu de agar cel puțin opt godeuri cu un diametru de 1O până la 13 mm și la nu mai puțin de 30 mm între centre. Testul poate fi efectuat pe plăci formate dintr-o placă de sticlă cu o față din aluminiu sau un inel din plastic plasat în vârf, 200 mm în diametru și 20 mm înălțime.

Se toarnă în plăci o cantitate din mediul (4.2), însămânțat cum este indicat la punctul 8.1., pentru a se obține un strat de aproximativ 2 mm grosime (60 ml pentru o placă de 200 mm diametru). Se lasă să se solidifice, se realizează godeuri și se pun în acestea volume de probă exact măsurate și soluții standard (între O,1O și O,15 ml/godeu, conform diametrului). Se utilizează fiecare concentrație de cel puțin patru ori, astfel încât fiecare determinare să fie supusă unei evaluări a 32 zone de inhibitie.

8 '

.3. lncubatie

Se incubea ' ză plăcile timp de aproximativ 18 ore, la 35 -

37°c.

9.

Evaluare

Se măsoară diametrul zonelor de inhibiție cu o aproximație de O,1 mm. Se înregistrează valorile •medii pentru fiecare concentrație

pe

hârtie

grafică

semi-logaritmic

ce

indică logaritmul concentrațiilor în raport cu, diametrul zonelor de inhibiție. Se trasează liniile cele mai potrivite atât pentru soluția etalon cât și pentru extract ca în exemplul de mai jos.

Se determină

punctul

ăcel mai potrivit" pentru cel mai scăzut nivel (SL) utilizând formula:

a)

S = L

7S 1

+4S2 +S-42S8

10

Se determină punctul ăcel mai potrivit" pentru nivelul

standard cel mai ridicat (SH) utilizând formula:

b)

SH=

7S8+4S4 +S-22S

1

10

Se calculează în mod similar punctele ăcele mai potrivite" pentru nivelul cel mai scăzut de extract (UL) și nivelul cel mai înalt de extract (UH) prin substituirea U1,U2 și U4 cu S1, S2 și S4 și S 8

din formula menționată mai sus.

Se înregistrează

valorile calculate

ale SL și SH, pe aceeași hârtie grafică și se unesc pentru a da linia ăcea mai potrivită" pentru soluția etalon. Se înregistrează în mod similar UL și UH și se unesc pentru a da linia ăcea mai potrivită" pentru extract.

În

absenta

oricărei

interferente

liniile

trebuie

fie

paralele.

Pentr '

u

scopuri

practice

l ' iniile

pot

fi

considerate paralele dacă valorile (SH-SL) și (UH-UL) nu diferă mai mult de 10% ca valoare medie a acestora.

Dacă liniile nu sunt paralele fie U 1

și S 1

fie U 8

și S 8

pot fi eliminate

și

SL,

SH,

UL

și

UH

calculate,

utilizând

formula alternativă, pentru a da liniile alternative ăcele mai potrivite".

(a')

S = L

5S1 +2S2 -2S4

sau

5S2 +2S4 -S8

6

6

(b')

sH

=

ss4 +2s-2s

1

sau

5S8+2s-4s2

6

6

și în mod similar pentru UL și UH. Trebuie să fie respectate aceleași criterii de paralelism Faptul că rezultatul a fost calculat pe baza celor trei nivele trebuie să fie notat în raportul final.

Atunci când liniile sunt considerate ca fiind paralele, se calculează logaritmul activității relative '(log A) prin intermediul uneia din următoarele formule:

Pentru patru nivele

(c)

LogA =

(Ul +U

2

+U4

+U

g

-S\ -S

2

-S4-S

g

)

X

0

,

602

U

4

+U 8

+S 4

+S 8

-U, -U

2

-S, -S 2

Pentru trei nivele

(d)

LogA=

(U, +U

2

+U

4

-S, -S

2

-S

4

)X0

,

401

U4

+S4

-Ul

-s,

sau

(d')

LogA

=

(U

2

+U4

+U 8

-S 2

-S

4

-S 8 )x0

,

401

U 8

+S 8

-U 2

-S 2

Activitatea reală - activitatea presupusă x activitatea reală Dacă activitatea relativă este în afara gamei de valori

cuprinse între 0,5 și 2,0, atunci se repetă proba făcând ajustări corespunzătore ale concentrațiilor extractului sau dacă aceasta nu este posibil, ale soluțiilor etalon. Atunci când activitatea relativă nu poate fi adusă în gama de valori solicitată, orice rezultat obținut trebuie să fie considerat

ca aproximativ

și acesta trebuie notat în raportul final.

Atunci când liniile sunt considerate ca nefiind paralele, se repetă determinarea. Dacă paralelismul nu este totuși realizat,

înseamnă că nu a fost obtinută o determinare satisfăcătoare.

1O. Repetabilitate

'

Diferența între rezultatele celor două determinări paralele efectuate pe aceleași probă prin aceeași analiză nu trebuie să depășească

-

20% în raport cu valoarea cea mai mare pentru niveluri de la 1O până la 25 mg/kg,

-

5 mg/kg, în valoare absolută, pentru niveluri de la 25 până la 50 mg/kg,

-

10% raport cu valoarea cea mai mare pentru niveluri mai mari de 50 mg/kg.

i(1) Pot fi utilizate alte metode ,

cu condiția să se fi stabilit că acestea utilizează suspensii de spori similare

( a ) Poate fi utilizat orice m e diu

co mercial de cultură de compoziție similară ce oferă aceleași rezultate

( b )

1 mg monenzin de sodiu este echivalent cu 1000 unități UK

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește metode naționale de analiză

pentru determinarea aminoacizilor, uleiurilor și grăsimilor brute și a olaquindoxului din furaje*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 154.288 din 28 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește metode

naționale

de

analiză

pentru

determinarea aminoacizilor,

uleiurilor

și

grăsimilor

brute

și

a olaquindoxului din furaje, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 20.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 20/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește metode naționale de analiză pentru determinarea aminoacizilor, uleiurilor și grăsimilor brute și a olaquindoxului din furaje

ANEXĂ

la norma veterinară

cromatografie cu schimbători de ioni și determinați prin reacția cu ninhidrină utilizând detectarea fotometrică la lungimea de undă de 570 nm (440 nm pentru pralină).

3.

Reactivi

Trebuie să se utilizeze apă bidistilată sau apă de calitate echivalentă (conductivitate<1O µS).

3.1.

Peroxid de hidrogen, w=30 %

3.2.

Acid formic, w=98-100

°/o

3.3.

Fenol

3.4.

Disulfit de sodiu

3.5.

Hidroxid de sodiu

3.6.

Acid 5-sulfosalicilic dihidrat

3.7.

Acid clorhidric, densitate aproximativ 1,18 g/ml

3.8.

Citrat de trisodiu dihidrat

3.9.

2,2' - Tiodietanol (tiodiglicol)

3.1 O.

Clorură de sodiu

3.11.

Ninhidrină

3.12.

Eter de petrol cu interval de fierbere 40-60

°c

3.13.

Norleucină sau alt compus corespunzător pentru a fi

utilizat ca standard intern.

3.14.

Azot gazos (<1O ppm oxigen)

3.15.

1-Octanol

3.16.

Aminoacizi

3.16.1.

Substanțe

standard

enumerate

la

punctul

1. Compuși puri ce nu conțin apă de cristalizare. Se usucă sub vid sub flux de P2O 5

sau H2SO4 timp de o săptămână înainte de utilizare.

3.16.2.

Acid cisteic

3.16.3.

Metionin sulfonă

3.17.

Soluție hidroxid de sodiu, c=7,5 mol/I:

Se

dizolvă 300 g NaOH (3.5.) în apă și se aduce la 1 litru.

3.18.

Solutie hidroxid de sodiu, c=1 mol/I:

Se dizolvă 40 g '

NaOH (3.5.) în apă și se aduce la 1 litru

3.19.

Solutie acid formic - fenol:

Se amestecă 88 '

9 g acid formic (3.2) cu 111 g apă și se adaugă

4,73 g fenol (3.3).

'

3.20.

Amestec de hidroliză, c=6 mol HCI/I ce cantine 1 g

fenol/I:

Se adaugă 1 g fenol (3.3) la 492 ml HCI (3.7) și se aduce la 1 litru cu apă.

3.21.

Amestec de extracție, c=0,1 mol HCI/I ce conține 2% tiodiglicol:

Se iau 8,2 ml HCI (3.7), se diluează cu aproximativ 900 ml apă, se adaugă 20 ml tiodiglicol (3.9) și se aduce la 1 litru cu apă, (nu se amestecă direct 3.7 și 3.9)

3.22.

Acid 5-sulfosalicilic, ț3 = 6%:

Se dizolvă 60 g acid 5-sulfosalicilic (3.6) în apă și se aduce la 1 litru cu apă.

3.23.

Amestec de oxidare (Acid performic-fenol):

Se amestecă 0,5 ml peroxid de hidrogen (3.1) cu 4,5 ml soluție de acid formic-fenol (3.19) într-un pahar mic. Se incubează la 20-30 °c timp de 1 oră pentru obținerea acidului performic, apoi se răcește pe o baie de apă cu gheață (15 min) înainte de adăugarea la probă.

Atenție: Se evită contactul cu pielea și se poartă haine de protecție.

3.24.

Tampon citrat, c=0,2 mol Na+/1, pH 2,20:

Se dizolvă 19,61g citrat de sodiu (3.8), 5 ml tiodiglicol (3.9), 1 g

fenol (3.3) și 16,50 ml HCI (3.7) în aproximativ 800 ml apă. Se aduce pH-ul la 2,20. Se aduce la 1 litru cu apă.

3.25.

Tampoane de eluție preparate în conformitate cu condițiile prevăzute pentru analizorul utilizat (4.9).

3.26.

Reactiv

ninhidrină

preparat

în

conformitate

cu condițiile prevăzute pentru analizorul utilizat (4.9).

3.27.

Solutii etalon de aminoacizi. Aceste solutii trebuie să fie păstrate la o'temperatură mai mică de

s 0 c.

'

3.27.1.

Soluție standard stoc de aminoacizi (3.16.1) c=2,5 µmol/ml

din

fiecare

în

acid

clorhidric.

Poate

fi

obținută comercial.

3.27.2.

Soluție standard stoc de acid cisteic și metionin sulfonă c=1,25 µmol/ml.

Se dizolvă 0,2115 g acid cisteic (3.16.2) și 0,2265 g metionin sulfonă în tampon citrat (3.24), într-un balon cotat de 1 litru și se aduce la semn cu tampon citrat. Se păstrează la o temperatura mai mică de 5° C maxim 12 luni. Această soluție nu poate fi

utilizată dacă soluția standard stoc (3.27.1) conține cisteic și metionină sulfonă.

3.27.3.

Solutie standard stoc a standardului intern, ex.

norleucină c=20 µm '

ol/ml.

Se dizolvă 0,6560 g norleucină (3.13) în tampon citrat (3.24), într-un balon cotat și se aduce la 250 ml cu tampon citrat. Se păstrează la o temperatura mai mică de 5° C timp de maxim 6 luni.

3.27.4.

Solutie de etalonare

a aminoacizilor

standard pentru utilizare cu '

hidrolizate, c=5 nmol/50µI de acid cisteic și

metionin sulfonă și c=1O nmol/50µI a altor aminoacizi.

Se dizolvă 2,2 g clorură de sodiu (3.1O) într-un pahar gradat de 100 ml cu 30 ml tampon citrat (3.24}. Se adaugă 4,00 ml soluție standard stoc de aminoacizi (3.27.1), 4,00 ml soluție standard stoc de acid cisteic și metionină sulfonă (3.27.2.) și 0,50 ml soluție standard stoc de standard intern, (3.27.3) dacă este utilizat. Se aduce pH-ul la 2,20 cu hidroxid de sodiu (3.18).

Se transferă cantitativ, într-un balon cotat de 50 ml și se aduce

la semn cu tampon citrat (3.24) și se amestecă.

Se păstrează la o temperatura mai scăzută de 5 °e, timp de maxim 3 luni.

Vezi de asemenea observațiile de la punctul 9.1.

3.27.5.

Solutie de etalonare a aminoacizilor

standard pentru utilizarea c '

u hidrolizate preparate în conformitate cu

punctul 5.3.3.1. și destinate a fi utilizate cu extracte (5.2). Soluția de etalonare este preparată în conformitate cu punctul ·

3.27.4, dar fără clorură de sodiu.

Se păstrează la o temperatura mai scăzută de 5 °e, timp de maxim 3 luni

4.

Aparatură

4.1.

Balon cu fund rotund de 100 sau 250 ml prevăzut cu refrigerent de reflux.

4.2.

Flacon de sticlă borosilicică, cu capac filetat, cu

garnitură de cauciuc/teflon, (ex. Duran, Schott) pentru utilizare în etuvă.

4.3.

Etuvă cu ventilație forțată și regulator de temperatură, cu o precizie mai mare de

+

2 °e.

4.4.

pH - metru (gradație de trei zecimale)

4.5.

Filtru cu membrană (0,2 µm)

4.6.

Centrifugă

4.7.

Evaporator rotativ cu vid.

4.8.

Agitator mecanic sau magnetic

l

l

4.9.

Analizor de aminoacizi sau echipament

HPLe cu coloană

schimbătoare

de ioni,

dispozitiv

pentru

ninhidrină, derivație

post-coloană

și detector

fotometric.

Coloana

este prevăzută

cu

rășini

polistiren

sulfonate,

pentru

separarea diferiților

aminoacizi

unul

de celălalt

și

din

alte materiale ninhidrin pozitive. Debitul de tampon și ninhidrină este asigurat de pompe având un grad de stabilitate a fluxului de

±

0,5% în perioada ce acoperă ambele soluții standard de etalonare și de analiză a probei. Cu aceleași analizoare de aminoacizi se pot utiliza metode de hidroliză în care hidrolizatul are o concentratie de sodiu de c=0,8 mol/I și conține tot acidul formic rezidual provenit

din

oxidare.

Altele

nu

pot

asigura

o

separare satisfăcătoare a unor

aminoacizi,

dacă

hidrolizatul

cantine exces e

acid formic și/sau concentrație crescută a ionilor de sodiu. ln acest caz volumul de acid este redus prin evaporare la aproximativ 5 ml, după hidroliză și anterior de ajustarea pH-ului. Evaporarea trebuie să se facă sub vid, la maxim 40 °e.

5.

Metodă de lucru

5.1.

Prepararea probei

Proba este măcinată pentru a trece printr-o sită de 0,5

mm. Probele cu umiditate ridicată trebuie, înainte de măcinare, uscate fiecare la aer, la o temperatură ce maxim 50 °e sau prin liofilizare.

Probele cu un conținut mare în grăsimi trebuie extrase cu eter de petrol (3.12), înainte de măcinare.

5.2.

Determinarea

aminoacizilor

liberi

din

furaje

și premixuri

Se cântărește,

cu o precizie

de 0,2 mg, o cantitate corespunzătoare (1-5 g) de probă preparată (5.1), într-un pahar conic și se adaugă 100,0 ml amestec de extracție (3.21). Se agită amestecul timp de 60 minute utilizând un agitator mecanic sau un agitator magnetic (4.8). Sedimentul se lasă să se decanteze și se pipetează 1O ml din soluția de supernatant într­ un pahar de 100 ml.

Se

adaugă

5

ml

soluție

de

acid

sulfosalicilic

(3.22) agitându-se și se continuă să se agite cu ajutorul agitatorului magnetic timp de 5 minute. Se filtrează sau se centrifughează supernatantul pentru îndepărtarea oricărui precipitat. Se pun 1 O

ml din soluția ce rezultă într-un pahar de 100 ml și se aduce pH­ ul la 2,20, utilizându-se soluție de hidroxid de sodiu (3.18). Se transferă într-un balon cotat de volum corespunzător, utilizându­ se

tampon

citrat

(3.24)

și

se

aduce

la

semn

cu

soluție tampon(3.24).

Dacă este utilizat un standard intern, se adaugă 1,00 ml standardul intern (3.27.3) pentru fiecare 100 ml soluție finală și se aduce la semn cu soluție tampon (3.24).

Se trece la etapa de cromatografie în conformitate cu punctul 5.4.

Dacă extractele existente nu sunt examinate în aceeași zi, acestea trebuie să fie păstrate la o temperatură mai scăzută de

5

°c.

5.3.

Determinarea aminoacizilor totali

5.3.1.

Oxidare

Se cântărește cu o precizie de 0,2 mg, de la

O, 1 la1 g de probă preparată (5.1) într-un:

(i)

balon cu fund rotund de 100 ml (4.1), pentru hidroliză deschisă (5.3.23) sau,

(ii)

balon cu fund rotund de 250 ml (4.1), dacă se cere o concentrație scăzută de sodiu (5.3.3.1) sau,

(iii)

flacon de 100 ml prevăzut cu un capac filetat

(4.2)

(pentru hidroliză închisă 5.3.2.4.)

Partea de probă cântărită trebuie să aibă un conținut în azot de aproximativ 1 O

mg și un conținut în umiditate de maxim 100 mg.

Se pune balonul/flaconul pe o baie de apă cu gheață și se răcește la

O

0

e,

se adaugă 5 ml amestec de oxidare (3.23) și se

amestecă utilizând o spatulă de sticlă cu extremitatea îndoită. Se închide ermetic

balonul/flaconul ce conține

spatula

cu ajutorul unui film etanș (la aer), se pune baia de apă cu gheață

ce conține recipientul închis în frigider la

O

0

e

și se lasă timp de

16 ore. După 16 ore se scote din frigider și se descompune

excesul de reactiv de oxidare prin adăugarea de 0,84 g disulfit de sodiu (3.4).

Se continuă ca la punctul 5.3.2.1.

5.3.2.

Hidroliza

5.3.2.1.

Hidroliza probelor oxidate

La proba oxidată preparată în conformitate cu punctul 5.3.1, se adaugă 25 ml amestec hidrolizat (3.20), avându-se grijă să se spele orice reziduu ce aderă la suprafața vasului și a spatulei.

în funcție

de procedura

de hidroliză

utilizată

se continuă în conformitate cu punctele 5.3.2.3. sau 5.3.2.4.

5.3.2.2.

Hidroliza probelor neoxidate

Se cântărește în oricare balon cu fund rotund de 250 ml sau de 100 ml (4.1) sau într-un flacon de 100 ml prevăzut cu un capac filetat (4.2), cu o precizie de 0,2 mg de la O,1 la 1 g de probă preparată (5.1). Partea de probă cântărită trebuie să aibă un conținut de azot de aproximativ 1O mg. Se adaugă cu atenție 25 ml amestec de hidroliză (3.20) și se amestecă cu proba.

Se continuă în conformitate cu punctele 5.3.2.3. sau 5.3.2.4.

5.3.2.3.

Hidroliză deschisă

Se adaugă 3 bile de sticlă amestecului din balon (preparat în conformitate cu punctele 5.3.2.1. sau 5.3.2.2) și se fierbe cu clocotire continuă timp de 23 ore. În completarea hidrolizei se spală

condensatorul

cu

5

ml

tampon

citrat

(3.24).

Se deconectează balonul și se răcește într-o baie cu gheață. Se continuă în conformitate cu punctul 5.3.3.

5.3.2.4.

Hidroliză închisă

Se

pune

flaconul

ce

conține

amestecul

preparat

în

conformitate cu punctele 5.3.2.1 sau 5.3.2.2 într-o etuvă (4.3) la 11O

0

c.

în timpul primei ore, pentru a se preveni creșterea presiunii (datorită emanării substanțelor gazoase) și pentru a

evita explozia, se pune capacul filetat la partea superioară a recipientului. Nu se închide recipientul cu capac. După o oră se închide recipientul cu capacul și se lasă în etuvă (4.3) timp de

23 de ore. În completarea hidrolizei se scoate flaconul din etuvă, se scoate cu atenție capacul flaconului și acesta se pune pe o baie de apă cu gheață. Se lasă la rece.

În funcție de procedura adoptată, pentru ajustarea pH-ului (5.3.3) se transferă gradual conținutul din flacon într-un pahar gradat de 250 ml sau într-un balon cu fund rotund de 250 ml, utilizându-se tampon citrat (3.24).

Se continuă în conformitate cu punctul 5.3.3.

5.3.3.

Ajustarea pH-ului

În functie de toleranta analizorului de aminoacid la sodiu, (4.9) se co ' ntinuă în co ' nformitate cu punctele 5.3.3.1 sau

5.3.3.2., pentru ajustarea pH-ului

5.3.3.1.

Pentru sistemele cromatografice (4.9) ce necesită

o concentratie mică de sodiu:

Se rec ' omandă să se utilizeze o solutie standard stoc

internă

(3.27.3)

atunci

când

sunt

folosite '

analizoare

de

aminoacizi ce necesită o concentrație mică de sodiu (când volumul acidului trebuie să fie redus).

În acest caz se adaugă hidrolizatului înaintea evaporării 2,00 ml soluție standard stoc internă (3.27.3).

Se adaugă 2 picături de 1-octanol (3;15) hidrolizatului obținut în conformitate cu punctul 5.3.2.3 sau 5.3.2.4.

Utilizându-se un evaporator rotativ (4.7) se reduce volumul la 5-1O ml, sub vacuum, la 40

°c.

Dacă volumul este redus accidental la mai puțin de 5 ml, hidrolizatul trebuie eliminat și

analiza reluată.

Se aduce pH-ul la 2,20 cu soluție de hidroxid de sodiu (3.18) și se continuă cu punctul 5.3.4.

5.3.3.2.

Pentru toți ceilalți analizori de aminoacizi (4.9)

Se iau hidrolizatele obținute în conformitate cu punctul

5.3.2.3 sau 5.3.2.4

și se neutralizează

parțial cu atenție, adăugându-se și agitându-se, 17 ml soluție hidroxid de sodiu

(3.17) asigurându-se că temperatura este menținută sub 40

°c.

Se

aduce

pH-ul

la

2,20,

la

temperatura

camerei, utilizându-se soluție de hidroxid de sodiu (3.17) și în final soluție

de hidroxid de sodiu (3.18). Se continuă la punctul 5.3.4.

5.3.4.

Soluția din probă pentru cromatografie

Se transferă gradual hidrolizatul adus la pH

(5.3.3.1 sau 5.3.3.2) cu soluție tampon citrat (3.24) într-un balon gradat de 200 ml și se aduce la semn cu tampon (3.24).

Dacă intern nu a fost încă utilizat un standard se adaugă 2,00 ml standard intern (3.27.3) și se aduce la semn cu tampon citrat (3.24). Se amestecă în întregime.

Se procedează la etapa de cromatografie (5.4).

Dacă soluțiile probei existente nu sunt examinate

în

aceeași zi, acestea trebuie să fie păstrate la o temperatură mai scăzută de 5

°c.

5.4.

Cromatografie

Înainte de cromatografie

se aduce extractul (5.2) sau hidrolizatul (5.3.4) la temperatura camerei. Se agită amestecul și se filtrează o cantitate potrivită printr-un filtru cu membrană de

0,2µm

(4.5).

Soluția

clară

obținută

este

supusă cromatografiei cu schimbători de ioni, utilizându-se un analizor de aminoacizi.(4.9).

Injecția poate fi executată manual sau mecanic. Este important

ca aceeași

cantitate de soluție ± 0,5

°/o

să fie adăugată la coloană, pentru ca analiza de standarde și probe, cu excepția cazului în care se utilizează un standard intern și rapoartele sodiu/aminoacid din soluțiile standard și probă să fie, pe cât posibil, similare.

În general

frecvența

injecțiilor

depinde

de stabilitatea reactivului ninhidrină și a sistemului de analiză. Standardul sau proba este diluată cu tampon citrat (3.24) pentru a realiza o arie a picului standardului de 30-200% din aria picului probei de aminoacid.

Cromatografia

aminoacizilor

se

modifică

ușor

în conformitate cu tipul de analizor întrebuințat și rășina utilizată. Sistemul ales trebuie să permită separarea aminoacizilor unii de alții și din materiile pozitive la ninhidrină. În cursul operațiunii, sistemul cromatografic trebuie să dea un răspuns linear la schimbările

privind

cantitățile

de

aminoacizi

adăugați

la coloană.

În timpul etapei de cromatografie raportul dintre partea superioară și partea inferioară a curbei menționate mai jos, se aplică atunci când este analizată o soluție echimolară

(a aminoacizilor existenți determinați). Această soluție echimolară trebuie să conțină cel puțin 30% din sarcina maximă a fiecărui

aminoacid ce poate fi măsurat cu precizie cu ajutorul sistemului analizorului de aminoacizi (4.9)

Pentru separarea treoninei de serină, raportul dintre partea inferioară și picul curbei a celor mai de jos 2 aminoacizi de pe cromatogramă, suprapuși parțial, nu trebuie să depășească raportul

2:1O

(dacă

sunt

determinate

numai

cist(e)ina, metionina, treonina și lizina) Separarea insuficientă de picurile vecine

influențează

nefavorabil

determinarea).

Pentru

toți ceilalți aminoacizii separarea trebuie să fie mai bună de 1:1O.

Sistemul trebuie să asigure că lizina este separată de artefactele de lizină și ornitină.

6.

Calcularea rezultatelor

Aria picurilor probei și a standardului este măsurată pentru fiecare aminoacid individual și este calculată cantitatea în g aminoacid/kg probă:

AxExMWxF

=Q

aminoacid/kg probă

BxWxlOOO

Dacă este utilizat un standard intern se multiplică cu:

D

C

A=aria picului de hidrolizat sau extract

B= aria picului soluției standard de etalonare

C= aria picului standardului intern în hidrolizat sau extract

D= aria picului standardului intern sau a soluției standard de etalonare

MW= greutatea moleculară a aminoacidului ce este determinat E=concentrația standardului în µmol/ml

W= greutatea probei (g) (corectată față de greutatea inițială, dacă produsul este uscat sau degresat)

F=ml de hidrolizat total (5.3.4) sau ml calculați la volumul total diluat de extract (6.1)

Cistina sau cisteina sunt ambele determinate ca acid cisteic în hidrolizate

ale

probelor

oxidate,

dar

calculate

ca

cistină (CGH12N2O4S2 MW 240,30 prin utilizarea MW 120,15 (=0,5 x

240,30)

Metionina este determinată în hidrolizate de probe oxidate ca metionin sulfonă, dar calculată ca metionină prin utilizarea MW de metionină: 149,21

Metionina liberă adăugată este determinată după extracția ca metionină, pentru calculare se aplică aceeași MW.

6.1.

Volumul diluției totale a extractelor (F) pentru determinarea de aminoacizi liberi (5.2) se calculează în modul următor:

F =

l00mlx

(10ml

+

5ml)

x

Vml

10ml

10ml

V=volumul extractului final

7.

Evaluarea metodei

Metoda a fost testată printr comparație efectuată la nivel internațional în 1990 utilizându-se patru furaje diferite (furaj combinat

pentru

porcine,

furaj

combinat

pentru

broileri, concentrat

proteic,

premix).

Rezultatele

după

eliminarea deviațiilor, a mediei și a deviației standard sunt redate în tabelul de mai jos:

Medii în g/kg

Substantă

de referin '

Aminoacid

Treonină

Cist(e)ină

Metionină

Lizină

Furaj combinat

pentru porcine

6,94 n=15

3,01 n=17

3,27 n=17

9,55 n=13

Furaj combinat pentru

broileri

9,31 n=16

3,92 n=18

5,08 n=18

13,93 n=16

Concentrat proteic

22,32 n=16

5,06 n=17

12,01 n=17

47,74 n=15

Premix

58,42

n=16

-

90,21 n=16

98,03

n=16

n=număr de laboratoare participante

7.1.

Repetabilitate

Repetabilitatea exprimată ca ădeviație standard în cadrul laboratorului" a comparărilor menționate mai sus este redată de tabelele următoare:

Deviația standard (S1) în cadrul laboratorului în g/kg

Substanta

de referin '

Aminoacid

Treonină

Cist(e)ină

Metionină

Lizină

Furaj

0,13

0,10

o, 11

0,26

combinat

pentru porcine

n=15

n=17

n=17

n=13

Furaj combinat pentru

broileri

0,20 n=16

0,11 n=18

0,16 n=18

0,28 n=16

Concentrat proteic

0,48 n=16

0,13 n=17

0,27 n=17

0,99 n=15

Premix

1,30 n=16

-

2,19 n=16

2,06 n=16

n=număr de laboratoare participante

Coeficient de variație ( 0

/o)

pentru deviația standard în cadrul

laboratorulu , i

St :)

Substanta de

'

referintă

Aminoacid

Treonină

Cist(e)ină

Metionină

Lizină

Furaj combinat pentru

porcine

1,9 n=15

3,3 n=17

3,4 n=17

2,8 n=13

Furaj combinat pentru broileri

2,1 n=16

2,8 n=18

3,1 n=18

2,1 n=16

Concentrat proteic

2,7 n=16

2,6 n=17

2,2 n=17

2,4 n=15

Premix

2,2

n=16

-

2,4

n=16

2,1

n=16

n=număr de laboratoare participante

7.2.

Reproductibilitate

Substanta de

'

referintă

Aminoacid

Treonină

Cist(e)ină

Metionină

Lizină

Rezultatele pentru deviația standard între laboratoare, menționate mai sus, sunt redate comparativ de tabelul de mai

os.

Furaj combinat

pentru porcine

0,28 n=15

0,30 n=17

0,23 n=17

0,30 n=13

Furaj combinat pentru

broileri

0,48 n=16

0,34 n=18

0,55 n=18

0,75 n=16

Concentrat proteic

0,85 n=16

0,62 n=17

1,57 n=17

1,24 n=15

Premix

2,49

n=16

-

6,20

n=16

6,62 n=16

n=număr de laboratoare participante

Coeficient

de

variație

(%)

pentru

deviația

standard

între laboratoare(St)

Substanta de referin '

ță

Aminoacid

Treonină

Cist(e)ină

Metionină

Lizină

Furaj combinat pentru porcine

4,1 n=15

9,9 n=17

7,00 n=17

3,2 n=13

Furaj

combinat pentru broileri

5,2

n=16

8,8

n=18

10,9

n=18

5,4

n=16

Concentrat

proteic

3,8

n=16

12,3

n=17

13,0

n=17

3,0

n=15

Premix

4,3

n=16

-

6,9

n=16

6,7

n=16

n=număr de laboratoare participante

8.

Utilizarea materialelor de referintă

Aplicarea corectă a metodei tre '

buie să fie verificată prin

efectuarea de măsurători repetate a materialelor de referință

certificate,

atunci

când

acestea

sunt

disponibile.

Este recomandată etalonarea cu solutie de etalonare certificată de

aminoacizi.

'

9.

Observatii

'

9.1.

Din cauza diferent , elor între analizorii de aminoacizi, trebuie luate ca indicator concentrat , iile finale ale solut , iilor de etalonare (vezi 3.27.4 și 3.27.5) și ale hidrolizatului (vezi 5.3.4).

Limitele răspunsului linear al aparatului trebuie verificate pentru toți aminoacizii.

Soluția etalon este diluată cu tampon citrat ,

pentru a se realiza picul ariilor din mijlocul câmpului.

9.2.

Atunci

când

este

utilizat

pentru

analizarea hidrolizatelor, echipamentul de cromatografie lichidă de înaltă performanță, condițiile experimentale trebuie să fie optimizate în conformitate cu recomandările fabricantului.

9.3.

Prin aplicarea metodei pentru furaje ce conțin mai mult

de

1%

clorură

(concentrate,

furaje

minerale,

furaje suplimentare) poate apare o subevaluare a metioninei și deci trebuie realizate tratamente speciale ce au fost făcute

Partea B

DETERMINAREA ULEIURILOR ȘI GRĂSIMILOR BRUTE

Determinarea uleiurilor si grasimilor brute se va face in conformitate cu metodele stabilite prin ăNorma veterinară ce stabilește metode de analiză pentru controlul oficial al furajelor privind

umiditatea,

bazele

azotate

volatile,

fosforul total și uleiurile și grăsimile brute".

PARTEAC DETERMINAREA OLAQUINDOXULUI

(2-[N -2 1

-

(hidroxietil) carbamoil]-3-metilquinoxaline -N 1

,

N 4

-

dioxid)

1.

Scop și aplicabilitate

Această metodă are ca scop determinarea olaquindoxului din furaje. Limita minimă a determinării este de 5 mg/kg.

2.

Principiu

Proba este extrasă cu ajutorul amestecului

de apă - metanol.

Conținutul

în

olaquindox

este

determinat

prin cromatografie lichidă de înaltă performanță în fază inversă (HPLC) ce utilizează un detector cu UV.

Atunci când uleiul sau grăsimea face obiectul unei testări calitative ulterioare se înlocuiesc fragmentele de piatră ponce cu bile de sticlă.

3.

Reactivi

3.1.

Metanol,

3.2.

Metanol grade HPLC

3.3.

Apă, grade HPLC

3.4.

Faza mobilă pentru HPLC:

Apă (3.3) - metanol (3.2) amestec, 900 +100 (V+V)

3.5.

Substanță standard : olaquindox pur

(2-[N -2'- (hidroxietil) carbamoil]-3-metilquinoxaline -N 1

,

N 4

-

dioxid), E 851

3.5.1.

Soluție

standard

(etalon)

stoc

de

olaquindox, 250µg/ml

Se cântăresc, cu aproximație de O,1 mg, 50 mg olaquindox (3.5), într-un balon cotat de 200 ml și se adaugă aproximativ 190 ml apă. Se pune apoi balonul timp de 20 minute într-o baie de ultrasunete

(4.1). După tratament

ultrasonic,

se aduce soluția la temperatura camerei, se aduce la semn cu apă și se amestecă. Balonul cotat se învelește într-o folie de aluminiu și se păstrează la frigider. Această soluție trebuie să fie proaspăt preparată în fiecare lună.

3.5.2.

Soluție standard intermediară stoc de olaquindox, 25µg/ml

Se transferă 1O ml soluție standard (etalon) stoc (3.5.1) într-un balon cotat de 100 ml, se aduce la semn cu faza mobilă (3.4) și se amestecă.

Balonul se învelește

într-o folie de aluminiu și se păstrează la frigider. Această soluție trebuie să fie proaspăt preparată în fiecare zi.

3.5.3 Calibrarea (etalonarea) solutiilor:

" lntr-o serie de baloane cotate de '

50 ml se transferă 1,0,

2,0, 5,0, 10,0, 15,0 și 20,0 ml din soluția standard intermediară (3.5.2). Se aduce la semn cu faza mobilă (3.4) și se amestecă. Balonul se învelește într-o folie de aluminiu. Aceste soluții corespund concentrațiilor de 0,5, 1,0, 2,5, 5,0 7,5 și 10,0 µg/ml de olaquindox. Aceste soluții trebuie să fie proaspăt preparate, în fiecare zi.

4.

Aparatură

4.1.

Baie de ultrasunete

4.2.

Agitator mecanic

4.3.

Echipament HPLC cu detector cu ultraviolete, cu lungimi de undă variabile sau detector cu sistem de diode

4.3.1.

Coloană de cromatografie lichidă: 350 mm

x 4

mm, C 18, 1 O

µm sau o coloană echivalentă.

4.4.

Filtre cu membrană de 0,45 µm

5.

Metodă de lucru

Notă:

Olaquindoxul

este

sensibil

la

lumină.

Toate procedurile se efectuează sub lumină difuză sau se utilizează sticlărie de chihlimbar.

5.1.

Generalităti

5.1.1.

Trebuie a '

nalizat un furaj martor pentru a se verifica

absența olaquindoxului și interferența substanțelor.

5.1.2.

Trebuie efectuat o testare de randament, prin care se analizează un furaj martor ce a fost îmbogățit prin adăugarea unei cantități de olaquindox identică cu cea prezentă în probă. Pentru a se îmbogăți la un nivel de 50 mg/kg, se transferă 10,0 ml soluție standard (etalon) stoc (3.5.1) într-un pahar conic de 250 ml și se evaporă soluția până la aproximativ. 0,5 ml. Se adaugă 50 g din furajul martor, se amestecă în întregime și se

lasă timp de 1O minute, înainte de procedura de extractie.(5.2)

A

l

Notă: ln cadrul acestei metode, furajul martor trebuie să fie

similar, ca tip, cu cel al probei de cercetat, iar cu privire la analiză, nu trebuie să fie detectat olaquindoxul.

5.2.

Extractie

Se cântăres '

c, cu o precizie de

O, 1 g, aproximativ 50 g din

probă. Se transferă într-un pahar conic de 1 OOO

ml, se adaugă 100,0 ml metanol (3.1).și se introduce paharul timp de 5 minute într-o baie de ultrasunete (4.1). Se adaugă 41 O

ml apă și se lasă

în

baia

de

ultrasunete

timp

de

alte

15

minute.

Se îndepărtează paharul din baia de ultrasunete, se agită timp de 30 minute pe un agitator (4.2) și se filtrează printr-un filtru pliat. Se transferă 10,0 ml filtrat într-un balon cotat de 20 ml, se aduce la semn cu apă și se amestecă. O parte alicotă se filtrează

prin

filtru

cu

membrană

(4.4)

(vezi

punctul

9 Observație). Se procede ză la determinarea HPLC (5.3).

5.3.

Determinare HPLC

5.3.1.

Parametri

Următoarele condiții sunt oferite pentru orientare, putând fi utilizate, cu condiția să ofere rezultate echivalente:

Coloană analitică (4.3.1),

Fază mobilă (3.4): apă (3.3) - metanol (3.2) amestec, 900

+100(V+V)

Debit: 1,5 - 2 ml /minut, Lungime de undă: 380 nm, Volum injectat: 20 - 100 µI

Se

verifică

stabilitatea

sistemului

cromatografic,

se injectează soluția de etalonare (3.5.3) ce conține 2,5µg/ml, de câte ori este nevoie, până când sunt obținute înălțimi ale picului și timpi de retenție constanți.

5.3.2.

Curbă de etalonare

Se injectează fiecare soluție de etalonare (3.5.3.) de câte ori este nevoie și se măsoară media înălțimilor picurilor (ariilor) pentru fiecare concentrație. Se reprezintă grafic o curbă de etalonare, utilizându-se mediile picurilor sau ariilor principale ale soluțiilor

de

etalonare,

ca

ordonate

și

concentrațiile corespunzătoare în µg/ml, ca abscise.

5.3.3.

Soluția probei

Se injectează extractul din probă (5.2) de câte ori este necesar, utilizându-se același volum luat pentru soluțiile de etalonare și se determină înălțimea (aria) medie a picului de olaquindox.

6.

Calcularea rezultatelor

Se determină concentrația probelor în mg/ml din media înălțimilor

(ariilor)

picurilor

de

olaquindox

a probelor,

prin referire la curba de etalonare (5.3.2). Conținutul

probei în olaquindox w (µg/ml) este dat de următoarea formulă:

cx l000

w =--

A

m

ln care:

c

=

concentrația extractului din probă în olaquindox, în µg/ml, m = masa părții testate exprimată în g (5.2).

7.

Validarea rezultatelor

7.1.

Identitate

Identitatea produsului analizat poate fi confirmată prin co­ cromatografie sau prin utilizarea unui detector cu sistem de diode, prin care sunt comparate spectrul extractul din probă (5.2) și al soluției de calibrare (3.5.3) ce conține 5,0 µg/ml.

7.1.1.

Co - cromatografia

Un extract din probă (5.2) este îmbogățit prin adăugarea unei

cantități

corespunzătoare

din

soluția

etalon

(3.5.3). Cantitatea

de olaquindox

adăugată

trebuie

să fie similară cantității

estimate

de olaquindox

detectată

în extractul din probă.

Numai înălțimea picurilor de olaquindox trebuie să crească după luarea în calcul a ambelor cantități adăugate și diluarea extractului. Lărgimea picului, la jumătate din înălțimea maximă, trebuie să se încadreze în ± 10%> din lărgimea originală a picului de olaquindox al extractului din proba neîmbogățită.

7.1.2.

Detectarea prin sistemul de diode

Rezultatele sunt evaluate în conformitate cu următoarele criterii:

a)

Lungimea de undă a absorbției maxime a probei și a spectrelor

standard, înregistrate

pe cromatogramă la vârful picului,

trebuie

fie

aceeași,

cu

o

limită

de

siguranță determinată de puterea de rezoluție a sistemului de detectare. Pentru detectare prin sistemul de diode, aceasta este tipică în cadrul

a+

2 nm.

b)

Între 220 și 400 nm, spectrul standard și al probei, înregistrate pe cromatogramă, la vârful picului, nu trebuie să fie diferite pentru acele părți ale spectrului cuprinse între 1O și 100% ale absorbției relative. Acest criteriu este îndeplinit când sunt prezente

aceleași

maxime

și când, la nici un punct observat, deviația între cele două spectre nu depășește 15%

din absorbtia probei de analizat standard.

A

I

c)

Intre 220 și 400 nm, spectrul curbei ascendente, al

vârfului și al curbei descendente a picului, produse de extractul probei nu trebuie să fie diferit unul de celălalt pentru acele părți ale spectrului în interiorul gamei de la 1O la 100%> de absorbție relativă.

Acest

criteriu

este

îndeplinit

când

sunt

prezente aceleași maxime și când, la toate punctele observate, deviația

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor în scopul identificării conținutului în halofuginonă*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.354 din 26 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor în scopul identificării conținutului în halofuginonă, prevăzută

în

anexa**)

care

face

parte

integrantă

din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 21.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 21/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor în scopul identificării conținutului în halofuginonă

ANEXĂ

la norma veterinară

Într-o serie de baloane cotate de 100 ml se transferă 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 și 6,0 ml din soluția standard (etalon) stoc (3.6.1). Se aduce la semn cu faza mobilă (3.2.1) și se amestecă. Aceste soluții corespund concentrațiilor de 2,0, 3,0, 4,0, și 6,0 mg/ml de halofuginonă. Aceste soluții trebuie să fie proaspăt preparate, înainte de utilizare.

3.7.

Acid clorhidric (r 20 aproximativ 1,16 g/ml)

3.8.

Metanol

3.9.

Azotat de argint

3.1O. Ascorbat de sodiu

3.11.

Carbonat de sodiu

3.12.

Clorură de sodiu

3.13.

EDTA

(sare

disodică

a

acidului etilendiamintetraacetic)

3.14.

Apa distilata grade HPLC

3.15.

Soluție de carbonat de sodiu, v

=

1Og/100 ml

3.16.

Solutie de carbonat de sodiu saturată în clorură de sodiu, v

=

5g/10 ' 0 ml

Se dizolvă 50 g carbonat de sodiu (3.11) în apă, se diluează până la 1 litru și se adaugă clorura de sodiu (3.12) până când soluția devine saturată.

3.17.

Acid clorhidric, aproximativ O,1 mol/I

Se diluează 1O ml HCI (3.7) cu apă până la 1 litru.

3.18.

Soluție tampon de acetat de amoniu, aproximativ

0,25

Se dizolvă 19,3 g acetat de amoniu (3.3) și 30 ml acid

acetic(3.5) în apă (3.14) și se diluează până la 1 litru.

3.19.

Prepararea rășinii Amberlite XAD-2

Se spală o cantitate corespunzătoare de Amberlite (3.2) cu apă până se elimină toți ionii de clorură, așa cum este indicat printr-un

test cu nitrat

de argint

efectuat

în faza

apoasă eliminată. Apoi se spală rășina cu 50 ml metanol (3.8), se înlătură metanolul și se păstrează rășina în metanol proaspăt.

3.20.

Soluție nitrat de argint, aproximativ O,1 mol/I Se dizolvă O,17 g nitrat de argint (3.9) în 1O ml apa.

3.21.

Faza mobilă HPLC

Se amestecă 500 ml acetonitril (3.1) cu 300 ml soluție tampon acetat de amoniu (3.18) și 1200 ml apa (3.14). pH-ul se

ajustează la 4,3, utilizându-se acid acetic (3.5). Se filtrează prin filtru de 0,22 mm (4.8) și se degazează soluția ( ex. prin ultrasunete timp de 1O minute). Această soluție este stabilă timp de o lună, dacă este păstrată la întuneric într-un recipient închis.

4.

Aparatură

4.1.

Baie de ultrasunete

4.2.

Evaporator cu film rotativ

4.3.

Centrifugă

4.4.

Echipament HPLC cu detector UV cu lungimi de undă variabile sau detector cu sistem de diode in linie

4.4.1.

Coloană de cromatografie lichidă: 300 mm x 4 mm, C 18, 1O mm sau o coloană echivalentă.

4.5.

Coloană de sticlă (300 mm x 1O mm) prevăzută cu filtru din sticlă sinterizată și robinet

4.6.

Filtre din fibre de sticlă, diametru 150 mm

4.7.

Filtru cu membrană de 0,45 mm

4.8.

Filtru cu membrană de 0,22 mm

5.

Metodă de lucru

Notă: Halofuginona ca bază liberă este instabilă în soluții alcaline și de acetat de etil. Aceasta nu trebuie să rămână în acetat de etil mai mult de 30 minute .

5.1.

Generalităti

5.1.1.

Trebuie a '

nalizat un furaj martor pentru a se verifica

absența halofuginonei și interferența substanțelor.

5.1.2.

Trebuie efectuat un test de randament prin care se analizează un furaj martor ce a fost îmbogățit prin adăugarea unei cantități de halofuginonă identică cu cea prezentă în probă. Pentru a se îmbogăți la un nivel de 3 mg/kg, se adaugă 300 ml soluție standard (etalon) stoc (3.6.1) la 1O g din furajul martor, se amestecă și se așteaptă timp de 1O minute înainte de procedura de extracție.(5.2)

Notă: În cadrul acestei metode, furajul martor trebuie să fie similar, ca tip, cu cel al probei de cercetat, iar cu privire la analiză, nu trebuie să fie detectată halofuginona.

5.2.

Extractie

Se cântăre ' sc, cu o precizie de O,1 g, 1O g din proba

preparată într-un tub de ' centrifugă de 200 ml, se adaugă 0,5 g

ascorbat de sodiu (3.1O), 0,5 ml EDTA (3.13) și 20 ml apă și se amestecă. Se transferă într-un pahar conic de 250 ml și se adaugă 100,0 ml metanol acidifiat (3.2). Se introduce tubul timp de 5 minute

într-o

baie

de apă

(80 °C).

După

răcire

la temperatura camerei, se adaugă 20 ml soluție carbonat de sodiu (3.15) și se amestecă. Imediat se adaugă 100 ml acetat de etil (3.4) și se agită energic timp de 15 secunde. Apoi se introduce tubul timp de trei minute în baia de ultrasunete

(4.1)

și se desface dopul. Se centrifughează timp de 2 minute și se decantează faza de acetat de etil prin filtrul din fibră de sticlă (4.6), într-o pâlnie de separare de 500 ml. Se repetă extracția probei cu a doua parte de 100 ml de acetat de etil. Se spală extractele combinate timp de un minut cu 50 ml soluție de carbonat de sodiu saturată în clorură de sodiu (3.16) și se înlătură faza apoasă.

Se extrage faza organică timp de 1 minut cu 5 ml acid clorhidric (3.17). Se transferă faza acidă inferioară într-o pâlnie de separare de 250 ml. Se extrage din nou faza organică timp de 1,5 minute cu o altă parte de 50 ml acid clorhidric și se combină cu primul extract. Se spală extractele acide combinate prin agitare timp de aproximativ

1O

secunde cu

1O

ml acetat de etil (3.4).

Se transferă cantitativ faza apoasă într-un balon cu fund rotund de 250 ml și se elimină faza organică. Se evaporă tot

restul de acetat de etil din soluția acidă utilizând un evaporator cu film rotativ

(2.4)

temperatura băii de apă nu trebuie să depășească 40 °c. Sub un vid de aproximativ 25 mbar toate reziduurile de acetat de etil trebuie să se elimine în 5 minute, la

38

°c

5.3.

Purificarea

5.3.1.

Prepararea coloanei de Amberlite

Pentru fiecare extract de probă se prepară o coloană XAD-

2.

(3.8),

Se transferă 1O g de Amberlite preparat într-o coloană de sticlă cu metanol (4.5). Se adaugă un mic tampon de vată de sticlă deasupra stratului de rășină Se scurge metanolul din coloană cu metanol și se spală rășina cu 100 ml apă, oprind scurgerea în momentul în care lichidul ajunge la suprafața stratului de rășină. Coloana se lasă să se stabilizeze timp de 1O

minute înainte de utilizare. Niciodată nu se lasă coloana să se usuce.

5.3.2.

Purificarea probei

Extractul

se

transferă

(5.2)

la

suprafața

coloanei

de Amberlite preparată (5.3.1)și se eluează, îndepărtând eluantul. Viteza de eluție nu trebuie să depășească 20 ml/minut. Se clătește balonul cu fund rotund cu 20 ml acid clorhidric (3.17) și se utilizează această soluție la spălarea coloanei rășinii. Se suflă asupra soluției de acid ce a rămas cu un curent de aer. Se îndepărtează lichidele de spălare. Se adaugă 100 ml metanol (3.8), în coloană și se lasă să elueze 5 -1O ml colectând eluantul într-un balon cu fund rotund de 250 ml. Metanolul rămas se lasă timp de zece minute să se stabilizeze cu rășina și se continuă eluția la o viteză ce nu depășește 20 ml/minut, colectând eluantul în același balon cu fund rotund. Se evaporă metanolul

cu

ajutorul

evaporatorului

cu

film

rotativ

(4.2), temperatura băii de apă nu trebuie să depășească 40° C. Se transferă cantitativ reziduul într-un balon cotat de 1O ml utilizând faza mobilă (3.21). Se aduce la semn cu faza mobilă și se amestecă. O parte alicotă este filtrată prin membrana filtrului (4.7). Această soluție se stochează pentru determinare HPLC (5.4).

5.4.

Determinare HPLC

5.4.1.

Parametri

Următoarele condiții sunt oferite pentru orientare, putând fi utilizate, cu condiția să ofere rezultate echivalente:

Coloana de cromatografie lichidă (4.4.1), faza mobilă HPLC (3.21),

Debit: 1,5 - 2 ml /minut, Lungime de undă: 243 nm, Volum injectat: 40 - 100 ml

Se

verifică

stabilitatea

sistemului

cromatografic,

se injectează soluția de etalonare (3.9.3) ce conține 3,0 mg/ml, de câte ori este nevoie, până când sunt obținute înălțimi sau arii ale picului și timpi de retenție constanți.

5.4.2.

Curba de etalonare

Se injectează fiecare soluție de etalonare (3.6.2.) de câte ori este nevoie și se măsoară înălțimile picurilor(ariilor) pentru

fiecare concentrație. Se reprezintă grafic o curbă de etalonare utilizând mediile picurilor sau ariilor principale ale soluțiilor de etalonare ca ordonate

și concentrațiile corespunzătoare în mg/ml ca abscise.

5.4.3.

Soluția probei

Se injectează extractul probei (5.3.2) de câte ori este necesar,

utilizând

aceleași

volume

luate

drept

soluții

de etalonare și se determină înălțimea (aria) medie a picului de halofuginonă.

6.

Calcularea rezultatelor

Se determină concentrația probelor în mg/ml din media înălțimilor (ariilor) picurilor de halofuginonă a probelor, prin referire la curba de etalonare (5.4.2).

Conținutul probei în halofuginonă w (mg/ml) este dat de următoarea formulă:

w

cxlO

=--

m

În care:

c = concentrația probei în halofuginonă, în mg/ml, m = masa probei exprimată în g

7.

Validarea rezultatelor

7.1.

Identitate

Identitatea produsului analizat poate fi confirmată prin co­ cromatografie sau prin utilizarea unui detector cu sistem de diode, prin care sunt comparate spectrul extractului probei și al soluției de calibrare (3.6.2) ce conține 6 mg/ml.

7.1.1.

Co - cromatografia

Un extract al probei este îmbogățit prin adăugarea unei cantități corespunzătoare din soluția etalon (3.9.3). Cantitatea de halofuginonă

adăugată

trebuie să fie similară

cantității estimate de halofuginonă detectată în extractul probei.

Numai

înălțimea

picurilor

de

halofuginonă

trebuie

să crească după luarea în calcul a ambelor cantități adăugate și diluarea extractului. Lărgimea picului, la jumătate din înălțimea

maximă, trebuie să se încadreze în maxim ± 10°/c> din lărgimea initială.

'

7.1.2.

Detectarea prin sistemul de diode

Rezultatele sunt evaluate în conformitate cu următoarele criterii:

a)

lungimea de undă a absorbției maxime a probei și a

spectrelor

standard,

înregistrate pe cromatogramă

la vârful picului,

trebuie

fie

aceeași

cu

o

limită

de

siguranță determinată prin puterea de rezoluție a sistemului de detectare. Pentru detectare prin sistemul de diode, aceasta este tipică în cadrul a

+

2 nm.

b)

între 225 și 300 nm, spectrul standard și al probei,

înregistrate pe cromatogramă, la vârful picului, nu trebuie să fie diferite pentru acele părți ale spectrului cuprinse între 1O și 100% ale absorbției relative. Acest criteriu este îndeplinit când sunt prezente aceleași maxime și când la nici un punct observat deviația între cele două spectre

nu depășește

15% din absorbția probei de analizat standard.

c)

între 225 și 300 nm, spectrul curbei ascendente,al

vârfului și al curbei descendente a picului, produse de extractul probei nu trebuie să fie diferit unul de celălalt pentru acele părți ale spectrului în interiorul gamei de la 1O la 100% de absorbție relativă.

Acest

criteriu

este

îndeplinit

când

sunt

prezente aceleași maxime și când la toate punctele observate deviația între

spectre

nu

depășește

15%

din

absorbția

spectrului vârfului. Dacă unul din aceste criterii nu este îndeplinit, prezența substantei de analizat nu este confirmată

7.2 ' . Repetabilitate

Diferența

între

rezultatele

a

2

determinări

paralele, efectuate

pe

aceeași

probă,

nu

trebuie

depășească 0,5mg/kg pentru un conținut în halofuginonă, până la 3 mg/kg.

7.3. Randament

Pentru proba martor îmbogățită, randamentul trebuie să fie de minim

80%.

8.

Rezultatele unui studiu de colaborare

A fost organizat un studiu de colaborare

C

)în care trei probe au fost analizate în opt laboratoare.

Rezultate

Rezultate

Proba A (Martor) la primire

Proba B (Făină)

Proba C 'Pelete)

la primire

după 2

luni

la primire

după 2

luni

Media

(1)

n.d.

2,80

2,42

2,89

2,45

Sr

-

0,45

0,43

0,40

0,42

CVR

-

16

18

14

17

rec.

86

74

88

75

C)

unități: în mg/kg n.d.: nedetectată

SR: deviația standard a reproductibilității CVR :

coeficient de variație(%)

rec.: randament(%)

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor cu referire la conținutul în spiramicină*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.599 din 26 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor cu referire la conținutul în spiramicină, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin. Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 22.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 22/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor cu referire la conținutul în spiramicină

ANEXĂ

la norma veterinară

de clorură de sodiu (4.3). Această suspensie poate fi menținută timp de o săptămână la aproximativ la 4 °.c.

4.

Mediu de cultură și reactivi

4.1.

Mediu de cultură (b)

Peptonă de carne

6,0 g

Triptona

4,0 g

Extract de drojdie de bere

3,0 g Extract de carne

1.5 g Glucoză

1,0 g

Agar

10,0 - 20,0 g

Apă

1000 ml

pH 6,5 - 6,6 (după sterilizare).

4.2.

Mediul probei (b)

Triptona

5,0 g

Extract de drojdie de bere

4,0 g Extract de carne

3,0 g Agar

10,0 - 20,0 g

Apă

1000 ml

pH 8,0 (după sterilizare).

4.3.

Soluție de clorură de sodiu 0,8%(w/v)

Se dizolvă 8 g clorură de sodiu în apă și se diluează până la 1 OOO

ml, se sterilizează.

4.4.

Tampon fosfat - bicarbonat, pH 8,0

(4.4)

Fosfat hidrogenat de potasiu K2HPO4 Fosfat dihidrogenat de potasiu KH2 PQ4 Carbonat acid de sodiu NAHCO 3

Apă până la

4.5.

Amestec de metanol și tampon

(50/50

VN).

4.6.

Substantă standard

16,7 g

0,5 g

20,0 g

1000 ml fosfat -bicarbonat

Spiramicină d '

e activitate cunoscută (în UI).

5.

Solutii etalon

Se dizo '

lvă o cantitate precis cântărită din substanța de

determinat și de standard (4.6) în amestec (4.5) și se diluează cu același amestec pentru a se obține soluția stoc ce conține 1 OOO

Ul spiramicină/ml. Se păstrează în flacoane închise la 4°C această soluție este stabilă timp de maxim cinci zile.

Din această soluție stoc se prepară prin diluții succesive cu ajutorul amestecului, (4.5) următoarele • soluții

Sa

1

Ul/ml

S4

0,5

Ul/ml

S2

0,25

Ul/ml

S1

O, 125

Ul/ml

6.

Prepararea soluțiilor de extract și de probă

6.1.

Extractie

Se cântăre ' ște o cantitate de probă de 20,0 g în cazul

furajelor, de 1,0 până la 20,0 g pentru premixuri. Se adaugă

100 ml de amestec (4.5) și se agită timp de 30 minute. Se centrifughează sau se decantează și se diluează soluția de supernatant

cu

amestecul

(4.5)

pentru

a

se

obține

o concentrație evaluată de spiramicină de 1 Ul/ml ( = U 8

)

Pentru

niveluri

evaluate

de

spiramicină

din

furaje, inferioare valorii de 2,5 mg/kg, extracția trebuie să fie efectuată după cum urmează. Se cântărește o cantitate de probă de 20,0

°

g. Se adaugă 100 ml de amestec (4.5) și se agită timp de 30 minute.

Se

centrifughează

timp

de

câteva

minute,

se prelevează un volum de 50 ml din soluția de supernatant și se evaporă până timp de aproximativ 4 minute, la presiune redusă, în evaporatorul rotativ, la temperatură ce nu depășește 40

C. Se diluează reziduul cu ajutorul amestecului (4.5), până se

obține o concentrație dorită de spiramicină de 1 Ul/ml ( = U 8 )

6.2.

Soluții probă

Pentru soluția U 8

se prepară soluțiile U 4 (conținut evaluat:

0,5

Ul/ml), U 2

(conținut evaluat: 0,25 Ul/ml) și U1 (conținut evaluat: O, 125

Ul/ml) prin diluții succesive

(1+1)

cu ajutorul amestecului

(4.5).

7.

Procedura de testare

l

7.1.

însământarea mediului de testare

Se însămânțează mediul de testare (4.2) cu suspensie bacteriană

(3.2)

la aproximativ

50

°

C.

Prin experimente

preliminare pe plăci cu mediu de testare (4.2). se determină cantitatea

de suspensie

bacteriană

necesară

pentru

a se determina cele mai întinse și mai clare zone de inhibiție cu diferite concentrații în spiramicină

7.2.

Prepararea plăcilor de însămânțare

Difuzia pe agar este efectuată în plăci utilizâdu-se patru concentrații din soluția etalon (Sa S4 S2 S1 ) și patru concentrații din soluția probei (U 8

,

U4,U2, U1). Aceste patru concentrații ale extractului și etalonului trebuie, în mod necesar să fie plasate în fiecare placă. În acest scop, se aleg plăci destul de mari pentru a permite să fie realizate în mediu de agar cel puțin opt godeuri cu un diametru de 1O până la 13 mm și la nu mai puțin de 30 mm între centre. Testul poate fi efectuat pe plăci formate dintr-o placă de sticlă cu o față din aluminiu sau un inel din plastic plasat în vârf, 200 mm în diametru și 20 mm înălțime.

Se toarnă în plăci o cantitate din mediul (4.2), însămânțat cum este indicat la punctul 7.1., pentru a se obține un strat de aproximativ 2 mm grosime (60 ml pentru o placă de 200 mm diametru). Se lasă să se solidifice, se realizează godeuri și se pun în acestea volume de probă exact măsurate și soluții standard (între O,1O și O,15 ml/godeu, conform diametrului). Se utilizează fiecare concentrație de cel puțin patru ori, astfel încât fiecare determinare să fie supusă unei evaluări a 32 zone de inhibitie.

7 '

.3. lncubatie

Se incubea ' ză plăcile timp de 16 până la 18 ore, la 30 ±

2°c.

8.

Evaluare

Se măsoară diametrul zonelor de inhibiție cu o aproximație

de O,1 mm. Se înregistrează

valorile medii pentru fiecare concentrație

pe

hârtie

grafică

semi-logaritmic

ce

indică logaritmul

concentrațiilor în raport cu diametrul

zonelor de inhibiție. Se trasează liniile cele mai potrivite atât pentru soluția etalon cât și pentru extract, ca în exemplul de mai jos.

Se determină punctul ăcel mai potrivit" pentru cel mai scăzut nivel (SL) utilizând formula:

a)

SL=

7S

1

+4S

2

+S4-2S

8

10

Se determină punctul ăcel mai potrivit" pentru nivelul standard cel mai ridicat (SH) utilizând formula:

b)

SH =

7Sg +4S4 +S2 -2S,

10

Se calculează în mod similar punctele ăcele mai potrivite" pentru nivelul cel mai scăzut de extract (UL) și nivelul cel mai înalt de extract (UH) prin substituirea u1 ,U4

și ua cu s1, s2 și sa din formula menționată mai sus

C

).

Se

înregistrează

valorile

calculate

ale SL

și SH,

pe aceeași hârtie grafică și se unesc pentru a da linia ,,cea mai potrivită" pentru soluția etalon. Se înregistrează în mod similar UL și UH și se unesc pentru a da linia ăcea mai potrivită" pentru extract.

În

absenta

oricărei

interferente

liniile

trebuie

fie paralele.

Pentr ' u

scopuri

practice

l ' iniile

pot

fi considerate

paralele dacă valorile (SH-SL) și (UH-UL) nu diferă mai mult de

10%,

ca valoare medie a acestora.

Dacă liniile nu sunt paralele fie u1 și s1 fie ua și sa pot fi eliminate și SL, SH, UL și UH calculate, utilizând formula alternativă, pentru a da liniile alternative ăcele mai potrivite".

(a')

SL=5S1+2S

2

-2S

4

sau

5S2+2S4-S

g

6

6

(b')

sH

=

ss

4

+

2s

2

-

s 1

sau

5S

8

+

2s

4

-

s

2

6

6

și în mod similar pentru UL și UH. Trebuie să fie respectate aceleași criterii de paralelism Faptul că rezultatul a fost calculat pe baza celor trei nivele trebuie să fie notat în raportul final.

Literele mici s și v se referă la diametrele zonelor de inhibitie.

A '

tunci când liniile sunt considerate ca fiind paralele, se

calculează logaritmul activității relative (log A) prin intermediul uneia din următoarele formule, depinzând de faptul dacă au fost utilizate trei sau patru nivele pentru evaluarea paralelismului.

Pentru patru nivele

(C)

LogA =

(U1

+U

2

+U4 +U

g -SI -S 2 -S 4

-S g )X0 , 602

---'---=----

;

;;

.;.

:c

;

;;

U 4 +U g

+S4 +S

g

-Ul

- U2

-Sl -S

2

Pentru trei nivele

(d)

Log

A

=

(U1

+U

2

+U

4

-S1-S

2

-S4)

X

0

,

401

U4+S4-U1-S 1

sau

(d')

LogA=

(U

2

+U

4

+U

8

-S

2

-S

4

-S

8

)

x

0,401

U 8

+S 8

-U

2

-S 2

Activitatea extractului probei -

activitatea standardului corespondent x A

(Ua

=

Sa x A)

Dacă activitatea relativă este în afara gamei de valori

cuprinse între 0,5 și 2,0, atunci se repetă proba făcând ajustări corespunzătore ale concentrațiilor extractului sau dacă aceasta nu este posibil, ale soluțiilor etalon. Atunci când activitatea relativă nu poate fi adusă în gama de valori solicitată, orice rezultat obținut trebuie să fie considerat

ca aproximativ

și acesta trebuie notat în raportul final.

Atunci când liniile sunt considerate ca nefiind paralele, se repetă determinarea. Dacă paralelismul nu este totuși realizat, înseamnă că nu a fost obtinută o determinare satisfăcătoare.

Se exprimă rezultatu ' l în miligrame de spiramicină bază pe kilogram de furaj.

9.

Repetabilitate

Diferența între rezultatele celor două determinări paralele efectuate pe aceleași probă prin aceeași analiză nu trebuie să depășească

2

mg/kg,

în

valoare

absolută,

pentru

niveluri

în spiramicină bază până la 1Og/kg,

20% în raport cu valoarea cea mai mare pentru niveluri de la 1O până la 25 mg/kg,

5 mg/kg, în valoare absolută, pentru niveluri de la 25 până la 50 mg/kg,

10% raport cu valoarea cea mai mare pentru niveluri mai mari de 50 mg/kg.

i (1) 1 mg spiramicină bază este echivalent cu 3200 unități intemaționale(UI)

( 3

) Pot fi utilizate alte metode , cu condiția să se fi stabilit că acestea utilizează suspensii bacteriene similare .

( b )

Poate fi utilizat orice mediu comercial de cultură de compoziție similară ce oferă aceleași rezultate.

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor în scopul identificării conținutului în robenidină (E 750)

și metil benzoat*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.183 din 26 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește metode

naționale

de

analiză

pentru

controlul

oficial

al furajelor în scopul identificării conținutului în robenidină (E 750) și metil benzoat, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 23.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 23/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește metode naționale de analiză pentru controlul oficial al furajelor în scopul identificării conținutului în robenidină (E 750) și metil benzoat

ANEXĂ

la norma veterinară

3.7.

Soluție de fosfat monohidrogenat de sodiu, c = 0,025mol/l. Se dizolvă 3,55 g difosfat monohidrogenat anhidru (sau 4,45 g dihidrat sau 8,95 g dodecahidrat ) în apă (grade HPLC) într-un balon cotat de 1OOO ml, se aduce la semn și se amestecă.

3.8.

Faza mobilă HPLC

Se amestecă următorii reactivi:

650 ml acetonitril (3.3), 250 ml apa (grad - HPLC),

50 ml soluție de fosfat dihidrogenat de potasiu (3.6),

50 ml soluție de fosfat monohidrogenat disodic (3.7).

Se filtrează prin filtre de 0,22 om (4.6) și se degazează soluția,

(ex.

prin tratament cu ultrasunete timp de 1O minute)

3.9.

Substanța standard (de titrare)

Robedinidină

pură:

1.

3-bis[(4-clorbenzidina)amino] guanidin hidroclorid, E 750.

3.9.1

Soluție standard stoc de robenidină: 300 mg/ml

Se cântăresc

cu aproximație

de O,1

mg,

30 mg din substanța standard (de titrare) de robenidină (3.9). Se dizolvă în metanol acidifiat (3.2) într-un balon cotat de 100 ml, se aduce la semn și se amestecă. Balonul cotat se învelește într-o folie de aluminiu și se păstrează la loc întunecos.

3.9.2

Soluție standard intermediară de robenidină: 12 mg/ml

Se pun 10,0 ml din soluția standard stoc (3.9.1) într-un balon cotat de 250 ml, se aduce la semn cu faza mobilă (3.8) și se amestecă. Balonul cotat se învelește într-o folie de aluminiu și se păstrează la loc întunecos.

3.9.3

Calibrarea (etalonarea) solutiilor

A

I

lntr-o serie de baloane cotate de 50 ml se transferă 5,0,

10,0,

15,0,

20,0

și

25,0

ml

din

soluția

standard intermediară (3.9.2). Se aduce la semn cu faza mobilă (3.8)

și

se

amestecă.

Aceste

soluții

corespund concentrațiilor de 1,2, 2,4, 3,6, 4,8, și 6,0 mg/ml

de robenidină.

Aceste

soluții

trebuie

fie

proaspăt preparate, înainte de utilizare.

4.

Aparat

4.1.

Coloana de sticlă

Construită din sticlă bruna prevăzută cu robinet și un rezervor

de

aproximativ

150 ml capacitate,

diametrul interior de la 1O la 15 mm, lungime 250 mm.

4.2

Agitator manual de laborator

4.3

Evaporator cu film rotativ

4.4.

Echipament HPLC cu detector cu ultraviolete cu lungimi de undă variabile sau detector cu sistem de diode in linie cu lungimi de undă cuprinse între 250 și 400 nm.

4.4.1.

Coloană de cromatografie lichidă: 300 mm x 4 mm, C 18, 1O mm sau o coloană echivalentă.

4.5.

Filtru cu hârtie din fibre de sticlă (Whatman GF/A sau filtre echivalente)

4.6.

Filtru cu membrană de 0,22 mm

4.7.

Filtru cu membrană de 0,45 mm

5.

Metodă de lucru

Notă: Robenidina este sensibilă la lumină Sticla bruna trebuie utilizată la toate operațiunile.

5.1.

Generalităti

5.1.1.

Trebu ' ie analizat un furaj martor pentru a se verifica

absența robenidinei și interferența substanțelor.

5.1.2.

Trebuie

efectuat

un test de randament

prin care se analizează

un

furaj

martor

ce

este

îmbogățit

prin adăugarea unei cantități de robenidină identică cu cea prezentă în probă. Pentru a se îmbogăți la un nivel de 60 mg/kg, se adaugă 3,0 ml soluție etalon stoc (3.9.1) intr-un pahar conic de 250 ml. Soluția se evaporă la c. 0,5 ml în curent de azot. Se adaugă 15 g din furajul martor, se amestecă și se așteaptă 1O minute înainte de procedura

I

de extractie.(5.2)

A

Nota: ln cadrul acestei metode, furajul martor trebuie să fie

similar, ca tip, cu cel al probelor de cercetat și cu privire la analiză, nu trebuie să fie detectată robenidina.

l

5.2.

Extractia

Se cântăresc cu o precizie de 0,01 g, aproximativ 15 g din proba preparată. Se transferă intr-un pahar conic de 250 ml și se adaugă 100,0 ml metanol acidifiat (3.2). Se acoperă și se agită timp de o oră la agitator.(4.2). Soluția

se filtrează prin hârtia de filtru din fibră de sticlă (4.5) și se colectează integral filtratul într-un pahar conic de 150 ml. Se adaugă 7,5 g de sită moleculară (3.4), se acoperă și se agită timp de 5 minute. Se filtrează imediat printr-un filtru din fibre de sticlă. Această soluție se păstrează pentru etapa de purificare (5.3).

5.3.

Purificarea

5.3.1.

Prepararea coloanei de oxid de aluminiu

Extremitatea inferioară a coloanei de sticlă se obstruează cu un mic tampon de vată de sticlă (4.1) și se tasează utilizând o baghetă de sticlă. Se cântăresc 11,0 g din oxidul de aluminiu preparat (3.5) și se transferă în coloană. Trebuie să se aibă grijă să se minimizeze expunerea la aer în timpul acestei etape.

Se

lovește ușor extremitatea inferioară a coloanei umplute pentru a se decanta oxidul de aluminiu.

5.3.2.

Purificarea probei

Cu ajutorul unei pipete, se transferă în coloană 5,0 ml din extractul de probă preparat la (5.2).Se lasă vârful pipetei închis până la peretele coloanei și se permite soluției să fie absorbită pe oxidul de aluminiu. Se eluează robenidina din coloană utilizând 100 ml metanol (3.1), la un debit de 2 până la 3 ml/minut și se colectează eluantul într-un balon cu fund rotund de 250 ml. Se evaporă soluția de metanol până la uscare la 40° C, la presiune redusă, cu ajutorul evaporatorului rotativ (4.3). Se redizolvă reziduul în 3 până la 4 ml de fază mobilă (3.8) și se transferă cantitativ într-un balon cotat de 1O ml. Se clătește balonul cu mai multe părți de 1-2 ml fază mobilă și se transferă aceste lichide de spălare în balonul cotat. Se aduce la semn cu același solvent și se amestecă. O parte alicotă este filtrată prin membrana filtrului de 0,45 mm (4.7). Această soluție se stochează pentru determinare HPLC (5.4).

5.4

Determinare HPLC

5.4.1.

Parametri

Următoarele condiții sunt oferite pentru îndrumare, putând fi utilizate cu cond , i , tia să ofere rezultate echivalente:

Coloana de cromatografie lichidă (4.4.1), faza mobilă HPLC (3.8),

Debit: 1,5 - 2 ml /minut, Lungime de undă: 317 nm, Volum injectat: 20 - 50 ml

Se

verifică

stabilitatea

sistemului

cromatografic,

se injectează

soluția de etalonare

(3.9.3) ce conține 3,6 mg/ml, de câte ori este nevoie, până se realizează cel mai înalt pic și timpii de retenție sunt constanți.

5.4.2.

Curba de etalonare

Se injectează fiecare soluție de etalonare (3.9.3.) de câte ori este nevoie și se măsoară înălțimile picurilor(ariilor) pentru fiecare concentrație. Se reprezintă grafic o curbă de etalonare utilizând mediile picurilor sau ariilor principale ale soluțiilor de etalonare ca ordonate și concentrațiile corespunzătoare în mg/ml ca abscise.

5.4.3.

Soluția probă

Se injectează extractul de probă (5.3.2) de câte ori este necesar, utilizând aceleași volume luate drept soluții de etalonare și se determină media înălțimilor picurilor (ariilor) de robenidină.

6.

Calcularea rezultatelor

Din media înălțimilor (ariilor) picurilor de robenidina a probelor se determină concentrația probelor în mg/ml prin referire la curba de etalonare (5.4.2).

Conținutul probei în robenidina

w

(mg/ml) este dat de următoarea formulă:

cx200

w=--

m

În care:

c = concentrația probei în robenidină, în mg/ml, m = masa probei exprimată în g

7.

Validarea rezultatelor

7.1.

Identitate

Identitatea produsului analizat poate fi confirmată prin co­ cromatografie sau prin utilizarea unui detector cu sistem de diode prin care sunt comparate spectrul extractului de probă și soluția de calibrare (3.9.3) ce conține 6 mg/ml.

7.1.1.

Co - cromatografia

Un extract de probă este îmbogățit prin adăugarea unei cantități

corespunzătoare

din

soluția

etalon

(3.9.3). Cantitatea de robenidină adăugată trebuie să fie similară cantității estimate de robenidină găsită în extractul de probă.

Numai înălțimea picurilor de robenidină trebuie să crească după luarea în calcul a ambelor cantități adăugate și diluarea

extractului.

Lărgimea

picului,

la jumătate

din

înăltimea maximă, trebuie să se încadreze în maxim 10°/o din l ' ărgimea inițială.

7.1.2.

Detectarea prin sistemul de diode

Rezultatele sunt evaluate în conformitate cu următoarele criterii:

(a)

lungimea de undă a absorbției maxime a probei și a spectrelor standardului,

înregistrate

la vârful picului, pe cromatogramă, trebuie să fie aceeași, cu o limită de siguranță determinată prin puterea

de rezolutie a sistemului de detectare. Pentru

detectare

' prin sistemul de diode, aceasta este

tipică până la aproximativ 2 nm.

(b)

între 250 și 400 nm, spectrele

standard șI a probei,

înregistrate

la

vârful

picului

pe cromatogramă, trebuie să fie diferite pentru acele părți ale spectrului cuprinse între 1O și 100% ale absorbției relative. Acest criteriu este îndeplinit când sunt prezente aceleași maxime și când nu se observă vreo deviație între cele două puncte ale spectrului ce depășește 15% din proba de analizat standard.

(c)

între 250 și 400 nm, spectrele curbei ascendente, vârfului și curbei descendente a picului, produse de extractul de probă nu trebuie să fie diferite unele de celelalte pentru acele părți ale spectrului în interiorul gamei de la 1O la 100% de absorbție relativă. Acest criteriu este îndeplinit când sunt prezente

aceleași

maxime

și

când

la

toate punctele

observate

deviația

intre

spectre

nu depășește 15% din absorbția spectrului vârfului.

7.2.

7.3.

Dacă unul din aceste criterii nu este îndeplinit, prezența substanței de analizat nu este confirmată

Repetabilitate

Diferența

între

rezultatele

a

2

determinări

paralele, efectuate pe aceeași probă, nu trebuie să depășească

10% din cel mai mare rezultat al continutului în robenidină, mai mare de 15mg/kg.

'

Randament

Pentru proba martor îmbogățită, randamentul trebuie să fie de minim 85%.

8.

Rezultatele unui studiu de colaborare

A

fost

realizat,

de

către

comunitate,

un

studiu

de colaborare în 12 laboratoare, în care au fost analizate 4 probe de furaj pentru păsări și iepuri, sub formă de făină sau pelete. Au fost efectuate analize duble pentru fiecare probă. Rezultatele sunt prezentate în tabelul următor: Rezultate

Media

27,00

27,99

43,6

40,1

mg/ml

Sr (mg/kg)

1,46

1,26

1,44

1,66

CVr (%)

5,4

4,5

3,3

4,1

Sr (mg/kg)

4,36

3,36

4,61

3,91

CVR (%)

16,1

12,0

10,6

9,7

Randamen

90,0

93,3

87,2

80,2

t (%)

Sr = deviația standard a repetabilității

CVr= coeficientul de deviație a repetabilității SR= deviația standard a reproductibilității CVR=coeficient de variație a reproductibilității

2. DETERMINAREA METIL BENZOATULUI

7-benziloxi-6- butii- 3- metoxicarbonil- 4-quinolona

1.

Scop și aplicabilitate

Această metodă are ca scop determinarea metil benzoatului din furaje.

Limita minimă a determinării este de 1 mg/kg.

2.

Principiu

Metil benzoatul este extras din probă cu soluție metanolică de acid metansulfonic. Extractul este purificat cu diclormetan prin cromatografie de schimb ionic și apoi din nou cu diclormetan. Conținutul în benzoat de metil este determinat prin cromatografie lichidă de înaltă performanță în fază inversă (HPLC) ce utilizează un detector UV.

3.

Reactivi

3.1.

Diclormetan

3.2.

Metanol, grade HPLC

3.3.

faza mobilă HPLC:

amestec de metanol (3.2) și apă (grade HPLC) 75+25

(v+v)

filtrarea prin filtre de 0,22 mm (4.6) și degazarea soluției, (ex. prin tratament cu ultrasunete timp de 1 O

minute)

3.4.

Solutie de acid metansulfonic, s = 2%

Se d ' iluează 20 ml acid metansulfonic până la 1 OOO

ml cu metanol (3.2).

3.5.

Solutie de acid clorhidric, s = 10%

Se dilue ' ază 100 ml acid clorhidric (P 20 c. 1,18 g/ml) cu apa

pana la 1 OOO

ml.

3.6.

Amberlite CG-120 (Na), rășină schimbătoare de cationi, diametrul granulelor de la 100 la 200 mesh (0,074 - 0,038 mm)

Rășina este retratată înaintea utilizării: se amestecă 100 g rășină

cu

500

ml

soluție

acid

clorhidric

(3.5)

și

se încălzește pe o placă fierbinte, agintându-se continuu. Se

lasă la rece pentru a se decanta acidul. Se filtrează prin hârtia de filtru sub vacuum. Se spală rășina de două ori cu 500 ml părți apa și apoi cu 250 ml etanol (3.2). Se spală rășina cu cele 250 ml părți de metanol (3.2) și se usucă prin trecerea aerului prin filtru.

Rășina uscată se păstrează într-o sticlă închisă.

3.7.

Substanța standard: metil benzoat pur (7-benziloxi-6- butil- 3- metoxicarbonil- 4-quinolona)

3.7.1.

Soluție stoc de metil benzoat, 500mg/ml

Se cântăresc

cu aproximație

de O,1

mg,

50 mg din substanța standard (3.7) se dizolvă în soluție de acid metansulfonic

(3.4). într-un balon cotat de 100 ml se completează până la semn și se amestecă.

3.7.2.

Solutie standard intermediară de metil benzoat, 50

mg/ml

'

Se transfera 5,0 ml soluție stoc de metil benzoat (3.7.1) într-un balon cotat de 50 ml, se aduce la semn cu metanol (3.2) și se amestecă.

I

3.7.3.

Etalonarea solutiilor

A

lntr-o serie de baloane cotate de 25 ml se transferă 1,0,

2,0, 3,0, 4,0, și 5,0, ml de soluție standard (etalon) intermediară de metil benzoat (3.7.2) Se aduce la semn cu faza mobilă (3.3) și se amestecă. Aceste soluții corespund concentrațiilor de 2,0, 4,0, 6,0, 8,0 și 10,0 mg/ml metil benzoat. Aceste soluții trebuie să fie proaspăt preparate înainte de utilizare.

4.

Aparat

4.1.

Agitator de laborator

4.2.

Evaporator rotativ

4.3.

Coloană de sticlă (250 mm

x

15 mm) prevăzută cu robinet și rezervor de aproximativ 200 ml capacitate.

4.4.

Echipament HPLC cu detector cu ultraviolete cu lungimi de undă variabile sau detector cu sistem de diode

4.4.1.

Coloana cromatografică cu lichid: 300 mm

x

4

mm, C

- 18, 10 mm

4.5.

Filtru cu membrană de 0,22 mm

4.6.

Filtru cu membrană de 0,45 mm

5.

Metodă de lucru

5.1.

Generalităti

'

5.1.1.

Un furaj martor trebuie analizat pentru a se verifica absenta metil benzenului sau a altor substante interferente.

'

'

5.1.2.

Trebuie efectuat un test de randament prin care se

analizează un furaj martor ce este îmbogățit prin adăugarea unei cantități de metil benzoat, identică cu cea prezentă în probă. Pentru a se îmbogăți la un nivel de 15 mg/kg, se adaugă 600 ml soluție stoc (3.7.1) la 20 g furaj martor, se amestecă și se așteaptă 1O minute înainte de procedura de extractie.(5.2)

A

I

Nota: ln cadrul acestei metode, furajul martor trebuie să fie

ca tip, similar cu cel al probei, iar cu privire la analiză, nu trebuie să fie detectat metil benzoat.

5.2.

Extractia

Se cân '

tărește cu precizie de 0,01 g, aproximativ 20 g din

proba preparată si se transferă într-un pahar conic de 250 ml. Se adaugă 100,0 ml soluție de acid metansulfonic (3.4) și se agită mecanic (4.1) timp de 30 minute. Soluția se filtrează prin hârtia de filtru (4.1) și se păstrează filtratul pentru etapa de separare lichid-lichid.

5.3.

Separarea lichidulichid

Se transferă 25 ml filtrat obținut, (5.2) într-o pâlnie de separare de 500 ml ce conține 100 ml soluție de acid clorhidric. Se adaugă 100 ml diclormetan (3.1), în pâlnie și se agită un minut. Se lasă să se separe fazele și se preia stratul inferior (diclormetan) într-un balon cu fund rotund de 500 ml. Se repetă extracția fazei apoase cu celelalte două porțiuni de diclormetan

a 40 ml și se combină acestea cu primul extract din balonul cu fund rotund. Se evaporă

extractul

de

diclormetan

până

la

uscare

la evaporatorul

rotativ

(4.2). ce funcționează

la presiune scăzută la 40° C. Reziduul se dizolvă în 20 până la 25 ml metanol (3.2), se pune dopul și se conservă extractul total pentru cromatografie prin schimb ionic.(5.4).

5.4.

Cromatografie prin schimb ionic

5.4.1.

Prepararea coloanei cu schimbători de cationi

Se

introduce

un

mic

tampon

de

vată

de

sticlă

la extremitatea inferioară a coloanei de sticlă. Se prepară o suspensie de 5 g de rășină schimbătoare de cationi (3.6) cu 50 ml acid clorhidric (3.5), se toarnă în coloana de sticlă și se lasă să se stabilizeze. Se îndepărtează excesul de acid lăsându-l să se scurgă chiar deasupra suprafeței rășinii

și se spală

coloana

cu apă

până

când este neutralizat cu turnesol. Se transferă 50 ml metanol (3.2) în coloană și permite scurgerea de pe suprafața rășinii.

5.4.2.

Cromatografie pe coloană

Cu ajutorul unei pipete, se transferă cu grijă extractul obținut în (5.3) coloană. Se clătește balonul cu fund rotund cu două părți de 5 și 1O ml metanol (3.2) și se transferă aceste lichide de spălare în coloana. Se lasă extractul să se scurgă pe suprafața rășinii, se spală coloana cu 50 ml metanol și se asigură că debitul nu este mai mare de 5 ml /min. Se înlătură eluantul. Se eluează metil benzoatul din coloană utilizând 150 ml soluție de acid metansulfonic (3.4) și se colectează eluantul din coloană într-un pahar conic de 250 ml.

5.5.

Separarea lichid-lichid

Se transfera eluantul obținut (5.4.2) într-o pâlnie de decantare de 1 litru. Se clătește paharul conic cu 5 până la 1O ml metanol (3.2) și se combină lichidul de spălare cu conținutul pâlniei de separare. Se adaugă 300 ml soluție acid clorhidric (3.5) și 130 ml diclormetan (3.1). Se agită timp de 1 minut și se lasă să se separe fazele. Se lasă să se scurgă faza inferioară (diclormetan) într-un balon cu fundul rotund de 500 ml. Se repetă extracția fazei apoase cu alte două părți de 70 ml de diclormetan și se combină aceste extracte cu primul într-un balon cu fundul rotund.

Se evaporă extractul de diclormetan pana la uscare cu evaporatorul rotativ

(4.2)

ce funcționează la presiune

redusă și la temperatura de 40

°c.

Se dizolvă reziduul într­

un balon cu aproximativ 5 ml metanol (3.2) și se transferă întreaga cantitate din această soluție într-un balon cotat de 1O ml. Se clătește balonul cu fund rotund cu două noi părți de 1 până la 2 ml metanol și acestea se transferă într-un

balon cotat. Se aduce la semn cu metanol si se amestecă. O porțiune alicotă este filtrată printr-un filtru cu membrană (4.6).Această

soluție

se

păstrează

pentru

analiza HPLC.(5.6).

5.6.

Determinarea HPLC

5.6.1.

Parametri

Următoarele condiții sunt oferite pentru orientare, putând fi utilizate cu conditia să ofere rezultate echivalente:

-

coloană cromato '

grafică cu lichid (4.4.1)

-

fază mobilă HPLC: amestec apă - metanol (3.3), - debit: de la 1 la 1,5 ml/minut.

-

lungime de undă de detecție: 265 nm, - Volum injectat de la 20 la 50 ml.

Se controlează stabilitatea sistemului cromatografic, injectându-se soluția de etalonare (3.7.3) ce conține 4 mg/ml, de mai multe ori, până când se realizează înălțimile sau ariile picului și timpii de retenție fixați.

5.6.2.

Curba etalon

Se

injectează

fiecare

soluție

de

calibrare

(etalonare) (3.7.3) la diferite intervale de timp și se măsoară înălțimile (ariile) picurilor pentru fiecare concentrație. Se reprezintă grafic o curbă de calibrare utilizându-se media înălțimilor picului

sau ariile soluțiilor

de calibrare

(etalonare)

ca ordonate și concentrațiile corespondente

în mg/ml, ca abscise.

5.6.3.

Soluția probă

Se injectează extractul de probă (5.3.2) de mai multe ori, utilizându-se același volum folosit pentru soluțiile de calibrare (etalonare) și se determină media înălțimilor picurilor (ariilor) de metil benzoat

6.

Calcularea rezultatelor

Se determină concentrația soluției din probă a soluției din probă în mg/ml pornindu-se de la media înălțimii (ariei) picurilor de metil benzoat a soluției din probă în raport cu curba de etalonare.(5.4.2).

Conținutul în metil benzoat al probei w (mg/ml) este dat de următoarea formulă:

cx40

w=-­

m

În care:

c

=

concentrația în metil benzoat a probei, în mg/ml, m = masa probei de testat exprimată în g

7.

Validarea rezultatelor

7.1.

Identitate

Identitatea produsului analizat poate fi confirmată prin co­ cromatografie sau prin utilizarea unui detector cu sistem de diode prin care sunt comparate spectrul extractului probei și soluția de etalonare (3.7.2) ce conține 6 mg/ml.

7.1.1.

Co - cromatografia

Un extract de probă este îmbogățit prin adăugarea unei cantități corespunzătoare din soluția de etalonare (3.9.3). Cantitatea

de

metil

benzoat

adăugată

trebuie

fie similară

cu

cantitatea

estimată

de

metil

benzoat

în extractul de probă.

Numai înălțimea picului de metil benzoat trebuie să crească după luarea în calcul a ambelor cantități adăugate și diluarea extractului. Lărgimea picului, la jumătate din înălțimea maximă, trebuie să se încadreze în maxim 10%> din lărgimea init , ială.

7.1.2Detectare prin sistemul de diode

Rezultatele sunt evaluate în conformitate cu următoarele criterii:

(a)

lungimea de undă a absorbției maxime a probei și a spectrelor

standardului

(etalonului),

înregistrate

pe cromatogramă la vârful picului, trebuie să fie aceeași, cu o

zonă

de

siguranță

determinată

prin

puterea

de

rezolutie a sistemului de detectare. Pentru detectare prin si ' stemul de diode , aceasta este tipică până la

aproximativ 2 nm.

(b)

între 220 și 350 nm, spectrele probei și a etalonului, înregistrate

pe

cromatogramă

la

vârful

picului,

nu trebuie să fie diferite pentru acele părți ale spectrului cuprinse între 1O și 100% ale absorbției relative. Acest criteriu

este

îndeplinit

când

sunt prezente

aceleași

7.2.

7.3.

8.

maxime și când nu se observă vreo deviație între cele două puncte ale spectrului ce depășește 15% din proba de analizat standard.

(c)

între 220 și 350 nm, spectrul curbei ascendente, a vârfului și a curbei descendente a picului produs de extractul de probă, nu trebuie să fie diferită unele

de celelalte, pentru acele părți ale spectrului în interiorul gamei de la 1O la 100% de absorbție relativă. Acest criteriu

este

îndeplinit

când

sunt

prezente

aceleași maxime și când la toate punctele observate deviația dintre

spectre

nu

depășește

15%

din

absorbția spectrului vârfului.

Dacă unul din aceste criterii nu este îndeplinit, prezența substantei de analizat nu este confirmată

Repetab ' ilitate

Diferența

între

rezultatele

a

2

determinări

paralele efectuate pe aceleași probe nu trebuie să depășească

10°/o din cel mai mare rezultat al continutului în metil benzoat, intre

4

si 20 mg/kg.

'

Randament

Pentru o probă martor îmbogățită, randamentul trebuie să fie de minim 90%.

Rezultate ale unui studiu de colaborare

Cinci probe au fost analizate de către 1O laboratoare. Au fost efectuate analize duble pentru fiecare probă.

Rezultate

Media

n.d

4,50

4,50

8,90

8,70

Sr (mg/kg}

0,30

0,20

0,60

0,50

CVr (%)

6,70

4,40

6,70

5,70

Sr (mg/kg)

0,40

0,50

0,90

1,00

CVR (%}

8,90

11,1O

10,10

11,50

Randament

-

93,00

92,00

89,00

(%)

92,00

n.d.

=

nedetectat

Sr = deviația standard a repetabilității

CVr= coeficientul de deviație a repetabilității SR= deviația standard a reproductibilității CVR=coeficient de variație a reproductibilității

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește o metodă națională de analiză pentru determinarea lasalocidului de sodiu din furaje*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.190 din 26 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește o metodă

națională

de

analiză

pentru

determinarea lasalocidului de sodiu din furaje, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 24.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 24/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește o metodă națională de analiză pentru determinarea lasalocidului de sodiu din furaje

ANEXĂ

la norma veterinară

Se transferă 5,0 ml de acid clorhidric (3.6) într-un balon gradat de 1OOO ml, se aduce la semn cu metanol (3.5) și se amestecă. Această soluție trebuie să fie proaspăt preparată înainte de utilizare.

3.9.

Fază mobilă pentru HPLC, soluție tampon de fosfat și metanol 5

+

95 (V

+

V)

Se amestecă 5 ml de soluție tampon de fosfat (3.7) cu 95 ml de metanol (3.5).

3.1O. Substanță etalon lasalocid de sodiu cu puritate

garantată,

C 34 H 53

0

8 Na (sare sadică

de polieter

a acidului monocarboxilic, produs de Streptomyces lasaliensis), E763

3.10.1.

Solutie mamă din etalon de lasalocid de sodiu, 500

µg/ml

'

Se cântăresc cu o precizie de O,1 mg, 50 mg de

lasalocid de sodiu (3.1O) într-un balon gradat de 100 ml, se dizolvă în metanol acidifiat (3.8), se aduce la semn cu același solvent și se amestecă. Această soluție trebuie să fie proaspăt preparată înainte de utilizare.

3.10.2.

Solutie etalon intermediară de lasalocid de sodiu,

50 µg/ml

'

Se pipetează 10,0 ml de soluție mamă din etalon (3.10.1) într-un balon gradat de 100 ml, se aduce la semn cu metanol acidifiat (3.8) și se amestecă. Soluția trebuie să fie proaspăt preparată înainte de utilizare.

3.10.3.

Solutii de etalonare

Se transferă 1, ' 0, 2,0, 4,0, 5,0 și 10,0 ml din soluția etalon

intermediară (3.10.2) într-o serie de baloane gradate de 50 ml. Se aduce la semn cu metanol acidifiat (3.8) și se amestecă. Aceste soluții corespund respectiv la 1,0, 2,0, 4,0, 5,0 și 10,0 µg de lasalocid de sodiu pe ml. Aceste soluții trebuie să fie proaspăt preparate înainte de utilizare.

3.11. Apă, de calitate HPLC

4.

· Aparatură

4.1.

Baie cu ultrasunete (sau baie de apă cu agitator) cu reglaj de temperatură

4.2.

Filtre cu membrană de 0,45 µm

4.3.

Echipament

HPLC

cu

sistem

de

injecție, corespunzător pentru injectarea de volume de 20 de µI

4.3.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă de 125 mm x 4 mm, în fază inversă C18, umplere de 5 µm sau echivalentă

4.3.2.

Spectrofluorimetru cu ajustarea lungimilor

de undă variabile a lungimilor de undă de excitație și emisie

5.

Procedură

5.1.

Generalităti

5.1.1.

Furaj ma ' rtor

Pentru efectuarea testului de recuperare (5.1.2), trebuie analizat un furaj martor pentru a se verifica faptul că nu este prezent lasalocid de sodiu sau substanțe interferente. Furajul martor trebuie să fie de tip similar cu cel al probei și nu trebuie

fie

detectate

lasalocidul

de

sodiu

sau

substantele

intereferente.

'

5.1.2.

Test de recuperare

Trebuie efectuat un test de recuperare prin analizarea furajului martor ce a fost îmbogățit prin adăugarea unei cantități de lasalocid de sodiu, similară celei prezente în probă. Pentru a se fortifica la un nivel de 100 mg/kg, se transferă 10,0 ml din soluția mamă din etalon (3.10.1) într-un balon conic de 250 ml și se evaporă soluția până la aproximativ 0,5 ml. Se adaugă 50 g de furaj martor, se amestecă cu grijă și se lasă timp de 1O minute, amestecând din nou de mai multe ori înainte de a se continua cu faza de extracție (5.2).

Alternativ, dacă un furaj martor de tip similar cu cel al probei nu este disponibil (vezi 5.1.1), poate fi efectuat un test de recuperare prin intermediul metodei de adăugare de etalon. în acest caz, proba ce trebuie analizată este îmbogățită cu o cantitate de lasalocid de sodiu, similară celei deja prezente în probă.

Această

probă

este

analizată

împreună

cu

proba neîmbogățită iar recuperarea calculată prin diferență.

5.2.

Extractia

5.2.1-. Furaj ' e

Se cântăresc cu precizie de 0,01 g, între 5 g și 1O g de probă într-un balon conic de 250 ml cu dop. Se adaugă prin pipetare 100,0 ml de metanol acidifiat (3.8). Se astupă lejer și se agită pentru a se dispersa. Se plasează balonul într-o baie cu ultrasunete (4.1) la aproximativ 40 °C timp de 20 de minute, apoi se scoate și se răcește la temperatura camerei. Se lasă să

stea aproximativ 1 oră până ce s-au decantat materiile în suspensie, apoi se filtrează o parte alicotă printr-un filtru cu membrană de 0.45 µm (4.2) într-un vas corespunzător. Se continuă cu determinarea HPLC (5.3).

5.2.2. Premixuri

Se cântăresc cu precizie de 0,001 g aproximativ 2 g de premix nemărunțit într-un balon gradat de 250 ml. Se adaugă 100,0 ml de metanol acidifiat (3.8) și se agită pentru a se dispersa.

Se plasează

balonul și conținutul

într-o baie cu ultrasunete (4.1), la aproximativ 40 °C, timp de 20 de minute, apoi se scoate

și se răcește

la temperatura

camerei.

Se diluează până la semn cu metanol acidifiat (3.8) și se amestecă cu grijă. Se lasă să stea timp de o oră până se decantează materiile în suspensie, apoi se filtreaază o parte alicotă printr-un filtru cu membrană de 0,45 µm (4.2). Se diluează un volum corespunzător de filtrat clar cu metanol acidifiat (3.8), pentru a se obține o soluție de testare finală ce conține aproximativ 4 µg/ml de lasalocid de sodiu. Se continuă cu determinarea HPLC (5.3).

5.3.

Determinarea HPLC

5.3.1.

Parametri

Următoarele condiții sunt

oferite spre orientare; pot fi utilizate alte conditii cu conditia ca acestea să dea rezultate

echivalente:

'

'

Coloană cromatografică lichidă (4.3.1): 125 mm

x

4

mm, în fază inversă C18, umplere de 5 µm sau echivalentă

Fază mobilă (3.9):

Amestec de soluție tampon de fosfat (3.7) și metanol (3.5), 5 + 95 (V + V)

Debit:

1,2 ml/min

Lungimea undei de detecție:

-

Excitatie:

310 nm

-

Emisie ' :

419 nm

Volum de injecție:

20 µI

Se

verifică

stabilitatea

sistemului

cromatografic, injectându-se de mai multe ori soluția de etalonare (3.10.3) ce conține 4.0 µg/ml, până când sunt obținute înălțimi (sau arii) ale picului și timpi de retenție constanți.

5.3.2.

Curbă de etalonare

Se injectează fiecare soluție de etalonare (3.10.3) de mai multe ori și se determină înălțimile (ariile) medii ale picului, pentru fiecare concentrație. Se stabilește o curbă de etalonare utilizând

înălțimile

(ariile) medii ale picului ca ordonate

și concentrațiile corespondente în µg/ml ca abcise.

5.3.3.

Soluția probei

Se injectează extractul probei (5.2.1 sau 5.2.2) de mai multe ori, utilizând același volum ca cel reținut pentru soluția de etalonare și se determină înălțimile (ariile) medii ale picului lasalocidului de sodiu.

6.

Calcularea rezultatelor

Plecând de la înălțimea (aria) medie a picului produsă prin injectarea soluției probei (5.3.3), se determină concentrația de lasalocid de sodiu (µg/ml) prin raportare la curba de etalonare.

6.1.

Furaje

Conținutul în lasalocid de sodiu, w (mg/kg) din probă este dat de următoarea formulă:

w

=

/3

.V

,

[

mg

I

kg]

m

unde:

ț3 = conținutul în lasalocid de sodiu al soluției probei (5.2.1) în µg/ml

V1

= volumul extractului probei, în conformitate cu 5.2.1 în ml (de ex. 100)

m = masa părții de test, în g

6.2.

Premixuri

Conținutul în lasalocid de sodiu, w(mg/kg) din probă este dat de următoarea formulă:

w=

/3.V2.f

[ mg

lk

g ]

m

unde:

ț3 = concentrația de lasalocid de sodiu a soluției probei (5.2.2) în µg/ml

V 2

= volumul extraxtului probei, în conformitate cu 5.2.2 în ml

(de ex. 250)

f

=

factor de dilutie, în conformitate cu 5.2.2

m = masa părții d '

e test în g

7.

Validarea rezultatelor

7.1.

Identitate

Metodele bazate pe spectrofluorimetrie sunt mai puțin supuse interferenței decât cele la care este utilizată detecția UV. Identitatea substanței de analizat poate fi confirmată prin co-cromatografie.

7.1.1.

Co-cromatografie

Un extract al probei (5.2.1 sau 5.2.2) este îmbogățit prin adăugarea

unei

cantități

corespunzătoare

din

soluția

de etalonare (3.10.3). Cantitatea de lasalocid de sodiu adăugată trebuie să fie similară cu cantitatea de lasalocid de sodiu constatată

în

extractul

probei.

Numai

înălțimea

picului lasalocidului de sodiu trebuie să fie mai mare într-o măsură ce este corelată cu cantitatea de lasalocid de sodiu adăugată și diluția extractului. Lărgimea picului la jumătatea înălțimii trebuie să se situeze la ±

1 O

%

de lărgimea inițială a picului produsă de extractul probei ne-îmbogățite.

7.2.

Repetabilitate

Diferența dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe aceeași probă nu trebuie să depășească:

-

15 % cu referire la valoarea maximă pentru conținutul în lasalocid de sodiu de la 30 mg/kg la 100 mg/kg,

-

15 mg/kg pentru conținutul în lasalocid de sodiu de la 100 mg/kg la 200 mg/kg,

-

7,5

%

cu referire la valoarea maximă pentru un conținut în

lasalocid de sodiu mai mare de 200 mg/kg.

7.3.

Recuperare

Pentru proba de furaj (martor) îmbogățită, recuperarea trebuie să fie de cel puțin 80 %. Pentru probele de premIx îmbogățite, recuperarea trebuie să fie de cel puțin 90

°/o.

8.

Rezultatele unui studiu de colaborare

A fost organizat un studiu

de colaborare în care 2 probe de premixuri (probele

1

și

2)

și

5 probe de furaje (probele 3-7) au fost analizate de 12 laboratoare. Pentru fiecare probă au fost efectuate analize duble. Rezultatele sunt date în următorul tabel:

Proba 1 Premix pui

Proba 2 Premix curci

Proba 3 Pelete curci

Proba 4 Granule pui

Proba 5 Furaj curci

Proba 6 Furaj A păsări

Proba 7 Furaj B păsări

L

12

12

12

12

12

12

12

N

23

23

23

23

23

23

23

Medie (mg/kg)

5 050

16 200

76,5

78,4

92,9

48,3

32,6

Sr

(mg/kg)

107

408

1,71

2,23

2,27

1,93

1,75

Cvr(%)

2,12

2,52

2,24

2,84

2,44

4,00

5,37

SR(mg/kg)

286

883

3,85

7,32

5,29

3,47

3,49

CVR(%)

5,66

5,45

5,03

9,34

5,69

7,18

10,70

Cont , inut nominal

5 OOO*

16 OOO*

80*

105*

120*

50+

35+

(mg/kg)

L: număr laboratoare

n: număr rezultate unice

Sr: deviație standard a repetabilității

SR: deviație standard a reproductibilității CVr: coeficient de variație a repetabilității, %

CVR: coeficient de variație a reproductibilității, %

* continut declarat de fabricant

+

fura ' j preparat în laborator

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare ce stabilește metode naționale de analiză pentru determinarea produselor amprolium, diclazuril și carbadox din furaje*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.880 din 25 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor, emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară ce stabilește metode naționale de analiză pentru determinarea produselor amprolium, diclazuril și carbadox din furaje, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 25.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 25/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

ANEXĂ

NORMĂ VETERINARĂ

ce stabilește metode naționale de analiză pentru determinarea produselor amprolium, diclazuril și carbadox din furaje

ANEXĂ

la norma veterinară

membrană de 0,22 µm (4.3) și se degazează soluția (de ex. în baia cu ultrasunete (4.4) timp de cel puțin-15 minute.

3.7.

Substanță etalon: amprolium pur, clorhidrat clorură de 1-[(4-amino-2-propil-5-pirimidin)metil]-2-metil-piridinium, E 750

(vezi 9.2).

3.7.1.

Soluție etalon stoc de amprolium, 500 µg/ml

Se

cântăresc

cu

o precizie

de

O,1

mg,

50 mg

de amprolium (3.7) într-un balon gradat de 100 ml, se dizolvă în 80 ml de metanol (3.1) și se plasează balonul timp de 1O min într-o baie cu ultrasunete

(4.4).

După tratament cu ultrasunete, se

aduce soluția la temperatura camerei, se aduce la semn cu apă și se omogenizeaza. La o temperatură de 4

°e,

soluția este stabilă timp de o lună.

3.7.2.

Soluție etalon intermediară de amprolium, 50 µg/ml Se pipetează 5 ml din soluția etalon stoc (3.7.1) într-un

balon gradat de 50 ml, se aduce la semn cu solvent de extracție (3.8) și se omogenizeaza. La o temperatură de 4

°e,

soluția este stabilă timp de o lună.

3.7.3.

Solutii de etalonare

Se transfer ' ă 0,5, 1 și 2 ml din soluția etalon intermediară

(3.7.2) într-o serie de baloane gradate de 50 ml. Se aduce la semn cu faza mobilă (3.6) și se omogenizeaza. Aceste soluții corespund la 0,5, 1 și respectiv 2 µg de amprolium pe ml. Aceste soluții trebuie să fie proaspăt preparate

înainte de utilizare.

3.8.

Solvent de extractie

Amestec de metanol (3 '

.1) și apă 2+1 (v+v).

4.

Aparatură

4.1.

Echipament

HPLC

cu

sistem

de

injecție, corespunzător injectării de volume de 100 µI.

4.1.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă de 125 mm x 4 mm cu schimbători de cationi, umplere de Nucleosil 1O SA de 1O µm sau echivalentă.

4.1.2.

Detector UV cu lungime de undă variabilă sau detector cu grup de diode.

4.2.

Filtru cu membrană, material PTFE, de 0,45 µm.

4.3.

Filtru cu membrană de 0,22 µm.

-

4.4.

Baie cu ultrasunete.

4.5.

Agitator mecanic sau magnetic.

5.

Procedură

5.1.

Generalităti

5.1.1.

Furaj ma ' rtor

Pentru efectuarea testului de recuperare (5.1.2), trebuie analizat un furaj martor pentru a se verifica faptul că nu este prezent amprolium sau substanțe interferente. Furajul martor trebuie să fie de tip similar cu cel al probei și nu trebuie să fie detectate amprolium sau substanțe interferente.

5.1.2.

Test de recuperare

Trebuie efectuat un test de recuperare prin analizarea furajului martor ce a fost îmbogățit prin adăugarea unei cantități de amprolium, similară celei prezente în probă. Pentru a se îmbogăți la un nivel de 100 mg/kg, se transferă 1O ml din soluția etalon stoc (3.7.1) într-un pahar conic de 250 ml și se evaporă soluția până la aproximativ 0,5 ml. Se adaugă 50 g de furaj martor, se amestecă cu grijă și se lasă timp de 1O minute, amestecând din nou de mai multe ori înainte de a continua cu faza de extracție (5.2).

Alternativ, dacă nu este disponibil un furaj martor de tip similar celui din probă (a se vedea 5.1.1), poate fi efectuat un test

de

recuperare

prin

intermediul

metodei

de

aditie

a

etalonului.

A ln acest caz, proba de analizat este îmbogățită '

cu o

cantitate de amprolium similară celei deja prezente în probă. Această probă este analizată împreună cu proba ne-îmbogățită, iar recuperarea poate fi calculată prin diferență.

5.2.

Extractie

5.2.1.

Prem '

ixuri (conținut de amprolium

<

1 %) și furaje

Se cântăresc cu o precizie de 0,01 g, între 5 și 40 g de probă, în funcție de conținutul în amprolium, într-un pahar conic de 500 ml și se adaugă 200 ml de solvent de extracție (3.8). Se plasează balonul în baia cu ultrasunete (4.4) și se lasă timp de 15 minute. Se scoate balonul din baia cu ultrasunete și se agită timp de o oră cu agitatorul mecanic sau cu agitatorul magnetic (4.5). Se diluează o parte alicotă a extractului cu faza mobilă (3.6) pentru un conținut în amprolium de 0,5- 2 µg/ml și se amestecă (vezi observația 9.3). Se filtrează 5-1O ml din această

soluție diluată printr-un filtru cu membrană (4.2). Se continuă cu determinarea HPLC (5.3).

5.2.2.

Premixuri (conținut 1

%

amprolium)

Se cântăresc cu o precizie de 0,001 g, 1-4 g de premix, în funcție de conținutul în amprolium, într-un pahar conic de 500 ml și se adaugă 200 ml de solvent de extracție (3.8). Se plasează balonul în baia cu ultrasunete (4.4) și se lasă timp de 15 minute. Se scoate balonul din baia cu ultrasunete și se agită timp de o oră cu agitatorul mecanic sau cu agitatorul magnetic (4.5). Se diluează o parte alicotă a extractului cu faza mobilă (3.6), pentru un conținut în amprolium de 0,5-2 µg /ml și se amestecă. Se filtrează 5-1O ml din această soluție diluată printr­ un filtru cu membrană (4.2). Se continuă cu determinarea HPLC (5.3).

5.3.

Determinarea HPLC

5.3.1.

Parametri:

Sunt oferite pentru orientare următoarele condiții; pot fi utilizate

alte

conditii

numai

dacă

acestea

dau

rezultate

echivalente.

'

Coloană cromatografică lichidă (4.1.1.): 125 mm x 4 mm, cu

schimbători de cationi, umplere de Nucleosil 1O SA de 1O µm sau echivalentă.

Fază mobilă (3.6):

Amestec

de

acetonitril

(3.2),

soluție de fosfat dihidrogenat de sodiu (3.4) și soluție de perclorat de sodiu (3.5), 450 + 450 + 100

(v+v+v)

Debit:

O,7-1 ml/min.

Lungimea undei de detecție:

264 nm. Volum de injecție:

100 µI.

Se verifică stabilitatea sistemului cromatografic injectând de mai multe ori soluția de etalonare (3.7.3) conținând 1,0 µg/ml, până la obținerea de înălțimi ale picului și timpi de retentie constanti.

'

'

5.3.2.

Curbă de etalonare

Se injectează fiecare soluție de etalonare (3.7.3) de mai multe ori și se determină înălțimile (ariile) medii ale picului pentru fiecare concentrație. Se stabilește o curbă de etalonare utilizând înălțimile (ariile) medii ale picului ale soluțiilor de etalonare ca ordonate și concentrațiile corespondente, în µg/ml, ca abcise.

5.3.3.

Soluția probei

Se injectează extractul din probă (5.2) de mai multe ori, utilizând

același

volum

ca

cel

utilizat

pentru

soluțiile

de etalonare și se determină înălțimea (aria) medie a picului pentru amprolium.

6.

Calculul rezultatelor

Plecând de la înălțimea (aria) medie a picurilor pentru amprolium

a soluției

din probă, se determină

concentrația soluției probei în µg/ml, prin referire la curba de etalonare (5.3.2).

Conținutul probei în amprolium w, în mg/kg, este dat de următoarea formulă:

w= V - xo - x m f

[

g l

k g ]

m

în care:

V = volumul solventului de extracție (3.8) în ml, conform 5.2 (adică 200 ml)

o

= concentrația de amprolium din extractul din probă (5.2) în µg/ml

f = factorul de dilutie conform 5.2 m = masa porțiunii '

de test în g

7.

Validarea rezultatelor

7.1

Identitate

Identitatea substanței de analizat poate fi confirmată prin co-cromatografie sau utilizând un detector cu grup de diode, prin intermediul căruia sunt comparate spectrele extractului probei (5.2) și ale soluției de etalonare (3.7.3) conținând 2,0 µg/ml.

7.1.1.

Co-cromatografie

Un extract din probă (5.2) este îmbogățit prin adăugarea unei cantități corespunzătoare din soluția de etalonare (3.7.3). Cantitatea

de amprolium

adăugată

trebuie

să fie similară cantității de amprolium constatată în extractul probei.

Numai înălțimea picului de amprolium ar trebui să crească

după luarea în considerare atât a cantității adăugate cât și a diluției extractului. Lărgimea picului, la jumătatea înălțimii sale, trebuie să se situeze la ± 10% din lărgimea inițială a picului pentru amprolium al extractului probei ne-îmbogățite.

7.1.2.

Detecție cu grupuri de diode

Rezultatele sunt evaluate în conformitate cu următoarele criterii:

a)

Lungimea de undă a absorbției maxime a spectrelor probei

și

a

etalonului,

înregistrată

la

vârful

picului

pe cromatogramă, trebuie să fie aceeași într-o marjă determinată de puterea de rezoluție a sistemului de detecție. Pentru detecția cu grupuri de diode, aceasta este în general de

+

2 nm.

b)

Între 21O și 320 nm, spectrele probei și ale etalonului, înregistrate la vârful picului cromatogramei nu trebuie să fie diferite pentru acele părți ale spectrului situate între 1O și 100 % din absorbanța relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente aceleași maxime și la nici un punct observat deviația dintre două spectre nu depășește 15°/o din absorbanța etalonului substantei de analizat;

c)

I A

ntre 21O ș '

i 320 nm, spectrele porțiunii ascendente, ale vârfului

și ale porțiunii

descendente

a picului produse

de extractul din probă, nu trebuie să fie diferite unele de altele pentru acele părți ale spectrului situate între 1O și 100

%

din absorbanța relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente

aceleași maxime

și când la toate punctele observate

deviația

dintre spectre nu depășește

15

%

din absorbanța spectrului vârfului picului.

Dacă unul din aceste criterii nu este îndeplinit, prezența substanței de analizat nu este confirmată.

7.2. Repetabilitate

Diferența dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe aceeași probă nu trebuie să depășească

a)

15 % din valoarea superioară, pentru un conținut în amprolium între 25 mg/kg și 500 mg/kg

b)

75 mg/kg pentru un conținut în amprolium între 500 mg/kg și 1OOO mg/kg

c)

7,5 % din valoarea superioară, pentru un conținut în amprolium mai mare de 1OOO mg/kg.

7.3. Recuperare

Pentru o probă (martor) îmbogățită, recuperarea trebuie să fie de cel puțin 90%.

8.

Rezultatele unui studiu de colaborare

A fost organizat un studiu de colaborare, în cursul căruia au fost analizate trei furaje pentru păsări (probe 1-3), un furaj mineral (proba

4) și

un premix (proba 5). Rezultatele sunt prezentate în următorul tabel

Proba 1 (furaj

martor)

Proba 2

Proba 3

Proba 4

Proba 5

L

n medie (mg/kg)

St (mg/kg) CVt(%)

SR (mg/kg)

CVR (%)

14

56

-

-

-

-

-

14

56

45,5

2,26

4,95

2,95

6,47

14

56

188

3,57

1,90

11,8

6,27

14

56

5129

178

3,46

266

5,19

15

60

25140

550

2,20

760

3,00

Continut nomi ' nal

(mg/kg)

-

50

200

5000

25000

L: număr de laboratoare n: număr de valori unice

St:

deviație standard a repetabilității

CVt: coeficient de variație a repetabilității SR: deviație standard a reproductibilității

CVR: coeficient de variatie a reproductibilitătii

9.

Observatii

9.1

Dacă

'

proba

conține

tiamină,

picul

tiaminei

din

cromatogramă

apare

puțin înainte de picul amprolium-ului. Potrivit acestei metode, amprolium-ul și tiamina trebuie să fie separate. Dacă amprolium-ul și tiamina nu sunt separate de coloana

(4.1.1) utilizată în această metodă, se înlocuiește cu metanol până la 50 % din partea de acetonitril a fazei mobile

(3.6).

9.2

Conform Farmacopeii Britanice, spectrul soluției de amprolium (c = 0,02 mol/I) în acid clorhidric (c =

O, 1 mol/I) prezintă maxime la 246 nm și 262 nm. Absorbanța va fi de 0,84 la 246 nm și de 0,80 la 262 nm.

Partea B DETERMINAREA DICLAZURILULUI

2,6

-

diclor-(4-clorofenil)-4-[2,3,4,5-tetrahidro-3,5-dioxo-1,2,4- triazin-2-yl]fenil-acetonitril

1.

Scop și domeniu de aplicare

Metoda permite determinarea diclazurilului din furaje și premixuri. Limita de detecție este de O,1 mg/kg iar limita de determinare este de 0,5 mg/kg.

2.

Principiu

După adiția unui etalon intern, proba este extrasă cu metanol acidifiat. Pentru furaje, o parte alicotă a extractului este purificată pe un cartuș C18 pentru extracție în fază solidă. Diclazurilul este eluat din cartuș cu un amestec de metanol acidifiat

și apă. După evaporare,

reziduul

este dizolvat

în DMF/apă. Pentru premixuri, extractul este evaporat iar reziduul este

dizolvat

în

DMF/apă.

Conținutul

în

diclazuril

este determinat

prin

cromatografie

în

fază

lichidă

de

înaltă performanță

(HPLC) cu gradient ternar și în fază inversă, utilizând un detector UV.

3.

Reactivi

3.1.

Apă, de grad HPLC.

3.2.

Acetat de amoniu.

3.3.

Hidrogenosulfat de tetrabutilamoniu (TBHS).

3.4.

Acetonitril, de grad HPLC.

3.5.

Metanol, de grad HPLC.

3.6.

N,N-dimetilformamidă (DMF).

3.7.

Acid clorhidric, d20 = 1,19 g/ml.

3.8.

Substanță etalon: diclazuril 11-24: [2,6 dicloro-(4- clorofenil)-4-(2,3,4,5-tetrahidro-3,5-dioxo-1,2,4-triazin-2-yl) fenil]-acetonitril, cu puritate garantată, E771.

3.8.1.

Soluție etalon stoc de diclazuril, 500 µg/ml.

Se cântăresc, cu o precizie de O,1 mg, 25 mg de substanță etalon de diclazuril (3.8) într-un balon gradat de 50 ml. Se dizolvă în DMF (3.6), se aduce la semn cu DMF (3.6) și se omogenizeaza.

Se

împachetează

balonul

într-o

foaie

de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare bruna și se depozitează în frigider. La o temperatură de 4 °e, soluția este stabilă timp de o lună.

3.8.2.

Soluție etalon de diclazuril, 50 µg/ml.

Se transferă 5,00 ml din soluția etalon stoc (3.8.1) într-un balon gradat de 50 ml, se aduce la semn cu DMF (3.6) și se omogenizeaza.

Se

împachetează

balonul

într-o

folie

de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare bruna și se depozitează în frigider. La o temperatură de 4 °e, soluția este stabilă timp de o lună.

3.9.

Substanță etalon internă: 2,6 dicloro-a-(4-chlorofenil}- 4-(4,5 dihidro-3,5-dioxo-1,2,4-triazină-2 (3H}-yl} a-metilbenzen­ acetonitril.

3.9.1.

Soluție etalon stoc internă, 500 µg/ml.

Se cântăresc, cu o precizie de O,1 ml, 25 mg de substanță etalon internă (3.9) într-un balon gradat de 50 ml. Se dizolvă în DMF

(3.6),

se

aduce

la

semn

cu

DMF

(3.6)

și

se omogenizeaza.

Se

împachetează

balonul

într-o

folie

de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare bruna și se depozitează în frigider. La o temperatură de 4 °e, soluția este stabilă timp de o lună.

3.9.2.

Soluție etalon internă, 50 µg/ml. Se transferă 5,00 ml din soluția etalon stoc internă (3.9.1) într-un balon gradat de 50 ml, se aduce la semn cu DMF (3.6) și se omogenizeaza. Se împachetează flaconul într-o folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare bruna și se depozitează în frigider. La o temperatură de 4 °e, la soluția este stabilă timp de o lună.

3.9.3.

Soluție etalon internă pentru premixuri,

p/1000 mg/ml (p = conținut nominal în diclazuril al premixului în mg/kg). Se cântăresc, cu o precizie de O,1 mg, 1O mg de substanță

etalon internă într-un balon gradat de 100 ml, se dizolvă în DMF (3.6) într-o baie cu ultrasunete (4.6), se aduce la semn cu DMF și se omogenizeaza. Se împachetează flaconul într-o folie de aluminiu sau se utilizează un flacon de culoare bruna și se depozitează în frigider. La o temperatură de 4 °C, soluția este stabilă timp de o lună.

3.1 O.

Soluție de etalonare, 2 µg/ml.

Se pipetează 2,00 ml de soluție etalon de diclazuril (3.8.2) și 2,00 ml de soluție etalon internă, (3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 16 ml de DMF (3.6), se aduce la semn cu apă și se omogenizeaza. Această soluție trebuie să fie proaspăt preparată înainte de utilizare.

3.11.

Cartuș C 18 pentru extracție în fază solidă, de exemplu, Bond Elut, mărime: 1 cc, masă de sorbție: 100 mg.

3.12.

Solvent de extractie: metanol acidifiat.

'

Se pipetează 5,0 ml de acid clorhidric (3.7) în 1OOO ml de

metanol (3.5) și se omogenizeaza.

3.13.

Fază mobilă pentru HPLC.

Solvent A: acetat de amoniu - soluție de hidrogenosulfat de tetrabutilamoniu.

3.13.1.

Se dizolvă 5 g de acetat de amoniu (3.2) și 3,4 g de TBHS (3.3) în 1 OOO

ml de apă (3.1) și se omogenizeaza.

3.13.2.

Solvent B: acetonitril (3.4).

3.13.3.

Solvent C: metanol (3.5).

4.

Aparatură

4.1.

Agitator mecanic.

4.2.

Echipament pentru HPLC cu gradient ternar.

4.2.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă, umplere de Hypersil ODS de 3 µm, 100 mm x 4,6 mm, sau echivalent.

4.2.2.

Detector UV cu lungime de undă variabilă sau detector cu grup de diode.

4.3.

Evaporator rotativ în vid.

4.4.

Filtru cu membrană de 0,45 µm.

4.5.

Distribuitor în vid.

4.6.

Baie cu ultrasunete.

5.

Procedură

5.1.

Generalităti

'

5.1.1.

Furaj martor

Un furaj martor trebuie să fie analizat pentru a se controla faptul că nu sunt prezente nici diclazuril și nici substanțe interferente. Furajul martor trebuie să fie de tip similar cu proba și la analiză nu trebuie să fie detectate diclazuril sau substanțe interferente.

5.1.2.

Test de recuperare

Trebuie

fie

efectuat

un

test

de

recuperare,

prin analizarea furajului martor ce a fost îmbogățit prin adăugarea unei cantități de diclazuril similară celei prezente în probă. Pentru a se îmbogăți la un nivel de 1 mg/kg, se adaugă O,1 ml din soluția etalon stoc (3.8.1) la 50 g dintr-un furaj martor, se amestecă cu grijă și se lasă timp de 1O minute, amestecând din nou de mai multe ori înainte de procedeu (5.2).

Alternativ, dacă un furaj martor de tip similar probei nu este

disponibil

(vezi

5.1.1), poate

fi

efectuat

un

test

de recuperare prin intermediul metodei de adiție a etalonului. În acest caz, proba ce urmează să fie analizată este îmbogățită cu o cantitate de diclazuril similară celei deja prezente în probă. Această probă este analizată alături de proba ne-îmbogățită, iar recuperarea poate fi calculată prin diferență.

5.2.

Extractie

'

5.2.1.

Furaje

Se cântăresc, cu o precizie de 0,01 g, aproximativ 50 g din probă. Se transferă într-un pahar conic de 500 ml, se adaugă 1,00 ml din soluția etalon internă (3.9.2), 200 ml solvent de extracție (3.12) și se astupă paharul. Se agită amestecul cu agitatorul (4.1) pe parcursul nopții. Se lasă să se depună timp de 1O minute. Se transferă o parte alicotă de 20 ml din

supernatant

într-un

recipient

de sticlă corespunzător

și se diluează cu 20 ml de apă. Se transferă această soluție într-un cartuș de extracție (3.11) și se trece prin vid (4.5). Se spală cartușul cu 25 ml dintr-un amestec de solvent de extracție (3.12) și apă, 65 + 35 (V + V). Se elimină fracțiunile colectate și se eluează compușii cu 25 ml dintr-un amestec de solvent de extracție (3.12) și apă, 80 + 20 (V + V). Se evaporă această fracțiune până când aceasta ajunge la sec, prin intermediul evaporatorului rotativ (4.3) la 60 °C. Se dizolvă reziduul în 1,0 ml de DMF (3.6), se adaugă 1,5 ml de apă (3.1) și se amestecă. Se filtrează printr-un filtru cu membrană (4.4). Se continuă cu determinarea HPLC (5.3).

5.2.2.

Premixuri

Se cântărește, cu o precizie de 0,001 g, aproximativ 1 g din probă. Se transferă într-un pahar conic de 500 ml, se adaugă 1,00 ml din soluția etalon internă (3.9.3), 200 ml de solvent

de extracție

(3.2),

și se astupă paharul.

Se agită amestecul pe parcursul nopții cu agitatorul (4.1). Se lasă să se depună timp de 1 O

minute. Se transferă o parte alicotă de 10000/p ml (p

=

conținut nominal în diclazuril al premixului în mg/kg)

din supernatant

într-un balon cu fundul

rotund de mărime adecvată. Se evaporă până când acesta ajunge la sec, sub presiune redusă la 60°C, prin intermediul evaporatorului rotativ (4.3). Se redizolvă reziduul în 10,0 ml de DMF (3.6), se adaugă 15,0 ml de apă (3.1) și se omogenizeaza .

Se continuă cu determinarea HPLC (5.3).

5.3.

Determinarea HPLC.

5.3.1.

Parametri

Sunt oferite spre orientare următoarele

condiții; pot fi utilizate

alte

conditii

numai

dacă

acestea

dau

rezultate

echivalente.

'

-

Coloană cromatografică100

mm

x

4,6

mm,

umplere

de Hypersil ODS de 3 µm sau

lichidă (4.2.1):

echivalent

-

Fază mobilă:

Solvent A (3.13.1): Soluție apoasă de acetat de amoniu și hidrogenosulfat de tetrabutilamoniu

Solvent B (3.13.2): acetonitril Solvent C (3.13.3): metanol

-

Mod de eluție:

.

- gradient linear

-

condiții inițiale:A+B+C= 60+20+20 (v+v+v)

-

după 1O minute, eluția prin gradient timp de 30 min la A+B+C = 45+20+35 (v+v+v)

Se clătește cu B timp de 1O minute.

-

Debit:

1,5-2 ml/min

-

Volum de injecție:

20 µI

-

Lungimea undei de detecție: 280 µI

Se verifică stabilitatea sistemului cromatografic, injectând de mai multe ori soluția de etalonare (3.1O), conținând 2 µg/ml,

până când sunt obținute înălțimi ale picului și timpi de retenție constanti.

'

5.3.2.

Solutie de etalonare

'

Se injectează 20 µI din soluția de etalonare (3.1O) de mai

multe ori și se determină înălțimea (zona) medie a picului de diclazuril și picurile etalonului intern.

5.3.3.

Soluția din probă

Se injectează 20 µI din soluția din probă (5.2.1. sau 5.2.2.) de mai multe ori și se determină înălțimea (aria) medie a picului de diclazuril și picurile etalonului intern.

6.

Calculul rezultatelor

6.1.

Furaje

Conținutul probei în diclazuril

w(mg/kg) este dat de următoarea formulă:

'

hd

sxh; c

<5 d ,c xl

OV

[

]

w=

x--mglkg

hi,sxhd,c

m

unde

hd,s

= înălțimea (aria) picului de diclazuril în soluția de probă (5.2.1.)

hi,s =

înălțimea (aria) picului etalonului intern în soluția de probă (5.2.1.)

hd,c

=

înălțimea (aria) picului de diclazuril în soluția de etalonare

(3.1O)

hi,c

= înălțimea (aria) picului etalonului intern în soluția de etalonare

(3.1 O)

5

d,c=

concentrația diclazurilului în soluția de etalonare în µg/ml

(3.1 O}

m = masa porțiunii de test în g

V= volumul extractului probei conform 5.2.1 (de ex. 2,5 ml)

6.2 Premixuri

Conținutul în diclazuril w (mg/kg) din probă este dat de formula:

hd,sxh; c

ad cx0,02Vxp [

]

W=

'X'

/

h;,sxhd,c

m

unde

hd,c=

înălțimea (aria) picului de diclazuril în soluția de etalonare

(3.1 O)

hi,c=

înălțimea (aria) picului etalonului intern în soluția de etalonare

(3.1O)

hd,s=

înălțimea (aria) picului de diclazuril în soluția probei (5.2.2)

hi,s=

înălțimea (aria) picului etalonului intern în soluția probei (5.2.2.)

8

d,c

=

concentrația diclazurilului în soluția de etalonare (3.1O) m = masa porțiunii de test în g

V= volumul extractului probei conform 5.2.2 (de ex. 25 ml) p

=

conținutul nominal de diclazuril în mg/kg din premix

7.

Validarea rezultatelor

7.1.

Identitate

Identitatea substanței de analizat poate fi confirmată prin co-cromatografie sau utilizând un detector cu grup de diode prin care sunt comparate spectrele extractului din probă (5.2.1. sau 5.2.2.) și ale soluției de etalonare (3.1O).

7.1.1.

Co-cromatografie

Un extract din probă (5.2.1 sau 5.2.2.) este îmbogățit prin adăugarea

unei

cantități

corespunzătoare

din

soluția

de etalonare (3.1O). Cantitatea de diclazuril adăugată trebuie să fie similară cu cantitatea de diclazuril constatată în extractul din probă.

Numai înălțimea picului de diclazuril și a picului etalonului intern ar trebui să crească după luarea în considerare atât a cantității adăugate cât și a diluției extractului. Lărgimea picului, la jumătatea înălțimii sale, trebuie să se situeze la ±10%, din lărgimea inițială a picului de diclazuril sau a picului etalonului intern al extractului din proba neîmbogățită.

7.1.2.

Detectare cu grup de diode

Rezultatele sunt evaluate în conformitate cu următoarele criterii:

a)

Lungimea de undă de absorbție maximă a spectrelor probei

și

a

etalonului,

înregistrate

la

vârful

picului

pe cromatogramă, trebuie să fie aceeași, cu o marjă stabilită de puterea de rezoluție a sistemului de detecție. Pentru detecția cu grup de diode, aceasta este în general de

+

2 nm.

b)

între 230 și 320 nm, spectrele probei și ale etalonului, înregistrate la vârful picului cromatogramei, nu trebuie să fie diferite pentru acele părți ale spectrului situate între 1O și 100 % din absorbanța relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când aceleași maxime sunt prezente și când la nici un punct observat deviația

între

cele

două

spectre

nu

depășește

15%

din absorba , nta etalonului substan ' tei de analizat.

c)

Între 230 și 320 nm, spectrele porțiunii ascendente, ale vârfului și ale porțiunii descendente ale picului produse de extractul probei nu trebuie să fie diferite unele de altele pentru acele

părți

ale

spectrului

situate

între

1O

și

100

°/o

din

absorbanța relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente

aceleași maxime și când la toate punctele observate

deviația

între

spectre

nu

depășește

15%

din absorbanța spectrului vârful picului.

Dacă unul din aceste criterii nu este îndeplinit, prezența substantei de analizat nu a fost confirmată.

'

7.2.

Repetabilitate

Diferența între rezultatele a două determinări paralele efectuate pe aceeași probă nu trebuie să depășească:

a)

30 % din valoarea superioară, pentru un conținut în diclazuril situat între 0,5 și 2,5 mg/kg

b)

0,75 mg/kg pentru un conținut în diclazuril situat între 2,5 și 5 mg/kg

c)

15 % din valoarea superioară, pentru un conținut în diclazuril mai mare de 5 mg/kg.

7.3.

Recuperare

Pentru o probă (martor) îmbogățită, recuperarea trebuie să fie de cel puțin 80 %.

8.

Rezultatele unui studiu de colaborare

A fost organizat un studiu de colaborare în care au fost analizate cinci probe de către 11 laboratoare. Aceste probe au constat în două premixuri; unul a fost amestecat cu o matrice organică (O 100) și celălalt cu o matrice anorganică (A 100). Conținutul teoretic este de 100 mg de diclazuril pe kg. Cele trei furaje

amestecate

pentru

păsări

au

fost

fabricate

de

trei producători diferiți (NL) (LI/ZI/Kl). Conținutul teoretic este de 1 mg de diclazuril

pe kg. Laboratoarele

au fost instruite să analizeze

fiecare

din probe o singură

dată

sau

în dublu. (Informații mai detaliate cu privire la acest studiu de colaborare pot fi găsite în Jurnalul AOAC Internațional, Volumul 77, nr. 6, 1994, pp. 1359

- 1361.)

Rezultatele

sunt

date

în tabelul următor:

Proba 1

A 100

Proba 2

O 100

Proba 3

L 1

Proba 4

21

Proba 5 K1

L

11

11

11

11

6

n

19

18

19

19

12

Medie

100,8

103,5

0,89

1,15

0,89

St (mg/kg)

5,88

7,64

0,15

0,02

0,03

CVt(%)

SR (mg/kg)

5,83

7,59

7,38

7,64

17,32

0,17

1,92

o, 11

3,34

0,12

CVR (%)

7,53

7,38

18,61

9,67

13,65

Continut

nomi ' nal (mQ/kQ)

100

100

1

1

1

L: număr de laboratoare n: număr de valori unice

St: deviație standard a repetabilității

CVt: coeficient de variație a repetabilității SR: deviație standard a reproductibilității

CVR: coeficient de variatie a reproductibilitătii

9.

Observatii

'

Răspunsul diclazurilului trebuie să fi fost demonstrat în

prealabil ca fiind linear peste gama de concentrații ce sunt măsurate.

Partea C DETERMINAREA CARBADOXULUI

Metil 3-(2-quinoxalinilmetilenă)carbazat N 1 ,N 4 -dioxid

1.

Scop și domeniu de aplicare

Prezenta metodă este destinată determinării carbadoxului din furaje, premixuri și preparate. Limita de detecție este de 1 mg/kg. Limita de determinare este de 1 O

mg/kg.

2.

Principiu

Proba este echilibrată cu apă și extrasă cu metanol­ acetonitril. Pentru furaje, o porțiune alicotă a extractului filtrat este supusă purificarii pe o coloană de oxid de aluminiu. Pentru premixuri și preparate, o porțiune alicotă a extractului filtrat este diluată la o concentrație corespunzătoare cu apă, metanol și acetonitril.

Conținutul

în

carbadox

este

determinat

prin cromatografie lichidă de înaltă performanță (HPLC) în fază inversă, utilizând un detector UV.

3.

Reactivi

3.1.

Metanol.

3.2.

Acetonitril, de grad HPLC.

3.3.

Acid acetic,

w

= 100

%.

3.4.

Oxid de aluminiu: neutru, grad de activitate I.

3.5.

Metanol-acetonitril 1

+

1 (v

+

v)

Se amestecă 500 ml de metanol (3.1) cu 500 ml de acetonitril (3.2).

3.6.

Acid acetic 1 O

%.

Se diluează 1 O

ml de acid acetic (3.3) cu apă până la 100

ml.

3.7.

Acetat de sodiu, CH3COONa.

3.8.

Apă, de grad HPLC.

3.9.

Soluție tampon de acetat, c

=

0,01 mol/I, pH

=

6,0

Se dizolvă 0,82 g de acetat de sodiu (3.7) în 700 ml de apă (3.8) și se ajustează pH-ul la 6,0 cu acid acetic (3.6). Se transferă într-un balon gradat de 1OOO ml, se aduce la semn cu apă (3.8) și se omogenizeaza.

3.1 O.

Fază mobilă pentru HPLC

Se amestecă 825 ml de soluție tampon de acetat (3.9) cu 175 ml de acetonitril (3.2). Se filtrează printr-un filtru de 0,22 µm

(4.5)

și se degazează soluția (de exemplu prin tratare cu ultrasunete timp de 1O minute.

I

3.11.

Substantă etalon

Carbadox

pur:

metil 3,4,2-quinoxalinilmetilenă)carbazat N 1 ,N 4 -dioxid - E 850.

3.11.1.

Soluție etalon stoc de carbadox, 100 µg/ml (vezi punctul 5 Procedură):

Se cântăresc, cu o precizie de O,1 mg, 25 mg de substanță etalon de carbadox (3.11) într-un balon gradat de 250 ml. Se dizolvă în metanol-acetonitril (3.5) prin tratare cu ultrasunete (4.7). După tratamentul cu ultrasunete, se aduce soluția la temperatura camerei, se aduce la semn cu metanol-acetonitril (3.5) și se omogenizeaza. Se ambalează balonul într-o folie de aluminiu sau se utilizează sticlărie de culoare bruna și se depozitează într-un frigider. La o temperatură de 4 °C soluția este stabilă timp de o lună.

I

3.11.2.

Solutii de etalonare

Se transferă 2,0, 5,0, 10,0 și 20,0 ml din soluția etalon stoc (3.11.1) într-o serie de baloane gradate de 100 ml. Se adaugă 30 ml de apă, se aduce la semn cu metanol-acetonitril (3.5) și se omogenizeaza. Se ambalează baloanele în folii de aluminiu. Aceste soluții corespund la 2,0, 5,0, 10,0 și respectiv 20,0 µg/ml de carbadox. Soluțiile de etalonare trebuie să fie proaspăt preparate înainte de utilizare.

Notă: Pentru determinarea

carbadoxului

din furaje ce conțin mai puțin de 1O mg/kg, trebuie să se prepare soluții de etalonare cu o concentrație inferioară valorii de 2,0 µg/ml.

3.12.

Amestec de apă-[metanol-acetonitril] (3.5), 300

+

700 (v

+

v)

Se amestecă 300 ml de apă cu 700 ml din amestecul de metanol-acetonitril (3.5).

4.

Aparatură

4.1.

Agitator de laborator sau magnetic.

4.2.

Hârtie de filtru din fibră de sticlă (Whatman GF/A sau echivalent).

4.3.

Coloană de sticlă (lungime de 300 - 400 mm, diametru intern de aproximativ 1O mm), cu frită de sticlă sinterizată și valvă de evacuare.

Notă: poate fi utilizată, de asemenea, o coloană de sticlă prevăzută cu un robinet sau o coloană de sticlă cu o extremitate efilată; în acest caz, un tampon mic de vată de sticlă este inserat la extremitatea inferioară și se împinge utilizând o baghetă de sticlă.

4.4.

Echipament HPLC cu sistem de injecție, adecvat pentru injectarea de volume de 20 µI.

4.4.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă: 300 mm x 4 mm, C18, umplere de 10 µm sau echivalentă.

4.4.2.

Detector UV cu lungime de undă variabilă sau detector cu grup de diode ce funcționează între 225 și 400 nm.

4.5.

Filtru cu membrană de 0,22 µm.

4.6.

Filtru cu membrană de 0,45 µm.

4.7.

Baie cu ultrasunete.

5.

Procedură

Notă:

Carbadoxul

este

fotosensibil.

Efectuati

toate procedurile în lumină estompată sau utilizați sticlărie de '

culoare

bruna sau sticlărie ambalată în folie de aluminiu.

5.1.

Generalităti

'

5.1.1.

Furaj martor

Pentru efectuarea testului de recuperare (5.1.2), trebuie să fie analizat un furaj martor, pentru a se verifica faptul că nu sunt prezente nici carbadox și nici substanțe interferente. Furajul martor trebuie să fie de tip similar cu proba și la analiză nu trebuie detectate nici carbadox și nici substanțe interferente.

5.1.2.

Test de recuperare

Trebuie efectuat un test de recuperare prin analizarea furajului martor (5.1.1) ce a fost îmbogățit prin adăugarea unei cantități de carbadox, similară celei prezente în probă. Pentru a se îmbogăți la un nivel de 50 mg/kg, se transferă 5,0 ml din soluția etalon stoc (3.11.1) într-un pahar conic de 200 ml. Se evaporă soluția la aproximativ 0,5 ml într-un curent de azot. Se adaugă 1O g din furajul martor, se amestecă și se așteaptă timp de 1O minute înainte de continua cu faza de extracție (5.2).

Alternativ, dacă nu este disponibil un furaj martor de tip similar

probei

(vezi

5.1.1),

poate

fi

efectuat

un

test

de recuperare prin intermediul metodei de adiție a etalonului. În acest caz, proba este îmbogățită cu o cantitate de carbadox similară celei deja prezente în probă. Această probă este analizată împreună cu proba neîmbogățită și recuperarea poate fi calculată prin diferență.

5.2.

Extractia

'

5.2.1.

Furaje

Se cântăresc, cu o precizie de 0,01 g, aproximativ 1O g din probă și se transferă într-un pahar conic de 200 ml. Se adaugă 15,0 ml de apă, se amestecă și se echilibrează timp de 5 minute. Se adaugă 35,0 ml de metanol-acetonitril (3.5), se astupă și se agită timp de 30 de minute cu agitatorul mecanic sau cu agitatorul magnetic (4.1). Se filtrează soluția printr-o hârtie de filtru din fibră de sticlă (4.2). Se reține această soluție pentru faza de purificare (5.3).

5.2.2.

Premixuri (O,1-2,0 %)

Se cântărește, cu o precizie de 0,001 g, aproximativ 1 g din proba nemăcinată și se transferă într-un pahar conic de 200 ml. Se adaugă 15,0 ml de apă, se amestecă și se echilibrează timp de 5 minute. Se adaugă 35,0 ml de metanol-acetonitril (3.5), se astupă și se agită timp de 30 de minute cu un agitator mecanic sau cu un agitator magnetic (4.1).Se filtrează soluția printr-o hârtie de filtru cu fibră de sticlă (4.2). Se pipetează o parte alicotă a filtratului într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă

15,0 ml de apă,

se aduce la semn

cu metanol­ acetonitril (3.5) și se omogenizeaza. Concentrația de carbadox a soluției finale trebuie să fie de aproximativ 1O µg/ml. O parte alicotă este filtrată printr-un filtru de 0,45 µm (4.6). Se continuă cu dozarea HPLC (5.4).

5.2.3.

Preparate ( > 2 %)

Se cântăresc, cu o precizie de 0,001 g, aproximativ 0,2 g din proba nemăcinată și se transferă într-un pahar conic de 250 ml. Se adaugă 45,0 ml de apă, se amestecă și se echilibrează timp de 5 minute. Se adaugă 105,0 ml de metanol-acetonitril (3.5),

se

astupă

și

se

omogenizează.

Proba

se

supune ultrasunetelor (4.7) timp de 15 minute,

urmate

de agitare mecanică sau magnetică timp de 15 minute (4.1). Se filtrează soluția printr-o hârtie de filtru din fibră de sticlă (4.2). Se diluează

o parte alicotă a filtratului cu amestecul

de apă­ metanol-acetonitril (3.12)

până

la

o

concentrație

finală

în carbadox de 10-15 µg/ml (pentru o preparare la 1O %, factorul de diluție este de 1O). O parte alicotă este filtrată printr-un filtru de 0,45 µm (4.6). Se continuă cu determinarea HPLC (5.4).

5.3.

Purificare

5.3.1.

Prepararea coloanei de oxid de aluminiu.

Se cântăresc 4 g de oxid de aluminiu (3.4) și se transferă în coloana de sticlă (4.3).

5.3.2.

Purificarea probei

Se aplică 15 ml din extractul filtrat (5.2.1) în coloana de oxid de aluminiu

și se elimină primii 2 ml de eluant. Se colectează următorii 5 ml și se filtrează o parte alicotă printr-un filtru de 0,45 µm (4.6). Se continuă cu determinarea HPLC (5.4).

5.4.

Determinarea HPLC.

5.4.1.

Parametri

Următoarele condiții sunt oferite pentru orientare; pot fi utilizate

alte

conditii

numai

dacă

acestea

dau

rezultate

echivalente

'

Coloană cromatografică lichidă (4.1.1):

Fază mobilă (3.1 O):

Debit:

300 mm x 4 mm, C18, umplere de

1O

µm sau echivalentă

Amestec

de soluție tampon

de acetat

(3.9)

și

acetonitril

(3.2), 825+175(v+v).

1 ,5-2 ml/min

Lungimea

undei detectie:

'

de 365 nm

Volum de injecție:

20 µI

Se verifică stabilitatea sistemului cromatografic, injectând de mai multe ori soluția de etalonare (3.11.2) conținând 5,0 µg/ml, până când sunt obținute înălțimi (arii) ale picurilor și timpi

de retentie constanti.

'

'

5.4.2.

Curbă de etalonare

Se injectează fiecare soluție de etalonare (3.11.2) de mai multe ori și se măsoară înălțimile (ariile) picurilor pentru fiecare concentrație.

Se stabilește

o curbă de etalonare

utilizând înălțimile sau ariile medii ale picurilor soluțiilor de etalonare ca ordonate și concentrațiile corespondente în µg/ml ca abcise.

5.4.3.

Soluția probei

Se injectează de mai multe ori extractul probei [(5.3.2) pentru

furaje,

(5.2.2)

pentru

premixuri

și

(5.2.3)

pentru preparate] și se determină înălțimea (aria) medie a picurilor carbadoxului.

6.

Calculul rezultatelor

Plecând

de

la

înălțimea

(aria)

medie

a

picurilor carbadoxului

soluției

din

probă,

se

determină

concentrația soluției din probă în µg/ml prin referire la curba de etalonare (5.4.2).

6.1.

Furaje:

Conținutul w în carbadox (mg/kg) din probă este dat de următoarea formulă

w=

&v;

[mg/ kg]

m

în care:

o=

concentrația de carbadox a extractului din probă (5.3.2) în µg/ml.

V 1 = volumul de extracție în ml (adică 50 ml). m= masa porțiunii de test în g.

6.2.

Premixuri și preparate

Conținutul w al probei în carbadox (mg/kg) este dat de următoarea formulă

w=

oxV

2

xf

[

mg

l k g

]

m

în care

o=

concentrația de carbadox a extractului din probă (5.2.2 sau 5.2.3) în µg/ml.

V 2 = volumul de extracție în ml (adică 50 ml pentru premixuri; 150 pentru preparate).

f =

factor de diluție conform

5.2.2 (premixuri) sau 5.2.3 (preparate).

m= masa porțiunii de test în g.

7.

Validarea rezultatelor

7.1.

Identitate

Identitatea substanței de analizat poate fi confirmată prin co-cromatografie sau utilizând un detector cu grup de diode prin care sunt comparate spectrele extractului din probă și ale soluției de etalonare (3.11.2) conținând 10,0 µg/ml.

7.1.1.

Co-cromatografie

Un extract al probei este îmbogățit prin adăugarea unei cantități

corespunzătoare

de

soluție

de

etalonare

(3.11.2). Cantitatea de carbadox adăugat trebuie să fie similară cantității estimate de carbadox constatată în extractul din probă.

Numai înălțimea picului carbadoxului ar trebui să fie mărită după luarea în considerare atât a cantității adăugate cât și a diluției extractului. Lărgimea picului, la jumătatea înălțimii sale maxime, trebuie să se situeze la ± 1O

0 /o din lărgimea inițială.

7.1.2.

Detectare cu grup de diode

Rezultatele sunt evaluate conform următoarelor criterii:

a)

lungimea de undă de absorbție maximă a spectrelor probei

și

a

etalonului,

înregistrată

la

vârful

picului

pe cromatogramă, trebuie să fie aceeași într-o marjă determinată de puterea de rezoluție a sistemului de detecție. Pentru detecția prin grup de diode, aceasta este de obicei de

+

2 nm;

b)

între 225 și 400 nm, spectrele probei și ale etalonului, înregistrate la vârful picului pe cromatogramă, nu trebuie să fie diferite pentru aceste părți ale spectrului într-un interval de 10-

100 % al absorbanței

relative. Acest

criteriu este

îndeplinit atunci când sunt prezente aceleași maxime și când la nici un

punct observat deviația între cele două spectre nu depășește 15 % din absorbanta substantei de analizat etalon;

'

'

c)

între 225 și 400 nm, spectrele porțiunii ascendente, ale

vârfului

și

ale

porțiunii

descendente

a

picului,

produse

de extractul din probă, nu trebuie să fie diferite unele de altele pentru acele părți ale spectrului într-un interval de 1O - 100 % al absorbanței relative. Acf3st criteriu este îndeplinit atunci când

sunt prezente

aceleași maxime

și când la toate punctele observate,

deviația dintre spectre nu depășește 15

%

din absorbanța spectrului vârfului.

Dacă unul din aceste criterii nu este îndeplinit, prezența substantei de analizat nu a fost confirmată.

'

7.2.

Repetabilitate

Pentru un conținut de 1 O

mg/kg și mai mare, diferența dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe aceeași probă nu trebuie să depășească 15 % din rezultatul superior.

7.3.

Recuperare

Pentru o probă (martor) îmbogățită, recuperarea trebuie să fie de cel puțin 90%.

8.

Rezultate ale unui test de colaborare

A fost organizat un studiu de colaborare în care șase furaje, patru premixuri și trei preparate au fost analizate de opt laboratoare. Au fost efectuate analize în dublu pentru fiecare probă. (Mai multe informații detaliate cu privire la acest studiu de colaborare pot fi găsite în Jurnalul AOAC, Volumul 71, 1988, pag.

484-490.)

Rezultatele

studiului

(cu

excepția

valorilor aberante) sunt indicate mai jos:

AGENfiIA VETERINARĂ ȘI PENTRU SIGURANfiA ALIMENTELOR

O R D I N

pentru aprobarea Normei veterinare privind metodele de analiză

pentru controlul oficial al furajelor cu referire la determinarea umidității, a grăsimilor

și uleiurilor vegetale, a magneziului și conținutului în fibre*)

În temeiul prevederilor art. 10 lit. b) din Ordonanța Guvernului nr. 42/2004 privind organizarea activității veterinare, în baza Hotărârii Guvernului nr. 308/2004 privind organizarea și funcționarea Agenției Veterinare și pentru

Siguranța Alimentelor și a unităților din subordinea acesteia,

văzând Referatul de aprobare nr. 153.597 din 25 mai 2004 al Direcției generale veterinare,

președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor emite următorul ordin:

Articolul 1

— Se aprobă Norma veterinară privind metodele de analiză pentru controlul oficial al furajelor cu referire la determinarea umidității, a grăsimilor și uleiurilor vegetale, a magneziului și conținutului în fibre, prevăzută în anexa**) care face parte integrantă din prezentul ordin.

Art.

2.

Institutele

centrale

de

profil,

direcțiile veterinare și pentru siguranța alimentelor județene și a

municipiului București vor duce la îndeplinire prevederile prezentului ordin.

Articolul 3

— Agenția Veterinară și pentru Siguranța Alimentelor va controla modul de îndeplinire a prevederilor prezentului ordin.

Articolul 4

— Prezentul ordin se va publica în Monitorul Oficial al României, Partea I.

Președintele Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor,

Liviu Harbuz

București, 10 iunie 2004.

Nr. 26.

*) Ordinul președintelui Agenției Veterinare și pentru Siguranța Alimentelor nr. 26/2004 a fost publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 1.020 din 4 noiembrie 2004 și este reprodus și în acest număr bis.

**) Anexa este reprodusă în facsimil.

NORMĂ VETERINARĂ

privind metodele de analiză pentru controlul oficial al furajelor

cu referire la determinarea umidității, a grăsimilor și uleiurilor vegetale, a magneziului și conținutului în fibre

ANEXĂ

ANEXĂ

la norma veterinară

105°C. Se continuă să se amestece, amestecând până la fund fiola, până când bulele nu se mai formează.

Pentru a se asigura eliminarea completă a umidității, se reîncălzește de mai multe ori la 103 QC

+

2

QC, se răcește la 93°C între încălziri succesive. Apoi se lasă să se răcească la temperatura camerei, în exsicator (3.4) și se cântărește. Se repetă această operațiune până când pierderea în masă între două cântăriri succesive nu mai depășește 2 mg.

N.B. O creștere a masei probei după încălzire repetată indică

o oxidare

a grăsimilor,

în care caz

se calculează rezultatul de la cântărirea efectuată imediat înainte ca masa să înceapă să crească.

5.

Calcularea rezultatelor

Conținutul de umiditate, ca procentaj din probă, este dat de următoarea formulă:

(M1 - M2) • 100/Mo

unde:

Mo

=

masa probei test, în grame;

M1 = masa fiolei cu conținutul acesteia înainte de încălzire, în grame,

M 2 = masa fiolei cu conținutul acesteia după încălzire, în grame, Rezultate mai mici de 0,05% trebuie să fie înregistrate ca

,,mai mici de

O, 705".

Fidelitate

Diferenta de umiditate între rezultatele a două determinări paralele

efe '

ctuate

privind

aceeași

probă

nu

trebuie

depășească

O, 705% în valoare absolută.

2.

DETERMINAREA MAGNEZIULUI

-

PRIN SPECTROMETRIE CU ABSORBTIE ATOMICĂ

-

1.

Domeniu și scop

'

Această metodă face posibil să se determine cantitatea de magneziu din furaje. Aceasta se consideră corespunzătoare, în special, pentru determinarea conținutului de magneziu mai scăzut de 5%.

2.

Principiu

Proba este calcinată și dizolvată în acid clorhidric diluat. Dacă proba calcinată conține substanțe anorganice, aceasta este dizolvată direct în acid clorhidric diluat. Solutia este diluată

și conținutul de magneziu determinat

prin spe '

ctrometrie cu

absorbție atomică, la lungimea de undă de 285 72 nm, prin compararea cu soluții standard.

3.

Reagenți

3.1.

Acid clorhidric a.p.d: 1 716.

3.2.

Acid clorhidric concentrat a.p.d : 1719.

3.3.

Bandă sau sârmă de magneziu, sau heptahidrat sulfat de magneziu, uscat la temperatura camerei.

3.4.

Soluție salină de stronțiu (clorura sau nitrat) la 2,75% (w/v) stronțiu (= 76,708 g SrCl 2

6H 2

0

a.p., sau 60,738 g Sr(NO3)2 a.p.).

3.5.

Soluție de magneziu standard cântărită cu aproximație de 1

mg, 1 g de magneziu (3.3) de la care s-a îndepărtat anterior

cu grijă învelișul de oxid format

sau cantitatea corespondentă (1O, 7143 g) de heptahidrat sulfat de magneziu (3.3). Se pune într-o sticlă plată gradată de 1OOO ml, se adaugă

80 ml

acid

clorhidric

(3.1), se

lasă

se dizolve

și

se

completează până la 1OOO ml cu apă. 1 ml din această soluție conține 1000 mg magneziu.

4.

Aparat

4.1.

Creuzete de calcinare din platină, siliciu sau porțelan

4.2.

Cuptor cu muflă electrică cu termostat.

4.3.

Spectrometru cu absorbție atomică.

5.

Procedură

5.1.

Prepararea soluției probă

5.1.1.

Furaje compuse exclusiv din substanțe minerale

Se cântăresc cu aproximație de 1 mg, 5 g din probă, într-o sticlă plată de 500 ml cu 250 până la 300 ml apă. Se adaugă 40 ml acid clorhidric (3.1), se aduce la punctul de fierbere și se menține lichidul cu grijă la fierbere timp de 30 de minute. Se lasă să se răcească, reformând volumul cu apă, se amestecă și se filtrează într-o cupă uscată printr-un filtru plisat uscat. Se înlătură primii 30 ml filtrați. În prezența siliciului, se tratează 5 g de probă cu o cantitate suficientă (15-30 ml) de acid clorhidric (3.2), se evaporă până la uscare într-o baie de apă

și se transferă într-un cuptor la 105°C

pentru o oră. Se procedează ca la a treia propoziție de la 5.1.2.

5.1.2.

Furaje

compuse

predominant

din

substanțe minerale.

Se cântăresc cu aproximație de 1 mg, 5g de probă, într-un creuzet și se calcinează la 550 QC într-un cuptor cu muflă, până este obt ' inută o substant ' ă de calcinare ce este liberă de

particule carbonice și se l • asă să se răcească. Pentru a se

elimina siliciu, se adaugă substanța de calcinare într-o cantitate suficientă (15-30 ml) de acid clorhidric (3.2), se evaporă până la uscare într-o baie de apă și se transferă într-un cuptor, la 105°C, timp de o oră. Se tratează reziduul cu 1O ml acid clorhidric (3.1) și se transferă într-o sticlă plată gradată de 500 ml,

utilizând

apă

caldă.

Se

lasă

se

răcească

și

se reformează volumul cu apă. Se amestecă și se filtrează într-o cupă uscată, printr-un filtru plisat uscat. Se înlătură primii 30 ml filtrati.

'

5.1.3.

Furaje ce conțin predominant substanțe organice

Se cântăresc cu aproximație de 1 mg, 5g de probă într-un creuzet și se calcinează la 550 QC într-un cuptor cu muflă, până

este obtinută o substantă de calcinare ce este liberă de particule '

carbonice. Se tra ' tează substanța de calcinare cu 5 ml

acid clorhidric (3.2), se evaporă până la uscare într-o baie de apă și apoi se usucă pentru o oră într-un cuptor, la 105 QC, pentru a se reda siliciu insolubil. Se tratează substanța de calcinare cu 5 ml acid clorhidric (3.1) și se transferă într-o sticlă

plată gradată de 250 ml utilizând apă caldă; se aduce la punctul de fierbere, se lasă să se răcească și se formează volumul cu apă. Se amestecă și se filtrează într-o cupă uscată printr-un filtru plisat uscat. Se înlătură primii 30 ml filtrați.

5.2.

Măsurare prin absorbție atomică

Prin dizolvarea soluției standard (3.5) cu apă, se prepară cel puțin cinci soluții de referință de concentrație cunoscuta, ce corespund șirului de măsurare optim al spectrofotometrului. Se adaugă fiecărei soluții 1O ml soluție salină de stronțiu (3.4) și apoi se reformează volumul la 100 ml, cu apă. Se dizolvă în apă o picătură din partea filtrată obținută de la 5.1.1, 5.1.2 sau 5.1.3, astfel încât să se obțină o concentrație de magneziu ce este în cadrul limitelor de

concentratie a solutiilor de referintă .

Concentratia acidului clorhidric din ace ' astă solu ' tie nu trebuie s '

ă

depășeasc ' ă O 74 N. Se adaugă 1O ml soluție sa '

lină de stronțiu

(3.4) și apoi se reformează volumul la 100 ml cu apă. Se măsoară absorbția din soluția determinată și din soluțiile de referință la lungimea de undă de 285.2 nm.

6.

Calcularea rezultatelor

Se calculează cantității de magneziu din probă, prin relație cu soluțiile de referință. Rezultatul se exprimă ca procentaj din probă.

Repetabilitate

Diferența dintre rezultatele celor două determinări paralele efectuate pe aceeași probă nu trebuie să depășească 5

%,

din valoarea relativă.

3.

DETERMINAREA CELULOZEI (FIBRĂ BRUTĂ)

1.

Domeniu și scop

Această metodă face posibil să se determine substanțele libere de materii organice grase din furaje ce sunt insolubile în acid și medii alcaline și sunt descrise convențional ca fibre brute (celuloză).

2.

Principiu

Proba, degresată dacă este necesar, este tratată în mod succesiv cu soluții fierbinți de acid sulfuric și hidroxid de potasiu de concentrații specificate. Reziduul este separat prin filtrare printr-un filtru din sticlă sinterizată, spălat, uscat, cântărit și calcinat între valori de 474 la 500 QC . Pierderea de greutate ce rezultă

din

calcinare

corespunde

celulozei

(fibrei

brute) prezente în proba test.

3.

Reagenți

3.1

Acid sulfuric, c

=

O,13 mol/I

3.2.

Agent anti-spumă (ex. n-octanol)

3.3.

Material auxiliar de filtrare (celit 545 sau echivalent), încălzit la 500 °C timp de patru ore (8.6)

3.4.

Acetonă

3.5.

Eter de petrol (între 40 si 60 QC)

3.6.

Acid clorhidric, c = 0,5 mol/I.

4.

Aparat

4.1.

Ansamblu de încălzire pentru digestia cu acid sulfuric sau soluția de hidroxid de potasiu, echipată cu un suport pentru creuzetul de filtrare (4.2) și prevăzută cu un tub de evacuare cu un robinet pentru eliminarea lichidului și vacuum, posibil cu aer comprimat. Înainte de utilizarea zilnică unitatea se preîncălzește cu apă fiartă timp de cinci minute.

4.2.

Creuzetul

cu filtru de sticlă fuzibilă sinterizată

și mărimea

porilor

40-90 µm.

Înainte

de prima

utilizare,

se încălzește la temperatura de 500 °C pentru câteva minute și se răcește (8.6).

4.3.

Cilindru de cel puțin 270 ml cu un condensator cu reflux, corespunzător pentru fierbere.

4.4.

Cuptor de uscare cu termostat

4.5.

Cuptor cu muflă cu termostat

4.6.

Unitate de extracție ce constă într-un vas cu suport pentru creuzetul de filtrare (4.2) și cu o țeavă de eliminare cu robinet pentru eliminarea vacuumului și a lichidului.

4.7.

Inele de conectarea pentru a se asambla unitatea de încălzire (4.1), creuzetul (4.2) și cilindru .(4.3) și conectarea la unitatea de extragere la rece (4.6) și la creuzet.

5.

Procedură

Se cântărește, cu aproximație de 0,001 g, 1g de probă preparată, se pune în creuzet (4.2), (vezi observațiile de la 8.1, 8.2 și 8.3) și se adaugă 1g de material auxiliar de filtrare(3.3).

Se asamblează unitatea de încălzire (4.1) și creuzetul de filtrare (4.2), apoi se atașează cilindru (4.3) la creuzet. Se picură (adaugă) 150 ml de acid sulfuric fiert (3.1) în cilindrul și creuzetul asamblat iar dacă este necesar se adaugă câteva picături de agent anti-spumă (3.2)

Se aduce lichidul la punctul de fierbere în 5 ± 2 minute și se fierbe energic pentru exact 30 minute.

Se deschide robinetul tubului de eliminare (4.1) și, în condiții de vacuum, se filtrează acidul sulfuric printr-un creuzet de filtrare și se spală reziduul de trei ori consecutiv, cu 30 ml părți de apă fiartă, asigurându-se că reziduul este filtrat uscat după fiecare spălare,

Se închide robinetul de evacuare și se picură (adaugă)

150 ml soluție de hidroxid de potasiu (3.7) în cilindrul și creuzetul asamblat și se adaugă câteva picături de agent anti­ spumă (3.2). Se aduce lichidul la punctul de fierbere în 5 ±2 minute și se fierbe energic pentru exact 30 minute. Se filtrează și se repetă procedura de spălare utilizată pentru acidul sulfuric.

După

spălarea

și

uscarea

finală,

se

deconectează creuzetul și conținutul acestuia și se reconectează la unitatea de extracție la rece (4.6). Se aplică vacuum și se spală reziduul din creuzet consecutiv cu trei porțiuni de 25 ml de acetonă (3.4) asigurându-se că reziduul este filtrat uscat după fiecare spălare.

Se usucă creuzetul până la greutate constantă, în cuptor, la 130

°e.

După fiecare uscare se răcește în exicator și se

cântărește repede. Se pune creuzetul într-un cuptor cu muflă și se calcinează până la greutate constantă la temperatură de la

475

°e

până la 500

°e

pentru cel puțin 30 minute.

După fiecare încălzire înainte de cântărire se răcește mai întâi în cuptor și apoi în exicator.

Se efectuează un test blanc fără probă. Pierderea de greutate ce rezultă din calcinare nu

trebuie să depășească 4 mg.

6.

Calcularea rezultatelor

Conținutul de celuloză (fibră crudă) ca procentaj din probă este dat de expresia:

(b-

c

)xlOO

a

unde:

a = masa probei în g

b

=

pierderea de masă după calcinare în timpul determinării, în g;

c = pierderea de masă după calcinare în timpul testului orb, în g.

7.

Repetabilitate

Diferența între două determinări paralele, efectuate pe aceeași probă, nu trebuie să depășească

-

0,3 în valoare absolută pentru conținutul de celuloză (fibră crudă) mai mic de 1 O %

-

3 % cu referire la rezultatul cel mai mare, pentru conținutul de celuloză (fibră crudă) egal sau mai mare de 1 O

0

/o.

8.

Observatii

'

8.1.

Furajele

ce

conțin

mai

mult

de

1 O

%

grăsimi

elementare trebuie să fie degresate înainte de analiză, cu eter de petrol (3.5). Se conectează creuzetul de filtrare (4.2) și conținutul acestuia la unitatea de extracție la rece (4.6) ,se aplică vacuum și se spală consecutiv reziduul cu trei părți de 30 ml de eter de petrol, asigurându-se că reziduul este uscat. Se conectează

creuzetul

și conținutul

acestuia

la unitatea

de încălzire (4.1) și se continuă așa cum se descrie la punctul 5.

Textul este prelucrat automat din sursa indicată; numerotarea și legăturile pot conține erori. Referințele subliniate duc la actele citate, așa cum au fost identificate de noi.