Standard din 4 ianuarie 2018
pentru laboratoarele TB condiții minime pentru asigurarea siguranței și eficienței activităților din laborator
prezumat în vigoare
Legături cu alte acte
Ce face acest act
Are ca temei 2
- HG nr. 589/2007 13 iunie 2007 privind stabilirea metodologiei de raportare și de colectare a datelor pentru supraveghere…
- Ordinul nr. 1466/2008 20 august 2008 pentru aprobarea circuitului informațional al fișei unice de raportare a bolilor transmisi…
Textul nu are o structură pe articole recunoscută și este afișat ca atare.
Ordinul nr. 6 din 4 ianuarie 2018 , publicat în Monitorul Oficial al României, Partea I, nr. 88 din 30 ianuarie 2018
ANEXA II
GHIDUL PENTRU MANAGEMENTUL CAZURILOR DE TB LA COPII 2017
AUTORI:
Marilena Umbrița CRIȘAN
Medic primar pediatru Medic specialst pneumolog Doctor în Științe Medicale
Asist. Univ. Facultatea de Medicină și Farmacie Oradea
Coordonator tehnic județean Bihor- Program Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberculozei
Elena BARBU
Medic primar pneumologie peditrică
Consultant Organizația Mondială a Sănătății -
Mauro Occhi
Anexa 1 - Efectuarea și interpretarea testului la tuberculină
Anexa 2 - Recoltarea produselor biologice (Ghid metodologic-2015) Anexa 3 - Diagnosticul de laborator al tuberculozei
Anexa 4 - Diagnosticul diferențial al opacităților hilare (după Ghidul 2006) Anexa 5 - Investigații în diagnosticul tuberculozei extrapulmonare la copil Anexa 6 - Diagnosticul diferențial al meningitelor cu lichid clar
Anexa 7 - Diagnosticul diferențial al pleureziei cu exudat
Anexa 8 - Medicamentele anti-tuberculoase de prima linie, forme de prezentare, cale de administrare, reacții adverse, interacțiunea medicamentoasă, formule pediatrice combinate Anexa 9 - Reacții adverse la medicamentele antituberculoase de linia I și managementul lor Anexa 10 - Reacțiile adverse ale medicației antituberculoase și managementul lor
Anexa 10-b - Noua clasificare OMS (aprilie 2016) a medicamentelor de linia a doua Anexa 11 - Fișa de tratament a tuberculozei
Anexa 12 - Fișa de evaluare a tratamentului
Anexa 13 - Fișa de tratament pentru cazul cu MDR TB Anexa 14 - Circuitul informațional RAPI
Anexa 15 - Fișa de monitorizare MDR Anexa 16 - Anunțarea cazului de tuberculoză Anexa 17 - Fișa de declarare a cazului TB Anexa 18 - Fișa anunțării infirmării din spital Anexa 19 - Fișa anunțării decesului în spital Anexa 20 - Fișa de transfer a cazului TB Anexa 21 - Fișa de chimioprofilaxie
Anexa 22 - Fișa pentru ancheta epidemiologică
Abrevieri
ABG - Antibiogramă
ADA - Adenozin deaminază
AINS - Antiinflamatoarele nesteroidiene AK - Amikacină
ARV - Antiretroviral
ART - Tratament antiretroviral
AST - Aminotransferaza aspartat (transaminaza glutamică oxaloacetică) ATI - Anestezie terapie intensivă
BAAR - Bacili acid-alcoolo-rezistenți BCG - Vaccin antituberculos
BK - Bacilul Koch CFZ - Clofazimină CLR - Claritromicină
CNSCBT - Centrul Național de Supraveghere și Control al Bolilor Transmisibile CPM - Capreomicină
CS - Cicloserină
CT - Computer tomograf
CT-HR - tomograf computerizat de rezoluție înaltă Dg - Diagnostic
DOT - Tratament direct observat
DPF - Dispensar de Pneumoftiziologie
DSPJ - Direcția de Sănătate Publică Județeană
DSPMB - Direcția de Sănătate Publică a Municipiului București E - Etambutol
ECDC - Centrul European pentru Prevenirea și Controlul Bolilor Cronice EDTA - Acid etilen-diamino-tetra-acetic
ETM - Etionamidă
FID - Fibroză interstițială difuză FQ - Fluorochiuinolonă
H - Izoniazidă
HIV - Virusul imunodeficienței umane HTP - Hipertensiune arterială pulmonară
IGRAs - Teste de detectare a interferonului gama INSP - Institutul Național de Sănătate Publică IP - Inhibitori ai proteazei
IRIS - Sindromul de reconstrucție inflamatorie imună ITBL - Infecția tuberculoasă latentă
KM - Kanamicină
LBA - Lavaj bronho-alveolar LCR - Lichid cefalorahidian LDH - Lactat dehidrogenază LES - Lupus eritematos sistemic
LJ - Mediul de cultură Lowenstein Jensen LNR - Laborator Național de Referință
LPA - Line Probe Assay (metodă de hibridizare pe suport de nitroceluloză) Mt - Mycobacterium tuberculosis
NPI - Neuropsihiatrie infantilă NTB - Micobacterii atipice
NTM - Micobacterii non-tuberculoase OFX - Ofloxacină
OMS - Organizația Mondială a Sănătății PAS - Acid Para-aminosalicylic
PCR - Reacția de polimerizare în lanț PF - Pneumoftiziologie
PMN - Polimorfonucleare
PNPSCT - Programul Național de Prevenire, Supreveghere și Control al Tuberculozei PPD - Derivat proteic purificat (tuberculina)
PTM - Protionamidă QFT - Test Quantiferon R - Rifampicină
RAA - Reumatism articular acut RAI - Riscul anual de infecție RFB - Rifabutină
RMN - Rezonanță magnetică nucleară RMP - Rifampicină
S - Streptomicină
SIDA - Sindromul imunodeficienței umane dobândite TB - Tuberculoză
TBP - TB pulmonară TBEP - TB extrapulmonară
TB/HIV - TB și coinfecție HIV TB DR - TB cu germeni rezistenți
TB DS - TB cu germeni chimiosensibili
TB MDR - TB cu microorganisme rezistente cel puțin la H și R
TB XDR - TB cu rezistență cel puțin la H, R, Q și injectabil de linia a II-a TCT - Test cutanat la tuberculină
THA - Thionamida THZ - Thiocetazonă
TPI - Terapie preventivă cu izoniazdă TSH - Hormonul de stimulare tiroidiană TZD - Terizidonă
UATM - Unitatea de Asistență Tehnică și Management UV - Radiație ultra-violet
WHO - Organizatia Mondială a Sănătăți Z - Pirazinamidă
Cuvânt înainte
În România, tuberculoza reprezintă o problemă importantă de sănătate publică. Incidența globală, deși în scădere continuă începând cu 2002 și până în prezent, rămâne cea mai ridicată din Uniunea Europeană.
Tuberculoza copilului, deși urmează trendul descendent al incidenței globale, înregistrează aproximativ 600 de cazuri anual. Diagnosticul este laborios din cauza dificultăților legate de obținerea specimenului necesar examenului bacteriologic, specificității joase a examenului radiologic, limitelelor testului cutanat la tuberculină. Din acest punct de vedere, ne confruntăm încă cu supradiagnostic sau subdiagnostic. Perioada îndelungată a tratamentului, formulele pediatrice și datele de farmacocinetică puține sunt câteva din elementele care afectează încă complianța la tratament.
Posibilitățile moderne imagistice (CT, CT-HR, RMN), accesul, acolo unde se impune, la testul Quantiferon, utilizarea mediilor de cultură lichide precum și a metodelor moleculare în diagnosticul bacteriologic, prezența unor combinații medicamentoase pediatrice mai ușor de adaptat greutății corporale a copilului sunt câteva din elementele care aduc un plus în diagnosticul și tratamentul actual al tuberculozei copilului. Aceste motive ne-au determinat să inițiem reactualizarea ghidului pentru diagnosticul și tratamentul tuberculozei la copil editat în 2006 , care rămâne o lucrare de referință în domeniul tuberculozei copilului.
Sperăm că această lucrare să ofere rețelei de pneumologie informațiile necesare stabilirii diagnosticului, tratamentului și managementului tuberculozei copilului.
I Diagnosticul tuberculozei la copil
În practică, problema diagnosticului tuberculozei copilului se pune de obicei în două circumstanțe:
•
copii cu simptome respiratorii cronice ridicând suspiciunea etiologiei tuberculoase
•
copii contacți cu bolnavi de tuberculoză .
Elementele necesare stabilirii diagnosticului tuberculozei la copil
•
context epidemiologic;
•
manifestări clinice;
•
TCT /IGRAs
•
examen imagistic;
•
examen bacteriologic;
•
teste de laborator și investigații suplimentare;
1.1
Contextul epidemiologic
Contactul de tuberculoză
este persoana
care stă în apropierea unui bolnav cu tuberculoză la distanța necesară unei conversații pe o durată de minim 4 ore într-o zi.
Contactul intradomiciliar:
Adulții bolnavi pot fi: părinții, alți membri ai familiei, alte persoane care îngrijesc copilul. Factori de risc:
•
vârsta mică (sugarii și copiii sub 5 ani în primul an de la expunere/infecție)
•
copil mic cu intercurențe respiratorii frecvente/stări patologice asociate (diabet zaharat, neoplazii,
malnutriție
protein-calorică,
insuficiență
renală)/simptome
respiratorii sugestive tuberculozei
•
copilul cu HIV (necesitând și verificarea coexistenței TB), boli imunosupresive
•
copil contact cu bolnavul sursă cu tuberculoză pulmonară intens baciliferă
•
intimitatea, intensitatea și durata contactului cu bolnavul caz index cu tuberculoză
•
copil contact cu pacient suspect/confirmat cu tuberculoză rezistentă/MDR
•
copii expuși adulților din categoriile considerate la risc (condiții socio-economice precare, consum excesiv de alcool, consum de droguri)
•
copii instituționalizați
Contactul extradomiciliar :
Este definit ca fiind reprezentat de persoana care a avut contact cu copilul mai mult de patru ore/zi în ultimele 3 luni anterioare diagnosticului. Adeseori, sursa poate fi adultul cu tuberculoză din colectivitatea frecventată de copil.
Indiferent de relația intra/extradomiciliară a copilului cu bolnavul caz indez cu tuberculoză, acesta trebuie investigat în cadrul Anchetei Epidemiologice.
În zonele cu prevalență crescută HIV toți contacții intradomiciliari/apropiați ai cazului index cu TB vor fi consiliați si testați HIV.
În zonele cu prevalență medie/joasă HIV toți contacții intradomiciliari/apropiați ai cazului index, contacți cu simptome sugestive de tuberculoză, pot fi consiliați și testați HIV.
1.2
Manifestări clinice sugestive
În tuberculoză simptomatologia pulmonară este nespecifică și dificil de diferențiat de cea din infecțiile respiratorii non-tuberculoase. Simptomele se instalează progresiv, durează mai mult de 3-4 săptămâni și nu cedează la medicația nespecifică.
Modificări clinice comune:
•
tuse persistentă de peste trei săptămâni (fără altă etiologie confirmată/cu răspuns terapeutic nesatisfăcător la antibioterapia administrată)
•
scădere ponderală importantă
•
sindrom febril (subfebril) prelungit
•
inapetență/astenie/diminuarea activității de joacă
•
sugarul/copilul
mic
care
prezintă
semne
ale
compresiei
ganglio-bronșice, hepatosplenomegalie,
convulsii
sau
alte
semne
meningo-encefalitice
sugestive diseminărilor miliare
La copiii mari și în funcție de forma de tuberculoză pot fi prezente și alte simptome: hemoptizia, junghiul toracic, dispneea.
În majoritatea cazurilor
examenul fizic pulmonar
este nespecific. În funcție de vârsta copilului și de gravitatea leziunilor bronșice/parenchimatoase pot fi puse în evidență: semne de condensare (modificări percutorii și stetacustice sugestive proceselor de condensare), emfizem obstructiv, revărsat pleural, stenoze bronșice, detresă respiratorie.
Uneori examenul fizic pulmonar este normal, deși radiografia pulmonară evidențiază prezența leziunilor sugestive primoinfecției (discordanța radio-clinică).
Modificările clinice în tuberculoza extrapulmonară
interesează organele și aparatele afectate:
•
tumefierea ganglionilor (mai frecvent latero-cervicali) cu adenomegalii confluente, trenante care pot fistuliza
•
deformări ale coloanei vertebrale: gibus, cifoscolioză (în special la copiii mari)
•
sindrom meningo-encefalitic cu instalare bruscă și risc sechelar/vital mai ales în depistarea tardivă (cel mai frecvent la sugar și copilul mic)
•
prezența exudatului pleural/pericardic/ascită (de obicei nedureroasă)
•
tumefierea articulară, fără semne celsiene la nivelul unei articulații mari. Poate genera impotență funcțională și sechele motorii, mai ales în depistarea tardivă.
Apariția eritemului nodos, kerato-conjunctivitei flictenulare sau a tuberculilor coroidieni ridică suspiciunea etiologiei tuberculoase indiferent de vârsta copilului.
Aspectele clinice trebuie încadrate în contextul epidemiologic și coroborate cu celelalte elemente de diagnostic ale tuberculozei.
1.3.1
Testul cutanat la tuberculină (TCT)
Reprezintă metoda convențională curentă de evidențiere a infecției cu Mt într-un organism. Se efectuează prin intradermoreacția după metoda Mantoux și constă în injectarea unei cantități de antigene din Mt (derivat de proteină purificată - PPD din tuberculina brută). Se produce la locul injectării o reacție inflamatorie în cazul în care organismul este infectat cu Mt. Testul este standardizat pentru fiecare țară, utilizând 5 UI/0,1 ml de PPD-S sau 2 UI/0,1 ml de PPD RT 23, ambele determinând răspunsuri similare la copiii infectați cu Mt. Reacția relevă hiperreactivitatea tuberculinică (hiperreactivitate de tip întârziat) evidențiată în 6-8 săptămâni (excepțional în 3 luni) de la momentul infectării inițiale și care uneori se păstrează
toată
viața.
Testul
cutanat
la
tuberculină
măsoară
răspunsul
imun
și
nu prezența/absența Mt în organism.
Reacția pozitivă
Este considerată indurația dermică 2 10 mm la locul inoculării, care apare până la 72 ore de la injectare. Ea poate semnifica nu numai infecția cu Mt, dar și cu M. bovis vaccinal sau natural. Interpretarea testului cutanat la 2 și 5 U.I. PPD:
•
Reacția :S 9 mm semnifică alergie post-vaccinală BCG în primii ani după naștere sau infecție cu micobacterii netuberculoase (excepție: copilul infectat cu HIV/tratamentul cu anti alfa TNF);
•
Reacția moderată, de 10-14 mm, sugerează infecția naturală cu Mt;
•
Reacția intensă, peste 15 mm (hiperergia), semnifică infecția cu Mt, nu neapărat tuberculoză activă, probabil risc crescut de evolutivitate lezională.
Reacții fals-pozitive:
•
vaccinarea BCG
•
tehnică/interpretarea incorectă a TCT
•
copil alergic la proteine
•
infecțiile cu mycobacterii atipice
•
efect booster
•
tuberculină inactivată prin depozitare.
Reacția pozitivă la tuberculină este marker al infecției tuberculoase, fără corelație cu tuberculoza activă .
Reacția negativă
sugerează:
•
lipsa infecției organismului testat
•
organismul este infectat și se află în faza ante-alergică (dacă există suspiciunea unei tuberculoze, testarea se poate repeta la 6-8 săptămâni)
•
infecția există, dar testul s-a efectuat în timpul sau imediat după o boală anergizantă;
•
negativarea unei reacții Mantoux anterior pozitive spontan sau după tratament.
Reacții fals-negative:
•
forme severe de tuberculoză la sugar și copilul mic
•
infecție HIV, infecții virale (varicelă, rujeolă)
•
medicație imunosupresivă (corticoizi , anti alfa TNF)
•
afecțiuni limfatice: limfom Hodgkin/ non-Hodgkin, leucemie, sarcoidoză
•
imunodeficiență primară
•
vaccinări recente cu virusuri vii
•
malnutriție/hipoproteinemie
•
stare de șoc
•
tuberculina inactivată prin depozitare și utilizare improprie
•
tehnică/citire incorectă.
TCT negativ nu exclude diagnosticul de tuberculoză.
Contraindicații:
în principal TCT nu are contraindicații. Se recomandă amânarea în următoarele situații:
•
stare febrilă/boală acută
•
boli eruptive
•
tratament cu corticosteroizi.
Incidente/accidente mai frecvent întâlnite: edem marcat, inflamație prin introducerea subcutanată a tuberculinei.
Toți copiii seropozitivi HIV vor efectua TCT. Administrarea, citirea TCT sunt redate în Anexa 1.
1.3.2.Testele IGRAs
IGRAs utilizează proteine specifice Mt: ESAT 6 și CTP 10 codificate de gene situate la nivelul secvenței RD-1 din genomul Mt.
Rezultatele posibile sunt:
•
pozitiv, negativ sau nedeterminant pentru Quantiferon-TB
•
pozitiv, negativ, la limită și nedeterminant pentru T-Spot. TB.
În România testele Interferon Gamma Releasing Assays (IGRAs) sunt reprezentate de Quantiferon-TB (Cellestis). Este un test modern care detectează imunitatea mediată celular și este utilizat în diagnosticul infecției tuberculoase latente.
Comparativ cu testul cutanat la tuberculină, acest test poate diferenția între rezultatul TCT fals pozitiv, urmare a vaccinării BCG și infecția actuală cu Mt precum și între infecția cu Mt și Mycobacterii netuberculoase.
Nu permit diferențierea infecției tuberculoase de tuberculoza boală, determinând dificultăți în interpreterea și monitorizarea cazurilor cu rezultate discordante: IGRAs pozitiv - TCT negativ
Recomandări:
Se pot efectua în aceeași zi cu TCT/la citirea TCT/la 3 luni de la efectuarea TCT
Limite :
-
nu este recomandat în evaluarea tratamentului ITBL
-
un test negativ nu se repetă
-
nu este recomandat copilului cu HIV-TB (rezultat nedeterminat)
Inconvenietul financiar este deosebit de important, fiind necesară stabilirea unor grupuri țintă cu risc crescut la tuberculoză.
De reținut :
•
testele IGRAs nu înlocuiesc TCT ca investigație în diagnosticul ITBL sau în cel de tuberculoză, indiferent de statusul HIV.
1.4. Examenul bacteriologic
Deși dificil de efectuat la copil, identitificarea Mt în examenul bacteriologic reprezintă standardul de aur al diagnosticului. Confirmarea nu depășește 10-15%, produsele biologice fiind nu doar mai greu de obținut dar și paucibacilare.
Efectuarea examenului bacteriologic la copil respectă aceleași procedee ca și la adult: modul de prelevare, transportul produselor recoltate, timpul scurs de la recoltare până la prelucrare al aspiratului/lavajului gastric, protocolul de instruire al copilului mare/cadrului mediu (Anexa 2).
Sputa emisă spontan
•
Se recoltează în camera de recoltare sub stricta supraveghere a personalului medical, cu respectarea protocolului de recoltare și a măsurilor de control al infecției tuberculoase.
•
Este recomandată copiilor mai mari de șase ani.
Sputa indusă:
•
Recoltarea se face în camera de recoltare cu respectarea măsurilor de control al infecției tuberculoase.
•
Metoda se utilizează la copiii mai mari de 6 ani, sub supravegherea personalului medical.
•
Inducerea sputei prin nebulizarea soluției saline cu o concentrație de 6-10% este o metodă eficientă și bine tolerată. Sensibilitatea metodei este de 90%.
Copiii excluși acestui procedeu:
•
Copiii intubați
•
Copiii cu astm bronșic în exacerbare/criză de astm
•
Copiii cu afecțiuni hemoragice/trombocitopenii. Incidente/accidente:
•
epistaxis
•
wheezing.
Aspiratul gastric/lavajul gastric:
•
Produsul se recoltează copiilor cu vârsta între 0-6 ani cu suspiciune de tuberculoză, în condiții de spitalizare, în două dimineți consecutive, cu pauză de cel puțin 4-6 ore de la ultima masă.
•
Copiii cu trombocitopenie sunt excluși de la această procedură.
•
Pe solicitarea examenului bacteriologic se completează obligatoriu ora recoltării pentru a putea fi prelucrat de personalul din laborator în maxim 4 ore de la recoltare.
Aspiratul bronșic / lavajul bronhoalveolar
•
Se recoltează prin fibro- endoscopie bronșică, manevră cu indicație specială și mai puțin utilizată la copil. Confirmarea bacteriologică din lavajul bronhoalveolar nu este superioară aspiratului gastric (33-40%).
Aspirarea secrețiilor laringo-traheale
•
Se efectuează copiilor care, deși au secreții, nu le pot expectora.
•
Sensibilitatea metodei este de 30-33%.
Prelevarea
prin
biopsie
și
prelucrarea
fragmentelor
tisulare
pentru
investigația bacteriologică reprezintă metoda cu cea mai mare sensibilitate în diagnosticul tuberculozei extrapulmonare (ajungând până la 80%, în adenopatiile mediastinale)
•
Prelevarea se efectuează în soluții nesaline, contraindicată fiind utilizarea formolului sau al altor fixatori.
•
Examinarea prelevatului bioptic se face prin amprentare, triturare, însămânțare. Produsele obținute
prin puncție : lichid cefalorahidian/lichid pleural/lichid pericardic / lichid ascitic/lichid articular. Necesită tehnici și condiții speciale pentru prelucrare (Anexa 2). Testele comerciale pentru sero-diagnostic nu se utilizează în diagnosticul tuberculozei copilului, indiferent de statusul HIV al acestuia.
Examenul microscopic
de evidențiere a BK (colorația Ziehl Neelsen) în produse biologice și patologice este simplu, rapid și ieftin. Metoda microscopiei oferă avantaje epidemiologice prin detectarea surselor intens bacilifere, contagioase.
Rezultatul este pozitiv dacă produsul recoltat conține peste 5000 bacili/ml. Dezavantaje:
•
are sensibilitate redusă pentru produsele paucibacilare
•
nu identifică tipul de mycobacterii
•
nu identifică viabilitatea mycobacteriilor.
Rezultatul depinde de calitatea recoltării, experiența personalului din laborator și nivelul endemiei din teritoriul din care provine pacientul.
Prin comparație, microscopia cu fluorescență (auramină, rodamină) reduce timpul de examinare a frotiului și prezintă sensibilitate mai mare.
Un rezultat pozitiv al frotiului nu certifică tuberculoza. Un rezultat negativ al frotiului nu excude tuberculoza activă .
Cultura BK
este standardul de aur al diagnosticului. Are o sensibilitate mai mare dacât microscopia. Deși majoritatea produselor sunt paucibacilare, permite genotiparea și testarea chimio-sensibilității. Rezultatul este pozitiv dacă sputa conține mai mult de 10 bacili/ml. Examinarea unui număr mai mare de probe din produsul examinat crește sensibilitatea metodei.
Dezavantajul major al examinării prin cultură pe
mediu solid
(cel mai utilizat este mediul Lowenstein-Jensen) este întârzierea rezultatelor (3-8 săptămâni). La copil, sensibilitatea
culturii este aproximativ 30%. Utilizarea
mediilor lichide
scurtează mult timpul până la rezultat (1-2 săptămâni) și crește rata confirmării.
O singură cultură pozitivă, în coroborare cu elementele clinice și imagistice sugestive este suficientă pentru a susține diagnosticul de boală activă.
Microscopia pozitivă-cultura negativă se poate întâlni în următoarele situații:
•
eliminarea de Mt morți după tratamentul antituberculos
•
tehnica de decontaminare prea agresivă care alterează viabilitatea Mt
•
medii de cultură necorespunzătoare, de calitate necontrolată
•
deficiențe de recoltare,păstrare și transport ale produselor biologice.
Cultivarea pe mediu lichid
constituie actualul standard de aur al diagnosticului tuberculozei copilului. Rezultatele sunt obținute mai repede și cu o creștere a pozitivității cu 10% față de cultivarea pe mediu solid. OMS recomandă utilizarea acestora pentru cultivare, alături de testele imunocromatografice pentru identificarea Mt dar și pentru antibiograma rapidă. Cultivarea simultană pe mediu solid/mediu lichid în sistem automat permite creșterea tulpinilor cu exigențe nutritive particulare în cel puțin unul dintre medii.
Sistemul
BACTEC MGIT 960
(actualul standard) utilizează mediul lichid Middlenbrook 7H9
modificat.
Se
bazează
pe
principiul
fluorometric
pentru
a
evidenția
scăderea concentrației oxigenului din mediul de cultură, eliminând dezavantajul radiometric al altor sisteme. Fluorescența este măsurată automat, fiind evidențiată prin iluminarea cu raze ultraviolet. Sistemul permite și testarea sensibilității la antibioticele antituberculoase a tulpinilor de Mt. izolate.
Versa TREK
este alt sistem de cultivare în mediu lichid Middlebrook 7H9 modificat, complet automatizat. Măsoară scăderea concentrației de oxigen datorată metabolismului microbian și modificarea presiunii parțiale a bioxidului de carbon si azotului din mediul de cultură. Permite și testarea sensibilității la antibioticele antituberculoase a tulpinilor de Mt. izolate.
Pentru ambele sisteme de cultivare este necesară suplimentarea mediului de cultură cu factori de creștere pentru mycobacterii și antibiotice care să limiteze contaminarea cu floră cu creștere rapidă.
Complexă și costisitoare, cultura în mediu lichid necesită personal instruit. Este o metodă calitativă (nu oferă informații asupra numărului de colonii) și are o rată mai mare de contaminare decât cultura în mediu solid.
Etapele de identificare după creșterea microbiană sunt:
•
confirmarea microscopică a prezenței BAAR (colorația Ziehl-Neelsen)
•
confirmarea apartenenței Mycobacteriilor izolate la Complexul Mt utilizând teste rapide - imunocromatografice sau teste de biologie moleculară
•
testarea sensibilității la medicația antituberculoasă (antibiograma).
Metoda culturii în mediu lichid este indicată pentru diagnostic în următoarele situații:
•
copil cu suspiciune de tuberculoză
•
copil infectat HIV suspect de tuberculoză
•
copil contact cu sursa - caz index cu tuberculoză rezistență/MDR.
Din fiecare produs recoltat se recomandă a se efectua examen microscopic, cultura în mediu lichid și solid. Pentru culturile pozitive se efectuează și antibiograma (ABG de linia I sau de linia I și II la suspiciunea de TB-MDR). La eșantioanele prelucrate care indică modificări sugestive pentru rezistență la R se efectuează testele moleculare (GeneXpert MTB/Rif) respectiv rezistență R și H (GenoTypeMTBDR plus).
Testele de sensibilitate sunt obligatorii pentru toate cazurile de tuberculoză confirmate în cultură. Antibiogramele serie lungă pentru medicația de linia II se efectuează la LNR.
Din prima cultură pozitivă a unui caz cu suspiciune de TB-MDR/XDR se va efectua antibiograma la medicamentele de linia a II-a în LNR. Se repetă ABG pentru culturile pozitive la T4 .
Metode rapide de identificare a Mycobacteriilor
a)
Metodele de amplificare
ale acizilor nucleici utilizează tehnica PCR. Acuratețea și sensibilitatea lor diferă în funcție de secvența genomică pe care o vizează precum și de produsul prelucrat. Cele mai cunoscute sunt: GenProbe și Amplicor dar nu pot diferenția speciile din cadrul Complexului Mycobacterium tuberculosis. Sensibilitatea este de 92% iar specificitatea de 99%.
Limite: - nu identifică culturile mixte
- nu discriminează între speciile Complexului Mycobacterium tuberculosis.
b)
Metode de amplificare genică în lanț și hibridizare liniară
Reduc timpul de confirmare al tuberculozei/TB-MDR la 24-48 de ore. Aprobate de OMS în 2008 pentru detectarea TB-MDR la cazurile pozitive în microscopie sau doar în cultură, nu înlocuiesc metodele actuale standardizate pentru detectarea Complexului Mt și nici a profilului de rezistență, ci doar completează prin diagnosticul precoce.
1)
Reacția de
amplificare în lanț în timp real , cantitativ, măsoară amplificarea PCR în timp real fiind utilizată în: genotipare, detecția germenilor patogeni, validarea țintei medicamentelor.
Din acest grup face parte
GeneXpert MTB/Rif
care detectează simultan atât Complexul Mt cât și rezistența la Rifampicină. Este un sistem închis, complet automatizat (cartușe de unică folosință și platformă specifică) și analizează fragmentele de ADN amplificat în aproximativ 2 ore. Recomandat de OMS în zonele în care prevalența MDR este de peste 15%.
În zonele în care prevalența MDR este sub 5%, necesită confirmarea prin orice alt test al diagnosticului definitiv de rezistență la Rifampicină.
Poate fi utilizat cu prioritate, în următoarele situații:
•
ca test de diagnostic inițial la copiii cu suspiciune de tuberculoză rezistentă/ MDR sau de coinfecție HIV
•
ca test inițial la copiii cu forme severe, extinse de tuberculoză pulmonară/extrapulmonară (meningita) care necesită diagnostic rapid.
Dacă resursele financiare permit, poate fi utilizat ca test inițial de diagnostic al tuberculozei copilului.
Copiii suspecți de tuberculoză pulmonară/extrapulmonară cu un singur test GeneXpert MTB/Rif negativ vor fi investigați în continuare coroborând și criteriile clinice, astfel:
•
cei cu suspiciune clinică înaltă de tuberculoză vor primi tratament chiar dacă rezultatul testului este negativ sau dacă testul nu este disponibil
•
recomandările nu se aplică următoarelor produse biologice: sânge, urină, materii fecale, sau produselor patologice care conțin resturi alimentare.
2)
Testele Line Probe Assay (LPA) utilizează tehnologia revers hibridizării cu diferite sonde ADN specifice. Cuprind două metode:
Inno-Lipa și GenoType . Line Probe Assay testează și rezistența la H (izoniazidă). Kitul
Inno-Lipa Rif.TB
detectează mutațiile în gena rpoB a Complexului Mycobacterium tuberculosis aplicabil atât pe culturi din mediu lichid/solid dar și direct din produsul patologic, evidențiind și rezistența la R (rifampicină). Testul
GenoType MTBDRplus v 2
aplicabil direct sau culturilor din produse patologice detectează alături de Complexul Mt și rezistența la Hidrazidă și Rifampicină.
3)
Din 2009, OMS recomandă și testul
GenoType MDRDRsl
care detectează prin test direct sau indirect și rezistența la chinolonă și aminoglicozid, contribuind astfel la urgentarea diagnosticului tuberculozei XDR.
Metoda de
hibridizare liniară
detectează și identifică simultan Complexul Mt și rezistența la R, H, Aminoglicozide și Fluorochinolone. În funcție de kitul utilizat, este posibilă identificarea speciilor în cadrul Complexului Mt sau a altor specii mycobacteriene mai frecvent izolate la om. GenoType Mycobacteria Hain Lifescience GmbH Nehren, Germany efectuează un ansamblu de teste bazate pe tehnologia hibridizării ADN pe stripuri (benzi).
Etapele de lucru includ extracția de ADN urmată de denaturare, amplificare, hibridizare pe suport și evaluarea testului.
Deși cultivarea pe medii lichide și metodele de hibridizare sunt considerate de către OMS un standard internațional, nu se poate renunța la cultivarea pe mediul solid și efectuarea antibiogramei convenționale.
Algoritmul pentru diagnosticul de laborator al TBP este detaliat în Anexa 3.
1.5 Modificările radiologice sugestive pentru tuberculoza copilului
Modificările radiologice,
deși nespecifice, ocupă un loc important în diagnosticului tuberculozei copilului.
Metoda cea mai des invocată în diagnostic este radiografia toraco-pulmonară în două incidențe (postero-anterioară și laterală). Efectuarea presupune condiții tehnice și de expunere corecte/adecvate vârstei și greutății copilului. Interpretarea radiografiei necesită colaborare radiolog - pneumolog. Ideală este lectura separată a imaginilor de către cei doi specialiști și coroborarea rezultatului cu datele epidemiologice, clinice, bacteriologice și biologice.
În tuberculoză, modificările radiologice au dinamică lentă (pot persista până la 3 ani) și nu dau relații despre activitatea leziunilor.
Limitele examinării radiologice pulmonare sunt date de:
•
dificultatea asigurării condițiilor tehnice necesare unui examen de calitate
•
posibilitatea confundării elementelor vasculare ale hilului cu adenopatiile
•
supradiagnostic/subdiagnostic
Metode imagistice suplimentare:
•
Ecografia toracică
pentru formațiunile mediastinale superioare, patologia pleurală și pericardică
•
Ecografia trans-esofagiană
câștigă teren în diagnosticul formațiunilor mediastinale
•
Ecografia Doppler cardiacă
este utilizată pentru patologia pericardică
•
Tomografia computerizată (CT ) este metoda de diagnostic deosebit de importantă în tuberculoza copilului, net superioară radiografiei standard pentru că:
-
localizează leziunile cu precizarea dimensiunilor, diferențiindu-le de reperele anatomice
-
evidențiază atât modificările bronșice consecutive stenozelor/erodării peretelui bronșic, îngroșării pereților cât și modificările parenchimatoase/pleurale.
•
Rezonanța magnetică nucleară (RMN)
permite explorarea mediastinului, a craniului și sistemului osos.
Poate discrimina între adenopatii și structurile vasculare fără a necesita utilizarea substanței de contrast.
Modificări radiologice sugestive
tuberculozei pulmonare:
•
Adenopatiile hilare, mediastinale și paratraheale, unice sau multiple, sunt situate cel mai frecvent în dreapta. Radiologic, adenopatia (mult mai frecventă, comparativ cu afectul primar) apare ca o formațiune ovalară, bine conturată, evidențiată mai bine pe radiografia de profil.
•
Modificările parenchimatoase pulmonare (opacități) pot fi de sine stătătoare sau pot însoți adenopatiile (omogene, sistematizate/nesistematizate, multifocale).
•
Leziunile
datorate
adenopatiilor
complicate:
opacități
pneumonice
sau bronhopneumonice, atelectazii/ hiperinflație (prin compresiunea bronhiilor), caverne ganglionare (consecința deversării cazeumului în bronhie).
•
Opacitățile lichidiene: pleureziile tuberculoase, majoritatea unilaterale, cu revărsat liber/închistat în marea cavitate (linia Damoiseau - limita superioară), au aspect omogen și intensitate mare.
•
Leziunile cu aspect miliar care pot fi evidențiate precoce la examenul CT toracic. Micronodulii omogeni, uniformi, bine conturați și diseminați în ambele arii pulmonare sunt evidențiați mai ales la nivelul lobilor superiori.
•
Pneumonia și bronhopneumonia cazeoasă cu opacități parenchimatoase, neomogene, cu pierderi de substanță.
Deși invocată cel mai fecvent în diagnosticul tuberculozei copilului, modificarea radiologică, oricât de sugestivă ar fi, trebuie interpretată în contextul celorlalte criterii de diagnostic.
Radiografia toracică este rareori normală în primoinfecția copilului. Diferențierea între boala activă și cea inactivă se poate efectua numai urmărind evoluția în timp a leziunilor.
Diagnosticul diferențial radiologic este complex și dificil de făcut (Anexa 4).
1.6. Teste complementare pentru tuberculoza pulmonară/extrapulmonară Endoscopia bronșică
Este o metodă de investigație specială, care necesită o echipă medicală specializată, cu experiență. La copil, efectuarea bronhoscopiei rămâne dificilă și nu este recomandată de rutină, necesitând anestezie generală (mai ales pentru sugar și copil mic).
Indicații:
•
Stenoze, compresii, sechele bronșice parțiale/totale
•
Fistule ganglio-bronșice
•
Bronșiectazii
•
Infecții bronhopulmonare
•
Pneumopatii interstițiale difuze
•
Suspiciune de polipi endobronșici
•
Recoltarea de probe pentru ex. bacteriologic (deși proporția confirmării bacteriologice din aspiratul bronșic nu este superioară aspiratului gastric)
•
Identificarea modificărilor endobronșice (compresii, fistule, sechele)
•
Diferențiază între tumori, atelectazii prin corpi străini.
În scop terapeutic endoscopia bronșică este utilă în: extracția corpilor străini, tratament, bronhoaspirație, electrocoagulare, fotochimioterapie, laserterapie, brahiterapie și crioterapie.
Accidente/incidente:
•
spasm glotic/bronhospasm
•
somnolență prelungită
•
diploplie.
În pneumologia pediatrică, investigația endobronșică este utilă în precizarea diagnosticului, localizarea leziunilor și stabilirea tratamentului.
Investigația funcțională pulmonară
Este indicată copiilor mai mari (peste 6-7 ani) și adolescenților care prezentă complianță la efectuarea explorărilor funcționale respiratorii speciale.
Indicații:
•
în pleurezia tuberculoasă pentru monitorizarea terapeutică
•
în formele asociate cu bronhospasm,
•
în modificări de cifoscolioză/ sechele de rahitism.
Investigațiile biochimice și serologice
Nu sunt specifice diagnosticului de tuberculoză.
•
Reactanții de fază acută (VSH, fibrinogenul seric, proteina C reactivă) pot avea valori de la moderat crescute la foarte mari în formele de tuberculoză complicate, extinse sau asociate cu alte afecțiuni. Scad și se normalizează sub tratament, exprimând și eficiența terapeutică.
•
Dozarea anticorpilor anti-mycobacterieni de tip IgG și IgM cu utilitate în aprecierea caracterului evolutiv al tuberculozei.
Investigațiile pentru diagnosticul tuberculozei extrapulmopnare
la copil se regăsesc în Anexa 5.
II
Algoritm de diagnostic în tuberculoza copilului Suspiciune de tuberculoză
•
copil simptomatic contact cu un caz confirmat de tuberculoză
•
copil cu tuse cronică neinfluențată de antibioterapia nespecifică
•
copil cu imunodepresie prin HIV, boli anergizante, tratament imunosupresiv
•
copil cu scădere în greutate/falimentul creșterii, malnutriție
•
copil cu adenopatie periferică nedureroasă.
Diagnostic probabil de TB
Un caz suspect la care se adaugă:
•
TCT/IGRAs pozitiv
•
modificare imagistică sugestivă
•
modificare histologică sugestivă
•
Evidențierea unui acid nucleic care să aparțină complexului Mt.
Diagnostic de certitudine al tuberculozei
•
Identificarea Mt în cultură
•
Evidențierea unui acid nucleic care să aparțină complexului Mt + Rezultat BAAR pozitiv la examenul microscopic.
Algoritm de diagnostic în tuberculoza copilului
III
Forme clinice de tuberculoză ale copilului
3.1 Definiții
Infecția
tuberculoasă (infecție tuberculoasă latentă) este definită prin răspunsul pozitiv la tuberculină, în absența manifestărilor clinice, imagistice, bacteriologice.
Tuberculoza
este boala activă din punct de vedere clinic, bacteriologic (histologic) și/sau imagistic.
Tuberculoza primară
apare consecutiv infecției, la copilul neinfectat anterior, însumând modificările: clinice, anatomo-radiologice, bacteriologice și imunologice apărute ca urmare a contactului cu Mt.
La copil, tuberculoza primară poate avea forme diferite de severitate în funcție de:
vârstă
starea de imunizare (vaccin BCG)
starea nutrițională
asocierea altor afecțiuni cu risc (bolile infecțioase ale copilăriei, bolile imunosupresive, infecția HIV/SIDA, corticoterapia de durată)
importanța/durata contactului infectant.
Tuberculoza secundară
apare la distanță de momentul infecției fiind rezultatul fie al reactivării germenilor care au produs infecția inițială, fie al suprainfecției exogene de la o altă sursă cu tuberculoză.
Tuberculoza primo-secundară
apare ca urmare a deplasării momentului primoinfecției spre vârsta adolescenței.
Tuberculoza este o boală sistemică și nu una strict pulmonară. Ea depinde pe de o parte de patogenitatea microorganismului și pe de altă parte de capacitatea organismului de a elimina Mt.
Diagnosticul tuberculozei, încadrarea cazurilor, tratamentul, monitorizarea și evaluarea aparțin serviciilor specializate în controlul tuberculozei.
3.2. Infecția tuberculoasă latentă (Primoinfecția ocultă)
Consecință a interacțiunii dintre organismul indemn și Mt, infecția tuberculoasă latentă (ITBL) este definită prin răspunsul pozitiv la tuberculină neînsoțit de manifestări clinice, radiologice sau bacteriologice. Diagnosticul este de obicei retrospectiv, ITLB reprezentând rezervorul principal al viitoarelor cazuri de tuberculoză activă ale adultului.
Diagnosticul se bazează pe
TCT
(standardul actual). TCT este utilizat în următoarele situații:
•
În
scop diagnostic
este reprezentat de IDR la tuberculină (PPD) prin tehnica Mantoux în următoarele situații:
-
copiii contacți cu un caz index / focar de tuberculoză
-
copiii cu infecție HIV
-
copiii aflați în tratament imunosupresor (corticoterapie îndelungată, chimioterapie, medicație anti-TNFalfa)
-
copiii la intrarea în colectivitățile cu risc (centre de plasament, școli ajutătoare, școli de corecție, etc.)
•
Pentru
aprecierea vaccinării BCG
•
Ca metodă de investigație epidemiologică pentru
calculul prevalenței infecției
și
a riscului anual de infecție (RAI).
Aproximativ 90% din copiii infectați rămân în stadiul de infecție latentă și nu se vor îmbolnăvi în următorii ani (majoritatea îmbolnăvirilor au loc în primii 2 ani de la infecție).
Riscul crescut de transformare a infecției în boală este prezent la următoarele categorii:
•
Copii sub 5 ani
•
Copii contacți de tuberculoză prin expunere repetată și masivă la sursa TB
•
Copii cu afecțiuni clinice asociate cu progresie la tuberculoza activă (diabet zaharat, ulcer gastro-duodenal, boli anergizante, neoplasm, transplant de organe)
•
Copii expuși unor factori precari socio-economici, ecologici de habitat și alimentari.
În cazul apariției
virajului tuberculinic,
nu putem ști dacă acest caz va rămâne biologic ocult sau va evolua spre o formă primară sau secundară de tuberculoză activă.
Reacția pozitivă la TCT este marker al infecției tuberculoase dar nu certifică tuberculoza activă.
Reacția negativă la TCT nu infirmă tuberculoza activă.
Diagnosticul utilizează și testele
IGRAs , teste de detecție a interferonului gamma. În România utilizăm Quantiferon TB Gold. Rezultatele posibile sunt: pozitiv, negativ sau nedeterminat. Se recomandă efectuarea lor în ziua citirii TCT, la cel mult 3 zile de la interpretarea acestuia sau după 3 luni de la efectuarea TCT.
Avantaje:
•
Diferențiază între Mt versus mycobacterii non-tuberculoase
•
Diferențiază între Mt versus vaccinarea BCG
Limite:
•
Nu se efectuează copilului sub 5 ani
•
Nu este recomandată repetarea lor dacă rezultatul este negativ
•
Nu sunt recomandate în monitorizarea/evaluarea tratamentului ITBL
•
Nu înlocuiesc TCT ca test de investigație al ITBL.
Algor itm
de diagnost i c
ff
BL
l a oo;p i
:
i
i
oontacț i
rn
M D R/TB XDR
Ge n e Xp e rt
N e gat i v
R eee valua r e
t
i mp
de
2 an i
-
l a 3
l un i -
E xam i na r
e
cl
i
n
i
c ă
La
6
l
u
ni
-
rad
i o g
raf
i
e
torace+
lCT
(dacă
ini ț
i
a
l
n eg a t
i v)
î ra ta m e ntTB
T CT I
l a 6- 8
s ă pt ăm â n
i
S i
m p t
om e
T
B
sau
rad i o g
r a fie
t
ora c e cu
m o d
i
f
i că r
i
Norm a l
E xam
i
na
r e
cl
i
n
i c ă R
a
d
i o g ra fi e to r ace
Cop
i
i
cont a cți
îB
M
D R /XDR
An a m11 e ·
z
ă
,
e xam e n cl
i
n
i c , ra d io g r af i e
t orace
3.3
Primoinfecția tuberculoasă manifestă benignă Primoinfecția necomplicată
Manifestări clinice : nu există o simptomatologie specifică, putând fi prezentă o subfebrilitate asociată cu semne de infecție respiratorie nespecifică. Persistența tusei și a altor manifestări clinice
(adinamie,
transpirații,
scădere
ponderală)
impun
efectuarea
unei
radiografii pulmonare. De cele mai multe ori însă, copilul poate fi asimptomatic. Prezența kerato- conjunctivitei
flictenulare
sau
a
eritemului
nodos
pot
fi
argumente
în
diagnosticul tuberculozei primare.
Radiografia toracică
rămâne principala investigație de depistare a tuberculozei primare prin evidențierea elementelor
complexului primar Ranke
(adenopatie, traiect de limfangită, complex primar).
Adenopatia
hilară și paratraheală, de obicei unilaterale, cu ganglioni de mărimi variabile, sunt cele mai frecvent întâlnite forme ale primoinfecției tuberculoase.
TCT
este de cele mai multe ori pozitiv.
Reacția negativă la un copil simptomatic impune repetarea lui după 4-6 săptămâni, când poate surveni
virajul tuberculinic,
ceea ce confirmă prezența infecției recente cu Mt. Interpretarea însă va ține cont de posibilitatea reacției postvaccinale BCG.
Testul
IGRAs
- Quantiferon poate tranșa între infecția cu Mt actuală versus reacția postvaccinală BCG /infecție cu Mycobacterii atipice (NTB) - dar nu se efectuează de rutină.
Confirmarea bacteriologică
rară (10-15% din cazuri) din aspirat/lavaj gastric, aspirat bronșic (endoscopie bronșică), spută indusă sau spontană este îmbunătățită prin cultivarea pe medii lichide (MGIT 90). Utilizarea metodelor genetice GeneXpert MTB/Rif va aduce un plus în rapiditatea și confirmarea diagnostică.
Ancheta epidemiologică
poate identifica sursa cu tuberculoză pulmonară activă.
3.4
Primoinfecția cu complicații benigne
Congestia perifocală
(epituberculoza/proces inflamatoriu extensiv benign). Este o reacție a organismului în perioada de hipersensiblitate la Mt, produs fie prin fistulizarea bronhiei, fie prin compresie extrinsecă ganglio-bronșică. Rezultă infiltrate tuberculoase fără cazeificare în conexiune cu elementele complexului Ranke. Diagnosticul este: clinic, imagistic, endoscopic.
Pleurezia serofibrinoasă
- este o reacție de hipersensibilitate interpretată ca o complicație a complexului primar subpleural, cu evoluție benignă și resorbție rapidă chiar și fără tratament.
Compresia gangliobronșică
- datorată comprimării lumenului bronșic prin fenomene de stenoză se manifestată cu tuse iritativă, tiraj, cornaj, dispnee, wheezing. Evoluția poate fi fie spre emfizem obstructiv, fie spre atelectazie. Diagnosticul este: clinic, imagistic, endoscopic.
Fistula ganglio-bronșică
- este reprezentată de complicația pornită de la ganglionul cazeificat și fistulizat spre bronhie, cu evacuarea cazeumului. Diagnosticul de elecție este endoscopia bronșică. Fistulizarea poate produce
emfizem de subocluzie .
Fistule: ganglio-esofagiene, ganglio-pericardice, ganglio-pleurale, ganglio-arteriale și ganglio-venoase
sunt produse prin însămânțare bronhogenă din ganglionul fistulizat.
Caverna primară,
deși extrem de rară, este o complicație care apare în zona infiltratului parenchimatos.
Deși majoritatea primoinfecțiilor cu complicații benigne au o evoluție favorabilă cu restabilire deplină, complicațiile tardive rezultate în urma instalării sechelelor pot induce apariția bronșiectaziilor, comprimării / stenozării unei bronhii lobare / segmentare, sindromului de lob mediu.
3.5
Primoinfecția cu complicații grave
La vârste mici, primoinfecția masivă cu Mt poate fi urmată de diseminare pe cale hematogenă sau bronhogenă, determinând forme severe de tuberculoză.
a)
Tuberculoza cazeos-extensivă,
produsă prin diseminarea bronhogenă de la nivelul complexului primar, determină apariția unui tablou clinic grav cu stare generală manifestată prin: febră, astenie, inapetență, pierdere ponderală, asociind sindrom funcțional (tuse productivă cu secreții mucopurulente orofaringiene) și fizic respirator (sindrom de condensare cu raluri crepitante/ subcrepitante). Imagistic, opacitățile parenchimatoase au aspect pneumonic sau bronhopneumonic (aspect de miez de pâine).
b)
Tuberculoza miliară
și
meningita tuberculoasă , apanajul sugarului și copilului mic, sunt produse prin diseminarea hematogenă de la nivelul elementelor complexului primar reprezentând principala cauză de mortalitate prin tuberculoză la aceste vârste.
Tuberculoza miliară
Este o boală sistemică produsă prin diseminarea limfhematogenă de la elementele complexului primar în diferite organe: plamân, ficat, splină. Există două forme clinice:
•
Diseminare limfhematogenă ocultă
asimptomatică de obicei, cu dezvoltarea leziunilor metastatice după luni/ani de la momentul infecției
•
Tuberculoza miliară
cu un tablou clinic care variază în funcție de vârstă, importanța contactului cu sursa și factorii de risc (malnutriția protein-calorică, varicelă, rujeolă, infecție
HIV,
corticoterapie
de
durată/terapia
imunosupresoare,
standard
socio- economic scăzut) este cel mai frecvent întâlnită în primii 3 ani de viață.
Diagnosticul este
suspectat
în următoarele condiții:
•
copil cu sindrom febril prelungit, tuse persistentă nonresponsivă la tratament, sindrom fizic și funcțional respirator sugestiv unui proces acut pneumonic/bronhopneumonic, staționare/scădere ponderală
•
uneori debutul este insidios cu subfebrilități, tuse persistentă, asociind ulterior febră, fenomene de detresă respiratorie (cianoză perioronazală, dispnee expiratorie cu balans toraco-abdominal), hepatosplenomegalie, ileus dinamic, meningism, sepsis
•
context epidemiologic sugestiv
•
TCT - negativ inițial (37 - 74% ), dar cu pozitivare pe parcursul terapiei
•
examen imagistic - microopacități nodulare, omogene, bine conturate, de aceeași dimensiune, diseminate bilateral (radiografie toracică/CT toracic)
•
examen bacteriologic (mai fidel la copil pe medii lichide) care poate pune în evidență prezența Mt din lavaj/aspirat gastric, aspirat bronșic, LCR
•
examenul fundului de ochi care poate pune în evidența prezența tuberculilor coroidieni
•
biopsia hepatică/ganglionară.
Diagnosticul de
certitudine :
•
identificarea în cultură a Mt din lavaj/aspirat gastric; lavaj bronho-alveolar; spută indusă/spontană
•
culturi pozitive din fragmente bioptice.
Factori de risc
ai tuberculozei miliare:
•
vârsta (nou-născut, sugar mic)
•
absența vaccinării
•
malnutriția protein-calorică
•
bolile infecto-contagioase ale copilăriei
•
infecția HIV/SIDA/corticoterapia de durată/terapia imunosupresoare
•
standard socio-economic scăzut.
Diagnosticul
tuberculozei
miliare
este
laborios
necesitând
coroborarea
datelor: epidemiologice, clinice, imagistice, bateriologice / histologice și imunologice.
TCT la tuberculină negativ nu exclude diagnosticul de tuberculoză miliară.
3.6
Meningita tuberculoasă (meningoencefalita tuberculoasă)
Este produsă prin diseminarea limfhematogenă a elementelor complexului primar la nivelul meningelui, straturilor cerebrale superficiale și a plexurilor coroide.
Indicele meningitic corelat cu prevalența surselor de infecție bacilară este un important indicator al evoluției endemiei tuberculoase.
Simptomatologia sugarului și copilului mic este nespecifică/necaracteristică. Diagnosticul se pune prin
coroborarea următoarelor elemente :
•
context epidemiologic sugestiv
•
examen clinic: febră, cefalee, vărsături, hiperestezie cutanată, fotofobie, redoarea cefei, Kernig și Brudzinsky pozitiv. Uneori asociază paralizii de nervi cranieni și/sau manifestări encefalitice
•
examenul LCR (Pandy pozitiv, celularitate 200-500/mm 3 , predominanță limfocitară, glicorahie scăzută, albuminorahie crescută, clorurorahie scăzută)
•
examenul bacteriologic poate pune în evidență prezența Mt
•
TCT de obicei negativ, dar cu pozitivare la 3-4 săptămâni de la inițierea terapiei specifice
•
examen imagistic (radiografie pulomnară, CT/RMN cranian)
•
examenul fundului de ochi (prezența tuberculilor coroidieni, hipertensiune intracraniană).
Prognosticul se apreciază în funcție de:
•
vârstă
•
starea generală la internare
•
precocitatea diagnosticului (inițierea terapiei specifice)
•
starea de nutriție
•
alte localizări/comorbidități.
Formele diseminate, cazeificante precum și orice formă de tuberculoză care evoluează sub tratament cu sindrom febril se însoțesc mai frecvent de meningită.
Diagnosticul diferențial al meningitelor cu lichid clar este prezentat în Anexa 6.
3.7
Tuberculoza extrapulmonară
Diagnosticul tuberculozei extrapulmonare este dificil, necesitând de cele mai multe ori excluderea altor etiologii. Include toate formele în care leziunile specifice tuberculoase se dezvoltă (și) în afara plămânului. Necesită colaborarea între medicul de organ și pneumolog. Manifestările clinice care sugerează tuberculoza extrapulmonară:
•
adenopatie laterocervicală/periferică cu evoluție spre fistulizare
•
tumefiere articulară fără prezența semnelor celsiene
•
meningită/meningoencefalită nonresponsivă la antibioticoterapie
•
revărsat pleural cu lichid clar
•
revărsat pericardic, ascită
•
eritem nodos, keratoconjunctivită flictenulară.
a)
Limfadenopatia tuberculoasă periferică
afectează cel mai frecvent ganglionii cervicali. Deși inițial ganglionul/lanțul ganglionar afectat nu asociază semne celsiene, în timp, prin creșterea în volum și inflamație, ganglionul poate fistuliza. Supurația poate deveni persistentă, neinfluențată de antibioterapia nespecifică. TCT este de obicei pozitiv, iar contextul epidemiologic prezent (contact cu caz index de tuberculoză).
Examenul bacteriologic din aspiratul ganglionar/examenul histopatologic al țesutului ganglionar precizează diagnosticul.
Examenul diferențial se face cu:
•
adenite infecțioase de altă etiologie (stafilococică, streptococică, mycobacterioze atipice, boala ghearelor de pisică, infecția HIV)
•
limfoame
•
sarcoidoză.
b)
Pleurezia tuberculoasă
Rar întâlnită sub vârsta de 5 ani, pleurezia reprezintă, ca frecvență, a doua formă de tuberculoză extrapulmonară a copilului după adenopatia traheo-bronșică, survenind frecvent la 6-12 săptămâni după infecția primară.
Pleurezia exudativă
apare precoce în evoluția infecției tuberculoase, fiind de obicei asimptomatică, diagnosticul punându-se pe criterii imagistice și de laborator (prezența exudatului și creșterea ADA pleurală).
Criterii de diagnostic:
•
clince: febră, tuse spastică / iritativă, jungi toracic, sindrom fizic pulmonar cu matitate/submatitate și abolire / iminuare a murmurului vezicular. Revărsatul pleural este de obicei unilateral ocupând marea cavitate pulmonară.
•
radiologic (opacifiere omogenă / îngroșarea pleurei / infiltrare parenchimatoasă / atelectazie)
•
pozitivarea TCT (peste 75%)
•
prezența exudatului (lichid serocitrin, predominanță limfocitară, glicopleurie scăzută, valori crescute ale ADA - peste 40 U/l, creșterea interferonului gamma în lichidul pleural cu sensibilitate 89-90%)
•
examen bacteriologic pentru BK (rezultate pozitive < 25%).
Empiemul tuberculos
apărut tardiv în evoluția infecției specifice se întâlnește rar și la vârste mai mari.
Diagnosticul diferențial al pleureziei exudative este prezentat în Anexa 7.
c)
Tuberculoza osteoarticulară:
1.
Tuberculoza coloanei vertebrale
(morbul Pott) este cea mai frecventă formă de tuberculoză osteo-articulară a copilului mare. Debutând la nivelul unui disc intervertebral poate difuza spre corpii vertebrali adiacenți (abcesul rece paravertebral) sau spre regiunea mediastinală/retroperitoneală.
Examenul imagistic (radiografie/CT/RMN) are un rol esențial în diagnostic, necesitând excluderea spondilitelor de altă etiologie, a bolilor degenerative ale coloanei vertebrale, metastazelor.
2.
Tuberculoza articulară
afectează de obicei o singură articulație mare (șold, genunchi, cot) dezvoltându-se cel mai des în primii 3 ani de la momentul infecției primare. Debutul se manifestă prin limitarea mobilității articulației (în absența semnelor celsiene), dar evoluează spre impotența funcțională a articulației cu leziuni osoase extinse, fistulizare și compromiterea definitivă a articulației.
Examenul imagistic (radiografie/CT/RMN) pune în evidență prezența leziunilor epifizare, afectarea regiunii subcondrale cu invazia cartilajului de creștere, sinovialei, îngustarea spațiilor articulare, impunând diagnosticul diferențial cu artritele infecțioase de altă etiologie, septicemii sau boli articulare degenerative.
3.
Tuberculoza oaselor mici
- spina-ventoza este un pseudochist osos cu metaplazie periostală. Poate evolua spre fistulizare cu elemente de sechestru.
d)
Tuberculomul cerebral
întâlnit extrem de rar, reflectă un răspuns imunologic activ.
Se prezintă sub forma uneia sau mai multor leziuni înlocuitoare de spațiu care determină crize convulsive generale/focale.
CT cranian pune în evidență prezența leziunilor inelare ce fixează substanța de contrast. RMN cranian relevă prezența modificărilor meningeene bazilare, de infarctizare, edem cerebral cu hipertensiune intracraniană care induce apariția hidrocefaliei. Biopsia este elementul care certifică diagnosticul.
e)
Tuberculoza abdominală:
-
Tuberculoza peritoneală
Recunoaște ca punct de plecare limfadenita tuberculoasă retroperitoneală sau mezenterică. Diagnosticul se confirmă de obicei prin examenul bacteriologic al lichidului de ascită/examen histopatologic peritoneal sau laparoscopic.
-
Tuberculoza intestinală
este o formă rară la copil afectând în principal zona ileocecală. Mecanismele patogene incriminate sunt diseminarea hematogenă/însămânțarea directă din sputa înghițită. Diagnosticul pozitiv se pune pe urmatoarele criterii:
•
Clinice: febră, transpirații, adinamie, meteorism, diaree cronică, dureri abdominale nesistematizate
•
examen imagistic: radiologic/CT
•
endoscopie intestinală
•
examen bacteriologic: lichid intraperitoneal/puroi din pustule
•
examen histo-patologic: biopsie ganglionară/mucoasă intestinală/peritoneală.
f)
Tuberculoza cutanată,
formă foarte rară la copil (frecvent la cel sub 5 ani) apare prin inoculare directă / soluție de contiguitate / diseminare limfhematogenă. Debutează sub forma unei papule/pustule care prin erodarea tegumentului
obrazului
se transformă într-o ulcerație neregulată. La 3-4 săptămâni asociază adenopatie satelită care poate evolua cu abcedare. Interesează de obicei fața dar și membrele inferioare și superioare.
TCT de obicei negativ se poate pozitiva la 6-8 săptămâni. Diagnosticul diferențial se face cu boala ghearelor de pisică, sporotricoză, tularemie, șancru sifilitic.
Tuberculoza
periorificială
se produce prin propagarea soluției de contiguitate de la nivelul joncțiunii cutaneo-mucoase adiacentă organelor infectate, cel mai frecvent cavitate bucală, orofaringe,
palatul
moale/tare,
laringe.
Ulcerația
este
dureroasă
cu
prezența
unei pseudomembrane fibroase bazale și asocierea tumefierii ganglionilor sateliți.
Tuberculoza cutanată miliară, goma tuberculoasă, tuberculoza verucoasă, tuberculidele și lupusul tuberculos
sunt forme extrem de rare la copil.
g)
Tuberculoza uro-genitală
apare ca urmare a diseminării limfohematogene sau prin diseminarea unui proces tuberculos de la structurile de vecinătate (coloană vertebrală, abces paravertebral) spre aparatul uro-genital.
Diagnosticul se pune pe următoarele criterii:
•
clinic - sindrom de impregnare bacliară
-
manifestări renale (hematurie, polakiurie, disurie, dureri lombare)
-
afectare genitală (metroanexită/epididimită)
•
paraclinic - uroculturi negative pentru flora nespecifică (dar pozitive pentru BK)
-
examen sumar de urină
•
TCT - de obicei pozitiv
•
Investigații imagisitice: radiografie pulmonară, radiogarafie reno-vezicală, urografie, ultrasonografie, cistoscopie, CT renal, RMN.
Diagnosticul diferențial se face cu: pielonefrita, cistita interstițială, epididimita (post urliană/ altă etiologie), papilita necrozantă.
h)
Tuberculoza otică
apare fie prin diseminare pe cale limfhematogenă, fie prin propagare limfatică prin intermediul trompei lui Eustachio. Este o otită cronică supurată cu multiple perforații ale membranei timpanice, țesut de granulație extins, hipoacuzie. Nediagnosticată la timp, se poate complica cu osteită (distrugerea labirintului osos și afectarea nervului facial) sau otomastoidită.
Diagnosticul diferențial se face cu: histoplasmocitoza, histiocitoza X, sifilis, limfom, nocardioză.
IV
Tuberculoza și infecția HIV/SIDA la copil Introducere
Infecția HIV, prin deprimarea mecanismelor imune de apărare, reprezintă cel mai important factor de risc pentru dezvoltarea tuberculozei la un copil infectat cu Mt. Pe de altă parte, tuberculoza accelerează și influențează nefavorabil infecția HIV.
4.1
Diagnostic
Diagnosticul de tuberculoză la un copil infectat HIV este dificil deoarece:
•
există semne și simptome comune ale celor două boli: sindrom febril, scădere ponderală, tuse persistentă
•
confirmarea bacteriologică este scăzută deoarece leziunile tuberculoase se dezvoltă foarte rapid înainte ca Mycobacteriile tuberculoase să poată fi eliminate și, prin urmare, evidențiate la examenul bacteriologic
•
TCT este mai puțin sensibil decât la copiii seronegativi. Diametrul indurației 2 5 mm este semnificativ. Testul Quantiferon este de evitat datorită rezultatelor nedeterminate
•
majoritatea copiilor HIV seropozitivi prezintă în evoluție manifestări clinico-radiologice pulmonare ale unor boli cu evoluție cronică de altă etiologie decât tuberculoza
•
tuberculoza la copilul infectat HIV are evoluție particulară prin asocierea frecventă cu alte coinfecții care pot masca răspunsul terapeutic
•
scaderea importantă a limfocitelor CD4 favorizează formele diseminate de tuberculoză. Cu cât gradul imunosupresiei este mai mare cu atât modificările radiologice pulmonare sugerează mai puțin tuberculoza.
4.2
Prevenția tuberculozei copilului infectat HIV
În România, conform protocolului de colaborare dintre PNPSCT și Programul Național HIV/SIDA, toți copiii cu tuberculoză pulmonară/extrapulmonară sunt testați HIV (după consilierea și avizul favorabil al aparținătorilor). Totodată, indiferent de vârstă, toți copiii cu infecție HIV/SIDA sunt investigați pentru depistarea precoce a tuberculozei (detalii la capitolul Prevenție).
Toți contacții unui caz index de TB ce asociază coinfecție HIV vor fi consiliați și testați HIV.
•
Copiii infectați HIV nu se vaccinează BCG (detalii la capitolul Vaccinare BCG)
•
Tratamentul ITBL cu H - 10 mg/kg corp, maxim 300 mg/zi timp de 6 luni se adresează:
-
tuturor copiilor infectați HIV contacți cu un caz index de tuberculoză, chiar dacă sunt asimptomatici
-
tuturor copiilor infectați HIV cu TCT 2 5 mm
Copiii cu infecție HIV efectuează TCT anual. Conform Ghidului Metodologic 2015, tratamentul ITBL se poate prelungi până la 9-12 luni.
4.3
Tratamentul copilului cu infecție HIV/SIDA
Tratamentul antituberculos al copilului infectat HIV, indiferent de forma de tuberculoză, va fi zilnic pe întreaga perioadă prescrisă, sub DOT (vezi detalii la capitolul Tratamentul formelor speciale de tuberculoză)
Tratamentul
ARV
va
fi
instituit
în
primele
8
săptămâni
de
la
inițierea
terapiei antituberculoase.
Vârsta
Inițiere tratament ARV
Sugari
Tratament indiferent de nivelul CD4
Copil 1-5 ani
Prioritari copii sub 2 ani aflați în stadiul OMS 3 sau 4 sau cu CD4 :S 750 celule/mm 3
Copil peste 5 ani
Copii în stadiul OMS 3 sau 4 sau cu CD4 :S 500 celule/mm3 (prioritari, copii cu CD4 :S 350 celule/mm 3 )
Alegerea medicației ARV aparține medicului infecționist (detalii în Ghidul coinfecției HIV/TB).
IRIS-TB și IRIS-BCG la copiii infectați HIV nu sunt asociate cu creșterea riscului mortalității.
A
l
g oritm
a
l
sc
r
ee fl i rigiu l u i i
tuber
rn
l
oze i
ș
i
tr a t a m e ntu l
u
i
I
T
B l l a
co p i
l
u
l
i nf ecta t
H
I
V
In
v
es
t
iga
t
p
e
ntru
TB
avâ nd
or i
ca
r e
d
i
n
t re
urm
ă
t oare l e .si m
pt
om e:
-
scăde r e
ponde ra i l ă
-
s
i n dro m f eb
r i l
-t us,e
- co n t
act
rn
un
caz
.
i n de
x
d e
TB
Cop
i
l
p es
t
e 1
a n H I V
p o zit
i
v
Cu
si m pto m e
sugest
i
v e
N egat
i
v
< 5mm
Fă ră s
im
pt
om
e
sug es tive
TCT
I
E v
a
l
u a r e
rn
a
c
t
i
v
H 3
l
uni
A!lt
dg
,
T
B
î r
at
T B
U r
mă
ri
r
,
e
*
t ra t a m e nt
I
TBL
Ge ri
eX
p
e rt
R a d i
ogra
fi
e
S
to
p
H*
S
urs
a
n ega t i v ă
l
luni
7
t
H9
t:l
T r
at
T B
Ex
,
b
a
d
H 6
l uri i
7
"'Eva
l
uar e
di
n
i
i
că
,
i
m ag i
st
i
că
,
î C
î
l
a
6
l uni
dacă
sur
sa
r ă m â n e
p oz it
i
vă
Preluat din Adriana Socaci - "Infecția tuberculoasă latentă"
V
Tratamentul tuberculozei la copil
5.1
Tratamentul tuberculozei sensibile
5.1.1
Obiectivele tratamentului tuberculozei copilului
sunt aceleași ca și ale tratamentului tuberculozei adultului:
•
vindecarea
•
reducerea riscului de recidive
•
prevenirea complicațiilor
•
prevenirea deceselor
•
prevenirea apariției TB rezistente
•
reducerea transmiterii bolii la contacți.
Principiile tratamentului:
•
terapia standardizată
•
terapia etapizată: fază de atac (intensivă) și faza de continuare
•
asocierea a cel puțin 3 medicamente antituberculoase
•
regularitatea și continuitatea administrării
•
individualizarea terapiei acolo unde se impune.
Particularitățile tratamentului
tuberculozei la copil:
•
formele cele mai frecvente de boală sunt cele paucibacilare, cu leziuni cazeoase închise.
•
copilul tolerează bine medicamentele antituberculoase și dezvoltă mult mai rar reacții adverse decât adultul. Rata succesului terapeutic este mai mare decât a adultului.
•
la sugar și copilul mic, dozarea medicamentului este dificil de adaptat greutății (formule pediatrice puține, iar combinațiile fixe sunt mai greu adaptabile). Pe parcursul tratamentului dozele trebuie permanent ajustate greutății copilului, mai ales în primul an de viață.
•
copilul dezvoltă tuberculoză extrapulmonară mai frecvent decât adultul.
•
îmbolnăvirile copilului cu Mt rezistente se produc de obicei cu tulpinile dobândite de la adult.
Regimurile
terapeutice
respectă
regimurile
adultului
cu
specificația
că
pentru tuberculoza
extrapulmonară
-
adenopatii
traheobronșice
necomplicate/adenopatii ganglionare periferice - se utilizează regimul III (HRZ).
5. 1.2. Medicamente antituberculoase de prima linie
Medicamentele anti-tuberculoase esențiale utilizate în terapia copilului sunt aceleași cu ale adultului.
Medicamente anti-tuberculoase de prima linie, mod de acțiune, doze zilnice recomandate la copil
Medicamentul
Mod de acțiune
Doza mg/kg
Doza maximă (mg)
Izoniazida (H)
bactericid
10 (7-15)
300
Rifampicina (R)
bactericid
15 (10-20)
600
Pirazinamida (Z)
bactericid
35 (30-40)
2000
Etambutol (E)
bacteriostatic
20 (15-25)
1600
Streptomicina (S)
bactericid
15 (12-18)
1 g
Medicamentele anti-tuberculoase de prima linie, formele de prezentare, calea de administrare, influența medicamentelor antituberculoase asupra concentrației serice a altor medicamente sunt prezentate în Anexa 8.
Pe parcursul tratamentului dozele trebuie
permanent ajustate
în funcție de creșterea în greutate a copilului. Studiile de farmacocinetică efectuate susțin și recomandă dozajul revizuit ca având profil de siguranță excelent și fără creșterea riscului de toxicitate.
Copilul cu infecție HIV primește aceleași medicamente antituberculoase conform categoriei de încadrare cu mențiunea administrării lor zilnice și în faza de continuare.
5.1.3. Regimuri terapeutice recomandate:
Regimurile terapeutice recomandate sunt aceleași cu ale adultului (asociere și ritm)
Este obligatorie administrarea sub directă observație în spital/dispensar antituberculos precum și identificarea / instruirea persoanei care supraveghează administrarea medicația copilului (medic de familie /asistent social/ aparținător) după externare, dacă domiciliul se află la distanță mare de dispensarul TB.
Regimuri de tratament în funcție de forma de boală
Diagnostic
Regimuri terapeutice anti-TB
Faza intensivă
Faza de continuare
Copil cu TB HIV-negativ din zonele cu prevalență scăzută HIV sau cu prevalență scăzută a rezistenței la Izoniazidă
Limfadenopatie intratoracică/TB ganglionară periferică
2HRZ 7/7
4HR 3/7
TBP cu BAAR negativ
TBP BAAR pozitiv
2HRZE 7/7
TBP cu leziuni extinse
TBEP forme severe (altele decât TB meningeală/osteoarticulară)
Copil cu TB HIV-negativ din zonele cu prevalență crescută HIV sau cu prevalență crescută a rezistenței la Izoniazidă
TBP cu BAAR negativ
2HRZE 7/7
4HR 3/7
TB ganglionară periferică/limfadenopatie intratoracică
TBP cu leziuni extinse
TBP BAAR pozitiv
TBEP forme severe (altele decât TB meningeală/osteoarticulară)
Copil cu tuberculoză HIV-negativ locuind în zone indiferent de prevalența HIV și rezistența la Izoniazidă
Meningită, Tuberculoză osteoarticulară
2HRZE 7/7
10HR 3/7
Retratament
2HRZES 7/7
1HRZE 7/7
5HRE 3/7
Tuberculoză rezistentă MDR/XDR
Regim individualizat
Recomandări:
•
Streptomicina nu este recomandată de OMS în tratamentul tuberculozei pulmonare sau ganglionare periferice
•
În formele severe de tuberculoză pulmonară/extrapulmonară Ghidul metodologic 2015 recomandă utilizarea regimului 2HRZES 7/7
urmat de 9-12HR 3/7
•
Etambutolul nu este recomandat la vârstele mici (sub 5 ani - conform prospectului medical) datorită posibilității instalării discromatopsiei. Decizia administrării aparține pneumologului, doza recomandată fiind de 15 mg/kg corp/zi cu examen oftalmologic înaintea instituirii terapiei și la încheierea fazei intensive.
Medicamentele anti-tuberculoase esențiale - doze la administrare intermitentă - 3/7 sunt prezentate în Anexa 8.
Dintre formulele pediatrice, OMS recomandă (ianuarie 2016) următoarea combinație: H 50 , R 75 , Z 150
pentru faza intensivă și H 50 , R 75
pentru faza de continuare (confom tabelului din Anexa 8). Aceste combinații sunt dispersabile, putându-se dizolva în 50 ml apă, cu administrare în maxim 10 minute de la dizolvare pe stomacul gol. Gustul este de portocală. Dezavantajul constă în faptul că sunt mai dificil de adaptat greutății reale a copilului. De aceea, în ceea ce privește formula de administrare în faza continuă, uneori trebuie completată doza de pirazinamidă pentru ajustarea dozajului calculat/ kg.corp, iar pentru formula din faza de continuare uneori trebuie completată doza de izoniazidă (Anexa 8).
5.1.4
Tratamentul adjuvant în tuberculoza copilului Corticosteroizii
Indicații:
meningita tuberculoasă - reduc mortalitatea și influențează favorabil evoluția pe termen lung a complicațiilor neurologice
miliara severă/ formele diseminate de tuberculoză
pericardita, pleurezia
adenopatia bronșică complicată.
Doze: 1-2 mg/kg/zi, nu se vor depăși 60 mg/zi, timp de 4-6 săptămâni, cu sevraj al dozelor (1-0,5 mg/kg timp de 2-3 săptămâni).
Tratamentul corticosteroid nu este indicat copilului HIV pozitiv deoarece favorizează infecțiile oportuniste.
Piridoxina
Indicații: pentru profilaxia nevritei periferice mai ales la copiii malnutriți, copiii HIV pozitivi. Piridoxina se administrează în doze de 5-10 mg/kg/zi.
Alimentația
Se recomandă alimentație hipercalorică, adecvată vârstei.
Se insistă pentru alimentația naturală a sugarilor și, eventual, pentru suportul nutrițional acordat mamelor care alăptează.
Kinetoterapia
Este indicată în pleurezia tuberculoasă și tuberculoza osteoarticulară (prevenirea viciilor de postură).
5.1.5
Tratamentul unor forme de tuberculoză extrapulmonară la copil Meningita tuberculoasă
•
Etambutolul și Streptomicina au penetrabilitatea bună în cazul meningelui inflamat. Ghidul Metodologic 2015 recomandă utilizarea schemei: 2HRZS 7/7
și 9-12HR 3/7 .
•
Se utilizează doze mari mai ales în faza intensivă pentru asigurarea concentrațiilor eficiente în LCR: H- 15 mg/kg/zi, R- 20 mg/kg/zi, Z- 40 mg/kg/zi, E- 25 mg/kg/zi, S- 25 mg/kg/zi (fără a se depăși doza maximă).
•
Ca medicație adjuvantă se recomandă de rutină corticoterapia: Prednison- 2mg/kg/zi, max. 60 mg/zi. Tratamentul durează 3-4 săptămâni, cu sevrajul treptat al dozelor în 2-3 săptămâni. Tratamentul include și măsuri complexe de îngrijire pe durată lungă, cu asocierea medicației pentru reducerea hipertensiunii intracraniene, prevenția/stoparea convulsiilor, tratament roborant, hidratare și nutriție adecvată.
•
Monitorizarea
tratamentului
impune
consult
interdisciplinar
cu
departamentele specializate de pediatrie și neurologie pediatrică.
Tuberculoza generalizată, inclusiv miliară
•
Copilul cu tuberculoză prin diseminare hematogenă urmează un regim terapeutic similar cu cel din tuberculoza meningelui. Durata de tratament este de 12 luni.
•
Corticoterapia se efectuează în aceeași schemă.
Pericardita TB
•
Regimul terapeutic este cel menționat în tabel (forme severe) cu mențiunea asocierii corticoterapiei.
•
În caz de tamponadă se recomandă drenajul cavității pericardice.
•
Se efectuează controlul și monitorizarea EKG, ecografică doppler.
TB osteoarticulară
•
Durata totală 12 luni
•
Se asociază tratament ortopedic, consilierea personalului medical/ familiei/ pentru supravegherea, creșterea aderenței la tratament și managementul sechelelor motorii / neurologice.
Tuberculoza ganglionară periferică
•
Ca urmare a penetrației dificile a medicației antituberculoase la nivelul maselor ganglionare (cazeoase), tratamentul se poate prelungi 9-12 luni cu administrare zilnică și în faza de continuare (acolo unde examenul clinic/bacteriologic impune).
Fișa de tratament este prezentată în Anexa 11.
5.1.6
Tratamentul anti-tuberculos în situații speciale
Tratamentul în tuberculoza
congenitală
se instituie rapid, cu aceeași schemă ca și în meningita tuberculoasă. Investigațiile bacteriologice și imagistice se fac în paralel mamei și nou născutului. Dozele se vor ajusta în funcție de modificarea greutății coroporale.
Separarea nou născutului de mamă nu este obligatorie, alăptarea este permisă (cu mască, pentru cazurile pozitive), deoarece riscul de transmitere a tuberculozei la copil prin laptele matern este neglijabil și toate medicamentele anti-tuberculoase sunt compatibile cu alăptarea. Medicamentele anti-tuberculoase regăsite în laptele matern sunt în cantitate prea mică pentru a induce chimiorezistența.
Excepția o constituie mama diagnosticată cu tuberculoză MDR, pentru care alăptarea nu este permisă.
Adolescentul cu TB
Regimurile de tratament sunt aceleași ca și ale adultului.Toleranța la medicamentele antituberculoase, dozele necesare, riscul apariției MDR-TB sunt similare cu cele ale adultului. Complianța la terapia TB este mai scăzută la vârsta adolescenței necesitând preocupare continuă pentru înțelegerea informațiilor medicale legate de boală, tratament, monitorizare, suport moral și psihologic.
Tuberculoza la copilul cu infecție HIV
Tratamentul antituberculos al pacientului HIV se stabilește de către medicul pneumolog și se instituie în colaborare cu medicul specialist infecționist. Regimul terapeutic antituberculos este cel standard, zilnic, cu durata de până la 12 luni, în funcție de forma clinică, de rezultatul examenului bacteriologic și complianța la tratament.
Sub tratament, copilul este monitorizat clinic în primele două săptămâni, apoi lunar: simptome, curba ponderală (cu ajustarea dozei), reacțiile adverse, complianța la tratament. În general, copiii cu tuberculoză sensibilă și infecție HIV răspund bine la tratament.
Factorii de risc care influențează răspunsul la tratament sunt:
•
malnutriția severă
•
încărcătura virală înaltă
•
infecțiile severe asociate
•
tuberculoza rezistentă
•
lipsa complianței la terapie.
Dacă medicația antiretrovirală aleasă de medicul infecționist interferează cu Rifampicina, se va amâna pe cât posibil inițierea terapiei ARV. Dacă acest lucru nu este posibil se vor utiliza inhibitori de protează, inhibitori ai reverstranscriptazei non-nucleozidice, iar Rifampicina va fi înlocuită cu Rifabutină 10-20 mg/kg corp/zi.
Aderența copilului cu TB-HIV la medicația antituberculoasă este deosebit de importantă. Numărul mare de medicamente, numărul redus al formulelor pediatrice, efectele adverse posibile recomandă administrare și supraveghere medicală atentă.
Reacția de deteriorare clinică temporară - IRIS poate să apară în primele 3 luni, cel mai frecvent în prima lună de la inițierea terapiei ARV. Astfel forma de tuberculoză care apare poate fi mascată, iar evoluția cazului va fi influențată de înârzierea instituirii tratamentului antituberculos.
Tuberculoza și sarcina
Tinerele gravide diagnosticate cu tuberculoză pot urma regimul terapeutic de linia I exceptând Streptomicina (teratogenă pentru făt). Se va asocia obligatoriu Piridoxina. În general, instituirea tratamentului antituberculos nu reprezintă indicație pentru avortul terapeutic, dar fiecare caz trebuie analizat minuțios.
Tuberculoza și contracepția
Este bine cunoscut faptul că Rifampicina interacționează cu medicația contraceptivă orală, scăzând
nivelul
protecției.
Din
acest
motiv,
tinerele
cu
tuberculoză
care
asociază tratamentului antituberculos și contraceptive orale trebuie să adauge acestora și alte metode contraceptive pentru creșterea siguranței.
5.1.7
Managementul reacțiilor adverse la medicația anti-tuberculoasă de linia I
La copil, reacțiile adverse ale terapiei antituberculoase apar mai rar decât la adult, toleranța fiind mult mai bună. Reacțiile adverse la medicația antituberculoasă de linia I sunt prezentate în Anexa 9.
5.1.8
Monitorizarea tratamentului anti-TB
Monitorizarea tratamentului tuberculozei copilului respectă același protocol ca și în cazul tuberculozei adultului.
•
controlul
clinic : simptome, eventuale reacții adverse, controlul curbei ponderale, obligatoriu în primele două săptămâni de la inițierea tratamentului, apoi în funcție de categoria de încadrare a cazului.
•
examenul
bacteriologic
al sputei va fi monitorizat în funcție de categoria de încadrare a cazului (CN-T2, T5, T6, iar pentru R- T3, T5,T8).
•
controlul
radiologic
nu se recomandă de rutină drept criteriu de monitorizare, cunoscută fiind involuția lentă radiologică a tuberculozei și persistența de durată a leziunilor (mai ales în formele complicate și cu leziuni parenchimatoase extinse). Radiografiile de control se pot efectua la 2-3 luni de la inițierea medicației și la finalul terapiei.
Monitorizarea este efectuată de către medicul pneumolog din dispensarul antituberculos. Datele controlului sunt consemnate în fișa copilului, iar controalele bacteriologice și în baza de date electronică.
Majoritatea copiilor prezintă evoluție bună sub tratament, răspunsul favorabil la tratament fiind condiționat de: aderență/infecția HIV/tuberculoza rezistentă (MDR).
5.1.9
Evaluarea rezultatului tratamentului
Evaluarea cazurilor de tuberculoză se efectuează cu încadrarea în aceleași categorii ca ale adultului: Vindecat, Tratament complet, Eșec, Abandon, Pierdut, Decedat, Continuă tratamentul (Ghid metodologic 2015). Cea mai frecventă situație a copiilor cu TB o reprezintă
tratamentul complet .
Fișa de evaluare a tratamentului este prezentată în anexa 12
5.1.10
Spitalizarea
Copilul bolnav cu tuberculoză necesită internare din următoarele motive:
•
recoltarea specimenelor pentru examenul bacteriologic
•
forme de tuberculoză cu bacteriologie pozitivă/forme severe
•
inițierea terapiei cu monitorizarea toleranței și a eventualelor reacții adverse
•
malnutriția sau alte comorbidități importante care impun asocierea unui tratament special
•
cazurile cu probleme sociale deosebite
Criterii de externare
•
Clinice:
-
ameliorarea simptomatologiei
-
creșterea în greutate (indică și răspunsul favorabil la terapie)
-
toleranță bună fără reacții adverse
•
Bacteriologice:
-
negativarea examenului microscopic BAAR
Se recomandă scurtarea perioadei de internare ținand cont insa de gradul de severitate, reacțiile adverse, evoluție și rezultatul examenului bacteriologic.
5.2.
Tratamentul tuberculozei rezistente (TB DR)
5.2.1
Medicamentele antituberculoase de linia a II-a și dozele acestora
Metodele moderne de testare genotipică și fenotipică sunt destinate atât diagnosticului rapid cât și ameliorării managementului tuberculozei MDR/XDR la adult și copil. La copil, tuberculoza rezistentă este mai frecventă acolo unde sursa cu rezistență/ MDR este în anturajul său intim.
Principiile terapeutice, regimurile și medicamentele administrate copiilor cu tuberculoză rezistentă sunt aceleași ca și ale adultului. Dozele utilizate vor fi maximale, ritmul de administrare va fi zilnic pe întreaga durată a tratamentului. În tabel sunt prezentate grupurile de medicamente recomandate cazurilor cu tuberculoză rezistentă.
Dozele de medicamente la copii
Medicamente de linia a II-a
Doze zilnice mg/kg corp
Doza zilnică maximă mg
Frecvența zilnică
Aminoglicozide GRUP 2 Inj
Streptomicina
20
1000
1
Kanamicina
15-30
1000
1
Amikacina
15-22
1000
1
Polipeptide ciclice
Capreomicina
15-30
1000
1
Fluoroquinolone - GRUP 3
Ofloxacina
15-20
800
2
Levofloxacina
7,5-10
750
1
Moxifloxacina
7,5-10
400
1
Gatifloxacina
Nu sunt date privind siguranța administrării sub 18 ani
Medicamente de linia
a II-a
Doze zilnice
mg/kg corp
Doza zilnică maximă
mg
Frecvența zilnică
GRUP 4
Etionamida/Protionamida
15-20
1000
2
Cicloserina/Terizidona
10-20
1000
1-2
PAS
150
12000
2-3
GRUP 5
Bedaquilina, Delamanid
Nu sunt date privind siguranța administrării sub 18 ani
Clofazimina
1
200
1
Linezolid
10
600
2
Imipenem/Cilastatin
Amoxicilină-Clavulanat
15 amoxicilină
4000/500
3
Meropenem
20-40/8 ore
6000
3
Claritromicină
7,5 - 15
1000
2
Thiocetazonă
3-4
150
1
Izoniazidă
15-20
400
1
Regimuri terapeutice
•
Tratamentul tuberculozei rezistente trebuie
adaptat
rezultatului antibiogramei acolo unde cultura este pozitivă.
•
Ori de câte ori ABG din cultură
nu este disponibilă
, tratamentul trebuie să țină seama de ABG cazului sursă.
•
Dacă ABG nu este disponibilă iar copilul aflat în tratament are frotiu pozitiv la T2 sau mai târziu, cu agravarea simptomelor și scădere ponderală continuă,
decizia schemei terapeutice trebuie să se bazeze pe sensibilitatea ABG a tulpinilor de TB MDR predominante în regiune.
•
Schema recomandată
combină cel puțin 4 medicamente de linia a II-a (la care probabilitatea sensibilității Mt este mare), din care unul injectabil, o fluorochinolonă, cu menținerea acelor medicamente de linia I (doze mari) la care tulpina a rămas sensibilă.
•
Dintre aminoglicozide :
-
Amikacina este preferată în comparație cu Kanamicina datorită unei concentrații minime inhibitorii mai reduse.
-
Capreomicina este de obicei rezervată pentru tratamentul TB XDR.
•
Dintre Fluorochinolone :
-
Levofloxacina și Moxifloxacina sunt superioare Ofloxacinei
-
Levofloxacina
-
se regăsește și sub formă de suspensie (25mg/ml)
-
se administrează de 2 ori/zi copilului sub 5 ani (rata de metabolizare crescută) și o dată /zi copilului peste 5 ani
-
Moxifloxacina
-
se poate prepara sub formă de suspensie - 20mg/ml.
•
Tionamidele și PAS
- nu se asociază, având în vedere riscul crescut de hipotiroidism
-
Etionamida - este greu tolerată din cauza reacțiilor adverse severe
•
Cicloserina
- capsula poate fi dizolvată în 10 ml de apă
-
foarte greu de tolerat din cauza reacțiilor adverse
•
Grupul 5
- nu este recomandat de rutină, eficacitatea nu este clar definită iar reacțiile adverse severe necesită consultarea unui expert TB-MDR.
Dozarea medicamentului constituie o problemă la copii deoarece sunt disponibile puține formule pediatrice și puține date despre farmacokinetica medicamentelor, iar capsulele trebuie dizolvate în apă pentru a fi administrate.
Din aceste motive, pot exista probleme de
subdozare/supradozare
și noncomplianță.
Divizarea tabletelor, administrarea dozelor divizate în mai multe prize zilnice sunt măsuri menite creșterii toleranței și complianței la medicație.
Spitalizarea copilului se face cel puțin în perioada administrării medicamentelor injectabile. Ca și la adult, tratamentul ambulatoriu este recomandat bolnavilor negativați și sub DOT, pe toată durata administrării medicamentelor.
Monorezistența, polichimiorezistența, tuberculoza MDR/XDR
recunosc aceleași scheme terapeutice cu același ritm de administrare și aceeași durată ca în tuberculoza adultului (Ghid Metodologic 2015).
În faza intensivă a tuberculozei MDR care durează 6-8 luni se vor utiliza 4-6 medicamente eficiente, din care unul injectabil. În faza de continuare se vor administra 4 medicamente la care există sensibilite păstrată. Durata va fi de 18 luni de la conversia în cultură. Durata totală a tratamentului este de 20-24 de luni.
În aprilie 2016 OMS a elaborat un nou ghid privind clasificarea și tratamentul tuberculozei MDR, ghid care prevede și utilizarea la copil a unui regim scurt de 12 luni. (Anexa 10-b)
De asemenea, există recomandarea pentru cazurile rezistente la R, de a utiliza H în doze mari și E sau fluorochinolonă.
Fișa de monitorizare a tratamentului este prezentată în Anexa 13.
Tipul chimiorezistenței
Regim terapeutic
Durata minimă a tratamentului (luni)
Comentarii
H (±S)
R, Z, E
6-9
În formele extinse de boală se poate asocia FQ
H, Z
R, E, FQ
9-12
La pacienții cu forme extinse de boală, durata trebuie prelungită
H, E
R, Z, FQ
9-12
La pacienții cu forme extinse de boală, durata trebuie prelungită
R (mono; MDR/XDR)
Z ±E + FQ + injectabil (8 luni) + medicamente orale de linia a II-a
20
Se tratează ca TB MDR/XDR
H, E, Z (±S)
R, FQ + medicament oral de linia a II-a + injectabil (cel puțin 2-3 luni)
18
La pacienții cu boală extinsă se poate prelungi administrarea injectabilului la 6 luni
WHO Guidelines for the programmatic management of drug-resistant tuberculosis 2008.
5.2.2
Managementul reacțiilor adverse
Monitorizarea
copilului cu tuberculoză rezistentă are în vedere: răspunsul la tratament, apariția și tratarea reacțiilor adverse, menținerea aderenței la terapie.
Urmărirea evoluției sub tratament se efectuează prin monitorizarea bacteriologică, clinică, radiologică, biologică.
Ca și la adult, anunțarea, declararea și înregistrarea copiilor cu tuberculoză rezistentă se face atât în registrul de TB cât și în aplicația electronică.
•
Monitorizarea unui pacient cu tratament de linia a II-a este esențială nu numai pentru răspunsul terapeutic, dar si pentru managementul reacțiilor adverse.
•
Creatinina serică, potasiul și auzul trebuie monitorizate lunar atunci când se administrează un medicament injectabil.
•
Testele funcției tiroidiene (TSH -hormon tireostimulant și T4-tiroxina) trebuie monitorizate în cazul administrării de acid paraaminosalicilic sau thionamide.
•
Testele funcției hepatice trebuie atent și repetat monitorizate la pacienții cu Z, H, R, THA, CFZ.
•
Suspiciunea unui sindrom mielosupresiv ar trebui evaluată pentru pacienții aflați sub Linezolid.
•
Examenul oftalmologic este obligatoriu pentru pacienții tratați cu Etambutol. Fișa de monitorizare este prezentată în Anexa 15.
5.3 Dispensarizarea
Dispensarizarea cazurilor de tuberculoză la copil este integrată în strategia PNPSCT și se efectuează la fel ca pentru cazurile de tuberculoză ale adultului.
5.4 Metodologia DOTS. Consilierea
Consilierea se inițiază în momentul stabilirii diagnosticului și are un rol determinant în succesul terapeutic.
Caracterul stigmatizant, tratamentul de durată, cu schemă de medicație încărcată și controale periodice obligatorii, riscul apariției tuberculozei MDR la copil, impun informarea repetată a familiei și copilului.
Consilierea se adresează de altfel tuturor persoanelor din anturajul copilului care dețin un rol important în tratamentul antituberculos. În cadrul consilierii pot fi incluși și copiii cu vârste peste 7 ani pentru a înțelege manifestările bolii, reacțiile adverse posibile, importanța administrării tratamentului în ritmul și pe durata indicată de medic. Copilul trebuie să devină partener activ al succesului terapeutic și trebuie să înțeleagă că boala nu este o stigmă iar reintegrarea școlară și socială va avea loc la momentul indicat de medicul pneumolog.
Persoanele responsabile pentru administrarea efectivă a dozei de medicație în cadrul DOT pot fi: cadrele medicale, părinții, rudele, educatorii, asistenții comunitari, mediatorii sanitari sau voluntarii desemnați.
Corectarea informațiilor neînțelese/greșite despre boală, reacții adverse, tratament, vindecare și riscul apariției tuberculozei rezistente se fac periodic adresându-se familiei, copilului, colectivității în care este inclus copilul (educatori/profesori/colegi).
Este bine cunoscut faptul că membrii familiei sunt cei mai susceptibili la a renunța la tratament când copilul se simte bine sau prezintă reacții adverse. Din acest punct de vedere, suportul psihologic al copilului și familiei este extrem de important.
Pe lângă aceste informații, familia sau copilul mare sunt consiliați pre- și post- testare HIV.
VI
Managementul cazurilor de tuberculoză
Conform definiției,
cazul de tuberculoză
este:
bolnavul cu tuberculoză confirmat bacteriologic / histopatologic
bolnavul fără confirmare, dar pentru care medicul pneumolog a decis inițierea tratamentului antituberculos (în urma discuției în colectivul medical)
Anunțarea -
Orice caz de tuberculoză pulmonară/extrapulmonară pentru care medicul pneumolog decide inițierea terapiei antituberculoase va fi anunțat prin completarea "Fișei de anunțare a cazului de tuberculoză" (Anexa 16 ) în maximum 48 de ore de la inițierea terapiei. Această fișă va fi transmisă prin fax sau poștă Dispensarului de Pneumoftiziologie pe teritoriul căruia locuiește efectiv bolnavul (indiferent de adresa trecută în documentul de identitate). Pentru cazul TB MDR / XDR se completează "Fișa de anamneză terapeutică" împreună cu toate datele clinice, imagistice și bacteriologice relevante. Aceasta este trimisă coordonatorului județean TB MDR și Centrului de Excelență TB MDR (Centru care va aviza tratamentul acestei categorii de pacienți).
Declararea și înregistrarea
- după primirea Fișei de anunțare a cazului de tuberculoză, Dispensarul de Pneumoftiziologie va înregistra cazul atât în Registrul de tuberculoză cât și în baza de date electronică. Cazul, odată înscris, va apărea atât în Unitatea Județeană cât și în serverul de la UATM - PNPSCT. Cazul declarat este definit în funcție de: localizare, confirmare bacteriologică/histopatologică și istoricul terapeutic, utilizând cele 2 tipuri de definiții OMS și ECDC.
În funcție de
istoricul terapeutic,
cazul de TB poate fi:
Caz Nou (N)
- definind pacientul care nu a luat niciodată tratament cu medicație antituberculoasă în asociere pe o perioadă mai mare de o lună de zile. Tratamentul ITBL nu este luat în considerare.
Caz cu retratament -
poate fi inclus într-una din următoarele categorii:
-
Recidivă (R) -
pacientul evaluat vindecat/tratament complet în urma unui tratament antituberculos
și
care
prezintă
un
nou
episod
de
tuberculoză
confirmată bacteriologic/histopatologic. Cazurile neconfirmate bacteriologic/histopatologic pot fi înregistrate numai în urma discuției colectivului medical.
-
Retratament pentru eșec (E) -
pacientul care începe retratamentul după ce a fost evaluat "eșec" al unui tratament anterior.
-
Retratament pentru abandon (A) -
pacientul care începe retratamentul după ce a fost evaluat "abandon"/"pierdut" al unui tratament anterior.
-
Cronic (Cr) -
pacient care începe un nou retratament după ce a fost evaluat "eșec" al unui retratament anterior.
Din punct de vedere epidemiologic,
ECDC
recomandă
următoarele criterii privind încadrarea
cazurilor de tuberculoză :
Criterii clinice :
a.
semne/simptome sugestive
b.
modificări imagistice sugestive
c.
decizia clinicianului/colectivului medical de a trata
d.
caz
diagnosticat
post
mortem
prin
modificărui
histopatologice
sugestive tuberculozei
Criterii de laborator :
a)
microscopie cu prezența BAAR pe frotiu
b)
evidențierea de acizi nucleici care să aparțină Complexului Mt
c)
aspect histopatologic de granulom tuberculos
d)
izolarea complexului Mt în cultură
Astfel, ECDC recomandă următoarele încadrări:
Confirmat:
unul sau două din următoarele criterii de laborator:
-
izolarea complexului Mt în cultură
-
depistarea acidului nucleic aparținând complexului Mt
Probabil:
prezența criteriilor clinice și a celor bacteriologice sugestive:
-
microscopie cu prezența BAAR pe frotiu
-
evidențierea unui acid nucleic care să aparțină Complexului Mt
-
aspect histopatologic de granulom tuberculos
Posibil : prezența criteriilor clinice
În termen de 3 zile de la declararea și înregistrarea cazului se declanșează Ancheta Epidemiologică coordonată de medicul din Dispensarul de Pneumoftiziologie pe teritoriul căruia locuiește pacientul.
Fișa de declarare a cazului de TB
semnată și parafată se trimite la sfârșitul lunii respective către DSPJ/DSPMB până cel târziu în primele 10 zile ale lunii următoare. Pacientul care nu locuiește la adresa indicată și al cărui domiciliu real nu poate fi identificat va fi înregistrat de către Dispensarul de Pneumoftiziologie în raza căruia declară că locuiește. Detaliile privind Anunțarea, Înregistrarea și Declararea cazului de tuberculoză se pot consulta în Anexa 17.
Infirmarea -
în cazul în care după înregistrarea cazului de tuberculoză medicul pneumolog deține elementele infirmării acestuia (având alt diagnostic prin confirmarea altei etiologii), acest caz se poate opera în "Fișa de anunțare a infirmării diagnosticului de tuberculoză" (Anexa 18), infirmarea fiind echivalentă cu categoria de evaluare finală.
Decesul (D) -
această categorie de evaluare poat fi întâlnită în două situații:
•
Dacă decesul pacientului diagnosticat cu tuberculoză survine în spital, se completează în maxim 48 de ore "Fișa de anunțare a decesului în spital" și se anunță Dispensarul de Pneumoftiziologie pe raza căruia locuia pacientul (Anexa 19).
•
Dacă diagnosticul de tuberculoză este pus urmare a necropsiei se completează "Fișa de anunțare a cazului de tuberculoză" și se transmite Dispensarului de Pneumoftiziologie în raza căruia locuia decedatul în vederea declanșării anchetei epidemiologice și a declarării post-mortem.
Transferul (T) -
în cazul în care pacientul își schimbă domiciliul în perioada tratamentului antituberculos, va fi evaluat "Transferat" de către Dispensarul de Pneumoftiziologie din care pleacă, după primirea confirmării preluării sale de către Dispensarul de Pneumoftiziologie pe raza căruia s-a mutat. În cazul în care pacientul nu apare la noua adresă în maximum 2 luni,
Dispensarul de Pneumoftiziologie care l-a înregistrat și declarat îl va evalua "Pierdut" (P) (Anexa 20).
Cazurile de TB MDR / XDR
vor fi înregistrate atât într-o categorie din cazurile de tuberculoză enumerate mai sus cât și într-una din următoarele categorii (ținând cont de anamneza terapeutică):
•
Caz nou de TB MDR : pacientul care nu a luat niciodată medicație antituberculoasă în asociere pe o perioadă mai mare de o lună.
•
Caz de TB MDR tratat anterior numai cu medicație de linia I:
pacientul care a primit anterior episodului actual tratament antituberculos cu medicație de linia I, mai mult de o lună.
•
Caz de TB MDR tratat anterior cu medicamente de linia a II-a : pacientul care a primit anterior episodului actual tratament antituberculos cu medicație de linia a II-a, indiferent dacă a utilizat și medicație de linia I.
Cazul de TB MDR suspect (copiii contacți cu caz index TB MDR) pot primi tratament antituberculos individualizat numai cu acordul Comisiei MDR, urmând a fi reevaluat la obținerea antibiogramei fenotipice. Evaluarea pacienților cu TB MDR /XDR se va efectua din 12 în 12 luni în categoria "Continuă tratamentul". Evaluarea finală va avea loc la 22-24 de luni de la instituirea tratamentului pentru TB MDR și la 36 de luni pentru TB XDR, sau în oricare din următoarele situații: abandon, eșec, pacient pierdut, deces.
VII
Controlul infecției tuberculoase
Controlul infecției tuberculoase prevede toate măsurile necesare limitării transmiterii tuberculozei de la sursele contagioase la persoanele care inhalează aerul contaminat cu aerosoli infectanți.
Diagnosticul precoce și tratamentul sunt cele mai eficiente metode de control al transmisiei tuberculozei.
7.1.
Profilaxia vaccinală BCG
Vaccinarea BCG
(vaccin viu, atenuat) realizează o profilaxie antituberculoasă relativă, protejând împotriva transformării infecției în boală. Vaccinarea nici nu întrerupe lanțul epidemiologic, nici nu împiedică infectarea cu Mt.
Vaccinarea:
•
previne diseminarea hematogenă
•
previne metastazele postprimare
•
crește rezistența la suprainfecțiile exogene Gradul diferit al protecției este variabil:
•
reduce riscul de îmbolnăvire cu 46 - 100% în meningita și miliara TB
•
reduce riscul de îmbolnăvire cu 53 - 74% la contacții sursei index
•
scade mortalitatea totală cu 6% Variabilitatea protecției se datorează:
•
tulpinilor vaccinale diferite
•
diferențelor genetice și nutriționale ale populației vaccinate
•
expunerii la Mycobacterii atipice
•
păstrării defectuase a vaccinului.
În România, deși nivelul endemiei tuberculoase este în scădere continuă,
se impune vaccinarea
tuturor nou născuților în primele 2-5 zile de la naștere (o singură doză vaccinală).
Tehnica vaccinării BCG.
Vaccinul se păstrează între 2 - 8 C, conținând 2 flacoane (unul cu mediul de diluție Sauton SSI). Seringa utilizată este de 1 ml. - uz intradermic, ac scurt cu bizoul tăiat oblic la 25 0 . Reconstituirea vaccinului se face prin transferarea unui ml din mediul de diluție Sauton în flaconul cu vaccin, fără a scoate dopul de cauciuc al acestuia. Se omogenizează suspensia cu mișcări blânde prin întoarcerea flaconului în sus și în jos de câteva ori (se evită scuturarea). Suspensia rezultată va fi omogenă, ușor opacă.
Injectarea este recomandată
strict intradermic
în regiunea deltoidiană a brațului stâng, deasupra inserției mușchiului deltoid astfel: - pentru nou-născut și sugar 0,05 ml din vaccinul reconstituit
-
pentru copilul > 12 luni 0,1 ml din vaccinul reconstituit
Acul se introduce stric intradermic iar injectarea se efectuează încet până la apariția unei mici papule.
Papula va dispărea după 10 - 15 minute. Dacă nu a apărut papula,
NU
se va administra a doua doză de vaccin. Vaccinul se utilizează în maxim 4 ore de la reconstituire.
Vaccinarea BCG se poate efectua în aceeași zi cu alte vaccinări sau se păstrează intervalul liber de 30 de zile între vaccinarea BCG și alte vaccinări.
Vaccinarea se efectuează numai de către medic/personalul mediu special instruit sub responsabilitatea medicului.
Contraindicațiile relative :
•
febra
•
leziunile tegumentare eruptive
•
imunodeficiențe congenitale/dobândite
•
tratamente imunosupresoare.
Prematuritatea/dismaturitatea și malnutriția proteincalorică nu mai reprezintă contraindicații, dar este prudent ca vaccinarea să fie temporizată până la atingerea greutății de 2500 g.
Contraindicații definitive :
•
antecedente bacilare confirmate
•
TCT pozitiv
•
copiii infectați HIV
Vaccinarea respectă protocolul prevăzut în prospectul vaccinului.
Controlul cicatricei BCG se va efectua după vârsta de 6 luni a sugarului. Studiile efectuate au pus în evidență faptul că nu există nici o corelație între diametrul cicatricei postvaccinale 2 3 mm și puterea protectivă vaccinală. Din acest punct de vedere,
revaccinarea nu se justifică .
Recuperarea sugarilor
nevaccinați la naștere se va efectua până la vârsta de 1 an astfel:
•
până la vârsta de 3 luni fără TCT
•
după vârsta de 3 luni cu TCT
Recuperarea copiilor născuți în străinătate
nevaccinați BCG se va face până la vârsta de 4 ani,
deoarece
în
România
majoritatea
formelor
diseminate
de
tuberculoză pulmonară/extrapulmonară aparțin categoriei de vârstă 0 - 4 ani.
Copiii al căror status HIV nu este cunoscut, fără simptome sugestive pentru HIV, deși provin din mame seropozitive HIV, pot fi vaccinați după o laborioasă analiză a factorilor locali de risc. Vaccinarea BCG poate induce sindromul IRIS-BCG copiilor seropozitivi HIV cărora terapia ARV le-a fost inițiată precoce. Deși acest sindrom poate induce forme diseminate de tuberculoză, mortalitatea este scăzută.
În teritoriile cu prevalență crescută a infecției HIV, copiii seronegativi, fără manifestări clinice sugestive, pot fi vaccinați BCG după o atentă și minuțioasă analiză a riscului.
Reacțiile adverse postvaccinale
(RAPI) sunt definite ca fiind incidentul medical care se produce după vaccinare, fiind considerat a se datora acesteia :
•
ulcerații trenante cu durata de peste 3 luni
•
adenopatie axilară (de aceeași parte cu inocularea vaccinului), supraclaviculară, laterocervicală, cu cel puțin un ganglion cu diametrul
1,5 cm
•
adeoflegmon
și/sau
limfadenita
supurată
sau
abcedantă
și/sau
limfadenita necrozantă, care durează mai mult de 2-3 luni
•
semne și simptome respiratorii (tuse, dispnee), radiografie toracică anormală, semne și
simptome
generale
(scădere
în
greutate,
febră),
sindrom
meningeal, limfadenopatii, hepatosplenomegalii, sugestive unui proces specific activ.
Din punct de vedere al severității, reacțiile postvaccinale sunt astfel standardizate:
•
ușoare:
reacții postvaccinale locale și/sau adenopatia regională necomplicată
•
moderate:
abcese locale mari persistente/limfadenite supurate, limfadenite mari, fluctuente/ noduli cu creștere rapidă ce determină fistule/infiltrarea pielii, masă reziduală solidă > 2cm, masă ganglionară masivă >3cm, masă ganglionară masivă cu creștere rapidă și herniere, ganglioni multiloculari/infiltrativi, adenita ce se dezvoltă rapid (sub 2 luni de la vaccinare)
•
severe:
BCG-ita sistemică, osteita/osteomielita, determinări grave pulmonare, meningită, lupus vulgar, eritem nodos.
Tratament:
reacții postvaccinale locale și/sau adenopatia regională necomplicată :
-
supraveghere 3-6 luni
-
eventual tratament local cu soluție Rivanol
-
nu necesită tratament chirurgical
-
nu necesită tratament antituberculos
abcese locale mari persistente/limfadenite supurate:
-
puncție aspirativă
-
antibioterapie conform antibiogramei
-
nu necesită tratament antituberculos
-
Izoniazida
NU
și-a dovedit utilitatea nici în scurtarea duratei de vindecare nici în evoluția adenitei către supurație
limfadenite
mari,
fluctuente/noduli
cu
creștere
rapidă
ce
determină fistule/infiltrarea pielii:
-
puncție aspirativă care va scurta durata de vindecare, va evita fistulizarea necontrolată.
-
se va evita intervenția chirurgicală.
-
eritromicina 40 mg/kg/zi timp de 14 zile
masă reziduală solidă > 2cm, masă ganglionară masivă > 3cm, masă ganglionară masivă cu creștere rapidă și herniere, ganglioni multiloculari/infiltrativi, adenita ce se dezvoltă rapid (sub 2 luni de la vaccinare):
-
tratament chirurgical hotărât de Comisia Locală TBC și chirurgul pediatru
-
nu se recomandă incizie pentru drenaj
BCG-ita sistemică, osteita/osteomielita, determinări grave pulmonare, meningită, lupus vulgar, eritem nodos:
- tratament 3HRE(S) 7/7 + 4 HR 3/7. În formele osoase sau cu determinări grave schema se poate prelungi (până la 10-12 luni).
Diagnosticul obligă la izolarea în cultură a Mycobacteriei vaccinale (laboratorul național de referință). Totodată, copilul nu provine din focar TB, iar intervalul dintre vaccinare și apariția complicațiilor exclude infecția cu Mt.
Circuitul informațional al RAPI este prezentat în Anexa 17.
Deoarece cazurile de RAPI la BCG nu sunt cazuri de tuberculoză activă, nu vor fi luate în evidenJă în Registrul TB. Monoterapia cu izoniazidă nu este recomandată de către OMS și ECDC .
7.2.
Profilaxia medicamentoasă
Profilaxia primară
se adresează copiilor sub 5 ani, fără simptome clinico-radiologice, cu TCT negativ, dar expuși unui caz index de tuberculoză (pagina 15).
Profilaxia secundară
vizează prevenirea evoluției infecției spre boală și se adresează copiilor deja infectați. Gradul protecției este variabil, ajungând până la 65 - 70%. Tratamentul profilactic are în vedere: criteriile de interpretarea ale TCT, vârsta copilului, starea de imunitate.
Opțiuni profilactice:
nou-născutul
în focar TB
1)
Caz netratat, descoperit odată cu nașterea
a)
dacă cazul sursă (mama) și nou-născutul se pot izola
b)
dacă cazul sursă și nou-născutul nu pot fi izolați
2)
Caz TB cunoscut aflat sub DOTS de minim 6 săptămâni
copii
cu expunere la TB
(vezi algoritm pag 15)
copii și adolescenți
din focar TB : - cei cu TCT pozitiv - vor efectua tratamentul profilactic 6 luni
- cei cu TCT negativ - vor efectua tratamentul profilactic 3 luni. Se repetă TCT. Dacă acesta este negativ se întrerupe tratamentul ITBL (dacă sursa s-a negativat). Dacă apare virajul tuberculinic se continuă tratamentul ITBL zilnic până la 6 luni.
copii cu
terapie biologică
imunosupresoare tip anti -TNFalfa și infecție tuberculoasă latentă.
A
l go r
i
tm
de
diag
os
ti
c
1T
B
l
a
co p
iii
s up
ș i
te
r a p
i
e i
b
i
o
l
ogic
e
Pa
d en t
în a in
te
d
e
inițierea
t era pi e i
bi olog i c e
Istor
i
c
m
e dica l
-t
E x:ame n
c li n ic
Ra
di og r a fi
e t orace
N
s
i m pt ome
ș
i
r
a
d iogra fi e
to rc 1 c ic
ă
t lormalăi
S ir
pto m
e
ș i
/ sa u
ra
d
iografie
to
ace
CL
I
mo dl
ifi
cări
îr
at :a m
Bflt
rn ra t i v """"
E v a lu are
p
e
ntru
TB
a ,
ct
i
v ă
* l sfo ri
ic
m
e
clic
al
: în
tr eb a.i
d
acă
B
î
n
ainteced
e
t
e
,
co n
t
a
c t. HI
rec :
e
t,
t r aitame r , t
cu r
e n t
im
omo d
ul
ator
(co rt
i ms t
ero
i
z
i
)
s;au
i
m
n osu p reso r ,
i s t o r
i c
d
e
d rog m
i
I V/ d e t e nț
i e / I-I I
V
-
da că
da ,
r
i
sc
cr es cu t
p
e n t
ru
1
TB
.s a u
re acti v
a
r
e
lB.
* 'OF
-
în
c
azu
l în
ca r
,
e s
c c e de
Cîse
r,
e rn r
;
•
a
nd
ă
a
se
ef e ct u a
în
ziL r
, a
i
nt
e
r
pr
e tă rii
testu I u
i
sa
l a c e
l
m
ul t
3
zil e
e la
in
t e r
p r et
a
r
e ,
p en
rn
a
m
.1
fi
i
nf
I
ue
nț
ate rezul
t
ate
l e
(p osihiI
rez
u l
ate
fa ls pioz"
i ve) .
*
·
'*
Luaț
i
î
co n
tinu a r
e
i
i ț ie
r
ea
t erap
i e i
b
iologice
l a 1-
2
lu n
i
du
ă
î
ncepe
r
ea t ra
a m e n tului
I TBL (
dacă este
p
o s i
b
il
a mâ
area
până ce t
r
,
atame
nt
u
I
1 TB L
e ste cornp
,
l
et)
*
·
***
În
ca
,
z de
B a ct
i
v ă
te
r a p
i
a
bio log i
că
s e
p oate
i
iț
ia
/ re i
n·r_
a
după f ir ,ali za rna
.
r atament ul
u i
TB
și
evaI
u
are ai fin a l ă .
E v
a
lu
are
p e
ntrn IT B-L
P
ozit
i v
2'5m m
Negativ
<'Smm
Negati v
CT
la
5-8
:s.ă pt ăr
ân
i
Pozit iv
2'5 ,
m
m
Ne g ati v
<Smm
H
10 rng/kg c ,
d ozam a
i:!:
.i mă 300
m g/ z
i ,
adm
i
i
strarezilni
c
ă
Schema terapeutică
Profilaxia medicamentoasă este reprezentată de monoterapia cu izoniazidă ( H ) 7 - 15 mg/kg maxim 300 mg/zi. Se adresează următoarelor categorii de contacți:
-
contacților cazului de TB sensibilă
- monoterapie zilnică cu H -10 mg/kg max 300 mg/zi
-
6 luni. Pentru imunodeprimați se poate administra (conform Ghidului Metodologic 2015) timp de 9-12 luni. Se asociază piridoxina (vitamina B6) 5-10 mg/kgc/zi.
În ceea ce privește copilul infectat HIV cu vârsta de peste 1 an, care nu prezintă simptome sugestive pentru tuberculoză/care nu este contact cu un caz index de tuberculoză, OMS recomandă următoarele atitudini:
•
necesită tratament cu H - 10 mg/kgc/zi (max. 300 mg/zi), timp de 6 luni, dacă locuiește într-un teritoriu cu prevalență crescută a tuberculozei
•
poate primi tratament cu H - 10 mg/kgc/zi (max. 300 mg/zi), timp de 6 luni, dacă locuiește într-un teritoriu cu prevalență medie /joasă a tuberculozei
-
contacților cazului de TB H
-
rezistentă
pot fi tratați cu R 10-20 mg/kg/zi maxim 600 mg/zi pe o perioadă de 4-6 luni
-
contacților cazului TB MDR
- deoarece nu există consens internațional, decizia va fi luată de colectivul medical de specialitate astfel:
•
în cazul contacților imunocompetenți - supraveghere clinică și imagistică timp de 2 ani
•
în cazul contacților cu risc mare de progresie al infecției latente spre boală (status imun deficitar) se pot administra timp de 12 luni unul dintre regimurile zilnice:
Z (25-30 mg/ kg/zi) împreună cu E (15-25 mg/kg/zi)
Z (25-30 mg/ kg/zi) împreună cu fluorochinolonă (Ofloxin-15-20 mg/kg corp/zi/Levofloxacin - 7,5-10 mg/kg corp/zi).
Tratamentul preventiv se administrează o singură dată în viață. Dacă există dovada infecției cu o tulpină nouă la copiii infectați HIV/copiii contacți apropiați cu un nou caz de tuberculoză microscopic pozitiv, se poate repeta tratamentul profilactic.
Fișa de profilaxie medicamentoasă este prezentată în Anexa 21.
7.3 Controlul infecției tuberculoase în unitățile sanitare
În Planul de Control al Infecției Tuberculoase, fiecare unitate sanitară/secție/compartiment va evalua
riscul de transmitere,
ținând cont de prezența surselor și de procedurile efectuate în fiecare din spațiile în care se desfășoară activitate medicală.
Controlul infecției tuberculoase cuprinde un set de măsuri manageriale, administrative, inginerești și de protecție respiratorie.
Activitățile mangeriale
cuprind:
•
evaluarea riscului
•
elaborarea planului specific unității sanitare
•
reorganizarea/amenajarea spațiilor, a circuitelor epidemiologice
•
numirea personalului responsabil pentru implementarea Controlului Infecției Tuberculoase, cu stabilirea responsabilităților
•
instruirea personalului privind controlul transmiterii tuberculoase
•
supravegherea apariției cazurilor de tuberculoză în rândul personalului angajat
•
monitorizarea și evaluarea activităților de control al infecției tuberculoase
•
accesul la cercetare operațională
Măsurile administrative
cuprind:
•
triajul pacienților
•
izolarea/separarea suspecților, pacientului TB negativ, TB pozitiv în microscopie cu sensibilitate, TB microscopic pozitiv cu rezistență
•
scurtarea timpului până la stabilirea diagnosticului (utilizarea metodelor rapide de depistare)
•
reducerea perioadei de spitalizare până la negativarea microscopiei și monitorizarea efectelor adverse ale terapiei
•
recoltarea corespunzătoare a produselor de spută în spațiile cu această destinație și cu respectarea protocoalelor
•
educația aparținătorilor/copiilor mai mari și vizitatorilor
•
stabilirea unei politici pentru vizitatori
Măsuri inginerești:
se recomandă utilizarea
ventilației naturale
cu stabilirea unui program zilnic, specific fiecărui spațiu.
Ventilația mecanică
va fi utilizată în spațiile și zonele cu risc mare de transmitere a tuberculozei (secții cu pacienți contagioși cu TB rezistentă, laboratoare de bacteriologie, servicii de endoscopie bronșică, servicii de probe funcționale respiratorii, ATI).
Adițional, în spațiile unde pot exista aerosoli infectanți se vor utiliza
lămpile cu UV
(cele cu scut fiind cele recomandate deoarece pot fi utilizate cu pacienți/personal medical prezent). Indiferent de tipul de lampă UV utilizat (cele indicate fiind lampa UV cu iradiere spre partea superioară a încăperii și lampa UV cu flux orizontal de radiație), se va ține seama de faptul că o lampă UV de 30 W acoperă în medie 18 m 2
din încăpere.
Se va întocmi un plan de funcționare pentru fiecare lampă.
Protecția respiratorie
constă în utilizarea de către pacienți în spațiile închise a
măștilor chirurgicale.
Măștile cu
filtru FFP2
vor fi utilizate de personalul medical în spațiile în care există aerosoli infectanți. Cei mai mulți dintre copiii cu tuberculoză pulmonară nu sunt contagioși și nu reprezintă un pericol pentru unitățile sanitare. De aceea, este foarte importantă efectuarea
triajului adulților
care însoțesc/vizitează copiii, pentru că aceștia ar putea fi sursa index a cazului de tuberculoză. Dacă copilul este pozitiv, va urma aceleași măsuri de izolare și controlul infecției ca și adultul pozitiv. Anchetele epidemiologice au un rol determinant în identificarea cazului index de tuberculoză.
7.4. Ancheta epidemiologică
Ancheta epidemiologică de filiație este definită drept complexul de măsuri/acțiuni care au scopul depistării persoanelor care fac parte dintr-un lanț de transmitere a infecției/bolii și a relațiilor de cauzalitate dintre ele. Este unul din elementele cheie ale Strategiei de Control a Tuberculozei.
Obiective:
•
depistarea persoanelor infectate/simptomatice respiratorii, contacți cu un caz index
•
investigarea și instituirea tratamentului (preventiv /curativ)
•
descoperirea precoce a cazurilor adiționale unui caz index de tuberculoză pentru întreruperea lanțului epidemiologic.
Ancheta epidemiologică poate fi:
ascendentă -
pornind de la un copil cu tuberculoză și vizează găsirea sursei.
Pentru
sugar și copilul mic sursa este cel mai frecvent intrafamilială / intradomiciliară. Uneori însă, găsirea sursei este dificilă, ea putând exista și extradomilciliar.
descendentă
- declanșată de diagnosticarea unui caz de tuberculoză vizând depistarea persoanelor îmbolnăvite/infectate de cazul index.
Cele
două
tipuri
ale
anchetei
epidemiologice
sunt
intricate.
Astfel,
dacă
ancheta epidemiologică ascendentă descoperă sursa, aceasta, tratată ca un caz nou, va declanșa o anchetă descendentă pentru a identifica și alte cazuri infectate/îmbolnăvite (Anexa 22 ).
Metodologia respectă aceiași parametri ca și ancheta epidemiologică pentru un caz de tuberculoză a adultului:
•
se declanșează la maxim 72 de ore de la anunțarea unui caz de tuberculoză
•
respectă cele maximum 30 de zile până la finalizare (excepția anchetei epidemiologice din focar)
•
utilizează date anamnestice, TCT, examene imagistice, bacteriologice pentru a putea stabili cronologia și filiațiunea îmbolnăvirilor.
•
este efectuată de rețeaua de medicină primară (medic de familie, medicină școlară, medicina muncii) în colaborare cu medicul pneumolog din teritoriu și medicul epidemiolog.
Noțiunea de
contact
al unui bolnav cu tuberculoză definește persoana care stă în preajma acestuia, la distanța necesară unei conversații, pe durata a cel puțin 4 ore. Contactul poate fi
intradomiciliar sau extradomiciliar.
Riscul de infecție este cu atât mai mare cu cât contactul a fost mai intim și mai prelungit. Riscul transformării infecției în boală este mult mai mare la sugar și copilul mic decât la copiii mari.
În ceea ce privește contagiozitatea, menționăm binecunoscuta corelație între aceasta și concentrația de bacili viabili din secrețiile respiratorii.
Deoarece majoritatea copiilor dezvoltă tuberculoză primară, care apare ca o complicație directă a infecției inițiale, ei sunt rar contagioși pentru anturaj. Puținii copii cu tuberculoză cavitară/infiltrativ - extinsă sunt potențial contagioși, necesitând aplicarea acelorași măsuri de control ca și în cazul adulților cu tuberculoză. În plus, în unitățile sanitare care îngrijesc copii cu tuberculoză, triajul vizitatorilor adulți este obligatoriu pentru evitarea transmiterii Mt.
Indicatorii utilizați în evaluarea anchetelor epidemiologice:
•
de
promptitudine
(intervalul
de
timp
între
diagnostic
și
declanșarea
anchetei epidemiologice)
•
numărul mediu de contacți
•
procentul contacților examinați dintre cei identificați
•
procentul surselor identificate în cadrul anchetei epidemiologice ascendente efectuate la copii.
7.5. Educația pacientului cu tuberculoză
Educația pacientului cu tuberculoză are un rol extrem de important în succesul terapeutic. În procesul educațional trebuie implicată atât familia cât și colectivitatea copilului. Pentru copii mici, părinții își vor asuma responsabilitatea îngrijirii copilului. Copii mari, însă, trebuie să primească toate informațiile legate de boală, tratament, monitorizare. Ei trebuie să devină parteneri activi în toate acțiunile îndreptate spre succesul terapeutic și să învingă prejudecățile legate de tuberculoză. De asemnea școala trebuie informată privind riscul de îmbolnăvire pentru a lua măsurile preventive ce se impun și a participa la desfășurarea anchetei epidemiologice.
Cadrele
didactice
trebuie
informate
privind
boala,
tratamentul, monitorizarea, pentru a integra copilul cu tuberculoză în colectivitate la momentul indicat de medicul pneumolog.
Obiective:
•
informații legate de boală
•
informații legate de tratament și monitorizare
•
înlăturarea prejudecăților
•
implicarea aparținătorilor /copilului tratat ca parteneri ai succesului terapeutic
Cui se adresează:
•
medicilor (pneumologi, medici de familie, medici școlari ,medici de medicina muncii)
•
asistentelor medicale și îngrijitoarelor
•
asistenților comunitari/mediatorilor sanitari
•
părinților/educatorilor/cadrelor didactice/colegilor copilului bolnav
Când se face:
•
la inițierea tratamentului
•
în timpul derulării Anchetei Epidemiologice
•
în timpul monitorizării
•
la solicitare
Ce informații trebuie transmise :
•
despre boală:
-
care este agentul cauzal
-
care sunt organele care pot fi afectate
-
care sunt condițiile vindecării
•
despre calea de transmitere
-
de la cine se transmite
-
cum se transmite
-
importanța igienei tusei
-
importanța Anchetei Epidemiologice
•
despre diagnostic
-
care sunt simptomele
-
care sunt probele biologice/patologice care trebuie recoltate
-
care sunt examenele paraclinice necesare punerii diagnosticului
•
despre tratament
-
asociere medicamentoasă
-
durată, ritm de administrare
-
importanța tratamentului sub directă observație
-
reacții adverse posibile și abordarea lor
-
monitorizare
•
informații despre prognosticul bolii
-
boala vindecabilă prin tratament
-
consecințele întreruperii tratamentului
-
consecințele tratamentului incorect
-
importanța controlului contacților.
Este foarte important ca informațiile să fie corecte, accesibile ca înțelegere și repetate pentru a verifica însușirea corectă. Atitudinea celui care face educația trebuie să fie prietenoasă, respectuoasă, permisivă. Spitalizarea de lungă durată nu este recomandată, având în vedere implicațiile psihologice care pot apărea la scoaterea din familie a copilului pe o perioadă îndelungată.
Suportul psihologic din spital trebuie să fie continuat și la nivelul dispensarului antituberculos și la domiciliul copilului pentru a-l ajuta pe acesta să se adapteze cât mai bine bolii și să devină partener activ al succesului terapeutic. Copiii, familiile acestora, colegii, cadrele didactice trebuie să elimine noțiunea de stigmă privind tuberculoza pentru o reinserție socială ușoară și fără repercursiuni asupra vieții copilului.
Bibliografie
1.
Automated real-time nucleic acid amplification technology for rapid and simultaneous detection of tuberculosis and rifampicin resistance: Xpert MTB/RIF system. Policy statemnet, Geneva, WHO 2011
2.
Barbara S. Reisner, Alice M. Gatson, Gail L. Woods. Use of gen-Probe AccuProbes to Identify Mycobacterium Avium Complex, Mycobacterium Tuberculosis Complex, Mycobacterium kansasii and Mycobacterium gordonae Directly from BACTEC TB broth cultures. J Clin Microbiol 1994 32(12): 2995-2998
3.
Bercea O, Panghea P., - Breviar de tuberculoză: Prevenirea și combaterea tuberculozei, p. 141-145. Tuberculoza primară p 35-47 Ed. Medicală București, 1999
4.
Center for Disease Control and Prevention - Latent Tuberculosis Infection: A Guide for Primary Health Care Providers 2011
5.
ECDC GUIDANCE, Management of contacts of MDR TB and XDR TB patients 2012
6.
Claudio Scarparo, Paola Piccoli, Alessandra Rigon, Giuliana Ruggiero, Domenico Nista, Claudio Piersimoni. Direct Identification of Mycobacteria from MB/Bact Alerd 3D Bottles: Comparative Evaluation of Two Commercial Probe Assays. J Clin Microbiol 2001; 39(9):3222-3227
7.
Enrico Tortoli, Alessandro Mariuottini, Gianna Mazzarelli. Evaluation of INNO-Lipa Mycobacteria v2: Improved Reverse Hybridisation Multiple DNA Probe Assay of Mycobacterial Identification. J. Clin Microbiol 2003 41(9):4418-20
8.
Ghidul pentru diagnosticul și tratamentul tuberculozei la copil. INCDS. Public H Press București 2006
9.
Ghid medotologic privind aplicarea PNSCT 2015
10.
Ginsberg M ANN - What's new in tuberculosis vaccines? Bull WHO 2002; 80: 483-488
11.
Guidance for national tuberculosis programmes on the management of tuberculosis in children - 2nd edition WHO 2014
12.
Guidelines for the programmatic management of drug-resistant tuberculosis WHO/HTM/TB/2008. 402
13.
Homorodean D., Moldovan O., Diculencu D., Chiriac D., Muntean I. - Îndrumar de tehnici de laborator de bacteriologie BK, București 2005: 5-12; 19-22; 32-33; 41-54
14.
A. Lancoma, N. Garcia-Sierra, C. Prat, J. Maldonado dJRuiz-Manzano, L. Haba, P.Gavin, S.Samper, V. Ausina, J.Domingueza. GenoType MTBDRsl for Molecular detection of second line drugs and Ethambutol-resistance in Mycobacterium tuberculosi Strain and Clinical Samples. Journal of Clinical Microbiology, Jan 2012, vol. 50. nr 1, 30-36
15.
Managementul cazurilor de tuberculoză multidrug rezistentă TB MDR. Ministerul Sănătății, Institutul de Pneumologie Marius Nasta, 2005, București
16.
Marius Barnard, Heidi Albert, Jerry Coetze, Richard O'Brian and Marlene E. Bosman. Rapid Molecular Screening for Multidrug Resistant Tuberculosis in a High-Volume Public Health Laboratory in South Africa. Am. J Respir Crit care Med Vol 177, pp 787-792, 2008
17.
Maureen Morgan, Shriprakash Kalantri, Laura Flores, Madhukar Pai. A commercial line probe assay for the rapid detection of Riffampicin resistance in Mycobacterium tuberculosis: a sistematic review and metanalysis. BMS Infect Disease 2005; 5:62
18.
Ravglione M.C., O' Brien R.J.-Tuberculosis Chap 169 in- Harrison's Principles of Internal Medicine, vol. 1, 15 th
edition 2001 Mc Graw Hill Med Publishing Division N.Y. USA p 1024-1035
19.
Recomandation for investigating contacts of persons with infectious tuberculosis in low- and middle -income countries. Geneva, WHO 2012.
20.
Socaci Adriana, Popescu Georgeta Gilda, Marica Constantin, Infectia tuberculoasă latentă - Întrebări și răsopunsuri - Ed. Partoș, Timișoara 2014, ISBN 978-606-8427-74-4
21.
WHO. BCG vaccine. WHO position paper. Weekly epidemiological record 2004; 79: 27-38
22.
WHO policy guidance on drug susceptibility testing (DST) of second untituberculosis drugs, Geneva 2008. WHO/HTM/TB/2008. 392
23.
WHO/HTM/TB/ 2011.9. Non-commercial culture and drug-susceptibility testing methods of screening patients at risk of multidrug-resistant tuberculosis: policy statement
ANEXA 1 EFECTUAREA ȘI INTERPRETAREA TESTULUI LA TUBERCULINĂ
După „Ghidul pentru diagnosticul
ș i tratamentul tuberculozei la copil", 2006 Materiale necesare efectuării testului tuberculinic (metoda Mantoux):
produsul biologic - tuberculina (se verifică valabilitatea și calitatea macroscopică ale produsului biologic)
seringă etanșă de unică folosință de 1 ml divizată în 0,10 ml, prevăzută cu ac special pentru injecții intradermice (de 10 mm, cu bizou scurt)
Soluție antiseptică - alcool de 75%
Vată
Locul inoculării : de preferat fața anterioară a antebrațului stâng, la intâlnirea 1/3 superioare cu cea medie, în tegumentul sănătos.
Tehnica administrării trebuie să fie riguroasă, cu efectuarea pașilor următori :
verificarea valabilității și calității macroscopice ale produsului biologic
dezinfectarea tegumentului cu alcool sanitar
întinderea pielii prin plierea tegumentelor de pe fața dorsală a antebrațului pentru a facilita introducerea strict intradermică a tuberculinei
se injectează ID 0,1 ml PPD care realizează de obicei o papulă ischemică de 5-6 mm cu aspect de „coajă de portocală"; aceasta nu trebuie tamponată după ce s-a extras acul.
IDR corectă este confirmată de lipsa sângerării și de obținerea papulei.
Evoluția intradermoreacției
La locul inoculării antigenului se dezvoltă o reacție inflamatorie cu vasodilatație, edem și o infiltrație de limfocite, monocite și neutrofile. Procesul inflamator este generat de eliberarea unor limfokine de către limfocitele T sensibilizate în contact cu antigenul (tuberculina).
Reacția la tuberculină poate fi locală, generală sau focală.
Reacția locală : inițial poate apare o reacție
nespecifică , care dispare sau nu în 24-48 de ore.
La cei la care testul este pozitiv, în 72 de ore se formează o papulă dermică dură, în relief față de planul dermic, de culoare roz-palidă până la roșu închis, care se diminuează în 4-7 zile, lăsând în loc o ușoară pigmentare și descuamare furfuracee.
Reacțiile imediate (24 h) nu au importanță epidemiologică și nu indică infecția tuberculoasă.
Uneori pot apărea: reacții locale veziculare, ulcerații, adenopatie regională sau limfangită (rar).
Reacție generală : foarte rar, febră, astenie, curbatură. Fenomenele dispar în 1-2 zile.
Reacțiile focale
sunt excepționale și se manifestă prin: congestia sau necroza leziunilor tuberculoase existente în organism în momentul testării.
Citirea testului
este
cantitativă .
Citirea rezultatului se face între 48 și 72 de ore (ideal 72 h) de la administrare, când indurația este maximă și reacția nespecifică dispare.
Se măsoară diametrul transversal al zonei de indurație cu ajutorul unei rigle transparente Eventual se marchează limitele, după ce au fost palpate și delimitate exact punctele extreme ale diametrului transversal . Se recomandă ca citirea să nu se facă după 72 de ore, întrucât se subestimează rezultatul.
Interpretarea calitativă (tipurile Palmer) și-a pierdut din actualitate.
Vaccinarea BCG induce obișnuit, pentru 3-4 ani o reacție care de obicei nu depășește 10 mm. O reacție mai intensă traduce foarte probabil infecția naturală cu
Mt
.
Citirea și interpretarea trebuie făcute de
personal cu experiență
care notează mărimea diametrului indurației și data citirii.
Interpretarea testului
Interpretarea TCT la 2 U.I. PPD, respectiv la 5 U.I. PPD se regăsește în textul paginii 7.
Virajul tuberculinic
constă în pozitivarea unei testări care succede uneia cu rezultat negativ și dacă nu este consecința unei vaccinări BCG, traduce o infecție de dată recentă.
Efectul booster
- s-a constatat că repetarea IDR la intervale scurte poate genera creșterea intensității reacției. Fenomenul apare dacă testul se repetă într-un interval de până la 12 luni și este întâlnit în special la persoanele în vârstă la care diametrul reacției poate să crească cu 3-8 mm față de reacția anterioară.
Convertorii
sunt subiecții la care se constată o creștere a reacției cu peste 10 mm la o retestare, într- un interval de 2 ani. Se apreciază că fenomenul semnifică progresia infecției TB spre boală activă.
ANEXA 2 RECOLTAREA PRODUSELOR BIOLOGICE (GHID METODOLOGIC-2015)
Investigația bacteriologică are o poziție centrală atât în diagnosticul și monitorizarea cazurilor de TB, cât și în evaluarea PNPSCT, de aceea toate etapele acesteia - de la pregătirea pacientului și recoltarea produsului patologic până la citirea și interpretarea rezultatelor - trebuie tratate cu deosebită atenție.
Aspecte generale
Calitatea produselor patologice este esențială pentru obținerea unor rezultate de încredere. În acest sens, trebuie să se țină seama de următoarele:
1.
Recoltarea și manipularea produselor patologice se fac astfel încât:
a.
să se evite contaminarea cu bacterii și fungi a produsului patologic
b.
să se evite diseminarea germenilor în mediul ambiant
c.
să se evite infectarea personalului medical implicat.
2.
Recoltarea și manipularea produselor patologice se face sub supravegherea unui cadru medical instruit privind reducerea riscului de contaminare a produselor, care trebuie să se asigure că s-a recoltat un produs provenit din focarul lezional, de la un pacient corect identificat și în cantitate suficientă pentru prelucrare în laborator.
3.
Respectarea NORMELOR GENERALE DE RECOLTARE și anume:
□
În cazul persoanelor suspecte de TB, produsele se recoltează înainte de începerea tratamentului antituberculos.
□
Repetarea examenului bacteriologic în zile succesive (la suspecții de TB pulmonară se pot recolta până la 4 spute, în cazul în care primele examinări au fost negative iar suspiciunea de TB se menține).
□
Caracteristicile RECIPIENTELOR pentru recoltarea sputei:
confecționate din material plastic, incasabil, transparent - pentru a observa cantitatea și calitatea produsului patologic fără a deschide recipientul
cu deschidere largă (minim 35 mm diametru) - pentru evitarea contaminării pereților exteriori ai recipientului
capacitate de 30-50 ml pentru spută și adaptată pentru fiecare tip de produs patologic
cu capac cu filet care închide etanș recipientul
cu posibilitatea de a fi marcate cu ușurință.
Recoltarea sputei expectorate spontan, în sectorul clinic. Primul pas pentru un diagnostic fiabil este obținerea unor produse de calitate. Recoltarea sputei:
□
Se efectuează ori de câte ori se suspectează diagnosticul de TB pulmonară
□
Se efectuează în spații special destinate
□
Se face după instruirea prealabilă a bolnavului
□
Se face sub supravegherea unui cadru medical (geam/vizor la boxa de recoltare)
□
Se respectă măsurile de control al infecțiilor și condițiile optime de păstrare a produselor patologice: ventilație corespunzătore (fereastră), lămpi U.V., măști, frigider pentru păstrarea probelor (până la maximum 4 zile), ușa cu geam pentru supravegherea recoltării.
Pacientul trebuie instruit cu privire la etapele recoltării înaintea acesteia:
□
Clătirea gurii cu apă pentru îndepărtarea resturilor alimentare și a bacteriilor contaminante
□
Efectuarea a 2 inspirații profunde urmate de reținerea respirației după fiecare dintre ele timp de câteva secunde, apoi o a treia inspirație profundă, urmată de un expir forțat. Se declanșează tusea care va ușura expectorația
□
Depunerea sputei în recipientul/flaconul care se ține sub buza inferioară.
Cadrul mediu trebuie să verifice după recoltare calitatea sputei. Sputa de bună calitate este: în cantitate de 3-5 ml, cu particule purulente; este frecvent vâscoasă și mucoidă; poate fi fluidă, dar să conțină fragmente de țesut necrozat; poate fi stratificată în culori de la alb mat la verde.
•
Dacă sputa este insuficientă cantitativ, pacientul trebuie încurajat să expectoreze din nou până la obținerea rezultatului dorit (la unii pacienți este nevoie de timp mai îndelungat pentru această manevră)
•
Dacă nu obțineți nici o expectorație, considerați recipientul deșeu infecțios și îndepărtați-l ca atare
•
Dacă s-a recoltat corect, asigurați-vă că recipientul este bine închis și etichetați-l clar ( pe corp, nu pe capac)
•
Spălați-vă mâinile cu apă și săpun
•
Dați un alt recipient pacientului și asigurați-vă că acesta a înțeles că a doua zi va recolta un nou produs imediat după trezirea de dimineață (în caz de recoltare nesupravegheată, la domiciliu)
•
Arătați pacientului cum se închide etanș recipientul.
□
Se recoltează 2 probe pentru fiecare examinare bacteriologică, ambele sub supraveghere medicală sau una prin autorecoltare din prima spută emisă spontan dimineața.
În cazul persoanelor care nu tușesc și nu expectorează spontan sau care înghit expectorația (de ex. femeile) se vor aplica
tehnici speciale de provocare și recoltare a sputei :
□
Aerosoli expectoranți cu soluție de NaCl 10%
□
Lavajul laringo-traheal cu ser fiziologic steril
□
Tubajul gastric folosind sonde Nelaton sau Einhorn
□
Aspiratul bronșic sau lavajul bronho-alveolar prin bronhoscopie.
Trimiterea probelor la laborator se face:
□
Împreună cu formularul de solicitare standardizat, completat la toate rubricile; un singur formular pentru toate probele, cu date de identificare identice pe recipient și pe formular.
□
Etichetarea flacoanelor cu numele și prenumele bolnavului pe corpul recipientului, nu pe capacul acestuia.
□
De către persoana desemnată, instruită, în cutii speciale din plastic, prevăzute cu compartimente pentru separarea și fixarea flacoanelor cu spută.
□
Transportul probelor către laborator trebuie realizat imediat după recoltare sau, dacă nu este posibil, acestea se păstrează la frigider (40C), maxim 3-4 zile (pentru a minimaliza multiplicarea florei de asociație).
FACTORII
care pot influența viabilitatea micobacteriilor trebuie cunoscuți pentru a fi evitați și anume:
□
Administrarea de antibiotice cu efect antituberculos: Rifampicină, Streptomicină, Kanamicină, Amikacină,
Ciprofloxacină,
Ofloxacină,
Claritromicină,
Amoxicilină
+
Acid
clavulanic, Azitromicina, Imipenem, Clofazimin, tetracicline, sulfonamide, Minociclina.
□
Conservarea în formol sau recoltarea pe EDTA
□
Contactul prelungit cu sucul gastric (peste 3-4 ore)
□
Păstrarea probelor la căldură sau lumină
□
Întârzierea prelucrării produselor patologice (peste 5 zile)
□
Congelarea prelevatelor.
Metode speciale de recoltare în caz de suspiciune de tuberculoză pulmonară
Se folosesc în cazul pacienților care nu expectorează, dar sunt suspecți de tuberculoză pulmonară activă. Pe buletinul de solicitare se menționează metoda de recoltare.
Sputa indusă
Inhalarea de aerosoli calzi salini-hipertoni (soluție de NaCl 5-10%) irită căile respiratorii și determină tuse cu expectorarea unui produs apos, cu aspect asemănător salivei, din profunzimea arborelui bronșic.
Recoltarea:
□
se începe cu o primă ședință de aerosoli cu durata de 10 minute
□
dacă nu este provocată tusea, se recomandă bolnavului să facă efort de tuse voluntară în următoarele 10 minute
□
în caz de insucces, se reia aerosolizarea cu durata de încă 10-20 minute sau se recurge la altă procedură de recoltare.
Lavajul laringo-traheal
□
pacientul face gargară cu xilină 1%, repetat de 2 ori;
□
cu o seringă cu canulă curbă, sub controlul oglinzii laringiene se introduc 5-10 ml ser fiziologic steril
□
tusea productivă apare în cursul manevrei sau după dispariția anesteziei
□
se recoltează sputa, se verifică volumul și calitatea ei (aspect grunjos, tulbure)
□
se va recolta și sputa eliminată spontan în următoarele 24 ore.
Aspiratul bronșic și lavajul bronho-alveolar
□
Se efectueauă numai în unitățile care au instrumentarul necesar (bronhoscop) și personal cu competență în acest domeniu. Produsul se recoltează direct în recipiente sterile, în timpul manevrei de lavaj prin bronhoscop
□
Se va recolta și sputa eliminată spontan în următoarele 24 de ore.
Lavajul laringo-traheal (spălătura bronșică), lavajul bronho-alveolar și aspiratul bronșic au avantajul că ulterior acestora este posibil să se elimine spută de bună calitate.
Lavajul gastric / aspiratul gastric
este recomandat atunci când niciuna dintre metodele menționate anterior nu este posibilă, pentru următoarele categorii de pacienți:
□
imagine radiologică sugestivă pentru tuberculoză, fără confirmare bacteriologică după examinarea unor produse patologice obținute prin alte metode de recoltare
□
pacienți necooperanți sau care își înghit sputa
□
pacienți care nu expectorează din cauza unor afecțiuni coexistente: comă, boli neurologice etc.
□
copiii mici care nu știu să expectoreze. Sensibilitatea metodei scade cu creșterea vârstei.
Recoltarea se face dimineața la trezire, după repaus alimentar de 8-10 ore, înainte ca pacientul să mănânce. Prelucrarea acestui tip de produs se face în primele 4 ore de la recoltare.
Recoltarea:
□
se aspiră conținutul stomacului dimineața la trezirea din somn (aspirat gastric) cu sonde de unică folosință adaptate la seringă (sonde Nelaton la copii sau sonde Einhorn la adulți)
□
dacă volumul de lichid recoltat este redus, se introduc pe sondă 5-10 ml ser fiziologic la copii, respectiv 20-30 ml la adulți
□
se aspiră conținutul gastric cu o seringă sterilă de 50 ml
□
lichidul aspirat se colectează în recipient steril, cu capac filetat, cu capacitate adecvată.
Proba trebuie prelucrată cât mai curând după recoltare, deoarece micobacteriile sunt distruse rapid ca efect al acidității gastrice. Dacă nu se poate prelucra în primele 4 ore, se ajustează pH-ul fluidului la valori neutre cu bicarbonat de sodiu sau fosfat disodic. Neutralizarea se face prin amestec în părți egale de aspirat gastric și fosfat disodic 15 % steril sau bicarbonat de sodiu 10%, steril, în prezența unui indicator de pH.
Combinarea inducerii sputei prin folosirea de aerosoli urmată în 30 de minute de lavaj/aspirat gastric crește procentul de culturi pozitive, comparativ cu utilizarea fiecăreia dintre cele două metode separat.
Recoltarea de produse biologice pentru diagnosticul tuberculozei extrapulmonare
Laboratorul poate să primească spre prelucrare pentru examen bacteriologic o varietate de produse biologice. Acestea se pot împărți în 2 categorii:
□
produse biologice din colecții închise - de obicei fără microorganisme de contaminare
□
produse biologice care conțin floră normală de contaminare sau produse care nu au fost recoltate aseptic.
ColecJiile închise
Fluidele (cefalorahidian, pleural, pericardic, sinovial, ascitic, sânge), precum și alte produse (puroi, măduvă osoasă), sunt recoltate de către medic, utilizând tehnici de aspirație sau proceduri chirurgicale. În majoritatea cazurilor de TB extrapulmonară numărul micobacteriilor din leziuni este mic, dar însămânțarea pe medii de cultură cu calități nutritive diferite poate crește șansa izolării acestora. Se folosesc mediul solid Lowenstein - Jensen și, în funcție de dotarea laboratorului, mediul lichid în sistem automat de cultivare.
Dacă produsele patologice cu consistență lichidă nu pot fi însămânțate imediat pe medii de cultură, pentru a preveni formarea flocoanelor de fibrină, la 10 ml lichid biologic se va adăuga o picătură de citrat de sodiu 20% steril sau 0,2 mg/ml heparină. Nu se va folosi EDTA, care inhibă creșterea micobacteriilor. Transportul la laborator trebuie făcut cât mai repede. Dacă nu se poate asigura transportul imediat către laborator sau se întârzie prelucrarea, se va păstra la frigider la 4-80 C, dar nu se va congela.
Fragmente tisulare (piese de biopsie)
Produsul recoltat trebuie pus după recoltare în recipient steril, fără soluție de fixare sau conservare. Pentru a preveni deshidratarea în cazul fragmentelor mici, se admite adăugarea unei cantități reduse de ser fiziologic steril, cu menținerea la temperatură sub 100 C.
Urina
Examinarea mai multor eșantioane crește șansa evidențierii micobacteriilor. Recoltarea urinei pentru suspiciunea de TB uro-genitală trebuie să fie precedată de:
□
Excluderea unei infecții urinare netuberculoase prin efectuarea de uroculturi pentru micobacterii cu creștere rapidă.
□
Cu 24-48 ore înaintea recoltării se recomandă regim hiposodat, reducerea cantității de lichide ingerate și suspendarea administrării de produse care influențează viabilitatea MT (vitamina C, aspirină, streptomicină, amikacină, kanamicină, chinolone, rifampicină, claritromicină, amoxicilină- clavulanat, imipenem).
Recoltarea urinei:
□
se face toaleta riguroasă a organelor genitale externe prin spălare cu apă și săpun;
□
se recoltează prima urină de dimineață, în 2-3 zile succesive
□
se aruncă primul jet de urină, apoi se colectează într-un recipient steril de 120 ml restul urinii eliminate
□
se transportă imediat la laborator pentru a fi prelucrat
□
dacă nu se poate prelucra imediat se admite păstrarea urinei la frigider (-4 -80 C) cel mult 24 ore.
ANEXA 3
DIAGNOSTICUL DE LABORATOR AL TUBERCULOZEI
LEGENDA LPA - Geno Type, Line Probe Assay, Xpert - GeneXpertMTB/RIF, LJ - cultura pe mediul solid Lowenstein-Jensen, MGIT - sistem automat de cultivare in mediul lichid, Linia 1 - medicamente antituberculoase de linia I, Linia 2 - medicamente antituberculoase de linia II
În funcție de dotarea laboratorului, experiența personalului și solicitarea clinicianului, ținând seama de categoria de caz, se va selecta calea de urmat pentru fiecare situație:
a.
Produsele provenite de la toate cazurile (cazuri noi, recidive, monitorizare) se prelucrează obligatoriu pentru microscopie și cultură pe mediul Lowenstein - Jensen, indiferent ce alte metode se pot folosi într-un laborator. Se prelucrează și se însămânțează pe acest mediu toate tipurile de produse patologice, cu excepția sângelui pentru hemoculturi, care necesită sistem special de cultivare (centrifugare-liză).
b.
Dacă este un caz eligibil pentru cultivare în mediul lichid, respectiv
suspect de TB cu rezistență
(contact cu un caz MDR, abandon repetat, recidivă, colectivitate supraaglomerată, persoană fără adăpost),
pacient infectat HIV suspect de TB, copil suspect de TB,
unul dintre produsele prelucrate se va însămânța pe două tuburi cu mediul Lowenstein - Jensen și un tub cu mediul lichid, celălalt produs însămânțându-se doar pe mediul Lowenstein - Jensen.
c.
Produsele extrapulmonare, sputele hemoptoice și sângele nu se prelucrează folosind versiunile actuale ale testelor genetice, indiferent de rezultatul examenului microscopic. Ele vor fi prelucrate în funcție de sediul leziunii, tehnica de recoltare și de gradul de contaminare inițială și se însămânțează obligatoriu pe mediul Lowenstein - Jensen (mai puțin sângele).
d.
Se exclud de la însămânțarea pe mediul lichid urina și sângele (pentru acesta din urmă se folosesc sisteme speciale).
e.
Produsele pozitiv BAAR se pot testa genetic prin test direct pentru confirmarea MT și evidențierea modificărilor indicatoare de rezistență la RMP sau RMP/H (GeneXpertRif TB, respectiv GenoType- LPA). Cazuri eligibile:
suspect de tuberculoză cu rezistență
(contact cu un caz MDR, abandon repetat, recidivă, colectivitate supraaglomerată, persoană fără adăpost),
pacient infectat HIV suspect de tuberculoză, copil suspect de tuberculoză . Pentru cazurile cu rezultat direct preliminar care indică modificări sugestive pentru rezistență, imediat după pozitivarea culturii (preferabil mediul lichid), aceasta se trimite la LNR pentru a se va face test genetic indirect GenoType (linia a doua) și antibiogramă fenotipică completă (linia I, linia a II-a).
f.
Culturile de
M. tuberculosis
izolate de la toți bolnavii cazuri noi și retratamente se testează la RMP- H prin metoda convențională sau folosind sistemul automat din dotare.
g.
În caz de suspiciune de TB cu rezistență se poate folosi metodă fenotipică rapidă directă (mediul lichid, în sistem automat) pentru sputa pozitivă BAAR la examenul microscopic. Trebuie ținut seama de faptul că rata de contaminare este comparabilă cu a culturilor, deci este necesară experiență în folosirea sistemului automat de cultivare când se decide folosirea ABG directe.
h.
În cazurile HIV pozitiv sau spută prelevată de la copii, se pot testa genetic (folosind GeneXpert RifTB) și cazuri negative BAAR la microscopie.
i.
Culturile pozitive după 4 luni de la începerea tratamentului și toate culturile izolate după fiecare 6 luni de la ABG anterioară se testează genetic pentru detectarea rezistenței RMP/H și prin metodă fenotipică rapidă în mediul lichid, urmată de metoda convențională, față de substanțe de linia I și linia a II-a.
j.
Nu se face test genetic direct pentru produsele recoltate în cursul monitorizării, indiferent de rezultatul examenului microscopic, rezultatele nefiind concludente. Pentru aceste cazuri se poate face test genetic indirect (i), urmat de teste fenotipice.
k.
Cultura de la T0 pentru cazul nou contact cu MDR se va testa prin metodă convențională față de substanțele antiTB de linia I și linia a II-a imediat după pozitivare.
75
l.
Culturile izolate de la pacienții MDR cunoscuți se testează față de medicamentele de linia I și linia a II-a prin metodă convențională și test genetic indirect pentru aminoglicozide/polipeptide și fluorochinolone).
m.
Orice cultură pozitivă (mai mult de 10 colonii) crescută după conversia bacteriologică se va testa prin metodă fenotipică rapidă - mediul lichid, pentru substanțe de linia I.
n.
Pentru supravegherea dinamicii prevalenței MDR se vor efectua teste fenotipice de sensibilitate la
H și RMP la toate culturile pozitive cu mai mult de 10 colonii, obținute înainte de începerea tratamentului , chiar dacă testul genetic direct efectuat nu a pus în evidență modificări sugestive de rezistență. Antibiograma se efectuează în laboratoarele de nivel III care au implementat sistemul de management al calității, care au obținut rezultate excelente și foarte bune la controlul extern al calității cel puțin pentru RH.
ANEXA 4
DIAGNOSTICUL DIFERENȚIAL AL OPACITĂȚILOR HILARE (DUPĂ GHIDUL 2006)
Substrat morfologic
Afecțiune
Elemente de diferențiere
Vasculare
anevrismul arterei pulmonare principale
Ganglionare
(adenopatiile hilare)
Boli infecțioase: bacteriene, virale, bacterii atipice, micotice și parazitare
Examen bacteriologic
Remitere rapidă sub tratament etiologic
Tumorale: brohopulmonare primitive, metastatice, boala Hodgkin, leucemii
Bronhoscopie, examen histopatologic, examen hematologic
CT toracic
Sarcoidoză
Afectare concomitentă cutanată, oculară,
osteoarticulară, neurologică Angiotensin covertază, biopsii diverse
Fibroză interstițială difuză (FID) prin tracțiunea hilurilor și dilatare de arteră pulmonară (HTP)
Clinic: dispnee progresivă și febră Sindrom funcțional respirator restrictiv Biopsia pulmonară și lavajul bronho -
alveolar (LBA) au un aspect caracteristic
Hemosideroza pulmonară idiopatică (Același mecanism ca la FID)
Hemoptizii repetate, anemie feriprivă cronică și fibroză interstițială difuză
În spută și în lichidul de LBA se evidențiază
siderofage
Infecții bronho - pulmonare
Pneumonii cu localizare hilară și perihilară
Examen bacteriologic
Remitere rapidă sub tratament etiologic
Opacități proiectate în hil prin suprapunerea unor structuri anatomice
de vecinatate
Tumori mediastinale Hipertrofie de timus Anevrism de aortă ascendentă Deformări vertebrale
Brohhoscopie Echo Doppler
Radiografie toracică de profil CT toracic
Variante anormale ale arterei sau venei pulmonare principale
Vase pulmonare ectatice
Șunturi stânga dreapta (DSV/DSA)
Hipoplazia pulmonară cu
Radioscopie pulmonară
Echografie Doppler
CT toracic
ANEXA 5
INVESTIGAȚII ÎN DIAGNOSTICUL TUBERCULOZEI EXTRAPULMONARE LA COPIL
Forme de tuberculoză extrapulmonară
Investigație
TB ganglionară periferică
Biopsie / aspirat ganglionar Ecografie
TB miliară
Radiografie toracică / CT toracic Puncție lombară
Meningita TB
Puncție lombară
CT / RMN craniu; cultură și Xpert
Pleurezie TB
Radiografie toracică / ecografie toracică Punctie pleurală; cultură și Xpert
TB peritoneală (abdominală)
Ecografie abdominală / CT abdominal cu substanță de contrast Puncție peritoneală; cultură și Xpert
TB osteoarticulară
Radiografie osoasă / articulară CT / RMN osos / articular Puncție biopsie osoasă / articulară
TB pericardică
Ecografie Doppler cardiacă Puncție pericardică Puncție biopsie pericardică
TB cutanată
Biopsie (examen histopatologic)
TB otică
Puncție aspirativă / examen bacteriologic Audiogramă
RMN craniu
TB oculară
Examen fund de ochi
TB urogenitală
Examen sumar de urină Urocultură
Radiografie reno-vezicală, urografie, ultrasonografie, cistoscopie, CT renal/RMN renal
Etiologie
Presiune
mm H2O
Celule/mm 3
Proteine
mg%
Glico-rahie
mg%/ml
Examen
bacteriologic
LCR normal
70-200
0-5 limf.
20-45
50-75
Tuberculoză
Crescută
50-500 limf.
45-500
0-45
Examen direct negativ
Culturi pozitive
la 12-30%
Virale
Normală sau crescută
0-2000 limf.
Normale
sau crescute
45-100
Negativ
Bacteriene
insuficient tratate
Crescută
500-2000 limf.
Polinucleare alterate
50-1000
0-45
Germeni la
examen direct și cultură
Meningococ
Crescută
200-500
polinucleare alterate
Normale
Normală
Sediment meningococ intra
și extracelular
Meningite aseptice, traumatisme, abcese și
tromboză
Normală
Crescute
Normale sau crescute
Normală
Negativ
Toxoplasmoză
congenitală
Crescută
50-500
monocite
Crescute
Normală sau
crescută
Serologie
pozitivă
Comă diabetică
Normală
Normale sau
crescute
Normale
Crescută
-
Meningism
Normală
Normale
Normale
sau crescute
Normală
Negativ
Sifilis
Crescută
10-500 limf.
45-400
15-75
Serologie
pozitivă
Scleroză
multiplă
Normală/
crescută
Normale/cresc
ute
Normale/
crescute
Normală
Gamaglobuline
crescute
ANEXA 6 DIAGNOSTICUL DIFERENȚIAL AL MENINGITELOR CU LICHID CLAR
ANEXA 7 DIAGNOSTICUL DIFERENȚIAL AL PLEUREZIEI CU EXUDAT
Exudat
Elemente de diagnostic diferențial
Citologie
Bacteriologie
Examene speciale
Proteine > 3 g/dl Prot pl/prot sg > 0,5
Glicopleurie < 0,60 g/l Nr leucocite > 1000/mm3 LDH pl > 200 u/l
LDH pl/LDH sg > 0,6
Tuberculoză
> 50% Ly
identif
Mt
ADA pl > 40 u/l
Para-pneumonic
predominant
PMN
± floră nespecifică
Examen bacteriologic spută
Viral
predominant Ly
lichid steril
Serologie pozitivă
Supurații subdiafragm.
predominant PMN
lichid steril
Echo abdomen, CT abdomen
Boli colagen
Nespecifică
lichid steril
serologie pozitivă (RAA, LES)
Pleurezie neoplazică
citologie tumorală
lichid steril
markeri tumorali
ANEXA 8 MEDICAMENTELE ANTI-TUBERCULOASE DE PRIMA LINIE,
FORME DE PREZENTARE, CALE DE ADMINISTRARE, REACȚII ADVERSE, INTERACȚIUNEA MEDICAMENTOASĂ, FORMULE PEDIATRICE COMBINATE
Medicamentul
Forma de prezentare/ Cale de administrare
Reacții adverse posibile
Izoniazida (H)
tablete de 100 mg, 300 mg/ oral sirop 20mg/ml/oral - 100 ml/flacon
soluție 100 mg/ml/iv
Creștere moderată a enzimelor hepatice, grețuri, vărsături, hepatită, nevrită periferică, rush
Rifampicina (R)
capsule de 150, 300 mg/oral soluție injectabilă 50mg/ml
Colorarea în oranj a secrețiilor, vărsături, reacții flu-like, hepatită, trombocitopenie,
hipersensibilizare
Pirazinamida (Z)
tablete 500 mg /oral
Hepatotoxicitate, hiperuricemie, artralgii,
tulburări gastro-intestinale
Etambutol (E)
tablete 100mg/ 250 mg, 400 mg
/oral
soluție injectabilă 100 mg/ml i.v.
Nevrită optică potențial reversibilă, discromatopsie, tulburări gastro-intestinale
Streptomicina (S)
soluție flacon 1 g/ im
Nevrită optică, nefrotoxicitate
Influența medicamentelor antituberculoase asupra concentrației serice a altor medicamente
Medicamentul
Interacțiunea medicamentoasă
Izoniazida (H)
Rifampicina (R)
Influențează metabolizarea unor anticonvulsivante: fenitoina, carbamazepina
Crește activitatea toxică a acetaminofenului, teofilinei
Crește concentrația serică a diazepamului.
Scade activitatea unor antibiotice (doxiciclina, cloramfenicol) și a levotiroxinei
Reduce concentrația serică a corticosteroizilor, benzodiazepinelor, fenitoinei, digoxinei, nifedipinei, propanololului, endoprilului, teofilinei
Scade eficacitatea anticoncepționalelor orale
Poate interacționa cu unele medicamente antiretrovirale, compromițând atât tratamentul anti-TB cât și pe cel antiretroviral.
Medicamentele anti-tuberculoase esențiale - doze la administrare intermitentă- 3/7*
Medicamentul
Ritm de administrare 3/7
Doza
Doza maximă
Izoniazida Rifampicina Pirazinamida*
10-15 mg/kg
10-20 mg/kg
35-40 mg/kg
600 mg
600 mg
2000 mg
Administrarea intermitentă 3/7 nu se aplică copilului infectat HIV, acesta primind tratament zilnic pe întreaga durată a terapiei.
*Pirazinamida se administrează numai în cazul monorezistenței la izoniazidă sau la rifampicină.
Formule pediatrice combinate recomandate de OMS
Interval de greutate
Număr de comprimate
Fază intensivă
Fază de continuare
RZH
E
RH
75/50/150
100
75/50
4-7 kg
1
1
1
8-11 kg
2
2
2
12-15 kg
3
3
3
16-24 kg
4
4
4
Peste 25 kg
Se utilizează medicația și dozele caracteristice adultului
ANEXA 9 REACȚII ADVERSE LA MEDICAMENTELE ANTITUBERCULOASE
DE LINIA I ȘI MANAGEMENTUL LOR
Efecte adverse
Medicație
Atitudine
MINORE
Se continuă tratamentul, se verifică dozele.
Anorexie, greață, dureri abdominale
Z, R
Se va efectua controlul funcției hepatice. Se administrează tratamentul în timpul prânzului sau la culcare.
Dureri articulare
Z
Aspirina / AINS; se monitorizează acidul uric și, dacă nivelurile sunt mari, se administrează Allopurinol.
Senzația de arsură - membrele inferioare
H
Piridoxină 50-75 mg/zi (5-10 mg/kg).
Colorarea în portocaliu a urinei
R
Se asigură pacientul că este un fenomen normal.
Flu syndrom
R
Doze intermitente.
Schimbarea ritmului de administrare din intermitent în zilnic.
MAJORE
Se întrerupe medicamentul responsabil.
Prurit, rash cutanat, peteșii
S, H, R, Z
Dacă nu este intens, se vor administra antihistaminice.
Dacă este generalizat, se sistează medicamentele responsabile și se reintroduc după remisiune, la 2-3 zile, în ordinea următoare: R, H, E și Z.
În cazul apariției rash-ului peteșial, se face controlul trombocitelor și, dacă asociază trombocitopenie , se întrerupe administrarea Rifampicinei.
Surditate
S
Se întrerupe S și se înlocuiește cu E.
Vertij sau nistagmus
S
Se întrerupe S și se înlocuiește cu E.
Icter, hepatită (excluderea altor cauze)
H, Z, R
Hepatita medicamentoasă este atestată de creșterea AST de 3 ori în cazul asocierii simptomelor clinice (sindrom dispeptic, icter) sau când AST crește de 5 ori la pacientul asimptomatic.
Se întrerupe medicamentul cauzator și se utilizează medicamente cu hepatotoxicitate mică.
Confuzie (suspiciune de insuficiență hepatică acută)
Majoritatea medicamentelor anti TB
Se întrerupe tratamentul, se investighează funcția hepatică și protrombina.
Alterarea acuității vizuale
E
Se întrerupe E.
Șoc, purpură, insuficiență renală acută
R
Se întrerupe R.
ANEXA 10 REACȚIILE ADVERSE ALE MEDICAȚIEI ANTITUBERCULOASE ȘI
MANAGEMENTUL LOR
Reacții adverse
Medicamente implicate
Sugestii pentru managementul reacției adverse
Comentarii
Reacții anafilactice
TOATE MEDICAMENTELE
se exclud alte cauze tratament: epinefrina 0,2-0,5 1:1000 sc, repetat/ hidratare/ corticoizi/ antihistaminice
Reacțiile apar în interval de minute de la administrarea medicamentului
Simptome: dispnee, elemente maculo-papuloase, angioedem, hipotensiune, febră, șoc
Simptome neuro- psihice
CS, H, TZD, OFX
se exclud alte cauze
-se verifică doza din schemă
-se reduce doza
-dacă simptomele persistă/severe se întrerupe administrarea medicamentului suspicionat
- se crește doza de piridoxină la 300 mg/zi
Consult de specialitate NPI obligatoriu
Istoricul medical cu antecedente de convulsii nu constituie contraindicație pentru a primi aceste medicamente dar poate fi factor de risc în apariția
convulsiilor pe perioada tratament TB DR
Neuropatia periferică
H, S, KM, AK, ETM, OFX
Neuropatia este, în general, reversibilă
Simptome psihotice
CS, OFX, H, ETM, PTM
-se exclude altă etiologie
-consult NPI
-se întrerupe agentul cauzal pentru o perioadă scurtă (1-4 săptămâni) până la controlul simptomelor, apoi se reintroduce medicamentul în doze mici
-se crește doza de piridoxină
-dacă simptomele revin/persistă se înlocuiește antituberculostaticul
Reacții moderate: iritabilitate, anxietate, tulburări de comportament
Reacții severe: psihoze, depresii, tendințe de suicid Unii pacienți necesită medicație antipsihotică pentru întreaga perioadă a tratamentului pentru tuberculoză.
Istoricul cu antecedente de afecțiuni psihiatrice nu constituie contraindicație în administrarea schemei terapeutice.
Simptomele sunt, de obicei, reversibile
Hepato- toxicitate
H, R, Z, ETM, OFX, CFZ
se sistează administrarea medicamentelor suspicionate
-se asteaptă revenirea la valori fiziologice a funcției hepatice și se reintoduc treptat, secvențial,
Dacă se diagnostichează hepatită toxică post medicamentoasă se întrerupe administrarea medicamentului incriminat
-
se crește doza de piridoxină
-
kinetofizioterapie
-
vitamine
-
dacă persistă/severă se întrerupe administrarea medicamentului
cu monitorizarea funcției hepatice
-vitamine, hepatoprotectoare
-se crește doza de piridoxină
Reacții adverse
Medicamente implicate
Sugestii pentru managementul reacției adverse
Comentarii
Grețuri Vărsături Diaree
PAS, H, E ,Z, PTM, ETM, CLR, THA
-rehidratare conform pierderilor (Astrup) și a necesarului fiziologic
-Tratament antispastic, antiemetic (atenție la indicarea și dozarea Metoclopramidului) se scad dozele medicamentelor implicate
administrare PAS în 3 prize/zi (dacă este posibil plicurile cu granule) sau administrare seara
Simptomele sunt comune în timpul primei luni de tratament și de obicei dispar la administrarea medicației adjuvante.
Monitorizarea nivelului de electroliți (Astrup/ionograma, uree, creatinina, teste hepatice)
Simptomele sunt reversibile după întreruperea agentului cauzal
Gastrite
PAS, PTM, H, E, Z, THZ
- se administrează tratamentul în timpul mesei sau după masă
-se evită administrarea alimentelor iritante
-se scade doza medicamentului implicat sau întreruperea acestuia (1-7 zile)
-se administrează antiacide
-se efectuează în scop diagnostic examen imagistic abdominal, endoscopia digestivă
Simptomele sunt reversibile la întreruperea medicamentului suspectat Atenție la administrarea antiacidelor pentru a nu interfera cu absorbția medicației anti-TB
- PTM se poate administra seara, în doze scăzute, doze ce pot crește treptat (2 săpt.) până la atingerea dozei optime
Insuficiență renală
S, KM, AK, CPM, E
-se elimină alte cauze
-se monitorizează funcția renală și nivelul electroliților (atentie la K)
-se întrerupe agentul cauzal
-se înlocuiește SM cu CPM
-după normalizarea funcției renale se reintroduce noul anti- TB în doze reduse /discontinuu (3x/săptămână)
De obicei reversibilă la oprirea tratamentului. Factori de risc:
Durere la locul injectării
S, KM, AK
-se adaugă anestezic local în seringă
-se alternează locul injecției
-se împarte doza și se administrează în locuri diferite
Nevrita optică
E
-se întrerupe EMB
- se înlocuiște cu un
-Reversibilă la întreruperea EMB
-
PAS: de la 12 g la 8 g
-
PTM de la 1g la 0,75g la 0,5g PAS se administrează după celelalte medicamente cu lapte, iaurt
-
dozele și durata tratamentului
-
hipokaliemia
-
afecțiunile hepatice și renale
Discroma- topsie
antituberculos substitutiv
-Administrarea EMB sub 5 ani este contraindicată conform indexului de
farmaco-vigilență
Reacții adverse
Medicamente implicate
Sugestii pentru managementul reacției adverse
Comentarii
Artralgii
Z, OFX
-se verifică dozajul
-se reduce /sistează doza medicamentului.
-se tratează cu AINS
-fizioterapie
-Allopurinol
Simptomele se atenuează în timp chiar fără nici o intervenție
Nivelul acidului uric poate fi crescut, dar are relevanță terapeutică redusă, iar terapia antigută nu a dovedit
beneficii la acești pacienți
Dermatite alergice
Toate medicamentele antiTB
Ușoare : prurit, rash
-trat.: antihistaminice, corticosteroizi topici
Severe:
-se întrerup medicamentele antituberculoase
-se admin. antihistaminice, corticosteroizi, iar când simptomele dispar se reintroduc treptat antiTB unul cate unul la 2 zile interval, cu monitorizare clinică
Sindrom Stevens Johnson:
se întrerupe tratamentul
Hipotiroi- dism
PAS, ETM,THA mai
ales în combinații
se trat. cu levothyroxine și se crește doza cu0,05mg/zi la dg. clinic, sau când creste TSH si scade T4.Dacă TSH crește dar T4este cu valori fiziologice se repetă testele peste o lună dacă simptomele nu se ameliorează se reduc dozele de PAS, ETM sau se întrerupe
administrarea lor.
Normalizarea TSH după 2-3 luni când se întrerupe levothyroxin-ul
Complet reversibil la întreruperea PAS sau ETM
Hipoacuzia
S, KM, AK, CPM, CLR
audiograma la inceperea terapiei.
se înlocuiește SM, KM cu CPM. se reduc/întrerup dozele medicamentelor antituberculoase
se monitorizează: audiograma
Influențează aderența pacientului la tratament Pacientul trebuie informat asupra posibilității apariției hipoacuziei pe parcursul tratamentului.
Hipoacuzia este ireversibilă, dar progresia ei poate fi prevenită
ANEXA 10-b NOUA CLASIFICARE OMS (APRILIE 2016) A MEDICAMENTELOR
DE LINIA A DOUA
Medicines recommended for the treatment of rifampicin-resistant and multidrug-resistant TB 1
A.
Fluoroquinolones 2
Levofloxacin Moxifloxacin Gatifloxacin
B.
Second-line injectable agents
Amikacin
Capreomycin Kanamycin (Streptomycin) 3
Lfx Mfx Gfx Am Cm Km (S)
C.
Other core second-line agents 2
D.
Add-on agents
(not part of the core MDR- TB regimen)
Ethionamide / Prothionamide Cycloserine / Terizidone Linezolid
Clofazimine
D1
Pyrazinamide
Ethambutol
High-dose isoniazid
D2
Bedaquiline Delamanid
D3
p-aminosalicylic acid
Imipenem-cilastatin4 Meropenem 4
Amoxicillin-clavulanate4 (Thioacetazone) 5
Eto / Pto Cs / Trd Lzd
Cfz Z E
Hh Bdq Dlm PAS
Ipm Mpm Amx-Clv (T)
1
This regrouping is intended to guide the design of conventional regimens; for shorter regimens lasting 9-12 months the composition is usually standardised (See Section A)
2
Medicines in Groups A and C are shown by decreasing order of usual preference for use (subject to other considerations; see text)
3
Refer to the text for the conditions under which streptomycin may substitute other injectable agents. Resistance to streptomycin alone does not qualify for the definition of extensively drug-resistant TB (XDR-TB) (26)
4
Carbapenems and clavulanate are meant to be used together; clavulanate is only available in formulations combined with amoxicillin
5
HIV-status must be tested and confirmed to be negative before thioacetazone is started
ANEXA 11
FIȘA DE TRATAMENT A TUBERCULOZEI
ANEXA 12
FIȘA DE EVALUARE A TRATAMENTULUI
ANEXA 13
FIȘA DE TRATAMENT PENTRU CAZUL CU MDR TB
ANEXA 14
CIRCUITUL INFORMAȚIONAL RAPI
Toate semnele și simptomele interpretate drept RAPI vor fi obligatoriu anunțate telefonic medicului epidemiolog din DSPJ/DSPMB pe teritoriul căruia funcționează unitatea sanitară care a depistat cazul. Raportarea se face conform HG 589/2007 și Ordinul MS nr. 1466/2008 art 7, litera a.
DSPJ/DSPMB pe teritoriul căruia funcționează unitatea sanitară care a depistat cazul de RAPI va completa fișa de supraveghere, după caz, împreună cu DSP din județul de domiciliu și per/sau județul unde a fost vaccinat copilul. Codul de caz va fi alocat de DSPJ al județului care depistează cazul.
Formularul de Fișă de supraveghere a cazului RAPI, anexa metodologiei de supraveghere RAPI aflată pe site-ul INSP poate fi descărcat de pe site-ul web al INSP:
http://www.insp.gov.ro/
.
Acest formular va fi completat cu date preliminare de către medicul curant care a depistat cazul, va fi semnat de acesta și va fi trimis în cel mai scurt timp la DSPJ/DSPMB pe teritoriul căruia funcționează unitatea sanitară care a depistat cazul de RAPI. Actualizarea datelor (completări/modificări la orice rubrică a fișei) se va face imediat după ce acestea sunt disponibile.
DSPJ/DSPMB care a depistat cazul va trimite fișa de supraveghere în cel mai scurt timp la CRSP la care este arondat și la CNSCBT.
ANEXA 15
FIȘA DE MONITORIZARE MDR
ANEXA 16
ANUNȚAREA CAZULUI DE TUBERCULOZĂ
Spitalul............................................
Județul.............................................
Către:
DISPENSATUL PNF.............................................
JUDEȚUL..............................................................
FIȘA DE ANUNȚARE A CAZULUI DE TUBERCULOZĂ
Nume ...................................Prenume.....................................Cod pacient..........................................
CNP....................................Sex M F Data nașterii (zz/ll/aaaa).....................................................
Localitatea/Județul/Țara nașterii.......................................................................................................
Domiciliul real..................................................................................................................................
Domiciliul legal................................................................................................................................ Asigurat Da Nu Medic de familie ............................................Adresa MF.................................
Data internării (zz/ll/aaaa)
Categorie caz*N R E A C Localizare ** PE
Diagnostic principal TB....................................................................................................................
Diagnostice secundare TB................................................................................................................
Boli asociate.....................................................................................................................................
Examen histopatologic......................................................................................................................
Examen bacteriologic la internare:
Produsul patologic.............................
Data intrării produsului în laborator
Laboratorul
Nr. registru laborator
Rezultat microscopie
Rezultat cultură
Test genetic EFECTUAT: DA/NU
Tip Test/Rezultat
Identificare Genetică a Complexului M. tuberculosis
Identificare Genetică a indicatorilor de rezistență
GenoType
NU
DA
NU
R
H
Q
Agl/Cap
Data
Nr. Lab.
Xpert/MTB/RIF
Data
Nr. Lab.
Antibiograma: sensibilitate.................................rezistență..............................................................
Data începerii tramentului actual (zz/ll/aaaa).................................................................................. Regim terapeutic: 1 2 3 individualizat
medicamente/doze (mg)................................
Ritm de administrare
/
Anunț post-mortem Data decesului (zz/ll/aaaa).........................................
Data completării.............................
MEDIC (semnătura și parafa)...................................
*N - caz nou; R - recidivă; E - retratament după eșec; A - retratament după abandon; C-cronic
**P- pulmonară; E - extrapulmonară.
SCRISOARE MEDICALĂ
ANEXA 17
FIȘA DE DECLARARE A CAZULUI TB
ANEXA 18
FIȘA ANUNȚĂRII INFIRMĂRII CAZULUI
Spitalul............................................
Județul.............................................
Către:
DISPENSATUL PNF.............................................
JUDEȚUL..............................................................
FIȘA DE ANUNȚARE A INFIRMĂRII DIAGNOSTICULUI DE TUBERCULOZĂ ÎN SPITAL* Nume ...................................Prenume.....................................Cod pacient......................................
CNP....................................Sex M F Data nașterii (zz/ll/aaaa)..................................................
Domiciliul real.............................................................................................................................
Data internării (zz/ll/aaaa)
Categorie caz*N R E A C Localizare ** PE
Diagnostic principal TB............................................................................................................
Diagnostice secundare TB.........................................................................................................
Examen histopatologic...................................................................................................................
Examen bacteriologic la internare:
Produsul patologic.......................... Rezultat microscopie ................................................. Rezultat cultură.......................................
Tip Test/Rezultat
Identificare Genetică a Complexului M. tuberculosis
Identificare Genetică a indicatorilor de rezistență
GenoType
NU
DA
NU
R
H
Q
Agl/Cap
Data
Nr. Lab.
Xpert/MTB/RIF
Data
Nr. Lab.
Antibiograma: sensibilitate......................................rezistență..........................................................
Data începerii trtamentului actual (zz/ll/aaaa).............................................................................. Regim terapeutic: 1 2 3 individualizat
Data trimiterii fișei de anunțare a cazului.................................................................................. Diagnostic final........................................................................................................................
Motivele infirmării.................................................................................................................
Data completării.............................
MEDIC (semnătura și parafa)...................................
*Se completează de către medicul din spital în cazul în care un pacient cu tuberculoză anunțat anterior este infirmat în cursul internării
**N - caz nou; R - recidivă; E - retratament după eșec; A - retratament după abandon; C-cronic
***P- pulmonară; E - extrapulmonară.
ANEXA 19
FIȘA ANUNȚĂRII DECESULUI ÎN SPITAL
Spitalul............................................
Județul.............................................
Către:
DISPENSATUL PNF .............................................
JUDEȚUL ..............................................................
FIȘA DE ANUNȚARE A DECESULUI PACIENTULUI CU TUBERCULOZĂ ÎN SPITAL*
Nume ...................................Prenume.....................................Cod pacient.....................................
CNP....................................Sex M F Data nașterii (zz/ll/aaaa)...........................................
Domiciliul real..................................................................................................................
Data internării (zz/ll/aaaa)
Categorie caz*N R E A C Localizare ** PE
Diagnostic principal TB............................................................................................................
Diagnostice secundare TB.....................................................................................................
Boli asociate...........................................................................................................................
Examen histopatologic....................................................................................................
Examen bacteriologic la internare:
Produsul patologic..................... Rezultat microscopie ........................................................... Rezultat cultură..............................
Test genetic EFECTUAT: DA/NU
Tip Test/Rezultat
Identificare Genetică a
Complexului M. tuberculosis
Identificare Genetică a indicatorilor de rezistență
GenoType
NU
DA
NU
R
H
Q
Agl/Cap
Data
Nr. Lab.
Xpert/MTB/RIF
Data
Nr. Lab.
Antibiograma: sensibilitate......................................rezistență....................................................
Data începerii trtamentului actual (zz/ll/aaaa)........................................................................ Regim terapeutic: 1 2 3 individualizat
Data trimiterii fișei de anunțare a cazului..................................................................................
Data decesului...................................................... Cauza decesului: TB □
altă cazuză □
Data completării.............................
MEDIC (semnătura și parafa)...................................
*Se completează de către medicul din spital în cazul în care un pacient cu tuberculoză anunțat anterior decedează în cursul internării
**N - caz nou; R - recidivă; E - retratament după eșec; A - retratament după abandon; C-cronic
***P- pulmonară; E - extrapulmonară.
ANEXA 20
FIȘA DE TRANSFER A CAZULUI TB
ANEXA 21
FIȘA DE CHIMIOPROFILAXIE
ANEXA 22
FIȘA PENTRU ANCHETA EPIDEMIOLOGICĂ
ANEXA III
GHID NAȚIONAL MANAGEMENTUL CAZURILOR TB-HIV
2017
AUTORI:
Adriana SOCACI
Medic primar pneumolog Doctor în Științe Medicale
Coordonator tehnic județean Timiș - Program Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberculozei
Coordonator Ambulatoriul de Specialitate - Dispensar TB, Spitalul Clinic de Boli Infecțioase și Pneumoftiziologie "Dr. Victor Babeș" Timișoara
Formator în domeniul pneumologiei - prevenirea și terapia TB
Președinte Secțiunea de Tuberculoză -Societatea Română de Pneumologie
Adriana HRISTEA
Conf. Univ. Universitatea de Medicină și Farmacie " Carol Davila" București
Medic primar boli infecțioase Institutul Național de Boli Infecțioase " Prof. Dr. Matei Balș" București
Doctor în Științe Medicale
Mulțumiri speciale domnului Dr.
Alberto MATTEELLI,
Consultant tehnic din partea Organizației Mondiale a Sănătății pentru sprijinul acordat în realizarea acestui material.
Anexa nr. 1 Managementul colaborativ TB-HIV Anexa nr. 2 Fișa de anunțare a cazului TB
Anexa nr. 3 Testul cutanat la tuberculină - tehnică și interpretare Anexa nr. 4 Măsuri de control al infecției tuberculoase
Anexa nr. 5 Clasificarea zonelor de risc infecțios
Anexa nr. 6 Algoritm diagnostic meningită/meningoencefalită TB la PIHIV Anexa nr. 7 Definirea cazului de TB, notificarea, înregistrarea și raportarea Anexa nr. 8 Fișe consiliere pre/post-test HIV
Anexa nr. 9 Medicamente anti TB de linia I Anexa nr. 10. Fișa de tratament anti TB
Anexa nr.11.a Grupurile de medicamente utilizate în tratamentul TB DR
Anexa nr.11.b Medicamente anti TB de linia a II-a utilizate la adulți și copii în prezent în cadrul PNPSCT
Anexa nr. 12. Fișa de tratament/de monitorizare a evoluției sub tratament a pacientului cu TB MDR/XDR
Anexa nr. 13 Doze ARV
Anexa nr. 14. Reacții adverse la medicamentele antituberculoase de linia I și linia a-II-a Anexa nr. 15. Reacții adverse ale medicației antiretrovirale
Anexa nr. 16 Categoriile de evaluare a rezultatului tratamentului pentru cazul de TB DS Anexa nr.17 Categoriile de evaluare finală a pacienților cu MDR-TB
Listă abrevieri:
3TC = Lamivudina ABC = Abacavir ATV = Atazanavir
ATV/r =Atazanavir/Ritonavir ARV = Antiretroviral
ART = Tratament antiretroviral BAAR = Bacili acid-alcoolo-rezistenți BCG = Bacil Calmette Guerin
CNLAS = Comisia Națională de Luptă Anti-SIDA DAA= Antivirale cu acțiune directă
d4T = Stavudina ddI = Didanozina
DOT = Tratament direct observat DPF = Dispensar de Pneumoftiziologie DRV = Darunavir
DRV/r = Darunavir/Ritonavir DTG = Dolutegravir
E = Etambutol EFV = Efavirenz ETR = Etravirina
FPV = Fosamprenavir
FPV/r = Fosamprenavir/Ritonavir FTC = Emtricitabina
H = Izoniazidă
HAART = Highly active antiretroviral therapy HIV = Virusul imunodeficienței umane
IDV = Indinavir
IGRA = Teste de detectare a interferonului gama IP = Inhibitori ai proteazei
IRIS = Immune reconstitution inflamatory syndrome (Sindromul de reconstrucție inflamatorie imună) ITBL = Infecția tuberculoasă latentă
LNR = Laborator Național de Referință MT = Mycobacterium tuberculosis
MVC = Maraviroc NFV = Nelfinavir
NTM = Micobacterii non-tuberculoase NVP = Nevirapina
PCR = Reacția de polimerizare în lanț PIHIV = Persoane infectate cu HIV PF = Pneumoftiziologie
PPD = Derivat proteic purificat (tuberculina)
PNPSCT = Programul Național de Prevenire, Supreveghere și Control al Tuberculozei PNPSCHS = Programul Național de Prevenire, Supreveghere și Control al infecției HIV/SIDA R = Rifampicină
RFB = Rifabutină RAL = Raltegravir RTV = Ritonavir S = Streptomicină
SIDA = Sindromul imunodeficienței umane dobândite SQV = Saquinavir
SQV/r = Saquinavir/Ritonavir TB = Tuberculoză
TBP = TB pulmonară TBEP = TB extrapulmonară
TB/HIV = TB și coinfecție HIV TB DR = TB cu germeni rezistenți
TB DS = TB cu germeni chimiosensibili
TB MDR = TB cu microorganisme rezistente cel puțin la INH și RMP
TB XDR = TB cu rezistență cel puțin la HIN, RMP, Q și injectabil de linia a II-a TCT = Test cutanat la tuberculină
TDF = Tenofovir
TPI = Terapie preventivă cu izoniazdă TPV = Tipranavir
TPV/r = Tipranavir/Ritonavir
UDI = Utilizatorii de droguri injectabile ZDV = Zidovudina
Z = Pirazinamidă
1
Introducere
Tuberculoza (TB) și infecția HIV sunt probleme majore de sănătate publică în lume, cu o interacțiune mutuală considerabilă. La nivel mondial se constată o emergență a ambelor infecții, infecția HIV reprezentând o provocare pentru programul de control al tuberculozei. La persoanele infectate cu HIV (PIHIV), probabilitatea de a dezvolta TB este de peste 29 de ori mai mare față de subiecții neinfectați din aceeași țară. HIV favorizează progresia infecției cu
M. tuberculosis
la TB activă, atât la pacienții recent infectați, cât și la cei cu infecție latentă. Infecția HIV crește numărul pacienților cu TB prin creșterea transmiterii TB atât în comunitate, cât și la nivel nozocomial. În plus, crește și riscul de transmitere a TB multirezistente (MDR-TB), dacă nu se asigură măsuri eficiente și continue pentru controlul infecției. Anumite grupuri populaționale sunt în mod particular expuse, cum ar fi persoanele private de libertate, din cauza factorilor de mediu (aglomeratie, cu condiții de ventilație proaste, iluminare inadecvată și expunere la pacienți bolnavi de TB), sau persoanele cu comportament la risc din cauza utilizării de droguri, tatuaje, sex neprotejat. TB este responsabilă de o treime din decesele în rândul PIHIV și un sfert din toate decesele prin TB. Pe de altă parte, TB reprezintă o cauză de deces prevenibilă. Aceste date subliniază necesitatea unui diagnostic precoce și a unui tratament adecvat al TB la toți pacienții infectați cu HIV.
Epidemiologia coinfecției TB/HIV în Europa și în România
În 2014, se estimează că 1.2 milioane de oameni (12%) din 9.6 milioane care au dezvoltat TB în întreaga lume erau infectați cu HIV. Cele mai multe cazuri (74%) au fost diagnosticate în Africa. În 2004 au decedat 570.000 de pacienți coinfectați HIV/TB, acest număr scăzând în 2014 la 390.000 (o scădere cu 32%). Global, în 2014, 51% din pacienții cu TB aveau un test HIV pozitiv, ceea ce a reprezentat a mică creștere de la 49% în 2013.
Situația epidemiologică a coinfecției HIV/TB nu este bine cunoscută în Europa, deoarece nu toate țările raportează aceste date, iar în cele care raportează situația coinfecției este parțial cunoscută. În 2012, în EU/EEA, 16 țări raportau 60,6% cazuri de TB cu status pentru infecția HIV cunoscut, proporția cazurilor cu coinfecție HIV fiind de 5,5%. În 2013, erau raportate 64 844 cazuri de TB în 30 EU/EEA țări, dintre care 4,9% cu coinfecție HIV. În cele mai multe din țările Europei, epidemiile HIV/SIDA și TB sunt independente și majoritatea pacienților cu TB nu sunt infectați cu HIV. În România, în 2014 proporția cazurilor de TB cu status HIV cunoscut era 69,5% (11046/15899) cazuri cu 2,8% (311) cazuri de coinfecție HIV/TB între cele cu status HIV cunoscut.
Comunitatea internațională recunoaște importanța luptei împotriva epidemiilor de TB și HIV/SIDA și recomandă o colaborare mai strânsă între programele de control TB și HIV/SIDA. Consolidarea aspectelor de management comun al serviciilor de TB și HIV la nivel de prevenire, diagnostic și tratament, precum și buna organizare a acestor servicii contribuie la atingerea obiectivelor de dezvoltare ale mileniului precum și a obiectivelor OMS referitoare la strategia END-TB.
2
Organizarea serviciilor pentru persoanele cu coinfecție TB/HIV
Scopul
managementului colaborativ TB/HIV este de a consolida capacitatea de răspuns a programelor TB și HIV pentru prevenirea și controlul coinfecției TB-HIV în România.
Cadrul de lucru pentru colaborarea între cele două programe naționale de sănătate
(Anexa nr.1)
La nivel național , activitățile comune TB/HIV vor fi coordonate de o
comisie națională comună PNPSCT-PNPSCHS , formată din specialiști din cele două programe și din reprezentanți ai factorilor de decizie (Ministerul Sănătății, Casa Națională de Asigurări de Sănătate etc.) precum și din reprezentanți ai organizațiilor neguvernamentele și asociații de pacienți. Principalele responsabilități ale comisiei vor fi planificarea, coordonarea, colaborarea intersectorială/intrasectorială și integrarea activităților comune TB-HIV în programele de luptă împotriva TB și respectiv HIV/SIDA.
La nivel județean,
responsabilii pentru implementarea planului de activități comune TB/HIV vor fi coordonatorii tehnici județeni ai
PNPSCT
și respectiv coordonatorii județeni ai
PNPSCHS .
La nivelul îngrijirilor locale TB/HIV,
activitățile comune TB/HIV vor fi derulate prin unitățile medicale din rețelele celor două programe de sănătate, respectiv de pneumologie (spitalele/secțiile de pneumoftiziologie (PF) și dispensare de PF (DPF) și de boli infecțioase (spitale/secții de boli infecțioase și secții de zi).
Mod de colaborare : trimestrială, telefonic sau prin email și întâlniri comune, trimestriale.
Comunicare trimestrială telefonic sau prin email pentru:
-
confruntarea listelor de cazuri noi HIV cu cele de cazuri noi TB
-
confruntarea listelor de cazuri noi de TB la pacienți cunoscuți cu infecție HIV
-
confruntarea listelor de cazuri noi de HIV la pacienții aflați în supravegherea rețelei de pneumologie
-
stabilirea cazurilor noi de co-infecții TB-HIV
-
înregistrarea eșecurilor terapeutice ale TB la PIHIV
•
Întâlniri comune trimestriale și oricând este nevoie pentru:
-
analiza datelor colectate trimestrial și raportarea lor numeric către eșalonul superior (pentru PNPSCHS la Centrele Regionale HIV/SIDA, iar pentru PNPSCT la Institutul Marius Nasta)
-
analiza eșecurilor terapeutice TB și HIV
-
verificarea raportărilor pe fișele tipizate pentru cele două infecții în parte.
Diagnosticul/confirmarea infecție HIV vezi capitolul 5.2. Anunțarea cazului HIV
•
La externarea pacientului cu TB din spitalul de PF, medicul pneumolog va scrie pe biletul de ieșire al acestuia dacă a fost testat HIV și rezultatul testului (dacă a fost testat): "HIV negativ", dacă rezultatul a fost negativ și "infecție H/S" (HIV/SIDA - pentru respectarea confldențialității), dacă rezultatul a fost pozitiv.
•
Medicul pneumolog din DPF în care este înregistrat pacientul va completa atât în fișa acestuia, cât și în Registrul TB al dispensarului și în baza electronică națională TB, statusul HIV al cazului (indiferent dacă acesta este pozitiv, negativ sau netestat).
•
Dacă infecția HIV este confirmată la pacientul TB, pacientul va fi evaluat în cel mai scurt timp de medicul infecționist în cadrul secției/spitalului TB unde este internat. Medicul infecționist va stabili cât mai repede tratamentul antiretroviral pentru pacient și va completa fișa de declarare a cazului HIV, care va fi transmisă atât la Centrul Regional HIV/SIDA căruia îi este arondat, cât și la DSPJ.
•
Centrele Regionale HIV/SIDA vor lua în evidență regional pacientul și vor trimite fișele completate către Compartimentul pentru Monitorizarea și Evaluarea Infecției HIV/SIDA, din cadrul Institutului Național de Boli lnfecțioase "Matei Balș", iar DSPJ vor trimite datele la direcția de specialitate din Ministerul Sănătății.
•
Nurnărul de testări efectuate la pacienții cu TB de către cele două spitale de boli infecțioase din București și rezultatele testărilor vor fi comunicate lunar la DSP București.
•
Direcțiile de Sănătate Publică Județene și a Municipiului București vor raporta la direcția de specialitate din Ministerul Sănătății, la Compartimentul pentru Monitorizarea și Evaluarea Infecției HIV/SIDA și la Unitatea Centrală de Coordonare a PNPSCT, trimestrial, urnătoarele date:
-
Nr. total testări HIV efectuate la pacienți TB;
-
Nr. total pacienți TB testați:
-
Nr. teste HIV pozitive la pacienți TB;
-
Nr. total pacienți TB cu un test HIV pozitiv.
Aceste informații se raportează trimestrial și la Unitatea de Asistență Tehnică și Management (UATM) UATM - HIV.
Buget, materiale consumabile, teste
•
Materialele consumabile pentru recoltarea probelor de sânge în unitățile de PF (mănuși, vacutainere, criotuburi etc.) vor fi achiziționate din fondurile "Programul Național de Prevenire, Supreveghere și Control al Tuberculozei" - secțiunea "Transferuri".
•
Testele ELISA pentru efectuarea testărilor HIV vor fi achiziționate centralizat din fondurile "Programul Național de Prevenire, Supreveghere și Control al infecției HIV/SIDA" și vor fi repartizate către laboratoarele acreditate de program, respectiv laboratoarele specializate din cadrul DSPJ, Institutul "Ion Cantacuzino", Institutul Național de Boli Infecțioase "Matei Balș", Spitalul Clinic de Boli Infecțioase și Tropicale "Victor Babeș" (de la DSPJ vor fi distribuite unităților sanitare
-
spitalele/secțiile de PF și DPF, dacă laboratoarele au dotarea corespunzătoare pentru a efectua teste ELISA).
Testele Western Blot nu se achiziționează centralizat. Contravaloarea acestor teste lucrate la Institutul "Ion Cantacuzino" va fi solicitată lunar la decontare de la PNPSCHS de către DSPJ-ul care a trimis proba la Institutul "Ion Cantacuzino".
Diagnosticul TB vezi capitolul 5.1
Anunțarea cazului TB:
•
Anunțarea cazului de tuberculoză pulmonară (TBP) la PIHIV se face de către medicul pneumolog care a stabilit diagnosticul și tratamentul anti TB, la DPF pe teritoriul caruia se află domiciliul real al pacientului, prin fișa de anunțare a cazului de TB. La rubrica diagnostic secundar, convențional, se va marca "HS" (HIV/SIDA), pentru a se evita încălcarea dreptului la confidențialitate. Se va înscrie de asemenea dacă pacientul primește ART sau chimioprofilaxie cu Cotrimoxazol.
•
Anunțarea cazului de tuberculoză extrapulmonară (TBEP) (ex. meningită, ganglionară etc.) la un pacient cu HIV/SIDA se face de către medicul infecționist care îngrijește pacientul, împreună cu medicul pneumolog cu care s-a efectuat consultul, acolo unde este posibil, la DPF pe teritoriul căruia se află domiciliul real al pacientului, prin fișa de anunțare a cazului de TB. La rubrica diagnostic secundar, convențional, se va marca "HS" (HIV/SIDA), pentru a se evita încălcarea dreptului la confidențialitate. Se va înscrie de asemenea dacă pacientul primește tratament antiretroviral sau chimioprofilaxie cu Cotrimoxazol.
•
La un pacient seropozitiv HIV cu TBP, TBEP, îngrijit într-un spital de boli infecțioase, instituirea tratamentului anti TB va fi anunțată de către medicul infecționist, împreună cu medicul penumolog care a efectuat consultul, la DPF pe teritoriul căruia se află domiciliul real al pacientului, prin fișa de anunțare a cazului de TB. La rubrica diagnostic secundar, convențional, se va marca
"HS"
(HIV/SIDA), pentru a se evita încălcarea dreptului la condifențialitate. Se va înscrie de asemenea dacă pacientul primește tratament antiretroviral (ART) sau chimioprofilaxie cu Cotrimoxazol.
•
Fișa de anunțare a cazului TB (Anexa nr.2) se va transmite la DPF pe teritoriul căruia se află domiciliul real al pacientului, în termen de 7 zile de la inițierea tratamentului anti TB, prin fax sau poștă.
În baza anunțării cazului, DPF va înregistra cazul și va completa datele despre infecția HIV, ART și chimioprofilaxia cu Cotrimoxazol atât în fișa pacientului, cât și în Registrul TB al dispensarului și în baza de date electronică națională TB.
Managementul cazurilor cu co-infecție TB-HIV
i.
Tratamentul, monitorizarea și evaluarea TB:
•
În cazul confirmării TB la un pacient cu infecție HIV, instituirea tratamentului anti TB are prioritate față de ART.
•
Tratamentul bolnavilor cu infecție HIV și TBP frotiu pozitiv se va face în secțiile de PF din orașele în care există Centre Regionale HIV/SIDA (București, Brașov, Craiova, Constanța, Cluj, Tg. Mureș, Iași, Timișoara), unde se va iniția și asigura în timp util ART.
•
Pacienții HIV pozitivi cu TBP cu frotiu negativ sau cu TBEP vor putea fi tratați în secțiile de boli infecțioase din orașele în care există Centre Regionale HIV/SIDA.
•
Pacienții cu TB DR (MDR/XDR) vor fi tratați în Centrul MDR București pentru a li se putea face evaluarea necesară inițierii ART în Institutul Național de Boli Infecțioase "Prof. Dr. Matei Balș" și Spitalul de Boli Infecțioase și Tropicale „Dr Victor Babeș".
•
Pentru PIHIV internați în spitalele de BI, specialistul de boli infecțioase va solicita consult de PF, ca urmare va iniția tratamentul anti TB, cu monitorizare ulterioară la externare la DPF teritorial unde cazul a fost înregistrat.
•
Orice tratament anti TB va fi monitorizat pe fișa de tratament anti TB tipizată (Anexa nr. 10 pentru TB DS/Anexa nr. 12 pentru TB MDR/DXR), întocmită odată cu stabilirea schemei terapeutice de către/împreună cu medicul pneumolog. Dacă inițierea tratamentului anti TB s-a facut în serviciul de boli infecțioase, cei doi specialiști - de boli infecțioase și pneumoftiziolog - vor semna fișa de monitorizare a tratamentului anti TB.
•
În cazul în care secțiile de boli infecțioase nu sunt în același spital cu serviciul de pneumoftiziologie, medicația anti TB se va obține, pe toată perioada internării pacientului, de la DPF din localitatea în care se află spitalul/secția de boli infecțioase, unde este internat pacientul cu coinfecție TB-HIV.
•
Tratamentul va fi administrat zilnic și în faza de continuare, iar durata tratamentului va fi în funcție de categoria de caz tratată: TBDS sau TB DR (MDR/XDR).
•
Externarea pacientului se va face atunci când acesta devine negativ la examenul microscopic al sputei, sau, în cazul pacientului cu TBP negativă la examenul microscopic al sputei, la decizia medicului care îl îngrijește, în urma consultului cu medicul pneumolog care a stabilit schema terapeutică.
•
La externare pacientului
i se vor înmâna biletul de ieșire și fișa de tratament anti TB,
va fi îndrumat la DPF teritorial la care a fost anunțat în prealabil existența cazului TB, pentru continuarea tratamentului, monitorizare și evaluare,
tratamentul
anti
TB,
monitorizarea
evoluției
bacteriologice
și
evaluarea
rezultatului tratamentului vor fi asigurate de către DPF teritoriale, conform recornandărilor PNPSCT,
va fi îndrumat pentru luarea în evidență la Centrul Regional HIV/SIDA, evaluare monitorizare și tratament.
ii.
Tratamentul, monitorizarea și evaluarea infecției HIV:
•
Conduita de tratament și gestionarea acestor cazuri va respecta protocoalele clinice stabilite prin ghidul național de tratament HIV/SIDA.
•
ART și urmărirea evoluției infecției HIV se vor asigura de către secțiile de boli infecțioase teritoriale, coordonate de Centrele Regionale HIV/SIDA.
•
Medicația ARV va fi ridicată lunar pe semnătură de către pacienți din secțiile de boli infecțioase teritoriale.
•
Centrele Regionale HIV/SIDA vor asigură evaluarea clinică, irnunologică și virusologică a pacientului la un interval de 6 luni sau ori de câte ori este nevoie.
iii.
Chimioprofilaxia
•
Chimioprofilaxia anti TB
la PIHIV se asigură conform ghidului național PNPSCT și va fi monitorizată de medicul infecționist care îngrijește pacientul în colaborare cu medicul pneumolog.
•
Chimioprofilaxia cu Cotrimoxazol
este recomandată și monitorizată conform ghidului național de tratament HIV/SIDA, de către medicul infecționist care îngrijește pacientul.
Legătura între cele două sisteme naționale de înregistrare și raportare a cazurilor cu TB și respectiv HIV/SIDA
•
La nivelul sistemelor naționale electronice de înregistrare a cazurilor cu TB și respectiv a cazurilor cu HIV/SIDA se va verifica trimestrial raportarea tuturor pacienților cu dublă infecție în ambele baze de date. Verificarea se va face în cursul lunii următoare trimestrului care s-a încheiat, cu identificarea (CNP) pentru fiecare caz în parte și precizarea formei clinice de TB.
•
În cazul lipsei unor pacienți sau a unor informații privind unii pacienți dintr-una din cele două baze de date, aceasta va fi completată cu informațiile din baza de date parteneră.
•
În primul trimestru al anului, rapoartele extrase din bazele de date pentru anul precedent vor fi de asemenea confruntate, iar toate diferențele vor fi identificate și cauzele lor remediate.
•
Rezultatele agreate de către ambele Comisii de specialitate vor fi publicate pe website-rile comisiilor și în revistele de specialitate și vor constitui baza calculării indicatorilor recomandați de OMS pentru monitorizarea și evaluarea activităților TB/HIV.
3
Managementul infecției tuberculoase latente (ITBL) la persoanele care trăiesc cu HIV/SIDA
3.1
Diagnosticarea ITBL
Infecția HIV este unul dintre cei mai importanți factori de risc cunoscuți ai reactivării tuberculozei latente. Riscul de progresie a ITBL la boală TB este de
7- 10% în fiecare an
pentru persoanele infectate HIV și cu ITBL în absența ARV, în timp ce persoanele cu ITBL și HIV negativ au un risc de boală TB de 10% pe parcusrul vieții.
Adulții infectați cu HIV trebuie
investigați
pentru TB cu un algoritm clinic. Cei care nu au nici un simptom ca: tuse, febră, scădere în greutate sau transpirații nocturne nu este probabil să aibă TB și trebuie să fie testați pentru ITBL. Cei care au cel puțin un simptom trebuie investigați pentru posibilitatea existenței TB sau a altei infecții.
Copiii infectați cu HIV care au oricare din următoarele simptome: absența creșterii în greutate, febră, tuse sau contact cu TB, ar putea avea TB și trebuie investigați pentru TB sau altă boală. Dacă evaluarea infirmă TB, acestor copii trebuie să li se ofere terapie preventivă cu izoniazidă (TPI) .
Testele pentru diagnosticarea ITBL sunt testul cutanat la tuberculină (TCT) și testele de detectare a interferonului gama (IGRA).
TCT
este utilizat ca instrument de screening (în scop diagnostic și epidemiologic) pentru depistarea infecției cu
M. tuberculosis ; singurul test acceptat este IDR la tuberculină prin tehnica Mantoux, produsul biologic utilizat fiind derivatul proteic purificat (PPD) - tuberculina (Anexa nr. 3).
TCT la persoanele infectate HIV este considerat pozitiv dacă diametrul indurației este 2 5mm.
Testele IGRA
au aceleași recomandări și semnificație ca și TCT, dar permit excluderea rezultatelor tuberculinice
fals
pozitive
postvaccinale
BCG
și
a
micobacteriilor
non-tuberculoase
(NTM); investigația nu se efectuează de rutină.
PNPSCT recomandă utilizarea unui algoritm de screening al ITBL bazat pe simptome clinice, radiografie toracică și TCT ca test uzual (în funcție de posibilitățile financiare se poate utiliza și IGRA) pentru diagnosticul ITBL
la persoanle care trăiesc cu infecție HIV, inclusiv la copii HIV pozitiv (figura 1).
Testarea anuală
ar trebui luată în considerare pentru persoanele infectate HIV care au avut ințial TCT negativ și care sunt sau rămân în categoria "risc ridicat" de expunere la MT (contacți ai bolnavilor TB, persoane private de libertate, persoane fără domiciliu, utilizatori de droguri injectabile, imigranți, persoane cu diabet); de asemenea, copiii infectați HIV ar trebui testați TCT anual, începând de la vârsta de 12 luni.
Adulți și adolescenți:
tuse persistenă febră (subfebrilități) scădere în greutate transpirații nocturne
Copii peste 12 luni :
absențacreșterii în greutate* febră
tuse persistentă istoric de contact TB
Figura 1 Algoritm pentru diagnostic ITBL la persoanele care trăiesc cu HIV
Persoane care trăiesc cu HIV
Unități PNF-DPF
Simptome TB
oricare din:
DA
NU
TCT/IGRA
Pozitiv
Radiografie torace
Investigare pentru TB și alte boli ***
Modificări
Normală
ITBL
Tratament
DPF
Anunțare BI
Reevaluare anuală
Negativ **
*absența creșterii în greutate este definită ca: scădere în greutate sau greutate mică în raport cu vârsta (greutatea corespunzătoare vârstei mai mică decât -3z scor) sau subponderal (greutatea corespunzătoare vârstei mai mică decât -2z scor) sau scădere în greutate (>5%) de la ultima vizită, sau aplatizarea curbei creșterii în greutate
** Persoanele pentru care tratamentul ITBL nu este indicat ar trebui să primească informații cu privire la TB, inclusiv importanța de a solicita îngrijire dacă simptomele TB se dezvoltă.
*** Investigațiile pentru TB ar trebui să fie efectuate în conformitate cu recomandările PNPSCT
3.2
Tratamentul ITBL
TPI este o intervenție importantă pentru prevenirea și reducerea riscului de TB activă la PIHIV. TPI ar trebui să se acorde PIHIV și care prezintă ITBL indiferent de gradul de imunosupresie.
Nu există dovezi că TPI crește riscul dezvoltării rezistenței la izoniazidă, de asemenea TPI este sigură și la persoanele care au primit/primesc ART.
Contraindicațiile tratamentului ITBL
includ:
✓
copilul peste 12 luni cu hepatită activă (acută sau cronică) și simptome de neuropatie periferică;
✓
adolescentul și adultul cu consum regulat de alcool, hepatită activă (acută sau cronică) și simptome de neuropatie periferică.
Conform PNPSCT, în acord cu recomandările OMS, pentru PIHIV, în funcție de vârstă, TPI se administrează astfel:
Adulți și adolescenți , care au TCT pozitiv și care nu este probabil să aibă TB activă - Izoniazidă (H), 5 mg/Kgc/zi, administrată zilnic timp de 6 luni (maxim 300 mg/zi). TPI trebuie considerată indiferent de gradul de imunosupresie și, de asemenea, pacienților cu ART.
Copii cu vârsta de peste 12 luni
și care este improbabil să aibă TB activă pe baza screeningului de simptome și care nu au contact cu caz de TB - Izoniazidă (H), 10 mg/kgc/zi, administrată zilnic timp de 9 luni (10 mg/Kgc/zi, maxim 300 mg/zi).
4
Controlul infecției TB în secțiile în care se tratează PIHIV
Măsuri de control al infecțiilor ar trebui să fie o prioritate pentru a reduce transmiterea TB în toate unitățile care oferă îngrijiri de sănătate.
Măsurile de prevenire a transmiterii TB urmăresc limitarea transmiterii bolii de la surse cu potențial de contagiozitate (pacienți cu examen microscopic pozitiv, ce elimină aerosoli care conțin particule infectante) la persoanele care inhalează aerul contaminat cu aerosolii infectanți.
Cea mai eficientă metodă de control al transmiterii nozocomiale a TB este reprezentată de diagnosticul precoce și tratamentul prompt și eficient al cazurilor de TB la pacienții internați.
În fiecare unitate sanitară și specific pentru fiecare departament trebuie evaluat
riscul de transmitere a TB ; acesta este dat de prezența surselor și de procedurile efectuate în zona respectivă. În funcție de gradul de risc, se stabilesc măsurile de control al transmiterii TB ce vor fi aplicate, acestea fiind prevăzute într-un
plan de control al transmiterii TB în unitate.
Plan de control al transmiterii TB
cuprinde un set de activități manageriale, administrative și măsuri de control al mediului precum și măsuri de protecție individuală (Anexa nr. 4):
activități mangeriale
sunt utilizate de către conducerea unității
-
identificarea și nominalizarea unei persoane responsabile cu controlul transmiterii TB în unitate/departament
-
evaluarea riscului de transmitere a TB în unitate și separat pentru fiecare departament
-
reorganizarea sau amenajarea (dacă este cazul) a spațiilor, circuitelor epidemiologice în funcție de riscul de transmitere a TB
-
monitorizarea și evaluarea activității de control al transmiterii infecției TB
activități administrative
o
triajul pacienților
o
stabilirea circuitului pacienților contagioși în unitate/departament
o
scurtarea timpului pentru diagnostic
o
educația pacienților și a vizitatorilor
o
recoltarea corespunzătoare a probelor biologice
o
izolarea pacienților contagioși
o
încurajarea pecienților să cunoască statusul HIV
măsuri de control al mediului
numite uneori și "inginerești" au drept scop reducerea concentrației de particule infectante din aer:
-
ventilație naturală
-
ventilație mecanică cu presiune negativă
-
radiația UV
protecția respiratorie
se aplică întotdeauna în spitalele în care sunt îngrijiți pacienți cu TB
-
măști respiratorii pentru personal medical, vizitatori
-
măști chirurgicale pentru pacienți.
Clasificarea riscului de transmitere a TB pentru fiecare zonă și procedură se face în funcție de
probabilitatea de a întâlni sau de a se produce aerosoli infectanți ce conțin
M. tuberculosis
în
zonă
sau în timpul procedurii respective. Gradul de risc depinde și de măsurile de control a transmiterii TB deja instituite. Conform PNPSCT, riscul de îmbolnăvire prin TB se clasifică în următoarele categorii (Anexa nr.5):
Risc scăzut
(verde):
o zonă sau o procedură dintr-o unitate sanitară cu probabilitate scăzută de expunere a personalului, vizitatorilor sau pacienților deserviți la suspecți sau pacienți cu TB contagioasă sau probe de la astfel de pacienți. Riscul în aceste zone este expunerea întâmplătoare și foarte rară a unui angajat, pacient sau vizitator la TB.
Risc mediu
(galben) :
o zonă sau o procedură din unitatea sanitară cu probabilitate medie de expunere a personalului, vizitatorilor, pacienților la suspecți sau pacienți cu TB sau la nuclei infectanți ce conțin
M. tuberculosis
proveniți de la pacienți sau probe de la pacienți cu TB contagioasă.
Cazurile de TB sau procedurile cu risc mediu apar în aceste unități pe durate scurte de timp sau mai degrabă accidental.
Risc înalt
(portocaliu):
o zonă sau o procedură din unitatea sanitară cu mare probabilitate de a expune personalul la suspecți sau pacienți cu TB contagioasă sau la aerosoli infectanți produși de pacienții cu TB sau produse biologice de la aceștia. Zonele sau procedurile cu risc înalt sunt acelea unde poate fi întâlnit pacientul cu TB sau unde acesta este supus unor proceduri cu risc înalt. În aceste locații se pot întâlni suspecți sau pacienți cu TB MDR sau XDR.
Risc foarte înalt
(roșu) :
o zonă sau o procedură din unitatea sanitară cu o foarte mare probabilitate de expunere a personalului la suspecți sau pacienți cu TB sau la aerosoli infectanți de la pacienți cu TB contagioasă sau la probe biologice ale acestora. Zonele cu risc foarte înalt sunt acelea unde se găsesc mulți suspecți de TB contagioasă (nedetectați) sau unde pacienți cu TB sunt prezenți sau supuși unor proceduri cu risc înalt. În aceste locuri putem întâlni un mare număr de suspecți și pacienți cu TB MDR sau XDR.
Trebuie avut în vedere că această clasificare este orientativă și se bazează numai pe probabilitatea de a întâlni surse de infecție într-o unitate sanitară; riscul poate însă varia după implementarea diferitelor intervenții; de exemplu, riscul intr-un serviciu de tratament a tuberculozei MDR, care obișnuit este clasificat drept foarte înalt, poate scădea într-o categorie inferioară în cazul aplicării măsurilor de control al transmiterii infecției TB (administrative, ventilație, radiație UV).
Există și evaluări ale nivelului riscului ce au la bază criterii cantitative; PNPSCT recomandă evaluarea riscului într-o unitate spitalicească în funcție de numărul de pacienți cu TB ce pot fi întâlniți în acea unitate, de exemplu:
-Pentru o unitate sanitară cu mai mult de 200 paturi în care au fost mai puțin de 6 pacienți cu TB în anul precedent, riscul este considerat scăzut; dacă numărul de pacienți a fost mai mare de 6, unitatea va fi clasificată cu risc mediu.
-Pentru o unitate sanitară cu mai puțin de 200 paturi în care în anul precedent au fost mai puțin de
3 pacienți, ricul este considerat scăzut; dacă numărul pacienților a depășit 3, unitatea este considerată cu risc mediu.
-Pentru un serviciu ambulatoriu, o unitate cu profil medico-social sau domiciliu familial, un număr mai mic de 3 pacienți cu TB în unitate în anul precedent clasifică unitatea ca având un risc scăzut; un număr mai mare de 3 pacienți o clasifică drept unitate cu risc mediu.
-Dovedirea transmiterii TB în unitate sau apariția unui caz la personal o clasează la "risc potențial de transmitere a TB".
5
Diagnosticul TB la PIHIV și al HIV la pacienți cu TB sau suspecți de TB
Toate PIHIV trebuie evaluate pentru TB la vizita inițială și la vizitele de monitorizare a infecției HIV. Testarea HIV, de asemenea, ar trebui efectuată la toate persoanele cu TB. Cele mai importante motive pentru care trebuie facute aceste lucruri sunt următoarele:
PIHIV sunt la risc mai mare pentru a dezvolta TB activă;
TB poate fi un semn indicator al infecției HIV avansată;
TB este una dintre cele mai importante cauze de deces în rândul persoanelor HIV pozitive;
TB influențează progresia clinică a infecției HIV și tratamentul acesteia.
Probabilitatea de a obține un test HIV pozitiv este mai mare în rândul persoanelor cu TB, în special la grupurile populaționale cu "risc ridicat" (contacți ai bolnavilor TB, persoane private de libertate, persoane fără domiciliu, utilizatori de droguri injectabile, irnigranți, persoane cu diabet).
5.1.
Diagnosticul TB la PIHIV
TB activă poate apărea în orice stadiu al infecției HIV, dar manifestările sale variază în funcție de stadiu:
în stadiile incipiente ale infecției HIV
când imunitatea celulară este doar partial compromisă,
TBP
se manifestă în cele mai multe cazuri prin aspectul tipic de infiltrate lobare superioare, cu prezența cavernelor, fără adenopatie semnificativă sau revărsat pleural.
în stadiile avansate ale infecției HIV , este mai frecvent un aspect de tip
TB primară , cu infiltrate interstițiale difuze, adenopatii intratoracice sau aspect de
miliară, prezența
cavităților este rară, revărsate pleurale - aspect de
TBEP . La persoanele sever imunodeprimate poate exista TBP cu aspect radiologic normal. TBEP este frecventă, asociată sau nu cu TBP
Aspectele clinice ale TB, la PIHIV, sunt strâns legate de deficitul imun, pe măsură ce scade nivelul limfocitelor CD4+, aspectele se modifică de la forme tipice localizate, la forme atipice diseminate.
Diagnosticul TB la PIHIV este principalul obiectiv în reducerea morbidității și mortalității în rândul acestei populații.
PIHIV ar trebui să fie testate pentru TB la fiecare viztă la o unitate sanitară.
5.1.1.
Diagnosticul TBP la adulții și adolescenții care trăiesc cu HIV
Screening-ul pentru TBP ar trebui să înceapă în primul rând de la investigarea prezenței următoarelor patru simptome:
tuse persistentă
febră (subfebrilități)
scădere în greutate
transpirații nocturne
prezența unuia sau mai multora din aceste simptome impune aplicarea algoritmului de diagnostic pentru tuberculoză pulmonară (figura 2).
Unități BI
Radiografie torece±modificări BARR negativ
XpertMTB/RIF negativ sau nedisponibil
Figura 2 Algoritm pentru diagnosticul TBP la adulții/adolescenții care trăiesc cu HIV
Adulții și adolescenți care trăiesc cu HIV cu suspiciune TB
Unități PNF-DPF
Radiografie torece
Examen bacteriologic convențional (frotiu și cultură)*
±
XpertMTB/RIF
Radiografie torece±modificări BARR pozitiv/negativ
Xpert MTB+, RIF+
Xpert MTB+, RIF-
Tratament MDR-TB
ABG linia I, II
Tratament TB
TBP probabilă
Investigații suplimentare pentru TB**
Unități BI
TBP improbabilă
NU/parțial răspuns
DA răspuns
Tratament pentru infecție bacteriană*** și sau pneumonie cu Pneumocystis jirovecii
TratamentARV Profilaxie Co-trimoxazol după caz
TPI
Investigații suplimentare pentru TB și alte boli**
DPF
TreatamentARV Profilaxie Co-trimoxazol
*Se recoltează întotdeauna 2 probe de spută separate, chiar și la suspecții la care examenul radiologic pulmonar este normal.
În cazul în care primele 2 probe recoltate sunt negative la examenul microscopic și suspiciunea de TB se menține, se repetă recoltarea după manevre de provocare și examinarea bacteriologică (maxim 4 specimene)
**reevaluare clinică, CT torace, repetare BAAR/ Xpert MTB/RIF, dacă se suspectează TBEP (meningită, limfoadenopatie etc) ar trebui să se obțină specimene extrapulmonare pentu examen Xpert MTB/RIF și cultură
***antibiotic cu spectru larg 10-14 zile (cu excepția fluorochinolonelor).
TBP la PIHIV prezintă aspecte clinic-radiologice diferite în funcție de stadiul deficitului imun (tabel 1):
în stadiul precoce al deficitului imun
, când
numărul de limfocite CD4+ este mai mare de 200/mm
3 , semnele clinice și radiologice ale TBP sunt similare cu cele ale pacienților fără infecție HIV, predominând cazurile cu frotiu pozitiv (75-80%).
în stadiul avansat al deficitului imun
, când
numărul de limfocite CD4+ este mai mic de 200/mm
3 , apar alte simptome și TBP prezintă forme atipice, precum TB miliară, fără leziuni cavitare, asociată unei adenopatii mediastinale și/sau pleurezii.
Tabel 1 Manifestări clinico-radiologice-bacteriologice la pacienții TB/HIV
Manifestări
Deficit imun
Stadiu precoce
(>200CD4/mm 3 )
Stadiu avansat
(<200CD4/mm 3 )
Clinice
Tuberculoză pulmonară
Tuberculoză pulmonară severă
Radiologice
Afectare lobi superiori Cavități
Afectare interstițială, miliară, adenopatii, pleurezie
Absența cavităților
Bacteriologice
Frotiu frecvent pozitiv
Frotiu frecvent negativ
Confirmarea diagnosticului de TB la PIHIV și inițierea tratamentului se fac de către medicul
pneumolog în colaborare cu medicul infecționonist
5.1.2.
Diagnosticul TBP la copiii care trăiesc cu HIV
Sursa de transmitere a TB la copil este de obicei adultul (adesea un membru al familie) cu TBP frotiu-pozitiv. Suspiciunea de TB la copil ar trebui să ducă la investigații ale mamei pentru TBP. TB la copii este în principal cauza unor disfuncționalități în controlul TB la adulți. Un program bun de control al TB este cel mai bun mod de a preveni TB la copii.
Copiii care trăiesc cu HIV au un risc crescut de expunere la TB, infecții, progresie a bolii și morbiditate/mortalitate legate de TB, acest risc fiind influențat de gradul de supresie imună.
Abordarea diagnostică a TBP la copiii care trăiesc cu HIV este în esență aceeași ca pentru copii neinfectați HIV. Confirmarea bacteriologică a TBP la copii fiind dificilă, diagnosticul de cele mai multe ori este de excludere și se bazează pe coroborarea mai multor elemente sugestive și numai într- un număr redus de cazuri pe date microbiologice (tabel 2).
Copii care trăiesc cu HIV și care prezintă oricare din următoarele simptome: absența creșrerii în greutate, febră, tuse persistenă sau istoric de contact TB, ar putea avea TB și ar trebui evaluați în acest sens.
Tabel 2 Abordarea diagnostică a TBP la copiii care trăiesc cu HIV
1.
Istoric de contact TB
cu un adult sau un copil mai mare cu TBP cu frotiu pozitiv
De cele mai multe ori sursa de infecție este mama copilului, sau persoana care petrece cel mai mult timp cu copilul (de reținut: contactul cu sursa poate fi în urmă cu 6 luni până la 2 ani).
2.
Semne clinice
Febră
Tuse persistentă
Apetit diminuat/anorexie
Pierdere în greutate/absența creșterii în greutate*
*Absenta creșterii în greutate este definită ca: scădere în greutate sau greutate mică în raport cu vârsta (greutatea corespunzătoare vârstei mai mică decât -3z scor) sau subponderal (greutatea corespunzătoare vârstei mai mică decât -2z scor) sau scădere în greutate (>5%) de la ultima vizită, sau aplatizarea curbei creșterii în greutate.
Nu există caracteristici specifice ale examenului clinic, care pot confirma că boala prezentă se datoreză TBP. Simptomele respiratorii și bolile pulmonare sunt extrem de frecvente în copilărie, în special la vârsta < 5ani.
În cele mai multe cazuri de suspiciune de TBP, copilul a fost tratat cu antibiotic cu spectru larg, fără răspuns clinic.
3.
Test cutanat la tuberculină
TCT pozitiv � 5mm
TCT semnificativ - salt sau viraj tuberculinic
Un test negativ nu exclude TB
4.
Radiografie torace
Aspecte sugestive:
imagini de tipul opacifiere persistentă cu extindere hilară și aspect nodular.
O radiografie toracică normală poate fi utilă pentru a exclude TBP sau TB miliară la un copil cu simptome sugestive. Copilul care a prezentat tuse persistentă și a primit o cură de antibiotice cu spectru larg ar trebui să repete radiografia toracică după o lună.
5.
Confirmare bacteriologică ori de câte ori este posibil
Produsele recoltate pentru diagnosticul TBP la copil pot fi: sputa expectorată spontan, sputa indusă, aspiratul gastric și aspiratul bronșic. Se recoltează întotdeauna 2 probe de produs separate, chiar și la suspecții la care examenul radiologic pulmonar este normal.
În cazul în care primele 2 probe recoltate sunt negative la examenul microscopic și suspiciunea de TB se menține, se repetă recoltarea și examinarea bacteriologică (maxim 4 specimene).
Xpert MTB / RIF pote fi utilizat, mai degrabă decât examenul bacteriologic convențional (microscopie și cultură convențională), ca test inițial în diagnosticul TB la copii.
5.1.3.
Diagnosticul TBEP la copiii și adulții care trăiesc cu HIV
Abordarea diagnosticului de TBEP la copii este similară cu cea la adulți și necesită investigații speciale de diagnostic.
TBEP poate apărea la orice vârstă, copiii mici și adulții HIV pozitivi sunt deosebit de sensibili, astfel că până la 25% din cazurile de TB la această categorie de pacienți pot fi TBEP. Copiii cu vârsta
< 2 ani sunt la risc de a dezvolta boală TB diseminată de tip miliară sau meningită.
Pacienții de obicei prezintă simptome generale (febră, transpirații nocturne, pierdere în greutate) și caracteristici legate de organul afectat, care sunt similare la adulți și copii.
Diagnosticul de TBEP este adesea dificil și de cele mai multe ori este un diagnostic prezumtiv sau de excludere .
Gradul de certitudine al diagnosticului depinde de disponibilitatea instrumentelor de diagnostic.
Cele mai comune forme de TBEP asociate cu infecția HIV sunt: limfadenopatiile, meningita, miliara, revărsatul pleural, pericardita și peritonita (tabel 3). Mulți pacienți cu TBEP și infecție HIV au asociată TBP sau prezintă tuberculoză diseminată, de aceea trebuie investigați și pentru forma pulmonară de TB (radiografie toracică și examen bacteriologic din spută).
Alte forme de TBEP sunt mai puțin frecvente; nu sunt informații dacă apar mai frecvent la PIHIV față de cele HIV negative.
Tabel 3 Forme comune de TBEP la PIHIV. Abordare diagnostică
Formă TBEP
Caracteristici clinice
Abordare practică a
diagnosticului
TB ganglionară periferică
(în special cervicală)
Adenopatie nedureroasă localizată (mai frecvent la nevelul ganglionilor laterocervicali și supraclaviculari), de consistență elastică sau fermă, de obicei neaderentă de țesuturile adiacente.
Evoluția este nedureroasă, cu apariția fluctuenței și ulterior fistulizare cu eliminare de cazeum.
Rareori se însoțește de manifestări generale
Radiografie torace (pentru a exclude localizarea pulmonară) Biopsie ganglionilor limfatici sau aspiratie cu ac fin
(vezi tabel 4)
Meningita TB (vezi Anexa nr.6)
Semne generale
(febră, transpirații nocturne, pierdere în greutate)
Caracteristici clinice de meningită cronică:
- debut progresiv cu cefalee și tulburări de conștiență,
- adeseori examinarea relevă redoare de ceafă și semn Kernig pozitiv,
- fotofobie, convulsii, paralizii nervi cranieni, paralizii ale membrelor
Puncție lombară
CT cerebral (dacă este disponibil)
Radiografie toracică (pentru a exclude localizarea pulmonară)
Formă TBEP
Caracteristici clinice
Abordare practică a
diagnosticului
TB miliară
Simptome generale
(febră, transpirații nocturne, pierdere în greutate) prezente mai frecvent decât simptome respiratorii
De multe ori simptomatologia clincă marcată de o
febră de origine necunoscută
Hepatosplenomegalie
Tuberculi coroidieni (identificați
fluoroscopic)
Radiografie toracică Examen spută și puncție
lombară (pentru a testa dacă nu există diseminarea bolii)
Pleurezie TB
Durere cu caracter pleural (junghi)
inițial puternică ce are tendința la diminuare odată cu acumularea lichidului
Febră
Tuse
în general uscată, se exacerbează adesea cu modificarea poziției bolnavului
Dispnee cu polipnee
în relație directă cu
volumul revărsatului pleural
Radiografie torace Puncție pleurală±biopsie
Pericardită TB
Simptomatologia sugestivă
reprezentată de semne de pericardită uscată, exudativă sau constrictivă
Coexistența altor focare de TB în organism
(exemplu TBP)
În populația cu prevalență mare a coinfecției TB/HIV, TB este cea mai probabilă cauză a pericarditei chiar dacă nu există confirmarea
bacteriologică sau histologică.
ECG
Ecocadriografie Radiografie torace Puncție pericardică
TB abdominală (peritoneală)
Semne generale
(febră, transpirații nocturne, pierdere în greutate)
Simptomatologie abdominală Ascită
Triada:
ascită
+
febră
+
TCT pozitiv , poate
sugera ca probabilă etiologia tuberculoasă a ascitei.
Ecografie abdominală CT abdominal (dacă este posibil)
Puncție abdominală
Notă:
Toate fluidele recoltate (LCR, lichid pleural, pericardic, lichid de ascită) vor fi analizate și
biochimic și citologic .
Toate produsele patologice recoltate vor fi
examinate bacteriologic pentru TB
prin metoda convențională (frotiu și cultură) și în funcție de dotarea laboratorului prin XpertMTB/RIF
În funcție de localizarea bolii se va efectua și
examen histopatologic
Tabel 4 Algoritm de investigație a limfadenopatiei la PIHIV (în caz de caracteristici ale ganglionilor limfatici altele decât LPG*)
Procedură
Test
Rezultat
Diagnostic
Aspirație cu ac fin a ganglionului limfatic
aspect macroscopic
aspirat
caseum
TB
frotiu BAAR din aspirat
BAAR pozitiv
TB
spută pentru citologie
celule maligne, limfom,
carcinom
malignitate
dacă nu s-a stabilit diagnosticul în urma aspiratului:
Biopsie ganglion limfatic
aspect macroscopic
piesă de biopsie
caseum
TB
frotiu BAAR din piesă
biopsie
BAAR pozitiv
TB
cultură TB din piesă
biopsie
cultură TB pozitivă
TB
examen histologic
granulom și BAAR
granulom fără BAAR
TB
celule maligne
malignitate
Aspectul histologic al ganglionilor limfatici în TB ganglionară la pacienții HIV pozitivi depinde de gradul de imunosupresie și se prezintă astfel:
imunosupresie redusă : ganglioni limfatici cu leziuni cazeificate cu sau fără BAAR
imunosupresie severă : ganglioni limfatici cu reacție celulară redusă cu mulți BAAR.
*LPG-limfadenopatie generalizată caracteristică infecției HIV
Confirmarea diagnosticului de TBEP se face de către medicul specialist de organ sau infecționist iar inițierea tratamentului se face de către medicul pneumolog în colaborare cu medicul infecționist dacă pacientul este internat în serviciul de boli infecțioase.
Definițiile de caz - TBP/TBEP, notificarea, înregistrarea și raportarea vezi Anexa nr.7.
5.2. Diagnosticul infecției HIV la pacienți cu TB sau suspectați a avea TB
Propunerea testării pentru infecția HIV ar trebui să fie făcută de rutină în serviciile în care sunt investigați/tratați pacienți care au TB activă sau sunt suspectați a avea TB. Pacientului trebuie să i se explice motivele pentru care se propune testarea HIV și importanța cunoașterii acestui rezultat pentru un corect management al bolii.
Testarea HIV a acestor pacienți se efectuează conform legislației în vigoare (consiliere pre și post- testare Anexa nr. 8)
Pacientul are dreptul să refuze testarea HIV, iar în această situație se consemnează refuzul pacientului.
Evaluarea inițială include (figura 3):
Consilierea pre-test HIV
Testarea serologică (ELISA și/sau test rapid, urmate în cazul unui rezultat pozitiv sau indeterminat de test de confirmare Western Blot)
Consiliere post-test
Recoltarea probelor, diagnosticul și confirmarea infecției HIV:
În județe:
•
Recoltarea pentru primul test ELISA se va efectua în spitalele/secțiile de PF/boli infecțioase/alte spitale unde este internat pacientul, iar probele de de sânge vor fi transportate și testate la laboratoarele pentru testare HIV de pe lângă Direcțiile de Sănătate Publică Județene (DSPJ) sau în laboratoarele spitalelor unde au fost recoltate, dacă laboratoarele au dotarea corespunzătoare.
•
Rezultatele primului test vor fi comunicate medicului care acordă asistență medicală de specialitate pacientului testat, cu respectarea confidențialității și în timpul cel mai scurt posibil.
•
În cazul unui test HIV pozitiv:
-
pacientului cu TB sau suspect de TB internat și având un prim test HIV pozitiv i se vor recolta 2 eprubete cu sânge simplu (eprubete cu dop roșu), care vor fi trimise la DSPJ. O eprubetă va fi utilizată pentru test HIV ELISA. Dacă rezultatul la această determinare este pozitiv, cea de-a doua eprubetă va fi trimisă direct de către DSPJ la Institutul Cantacuzino pentru test de confirmare Western-Blot. Pacientul nu se va externa înainte de clarificarea statusului HIV.
-
pacientul suspect TB cu frotiu negativ, care nu necesită internare în rețeaua TB, se va îndruma către spitalul/secția de boli infecțioase local pentru evaluare clinică și confirmarea statusului HIV, conform protocolului de supraveghere și monitorizare a infecției HIV.
În București:
•
Probele de de sânge vor fi recoltate în spitalele/secțiile de PF și vor fi transportate pentru testare HIV în laboratoarele din Spitalul de Boli Infecțioase și Tropicale "Victor Babeș" (SBITVB) (pentru secțiile de pneumologie din acest spital), respectiv din Institutul Național de Boli lnfecțioase "Prof. Dr. Matei Balș" (INBIMB), pentru Institutul de Pneumologie "Marius Nasta" și Spitalul "Sf .
Ștefan" sau în laboratoarele spitalelor unde au fost recoltate, dacă laboratoarele au dotarea corespunzătoare.
•
Laboratoarele din SBITVB și din INBIMB vor efectua cel de-al doilea test ELISA în cazul unui test pozitiv, iar confirmarea prin testul Western Blot va fi efectuata de către laboratorul de referință INBIMB și SBITVB. Confirmarea infecției HIV se poate face și prin viremie HIV (ARN-HIV).
•
Rezultatele testelor HIV vor fi comunicate medicului care a solicitat testarea.
•
Se va asigura comunicarea rezultatelor pacientului și consilierea post-testare, atât după primul test pozitiv, cât și după confirmarea prin Western Blot, de către personalul medical în grija căruia se află pacientul la momentul respectiv.
•
Pacientul depistat HIV pozitiv va confirma în scris că a fost informat că este infectat cu HIV și că a beneficiat de consilierea post-testare.
Trebuie subliniat faptul că durata până la instituirea tratamentului ARV trebuie să fie cât mai scurtă (2-4 săptămâni în funcție de localizarea TB, vezi capitol 9), așa încât este importantă asigurarea unui diagnostic al infecției HIV cât mai rapid.
Figura 3 Testare HIV la persoana cu TB suspect/confirmat și confirmarea diagnosticului de infecție cu HIV
Suspect TB TBP/TBEP confirmat
Unități PNF-DPF *
Consiliere pre-testare**
(Ce este infecția HIV Relația TB-HIV)
Ac-anti HIV I. Test rapid/test ELISA
(1 eprubetă sânge simplu)
Sânge trimis la DSPJ
(Rezultatul testului este trimis la solicitant)
Negativ
Pozitiv/ Indeterminat
Retestare peste 3 luni
II.T est ELISA
Test Western-Blot
(2 eprubete sânge simplu)
Sânge trimis la DSPJ
(Rezultatul testului este trimis la solicitant)
Negativ
Pozitiv/ Indeterminat
Consiliere post-testare***
Bilanț pentru încadrare clinico -imunologică Declarare HIV
Unități BI
* Valabil pentru unitățile de PF - de estimat numărul de teste HIV rapide și ELISA care ar fi necesar pentru anul următor și de anunțat la DSPJ-până la 30 iunie - anul în curs.
**/***Fișe de consiliere pre/post-testare a se vedea la anexe
6
Tratamentul
6.1
Tratamentul TB pentru PIHIV
Tratamentul TB la PIHIV este o prioritate și ar trebui să înceapă cât mai curând după ce TB activă a fost diagnosticată; tratarea promptă a TB va reduce mortalitatea legată de TB și riscul de transmitere a bolii.
Tratament anti TB pentru PIHIV, indiferent de localizarea bolii trebuie instituit de medicul
infecționist în colaborare cu medicul pneumolog
Regimurile terapeutice în funcție de forma de TB, recomandate la pacienții TB/HIV (copii și adulți) sunt regimurile standard ale PNPSCT (tabel 5), cu administrare zilnică pe toată durata tratamentului (faza intensivă și faza de continuare). Medicamentele anti TB de linia I-a sunt redate în Anexa nr. 9. Pentru fiecare pacient cu TB DS care începe un tratamentul se completează „Fișa de tratament" (Anexa nr. 10).
Tabel 5 Categorii de tratament în funcție de forma de TB la pacienții cu TB/HIV
Regimul/ Categoria
Forma de TB
Asocierea de medicamente
Faza de atac
7/7 (zilnic)
Faza de continuare
7/7 (zilnic)
I
2 HRZE
sau
2 HRZS
(se va administra la forme severe TBP și TBEP)
Obs:
la cazurile cu frotiu pozitiv la T 2 :
3 HRZE(S)
4 HR
3 HR
Obs:
faza de continuare se prelungește până la o durată totală
a tratamentului de 8-12 luni*
II
cazuri la care nu s-a confirmat o chimiorezistență.
2 HRZSE + 1 HRZE
Obs:
sunt necesare antibiograme fiabile preterapeutic și la
cazurile încă pozitive la T
3
5 HRE
Obs:
la cazurile severe, faza de continuare se prelungește până la o durată totală a tratamentului de 12 luni*
Individualizat
Pentru această categorie sunt recomandate regimuri individualizate (vezi Anexa nr. 9)
Notă: Cifra plasată înaintea fazei reprezintă durata acesteia în luni
*Prelungirea fazei de continuare peste 4 luni pentru regimul I/5 luni pentru regimul II nu se vor interpreta ca regim individualizat. Durata tratamentului pentru formele grave diseminate, hematogene (meningite, miliare) se prelungește la 10-12 luni.
TBP caz nou
TBEP caz nou
TBP / TBP la retratament
-
recidive
la cazuri la care nu s-a confirmat o chimiorezistență;
-
eșec
al tratamentului inițial;
-
tratament după abandon
la
Reacții adverse severe la medicamente de linia I-a
Mono-/polirezistențe
Este obligatorie administrarea tratamentului sub directă observație pe toată durata acestuia!
Recomandările de utilizare a glucocorticoizilor în coinfecția TB/HIV:
Glucocorticoizii sunt substanțe imunodepresive și pot crește riscul asocierii infecțiilor oportuniste la pacienții cu TB infectați HIV. Cu toate acestea, utilizarea lor în cazurile descrise în tabelul nr. 6 este oportună cu un efect pozitiv asupra evoluției TB, chiar și în cazul coinfecției HIV.
Tabel 6 Indicațiile de utilizare a glucocorticoizilor și dozele la pacienții TB/HIV
Indicații de utilizare a glucocorticoizilor
DOZE DE PREDNISOLON/PREDNISON:
Adulți
Copii
Meningita TB
60 mg/zi 4 săptămâni, cu reducerea ulterioară treptată a dozei în decurs de câteva săptămâni.
1-2 mg la kg corp/zi 4 săptămâni, cu reducerea ulterioară treptată a dozei
în
decurs
de
câteva
săptămâni.
Pericardita TB
60 mg/zi 4 săptămâni, apoi 30 mg/zi încă 4 săptămâni, cu reducerea ulterioară treptată a dozei în decurs de câteva săptămâni.
1-2 mg la kg corp/zi 4 săptămâni, apoi 0,5-1 mg la kg corp/zi încă 4 săptămâni, cu reducerea ulterioară treptată a dozei în decurs de câteva
săptămâni.
6.2. Tratamentul TB MDR/XDR pentru PIHIV
Tratamentul TB MDR/XDR are importanță practică deosebită din cauza costurilor mari pe care le implică și dificultăților provocate de durata prelungită, cu medicamente greu de tolerat.
Toate cazurile de TB MDR/XDR indiferent de statusul HIV trebuie discutate în Comisia MDR,
care funcționează în cele două centre de excelență de la București și Bisericani.
Se recomandă internarea tuturor pacienților pozitivi în unități spitalicești de profil. Centrele specializate de tratament al TB chimiorezistente trebuie valorificate pentru tratamentul unui număr cât mai mare de pacienți în faza intensivă.
Se recomandă ca pacienții să rămână spitalizați cel puțin până la negativarea microscopică a sputei, de preferat până la conversia în cultură
(minim 2 culturi consecutive negative).
Pentru pacienții la care Comisiile Centrelor MDR nu identifică resurse terapeutice se impune luarea tuturor măsurilor necesare izolării cazurilor în scopul limitării transmiterii infecției, la domiciliu sau în unități spitalicești corespunzătoare.
Stabilirea regimului de tratament pentru TB MDR / XDR
se bazează pe ABG efectuată pentru medicamentele de linia I și a II-a într-un LNR.
În tratamentul TB MDR/XDR la pacienții cu sau fără infecție HIV se utilizează grupurile de medicamente redate în Anexele nr. 11 a și 11 b.
Pentru fiecare pacient cu TB MDR/XDR care începe un tratamentul se completează „Fișa de tratament" pentru cazul cu TB MDR/XDR și „Fișa de monitorizare a evoluției sub tratament" a pacientului cu TB MDR/XDR (Anexa nr. 12).
Schema terapeutică în cazul TB MDR/XDR la pacienții cu/fără infecție HIV se structurază astfel:
Faza intensivă
- definită prin
utilizarea preparatului injectabil , în această fază se folosesc 4 medicamente considerate a fi eficiente plus Z.
■
durata fazei intensive va fi de 8 luni de la negativarea culturii
■
schema va cuprinde medicamentele din grupul 1-5 în ordine ierarhică bazată pe eficiență:
-
se va utiliza orice medicament de linia I-a la care sensibilitatea este păstrată (Z, E)
-
se utilizează un preparat injectabil: AK, K sau CM;
NU se utilizează Streptomicina chiar dacă antibiograma arată sensibilitate, din cauza riscului crescut de rezistență
-
se va utiliza o fluorochinolonă de preferat de generație recentă (Ofloxacina, Levofloxacina, Moxifloxacina).
NU se va utiliza Ciprofloxacina!
-
se vor utiliza medicamente din grupul 4 pentru a completa până la 4 medicamente active, în ordinea: Etionamida/Protionamida - Cicloserina, sau PAS dacă Cicloserina nu poate fi folosită;
-
pentru regimurile care au mai puțin de 4 medicamente active, luați în considerare 1-2 medicamente din grupul 5 (Linezolid, Amoxicilina/Clavulanat, Imipenem, Claritromicina, Tiacetazona, Bedaquilina, Clofazimina, Izoniazida în doze înalte). Regimurile, în funcție de eficacitate, pot conține 5-7 medicamente.
Faza de continuare -
se administrează pe cale orală 4 medicamente la care sensibilitatea este păstrată.
■
Durata fazei de continuare este de 18 luni după conversia în cultură.
■
Conversia culturii
se înregistrează în momentul în care pacientul, inițial pozitiv în cultură, după începerea tratamentului pentru TB MDR/XDR, are 2 controale succesive (efectuate la interval de minimum 30 de zile) negative în cultură.
Regimul recomandat cu medicamente de linia a 2-a trebuie să conțină:
Z ± E + injectabil de linia a II-a + FQ + ETM/PTM + CS/PAS
Durata totală de tratament pentru pacienții cu TB MDR este de 24 luni, iar pentru cazurile TB XDR de până la 36 luni, putând fi modificată (redusă) în funcție de răspunsul la tratament (perioada în luni după conversia în cultură de 18 luni).
6.3 Tratamentul HIV la pacienții cu TB
Adulți
Problemele legate de utilizarea ARV la pacientul cu TB activă includ:
Când se începe tratamentul ARV
Interacțiunile între rifampicină și unele ARV
Toxicitatea cumulativă între anti TB și ARV
Apariția sindromului de reconstrucție imună (immune reconstitution inflammatory syndrome-IRIS)
Necesitatea unui suport pentru tratament, incluzând tratamentul direct supravegheat și integrarea celor două tratamente în procesul îngrijirii pacienților.
Când trebuie început tratamentul ARV
Toți pacienții cu TB activă au boala HIV avansată și sunt deci eligibili indiferent de numărul de CD4 pentru tratamentul antiretroviral (ARV), care trebuie început cât mai devreme după începerea tratamentului anti TB. Cu toate acestea, este preferabil să nu se inițieze simultan tratament pentru HIV și TB.
Tratamentul anti TB trebuie inițiat cât mai precoce:
<50 cel/mm 3
- ARV se va începe îndată ce tratamentul anti TB este tolerat.*
>50 cel/mm 3
- începerea ARV îndată ce este posibil, în primele 8 săptămâni, mai ales când sunt probleme legate de interacțiuni, aderență sau toxicitate.
*La persoanele care încep tratamentul ARV la CD4 scăzut și relativ devreme după începerea tratamentului anti TB, riscul de sindrom de reconstrucție imună (IRIS) este ridicat. (vezi capitolul 9).
Trei studii clinice înrolând pacienți cu CD4<50cel/mm 3
au arătat un beneficiu în termeni de mortalitate când tratamentul ARV a fost început precoce (2-4 săptămâni) față de tardiv (8 săptămâni) după începerea tratamentului anti TB.
În meningita TB, tratamentul ARV început în primele două săptămâni nu reduce mortalitatea față de începerea ARV la 8 săptămâni, în schimb cu tratament ARV precoce există mai multe reacții adverse de tip IRIS. Recomandăm începerea tratamentului ARV în meningita TB la 4 săptămâni după tratamentul anti TB.
Ce tratament ARV?
Factorii care trebuie luați în considerare în selectarea celui mai bun tratament ARV sunt:
Potența
Efectele adverse și toxicitatea
Aderența
și trebuie acordată atenție:
Interacțiunilor între rifampicină și unele ARV
Riscului de sindrom de reconstrucție imună (IRIS)
Regimuri HAART de prima linie:
TDF/FTC + RAL ABC/3TC + RAL ZDV/3TC +RAL
TDF/FTC +EFV ABC/3TC + EFV ZDV/3TC +EFV
Alternative:
•
TDF/FTC + DTG bid*** cu rifampicină (*** sunt disponibile numai date de farmacocinetică și nu date din studii clinice, a se utiliza cu precauție)
•
Rifampicina plus doza dublă LPV/r sau cu RTV "super boosted" (400 mg bid) + LPV.
•
Dacă rifabutina (RFB) va fi înregistrată, va fi posibilă utilizarea inhibitorilor de protează.
Copii
Când trebuie început tratamentul ARV?
Toți copiii aflați în stadiul 4 trebuie să înceapă tratament ARV indiferent de numărul de CD4.
Ce tratament ARV?
Regimurile ARV recomandate copiilor cu coinfecție HIV/TB diferă puțin de recomăndarile pentru copiii monoinfectați cu HIV. Alegerea ARV este complicată de numărul limitat al formulărilor pediatrice și/sau informațiile privind dozele ce pot fi folosite, mai ales la copiii sub 3 ani.
Considerații pentru ARV
În cazul toxicității AZT sau al intoleranței se poate folosi stavudina (d4T)
Dacă NVP este administrată concomitent cu rifampicina, potențiala toxicitate hepatică trebuie monitorizată atât clinic, cât și prin teste hepatice
EFV nu este recomandat copiilor sub 3 ani, și nici fetelor active sexual care nu folosesc o metodă de contracepție adecvată sau se află în primul trimestru de sarcină.
Tabel 7 Regimuri HAART pentru copiii coinfectați TB/HIV tratați cu rifampicină
Vârsta copilului
Clase ARV
Combinații ARV
<3 ani
2 NRTIs + 1NNRTI (preferat)
ZDV+3TC+NVP
3 NRTIs (alternativă)
ZDV+3TC+ABC
>3 ani
2 NRTIs + 1NNRTI (preferat)
ZDV+3TC+EFV
3 NNRTIs (alternativă)
ZDV+3TC+ABC
Dozele ARV sunt incluse în Anexa nr. 13.
Tabel 8 Interacțiunile medicamentoase ale ART/R/RFB
Clasa ARV
Medicație ARV
Comentarii
INRT
R/RFB:doze standard
IP/r
FPV, DRV, IDV, LPV/r, ATV
R: nerecomandată
RFB: 150mg/zi IP/r:doze standard
Monitorizare transaminaze
Clasa ARV
Medicație ARV
Comentarii
INNRT
EFV
R: doze standard RFB: 450mg/zi EFV: doze standard
NVP
R/RFB: nerecomandate
ETV
R: nerecomandată
RFB: doza standard ETV:doza standard
Inhibitori integrază
RAL
R: doza standard, cu RAL 800mg/zi
RFB: doza standard cu RAL doza standard
DTG
R: doza standard cu DTG 50mgx2/zi RFB: doza standard cu DTG doza standard
Inhibitor CCR5
MVC
R: doza standard cu MVC 600mgx2/zi RFB: doza standard cu MVC doza standard
(300mgx2/zi în absența tratamentului cu IP/r, 15mgx2/zi la pacienții sub IP/r)
Inhibitor de fuziune
T-20
R/RFB: doze standard
RFB=rifabutina
6.4. Asigurarea aderenței la tratamentul anti TB și anti HIV
Monitorizarea aderenței și a menținerii pacientului în tratament.
Nu există un "standard de aur" pentru evaluarea aderenței, dar supresia încărcăturii virale este unul din indicatorii cei mai adecvați. Când pacienții nu ating nedetectabilitatea în 6 luni trebuie evaluată posibilitatea non-aderenței, alături de alți factori potențial implicați. Aderența auto-raportată este cea mai folosită metodă de evaluare, dar aceasta trebuie atent judecată, ea depinzând de multe ori de cum este obținută. Unii experți sugerează ca întrebarea să vizeze numărul de doze uitate mai degrabă decât "V-ați luat medicamentele?". Alți experți sugerează ca pacientului să i se ceară să-și evalueze aderența din ultimele 4 săptămâni pe o scală Likert cu 5 sau 6 puncte. Strategii pentru a menține pacientul în tratament vezi tabelul 9.
Toți membrii unei echipe implicate în tratarea unui pacient (medici, asistente, asistenți sociali) au roluri în stabilirea și menținerea unei bune aderențe la tratament.
Individualizarea tratamentului ARV și implicarea pacientului sunt esențiale în planificarea tratamentului și succesul terapeutic. Primul principiu al tratamentului este stabilirea unui plan de tratament pe care pacientul să-l înțeleagă. Modalitatea de administrare trebuie să țină seama de informațiile pacientului, așa încât schema de tratament să se integreze în activitățile zilnice ale acestuia. Uneori ajutorul familiei este important în stabilirea unei bune aderențe la tratament. Pacienții naivi la ART trebuie să înțeleagă că de primele regimuri depinde succesul pe termen lung și prevenirea
rezistenței. Stabilirea unei bune relații între medic și pacient și menținerea comunicării va avea ca rezultat o bună aderență timp îndelungat. În cazul utilizatorilor de droguri, pentru a menține o aderență adecvată este necesar să fie rezolvate abordate și problemele legate de medicația de substituție și suportul social. Tratamentul ARV administrat sub directă observație (DOT) s-a dovedit eficace la utilizatorii de droguri injectabile, dar nu și la populația generală.
Spre deosebire de tratamentul ARV, tratamentul anti TB se recomandă a se administra sub directă observație pentru a consolida aderența la tratament, combinat cu sprijin centrat pe pacient. Cu toate că DOT este foarte solicitant pentru serviciile de sănătate a celor două programe, punerea în aplicare a strategiei DOT corespunzătoare ar trebui să fie prioritară și să vizeze în mod specific grupurile cu "risc ridicat" (contacți ai bolnavilor TB, deținuți, persoane fără domiciliu, utilizatori de droguri injectabile, irnigranți, persoane cu diabet) și TB DR.
Un pacient cu terapie dublă anti TB/ARV va avea o cantitate mai mare de pastile și cel mai probabil va experimenta mai multe efecte secundare, de aceea este necesară o educație atentă a pacientului și sprijin la fiecare schimbare de tratament. Pentru a crește aderența, tratamentul anti TB se va administra dimineața iar cel ARV în cursul zilei.
Astfel, evaluarea nivelului de aderență la tratamentul anti-TB, rezultatele tratamentului precum și identificarea factorilor asociați cu non-aderența și rezultatele slabe la tratament sunt vitale pentru îmbunătățirea aderenței și rezultatele tratamentului la pacienții TB/HIV.
Astfel, evaluarea nivelului de aderență la tratamentul anti-TB, rezultatele tratamentului precum și identificarea factorilor asociați cu non-aderența și rezultatele slabe la tratament sunt vitale pentru îmbunătățirea aderenței și rezultatele tratamentului la pacienții TB/HIV.
Pentru a estima dacă sunt necesare măsuri suplimentare de creștere a aderenței trebuie evaluate de rutină încărcătura virală, medicamentele (ritmul eliberării și stocurile, dacă este posibil) și indicatori care măsoară reținerea în tratament. Pacienții cu istoric de non-aderență au un risc mai mare să aibă aderență slabă și la tratamente noi, de aceea trebuie acordată atenție motivelor de non-aderență anterioare. În tabelul nr. 9 sunt cuprinse câteva strategii și exemple de acțiuni menite să mențină pacientul în tratament.DOT ar putea fi administrat în centrele în care se supraveghează eliberarea metadonei, concomitent cu programele de schimburi de seringi.
Tabel 9 Strategii pentru a menține pacientul în tratament ARV
Strategia
Acțiuni
Implicați echipa multidisciplinară
Evaluați dorința pacientului de a începe tratamentul ARV
Evaluați cunoștințele pacientului despre HIV, prevenirea și tratamentul acesteia, și furnizați informații
Identificați facilitatori, bariere potențiale pentru aderență și abilități de management necesare înainte de a începe medicația.
medicamente).
•
Evaluarea pacientului privind competența cognitivă
•
Evaluarea comportamentală și psihosocială, inclusiv depresie, tulburări psihice, situație socială, consum problematic de alcool și/sau droguri, non-divulgare a serostatusului HIV și stigmatizarea.
•
Informații despre medicamente, abilități și provocări cu aderența (ex. efecte adverse la medicamente în tratamente anterioare, probleme de administrare a altor medicamente cronice, nevoia de memento-uri și organizatori pentru
Strategia
Acțiuni
Asigurați resursele necesare
bază, locuințe stabile, asistență socială, venituri și securitatea alimentară.
Implicați pacientul în alegerea tratamentului ARV
Evaluarea aderenței la fiecare vizită
Utilizați mesaje pozitive pentru a promova aderența
de aderență
Identificați tipul și motivul nonaderenței
•
Evaluarea problemelor structurale, inclusiv locuințe instabile, lipsa de venituri, program zilnic imprevizibil, lipsa de acces continuu la medicamente.
•
Furnizarea tratamentelor psihiatrice și/sau pentru tratarea abuzului de substanțe toxice
•
Asigurarea resurselor pentru a obține medicamentele de
•
Revizuirea potenței regimului, efecte secundare, doza, frecvența administrării, număr tablete, cerințele de stocare, cerințele de alimentare concomitentă și consecințele nonaderenței.
•
Evaluarea activităților zilnice și adaptarea regimului la evenimente previzibile și la rutina zilnică.
•
Luarea în considerare a utilizării combinațiilor.
•
Monitorizarea încărcăturii virale.
•
Folosirea unei scale simple de rating comportamental.
•
Asigurarea că ceilalți membri ai echipei de îngrijire evaluează aderența.
•
Informarea pacienților despre niveluri nedetectabile de încărcături virale HIV și creșteri în numărul de celule CD4.
•
Atunci când este necesar, luarea în considerare a furnizării de stimulente și recompense pentru a atinge un nivel ridicat
•
Eșecul de a urma prescripția
•
Eșecul de a înțelege instrucțiunile de administrare
•
Complexitatea regimului (de exemplu dimensiunea, programul de administrare, cerințele de alimentare)
•
Aversiunea pt pilule
•
Oboseala de tratament
•
Efecte adverse
•
Înțelegere inadecvată a rezistenței la medicament și relația sa cu aderarea
•
Probleme legate de depresie, consum de droguri, alcool
•
Non-divulgarea statusului HIV
•
Alte bariere potențiale (sărăcie etc)
7
Monitorizarea tratamentului pacienților cu coinfecție TB/HIV
7.1. Monitorizarea tratamentului TB
Este important să se monitorizeze toți pacienții cu TB, adulți și copii, în timpul tratamentului; acest lucru are drept scop evaluarea progresului TB individual la pacienți precum și evaluarea preformanței Programului. Monitorizarea evolutiei cazului TB sub tratament se face:
Clinic : creștere în greutate, afebrilitate, dispariția tusei;
Radiologic
(cel puțin la sfârșitul fazei intensive și la sfârșitul tratamentului, iar pentru cazurile MDR/XDR la 3 luni): reducerea cavităților, ștergerea infiltratelor, fibrozarea nodulilor;
Bacteriologic:
la intervale bine precizate în funcție de tipul cazului TB (tabel 10), se adresează formelor de TBP;
Biologic
(funcția hepatică, funcția renală, hemoleucogramă) - la 2 săptămâni de la instituirea tratamentului și în orice moment al tratamentului în cazul apariției simptomatologiei sugestive pentru reacții adverse. Pentru pacienții care au avut inițial teste modificate și pentru cazurile TB MDR/XDR monitorizarea se face lunar.
Examenul clinic și radiologic au numai un rol orientativ în monitorizarea evoluției sub tratament, iar examinarea biologică evidențiază toleranța la tratamentul anti TB.
NB. Formele de TBEP se monitorizează clinic, radiologic și biologic.
Tabel 10
Monitorizarea evoluției sub tratament prin controlul sputei (microscopie și cultură)
Momentul controlului
Categoria I/III
Categoria a II-a
Individualizat *
La momentul diagnosticului (2 produse)
T0
T0
T0
La sfârșitul fazei inițiale (2 produse)
T2 **
T3 **
*
În faza de continuare (2 produse)
T5
T5
La sfârșitul tratamentului (2 produse)
T6
T8
*Pentru pacienții MDR/XDR și pentru cazuri cu polichimiorezistență se recomandă efectuarea lunară a examenului microscopic și culturilor în faza intensivă și la 2 luni după conversia sputei; ABG nu se va repetă decât în caz de repozitivare după conversie, dar nu mai devreme de 4 luni de la testarea precedentă. Ceilalți pacienți cu tratament individualizat (monorezistențe, reacții adverse) vor fi monitorizați bacteriologic în funcție de categoria de caz la încadrare.
**În cazul pozitivității se repetă după o lună, timp în care se continuă faza intensivă.
Evaluarea tratamentului TB.
Orice caz de TB înregistrat va fi evaluat în momentul în care se cunosc toate informațiile necesare evaluării, dar numai după sosirea rezultatului ultimei culturi recoltate (inclusiv ABG dacă a fost solicitată), dar nu mai târziu de 12 luni de la data declarării. În caz de deces sau abandon survenite anterior sosirii rezultatului ultimei culturi/ABG recoltată se va temporiza evaluarea până la sosirea rezultatelor.
În România circuitul informațional al pacienților cu TB se face electronic. În momentul evaluării se completează electronic „Fișa de evaluare a tratamentului antituberculos". Evaluarea se face de către
DPF unde a fost înregistrat pacientul și se ține cont de tipul de pacient evaluat: pacient cu TB DS și pacient cu TB DR, conform criteriilor de evluare (Anexele nr. 16 și 17)
Atitudinea de urmat în caz de abandon:
caz pozitiv în microscopie: se reînregistrează cazul ca „retratament după abandon" și se începe o nouă cură de tratament;
caz negativ la microscopie - se așteaptă rezultatul la cultură:
-
dacă este pozitiv la cultură: se reînregistrează ca „retratament după abandon" și se începe o nouă cură de tratament;
-
dacă este negativ la cultură și nu are alte criterii de activitate a bolii: se menține în observație prin control bacteriologic trimestrial timp de un an și ori de câte ori e nevoie; dacă se pozitivează în microscopie sau cultură, se reînregistrează ca „retratament după abandon" și se începe un nou tratament.
Orice pacient cu TB MDR/XDR trebuie să aibă o evaluare finală la 24 luni pentru MDR (respectiv 36 de luni pentru XDR). Până la acest termen, pacientul va trebui evaluat la fiecare 12 luni cu evaluarea intermediară "C" sau, dacă se realizează condițiile unei evaluări finale, cu alte categorii de evaluare.
Cazurile TB-MDR/XDR care continuă să fie pozitive la culturi pe parcursul a 12 luni nu vor fi
evaluate la sfârșitul acestora "Continuă tratamentul", ci "Eșec" și vor fi redeclarate.
7.2 Monitorizarea tratamentului HIV la pacienții cu coinfecție TB
Monitorizarea pacienților ce primesc ART concomitent cu tratament anti TB include: semne și simptome clinice, criterii imunologice și virusologice, toxicitatea ART, efecte adverse, apariția IRIS în asociere cu monitorizarea pentru tratamentul anti TB. Evaluările și ritmul în care trebuie realizată monitorizarea terapiei duble la pacienții TB/HIV este redată în tabelul 11.
Tabel 11 Evaluarea pacientului TB/HIV în tratament anti TB și ART
Evaluare
Săptămână
Lună
0
2
4
8
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
Istoric de infecție HIV și TB
X
X
Examinare fizică
X
X
X
X
X
X
X
Comorbidități
X
X
X
X
Examinare ginecologică
X
X
X
Teste de laborator de rutină
X
X
X
X
X
X
X
X
CD4
X
(X)
(X)
(X)
(X)
X
Încărcătură virală (dacă este
posibil)
X
(X)
(X)
X
X
X
Radiografie torace
X
X
X
Test de sarcină
X
X
Exament spută*
X
X
X
X
X
X
Aderență (tratament anti TB
și tratament ARV)
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
•
Hemoleucogramă completă
•
Teste funționale hepatice (ALT,AST și eventual bilirubine)
•
Creatinină
•
Uree
•
Examen de urină
X: necesar; (X): opțional
* necesar la sfărșitul lunii a-3 a și la sfârșitul lunii a 8 la un regim de tratament de 8 luni și lunar la TB DR
Testarea rezistenței și tropismul trebuie efectuate pentru selectarea regimului ART. Tropismul viral CCR5 trebuie efectuat, dacă este accesibil în momentul inițierii ART sau în cazul eșecului. Testarea pentru HLA 5701 trebuie efectuată dacă se dorește inițierea tratamentului cu ABC.
8
Identificarea și managementul reacțiilor adverse
8.1. Reacții adverse la medicație anti TB
Recunoașterea promptă și managementul adecvat al reacțiilor adverse la medicamentele anti TB reprezintă o parte importantă a programului de tratament. Este obligatoriu necesară o evaluare a reacțiilor adverse și identificarea medicamentului incriminat pentru evitarea sistării unor medicamente de linia I-a (esențiale). Reacțiile adverse la medicamentele anti TB sunt mai frecvente la pacienții TB/HIV pozitiv decât la cei HIV negativ, pericolul de reacții adverse crește cu creșterea gradului de imunosupresie. Cele mai multe reacții adverse apar în primele 2 luni de tratament anti TB.
În funcție de severitatea manifestărilor, reacțiile adverse la medicamentele anti-tuberculoase (de prima linie și de linia a-II-a) sunt grupate în
reacții adverse majore
ce impun întreruperea/înlocuirea medicamentului responsabil și
reacții adverse minore
ce permit continuarea terapiei anti TB și necesită verificarea dozelor (Anexa nr. 14).
8.2 Reacții adverse la medicația ARV
Reacții adverse au fost raporate la utilizarea tuturor medicamentelor antiretrovirale (ARV) și reprezintă cea mai frecventă cauză de modificare a regimului terapeutic, întrerupere sau non-aderență la terapie (Anexa nr 15). Din fericire, noile regimuri terapuetice sunt mai putin toxice. În general, mai puțin de 10% dintre pacienții naivi la terapia ARV dezvoltă pe parcursul tratamentului reacții adverse.
Există o serie de factori ce predispun pacienții la reacții adverse secundare utilizării medicației ARV. De exemplu, femeile (în mod particular cele naive la tratamentul ARV, cu un nivel CD4 > 250cel/mm 3 ) au un risc mai mai mare comparativ cu bărbații de a dezvolta sdr Steven-Johnson, alergodermii, hepatotoxicitate secundare terapiei cu NVP și acidoză lactică secundară administrării inhibitorilor nucleozidici de revers transcriptază.
Alți factori pot contribui la apariția reacțiilor adverse:
comorbidități ce determină o creștere/ exacerbare a riscului de reacții adverse (ex: consumul problematic de alcool sau coinfecțiile cu virusurile hepatice cresc riscul de hepatotoxicitate)
factori genetici care predispun pacienții la reacții de hipersensibilitate la ABC.
Ambele terapii, ARV și anti TB, pot determina reacții adverse similare prin suprapunere/adiție a toxicității drogurilor utilizate (tabel 12). Este importantă cunoașterea acestor reacții adverse, în special pruritul și erupțiile cutanate, și să se stabiliescă dacă acestea nu au fost prezente înainte de tratamentul pentru TB, deoarece multe persoane cu HIV suferă de leziuni ale pielii (scabie, micoze superficiale, dermatită eozinofil, etc.) sau sunt datorate altor medicamente care produc aceste reacții cutanate (trimetoprim/ sulfametoxazol, pirimetamină etc.).
Atunci când medicamentul responsabil pentru reacția adversă nu este cunoscut, abordarea standard pentru reintroducerea medicamentelor anti TB de linia- I, în scopul de a găsi medicamentul responsabil, este cea redată în tabelul nr. 13.
Tabel 12 Suprapunerea/adiția toxicității ARV și anti TB
Reacția adversă
Anti TB
ARV
Hepatotoxicitate
-hiperbilirubinemie izolată
-
ATV
-citoliză hepatică cu/sau fără icter
Z, R, H, RFB
ART excepție 3TC, ABC
Neurologice
-neuropatie periferică
H, E, ETM, CS
ddI, D4T, ABC
-amețeli și vertij
Aminoglicozide
EFV
-convulsii
H, CS
-
-parestezii circumorale
SM
Amprenavir, RTV
Psihiatrice
-depresie
CS
EFV
-pierderea memoriei, psihoză
CS, H
EFV
Gastrointestinale
-greață, vărsături,
ETM, H, Z, R
ZDV, ABC, TDF, ddI, IP
-pancreatită
-
ddI, D4T
-diaree
OFX, MFX, PTM
IP
Acidoză lactică
-
ZDV, D4T, TDF
Cutanate
-rash
Z, H, R, ETM
NVP, ABC, EFV
-dermatită exfoliantă
Aminoglicozide
NVP, ABC
-erupții acneiforme
R
-
-hiperpigmentare
-
ZDV
Hematologice
-anemie
-
ZDV
-leucopenie
-
ZDF, 3TC
-trombocitopenie
R
-
Musculoscheletice
-creșterea CPK
-
ZDV, RAL
-hiperuricemie/Gută
Z, E
-
-hipofosfatemie
TDF
-mialgii/artralgii/artropatie
R, Z, FQ
ZDV, ABC, RAL, RTV,
Renale
-insuficiență renală acută
R, Aminoglicozide
-
-nefrolitiază
-
ATV
-sindrom Fanconi
-
TDF
Endocrine
-rezistență la insulină, diabet și anomalii lipidice
-
IP, D4T, ABC
-lipodistrofie
-
D4T, ZDV, IP
-tiroida
PAS, ETM
-
Oculare
-nevrită retrobulbară
E
-
Diverse
-sindrom pseudogripal
RMP
-
-afectare de nerv acustico-vestibular
SM, Aminoglicozide
-ginecomastia
H
EFV, ddI
Tabel 13 Reintroducerea secvențială a medicamentelor anti TB de linia I după reacții cutanate
Medicament
Probabilitatea pentru cauza reacției
Doza de încercare
Ziua 1
Ziua 2
Ziua 3
Izoniazidă
Mai puțin probabil
50 mg
300 mg
300 mg
Rifampicină
75 mg
300 mg
Doză completă
Pirazinamidă
250 mg
1000 mg
Doză completă
Etambutol
100 mg
500 mg
Doză completă
Streptomicină
Mai probabil
125 mg
500 mg
Doză completă
9
Identificarea și managementul sindromului de reconstrucție inflamatorie imună (IRIS)
Definiție și epidemiologie.
Sindromul inflamator de reconstrucție imună reprezintă un răspuns inflamator exagerat la
M. tuberculosis,
când există o trecere de la un status de imunodepresie, în care răspunsul inflamator este supresat, la o stare proinflamatorie ca rezultat al dispariției sau scăderii factorilor ce promovează imunosupresia. IRIS apare mai frecvent la pacienții infectați cu HIV. Mediana duratei până la apariția IRIS a fost variabilă, între 56 zile, 86 de zile și 107 zile. În 2007 a fost publicată o definiție de consens, adaptată utilizării atât în țările dezvoltate cât și în cele cu resurse limitate, definiție a
International Network for the Study of HIV-associated IRIS . Au fost definite două tipuri de IRIS: IRIS ca reacție paradoxală și IRIS demascând o TB netratată.
Pentru
IRIS ca reacție paradoxală
definiția include:
1)
diagnostic de TB conform criteriilor OMS
2)
răspuns favorabil inițial la tratament anti TB
3)
apariția în 3 luni după inițierea tratamentului ARV
4)
excluderea altor cauze de deteriorare clinică (infecții bacteriene, fungice, limfoame, sarcom Kaposi, rezistență la anti TB, aderență inadecvată la tratament, reacții medicamentoase).
Diagnosticul clinic
constă într-un criteriu major și două criterii minore. Criteriile
majore
sunt:
Apariția de noi adenopatii sau creșterea celor existente, abcese reci sau alte afectări tisulare
Apariția sau agravarea caracteristicilor radiologice ale TB
Apariția sau agravarea simptomelor TB SNC
Apariția sau agravarea serozitelor (pleurezie, ascită sau pericardită)
Criteriile
minore
sunt:
Apariția sau agravarea simptomelor constituționale (febră, transpirații etc.)
Apariția sau agravarea simptomelor respiratorii (tuse, dispnee etc.)
Apariția
sau
agravarea
durerii
abdominale
însoțită
de
hepato-splenomegalie,
adenopatii abdominale (ecografic)
Rezoluție clinică și/sau radiologică fără modificarea tratamentului anti TB
Pentru
IRIS demascând o TB netratată
diagnosticul presupune:
1.
Absența tratamentului anti TB când se inițiază medicația ARV
2.
Apariția în 3 luni după inițierea ARV a cel puțin unui criteriu din:
Modificări clinice incluzând o componentă inflamatorie marcată (ex: limfadenită/abces cu importantă inflamație; TBP complicată cu insuficiență respiratorie, sindrom inflamator sistemic marcat)
TB complicată de o reacție paradoxală.
Pentru diagnosticul IRIS, paradoxal, este crucial să se excludă alte diagnostice alternative, în special infecții noi, TB rezistentă sau lipsa aderenței.
Factori de risc pentru IRIS la pacientul infectat cu HIV
cu cât intervalul de timp între inițierea tratamentului anti TB și inițierea tratamentului ARV este mai scurt, cu atât crește probabilitatea apariției IRIS. De aceea, chiar și la pacienții cu CD4 sub 50 începerea tratamentului ARV este amânată cu cel puțin 2 săptamâni după începerea tratamentului anti TB. Există multe dovezi care sugerează că, deși poate apărea IRIS, inițierea precoce a ART trebuie să fie luată în considerare, mai degrabă decât întârzierea acesteia, deoarece ART precoce se asociază cu scăderea riscului global al mortalității.
numărul de CD4 mic și încărcatura virală peste 5 log10/ml, asociate cu o rapidă recuperare viro- imunologică sub tratament specific sunt factori de risc majori pentru IRIS.
un alt factor de risc potențial este TB diseminată.
Aspecte clinice.
Pacienții cu IRIS pot avea diverse manifestări clinice, care interesează localizarea inițială a tuberculozei sau să aibă altă localizare. Cel mai frecvent este vorba de adenopatii, de agravarea infiltratelor pulmonare pe radiografia pulmonară, cu sau fără recurența simptomelor respiratorii. Alte manifestări clinice cum sunt cele nervos centrale, serozita, manifestări cutanate sau subcutanate, gastro-intestinale au fost descrise cu frecvențe sub 10%, în timp ce insuficiența renală acută, orhi-epididimita, hipercalcemia și manifestările oculare au fost descrise foarte rar.
Prognostic.
Cu excepția IRIS care interesează SNC prognosticul este în general bun și au fost raportate puține decese. În general IRIS TB paradoxal se asociază cu o mortalitate scăzută - 3,2% într-o meta- analiză publicată în 2010. Cu toate acestea, neuro IRIS TB paradoxal este mai frecvent asociat cu deces, mortalitatea la 6-9 luni putând atinge 30%.
Tratament.
La PIHIV în cazurile ușoare sau moderate se pot folosi AINS, în timp ce în cazurile mai severe se utilizează corticoizi. Pacienții trebuie să continue ART. Întreruperea temporară a ART poate fi considerată numai în situații amenințătoare de viață, ca afectarea persistentă și severă a conștienței, și deficiențe neurologice severe care nu răspund la tratamentul cu corticosteroizi.
Se utilizează prednison, doza de 1.5mg/Kgc timp de 2 săptămâni, urmată de 0.75mg/Kgc încă 2 săptămâni a dus la îmbunătățirea simptomatologiei și a scăzut spitalizarea. La pacienții tratați cu corticosteroizi au fost descrise hipertensiune, hiperglicemie, retenție hidrosalină.
10
Managementul TB/HIV în condiții speciale
10.1
Insuficiența renală
Tratamentul anti TB
Izoniazida, rifampicina și pirazinamida sunt eliminate aproape în întregime prin excreție biliară sau metabolizate în compuși netoxici asfel aceste medicamente pot fi administrate în doze normale la pacienții cu insuficiență renală.
Streptomicina și Etambutolul se elimină pe cale renală, motiv pentru care se vor folosi doze mici (în funcție de clearance-ul la creatinină) și se va monitoriza funcția renală pe durata tratamentului cu aceste
medicamente
(lunar
nivelul
creatininei).
În
cazul
în
care
este
necesară
administrarea streptomicinei și etambutolului, ele vor fi recomandate de 3 ori pe săptămână, dozele fiind reduse cu o treime.
Regimurile recomandate în insuficiența renală sunt prezentate în tabelul nr. 14.
Tabel 14 Regimuri de tratament anti TB recomandate la pacienții cu insuficiență renală*
Regim terapeutic
Faza de atac
Faza de continuare
Preferențial
HRZ 2luni
HR 4luni
Alternativă
HRZE 2luni
HR 4luni
* insuficiența renală este definită când nivelul creatininei crește la 130-160 micromoli/l.
La bolnavii
hemodializați,
medicația antituberculoasă se administrează imediat după ședința de hemodializă.
Terapia antiretrovirală la pacienții cu insuficiență renală
În cazul unei afectări renale și a administrării concomitente de inhibitor de CYP 3A4, Maravirocul trebuie dozat în funcție de rata filtrării glomerulare (RFG). De asemenea, Tenofovirul (FTC) trebuie evitat la pacienții cu RGF < 50ml. T-20 (Fuzeonul) poate fi administrat fără modificarea dozelor până la un clearance al creatininei de 30 ml/min/1.73 m2; nu sunt disponibile date în cazul unei afectări renale severe.
Tabel 15 Ajustarea ARV în afectarea renală
RFG
50
30-49
10-20
<10
Hemodializă
NRTI
ABC
300 mg/12h
Fără modificarea dozelor
ddI(1)
260kg
400mg/zi
200mg/zi
150mg/zi
100mg/zi
100mg/zi
<60kg
250mg/zi
125mg/zi
100mg/zi
75mg/zi
75mg/zi
d4T
260kg
30mg/12h
15mg/12
15mg/zi
15mg/zi
15mg/zi
<60kg
40mg/12h
20mg/12h
20mg/zi
20mg/zi
20mg/zi
FTC
200mg/24h
200mg/48
200mg/72
200mg/96h
200mg/96h
RFG
50
30-49
10-20
<10
Hemodializă
NRTI
3TC
300mg /24h
150mg/24
100mg/24h
(3)
50-25mg/24h
(3)
50-25mg/24h
(2,3)
TDF
245mg/24h
245mg/48
Nerecomandat
ZDV
300mg/12h
Fără modificarea dozelor
100mg/8h
100mg/8h
(2)
ABC/3TC
600/300mg/zi
Utilizare medicație individuală
ZDV/3TC
300/150mg/12h
NNRTI
EFV
600mg/24h
Fără modificarea dozelor
ETV
200mg/12h
NVP
200mg/12h
IP (4)
ATV/r
300/100mg/zi
Fără modificarea dozelor (date limitate la pacienții cu afectare renală; analiza farmacokinetică sugerează menținerea dozelor)
DRV/r
800/100mg/zi 600/100mg/12h
FPV/r
700/100mg/12h
LPV/r
40/100mg/12h
SQV/r
1000/100mg/12h
TPV/r
500/200mg/12h
INHIBITORI INTEGRAZĂ
RAL
400mg/12h
Fără modificarea dozelor (date limitate la pacienții cu afectare renală; analiza farmacokinetică sugerează menținerea dozelor)
DTG
50mg/zi
(1) Reducerea dozelor în co-administrare cu TDF, (2) După dializă., (4) Doza de încărcare de 150mg, (4) Utilizarea IP/r (boostati) se asociază cu nefrotoxicitatea.
10.2
Boala hepatică
Tratamentul anti TB la pacienții cu boală hepatică
Izoniazida, rifampicina și pirazinamida au efecte hepatotoxice fiind toate asociate cu hepatita indusă medicamentos. Dintre acestea, pirazinamida are cea mai mare activitate hepatotoxică, la pacienții cu afecțiuni hepatice cu citoliză se recomandă evitarea administrării sale. Regimurile de tratament alternativ la pacienții cu boli hepatice sunt prezentate în tabelul nr. 16.
Tabel 16 Regimuri de tratament anti TB recomandate la pacienții cu boli hepatice*
Regim terapeutic
Faza de atac
Faza de continuare
Preferențial
SHRE 2luni
HR 6luni
Prima alternativă
SHE 2luni
HE 10luni
* boala hepatică este definită de valoarea ALT de 3ori mai mare decât nivelul normal, sau prezența hepatitei cronice sau
cirozei hepatice.
Monitorizarea clinică și a probelor hepatice trebuie efectuată în mod regulat, la o frecvență care depinde de starea bolnavului. Dacă în timpul administrării tratamentului anti TB apare citoliza hepatică (cu valori ale transaminazelor de cel puțin 5 ori mai mari la pacientul asimptomatic, și de cel puțin 3 ori
mai mari la pacientul simptomatic), se întrerupe tratamentul până la normalizarea probelor hepatice (7- 10 zile) și se reia ulterior cu reintroducerea secvențială a medicației până la doza uzuală.
ART la pacienții cu boală hepatică
Tabel 17
Ajustarea ARV în afectarea hepatică
NRTI
ABC
Child-Pugh clasa A: 200mgx2/zi
Child-Pugh clasaB/C: Contraindicat
ddI
Contraindicat
d4T
Contraindicat
FTC
Fără modificarea dozelor
3TC
TDF
ZDV
Reducerea dozelor la jumătate/dublarea intervalului dintre administrări Child-Pugh clasa C
NNRTI
EFV
Fără modificarea dozelor; utilizat cu precauție la pacienții cu afectare hepatică
ETV
Child-Pugh clasa A/B: fără modificarea dozelor
Child-Pugh clasa C: fără date privind siguranța administrării
NVP
Child-Pugh clasa B/C: contraindicate
IP
ATV
Child-Pugh clasa B: 300mg/zi
Child-Pugh clasa C: nerecomandat
DRV
Child-Pugh clasa A/B: fără modificarea dozelor
Child-Pugh clasa C: nerecomandat
FPV
Pacienți naivi la terapia cu IP
Child-Pugh clasa A/B: 700mgx2/zi
Child-Pugh clasa C: 350mgx2/zi
Pacienți experimentați la terapia cu IP
Child-Pugh clasa A: 700mgx2/zi + RTV 100mg/zi
Child-Pugh clasa B: 450mgx2/zi + RTV 100mg/zi
Child-Pugh clasa C: 300mgx2/zi + RTV 100mg/zi
IDV
Child-Pugh clasa A/B: 600mg/8h
Child-Pugh clasa C: fără date privind siguranța administrării
LPV/r
Fără modificarea dozelor; utilizat cu precauție la pacienții cu afectare hepatică
SQV
Child-Pugh clasa A/B: utilizare cu precauție
Child-Pugh clasa C: nerecomandat
TPV
Child-Pugh clasa A: utilizare cu precauție
Child-Pugh clasa B/C: contraindicate
INHIBITORI FUZIUNE
ENF (T-20)
Fără modificarea dozelor
INHIBITORI CCR5
MVC
Fără recomandări privind modificarea dozelor. Concentrațiile de medicament vor crește la pacienții cu afecatre hepatică
INHIBITORI INTEGRAZĂ
RAL
Fără modificarea dozelor
DTG
Child-Pugh clasa A/B: fără modificarea dozelor
Child-Pugh clasa C: fără date privind siguranța administrării
Terapia ARV la pacienții cu hepatită cu virus B (VHB).
O mare parte din schemele terapeutice destinate infecției HIV conțin agenți activi anti-VHB (ex: Lamivudina-3TC, Emtricitabina- FTC, Tenofovir-TDF), motiv pentru care pacienții cu indicație de tratament VHB, vor fi inițiați pe terapie ARV (cu regimuri ce conțin analogi nucleozidici/nucleotidici activi), indiferent de nivelul CD4. Similar, pacienții coinfectați HIV/VHB cu indicație de terapie ARV vor primi medicație ARV incluzând agenți activi anti-VHB. Asocierea TDF/3TC sau FTC este recomandată ca terapie eficace de prima linie anti-VHB . . Tratamentul cu FTC sau 3TC ca singuri agenți activi anti-VHB în schema ARV nu este recomandat, din cauza riscului de dezvoltare a rezistenței medicamentoase VHB.
Terapia ARV la pacienții cu hepatită cu virus C (VHC).
Rata de progresie a afectării hepatice este acelerată la pacienții coinfectați HIV/VHC, în mod particular la cei cu nivel CD4 :S 350cel/mm 3 . Totuși, tratamentul ARV trebuie inițiat la toți pacienții coinfectați HIV/VHC, indiferent de nivelul CD4. Regimurile ARV inițiate la pacienții naivi terapeutic vor fi similare cu cele ale pacienților noninfectați HIV. În momentul în care se inițiază tratament, atât pentru infecția HIV cât și pentru VHC, se vor lua în considerare posibilele interacțiuni medicamentoase ( tabel 18).
Tabel 18 Utilizarea concomitentă a medicației ARV și VHC la pacienții coinfectați HIV/VHC
Antivirale cu acțiune directă (DAA)
Terapie HCV non-DAA
ARV
Inhibitor NS5B
Coformulări NS5A/IP
+ NS5B
Inhibitor protează
Sofosbuvir
Ombitasvir/Paritaprevir/Ritonavir + Dasabuvir
Simeprevir
Ribavirina
Peg-IFNa
NRTI
3TC
✓
✓
✓
✓
✓
ABC
✓
✓
✓
✓
✓
FTC
✓
✓
✓
✓
✓
TDF
✓
✓
✓
✓
✓
ZDV
✓
✓
✓
X
X
NNRTI
EFV
✓
X
X
✓
✓
ETR
✓
X
X
✓
✓
NVP
✓
X
X
✓
✓
IP
ATV/r
✓
✓
ATV 300mg se adm în același moment cu regimul DAA; RTV va fi oprit până la completarea terapiei VHC
X
✓
✓
DRV/r
✓
X
X
✓
✓
FPV/r
✓
X
X
✓
✓
LPV/r
✓
X
X
✓
✓
SQV/r
✓
X
X
✓
✓
TPV/r
X
X
X
✓
✓
INHIBITORI INTEGRAZĂ
DTG
✓
?
✓
✓
✓
RAL
✓
✓
✓
✓
✓
INHIBITOR CCR5
MVC
✓
X
✓
✓
✓
10.3.
Femeia de vârstă fertilă/însărcinată
Terapia anti TB la femeia gravidă
Rifampicina interacționează cu medicația contraceptivă orală scăzând nivelul de protecție a anticoncepționalelor, astfel se vor lua în considerare alte metode contraceptive ceea ce va pernite administrarea unui regim standard antituberculos.
Cele mai multe medicamente antituberculoase de linia I sunt sigure pentru a fi utilizate în timpul sarcinii, excepția este streptomicina care este teratogenă/ototoxică pentru făt și nu trebuie utilizată în timpul sarcinii, regimul reomandat fiind HRZE.
Întrucât siguranța tratamentului cu anti TB de linia a-II-a în sarcină nu este suficient cunoscută, în funcție de vârsta sarcinii, se poate lua în considerație avortul terapeutic.
ART la femeia la vârstă fertilă/însărcinată
Majoritatea studiilor nu au evidențiat diferențe ale utilizării regimurilor terapeutice între femei și bărbați. Există însă diferențe între sexe, secundare administrării terapiei ARV privind frecvența, modalitatea de prezentare și severitatea reacțiilor adverse.
Efecte adverse:
-
Hepatotoxicitatea asociată utilizării Nevirapinei (NVP): Nu se recomandă administrarea NVP femeilor naive terapeutic, cu un nivel CD4>250cel/mm 3 ;
-
Acidoza lactică: Există o incidență crescută a acesteia la femeile aflate timp îndelungat sub regimuri ARV ce conțin NRTI. Acidoza lactică a fost mai frecventă la utilizarea Stavudinei (d4T), Didanozinei (ddI) și Zidovudinei (ZDV).
-
Complicații metabolice: Femeile HIV-pozitive, spre deosebire de bărbați, au un risc mai mare de a dezvolta obezitate abdominală, osteopenie/osteoporoză.
Tabel 19 ART la femeia gravidă
Femeie aflată sub ARV, ce plănuiește sarcina
Se menține schema terapeutică; excepție fac regimurile ce conțin ddI, d4t și tripla terapie cu NRTI
Femeie aflată sub ARV, însărcinată
Se menține schema terapeutică; excepție fac regimurile ce conțin ddI, d4t și tripla terapie cu NRTI
Femeie fără ARV, însărcinată
Inițiere rapidă a terapiei ARV (pe cât posibil, nu mai târziu de trimestrul II)
Femeie fără ARV, care se prezintă peste 28 săptămâni de sarcină
Inițiere imediată a terapiei ARV; dacă ARN-HIV este mare, se utilizează regimuri ce conțin inhibitori de integrază
Femeie cu ARN-HIV nedetectabil în TIII
Testarea rezistenței și adăugarea la schema terapeutică a inhibitorului de integrază
Regim ARV în sarcină
Același regim terapeutic anterior sarcinii
NVP nu se inițiază, dar utilizarea sa este posibilă dacă a fost inițiată anterior sarcinii
EFV se inițiază în lipsa altor opțiuni medicamentoase; utilizarea sa este posibilă dacă a fost inițiată anterior sarcinii
Dintre IP sunt preferați LPV/r și ATV/r
Dacă se administrează RAL, DRV/r poate fi continuat
Medicație contraindicată în sarcină
ddI, d4T, triplă asociere NRTI
ZDV iv în travaliu
Nu este necesar la ARN-HIV < 50copii/ml
Doză unică NVP în travaliu
Nerecomandată
Operație cezariană
Recomandată dacă ARN-HIV > 50copii/ml în săpt 34-36
10.4 Utilizatorii de droguri injectabile (UDI)
Un consumator de droguri injectabile care prezintă și coinfecție TB HIV urmează același circuit ca orice alt pacient. În plus, dacă pacientul e în tratament substitutiv cu metadonă, aceasta e pusă la dispoziția pacientului prin intermediul organizației/instituției care l-a inclus pe pacient în programul substitutiv. Se recomandă ca medicul specialist care îl are în evidență pe pacient să contacteze organizații neguvernamentale care oferă servicii de reducere a riscurilor sau centre ale Agenției Naționale Antidrog și să trimită pacientul către aceste servicii, după externare, dacă pacientul nu le-a accesat deja.
Tratamentul TB la UDI
UDI au un risc mare de TB, care se adaugă la riscul mare de infecție HIV și hepatită C. OMS a elaborat recomandări specifice privind furnizarea de servicii colaborative TB-HIV pentru UDI. Astfel, următorii factori necesită abordări speciale pentru managementul clinic al TB/HIV la aceste persoane:
-
selecția atentă /doze adecvate a medicamentelor anti TB și ARV și monitorizarea atentă a funcției hepatice;
-
cicloserina
provoacă o mare parte din incidența efectelor adverse la UDI și la persoanele dependente de alcool și, din acest motiv, ar trebui evitată includerea cicloserinei în schema de tratament TBMDR/XDR la aceste persoane;
o
rifampicina
reduce substanțial concentrația și efectul metadonei. Astfel, doza de metadonă trebuie să fie ajustată (crescută) pentru a menține efectul de substituție; ca alternativă, rifampicina ar putea fi înlocuită cu
rifabutina
(deoarece aceasta nu intreacționează cu metadona); Înlocuirea Rifampicinei cu Rifabutina poate permite asocierea medicației antiretrovirale ce include inhibitori de protează sau de integrază, oferind mai multe opțiuni terapeutice pacienților coinfectați HIV-TB multiexperimentați la tratamentul antiretroviral. Rifabutina se administrează astfel, în conformitate cu recomandările CDC (tabel 20):
Tabel 20 Utilizarea Rifabutinei în tratamentul pacienților coinfectați HIV-TB multieperimentați la tratamentul antiretroviral
ARV
RIFABUTINA
METADONA
OBSERVATII
Rifabutina + Metadona fara ARV
300 mg / zi
Aceeași doză
Poate fi necesară creșterea dozei de metadonă, dacă apar semne de sevraj
Monitorizare pentru sevraj 1
Dacă apar semne de sevraj, se crește doza de metadonă
Rifabutina + Metadona + ARV
Atazanavir/r
150 mg /zi
Aceeași doză
Monitorizare pentru eventual sevraj (rar) și ECG (prelungire interval QT)
Darunavir/r
150 mg /zi
Aceeași doză
Poate fi necesară creșterea dozei de metadonă, dacă apar semne de sevraj
Lopinavir
150 mg / zi
Poate fi necesară creșterea dozei de metadonă, dacă apar semne de sevraj
Monitorizare pentru sevraj și ECG (prelungire interval QT) Monitorizare toxicitate legată de
rifabutin (uveita sau neutropenie)
Raltegravir 400 x 2
300mg / zi
Aceeași doză
Dolutegravir 50
300 mg / zi
Aceeași doză
Zidovudina
300 mg / zi
Aceeași doză
Se crește doza de Zidovudină Monitorizare pentru toxicitate
Didanozina
300 mg / zi
Aceeași doză
Lamivudina
300 mg / zi
Aceeași doză
Abacavir
300 mg / zi
Aceeași doză
Poate fi necesară creșterea dozei de metadonă (eventual)
Monitorizare pentru sevraj
Tenofovir
300 mg / zi
Aceeași doză
Emtricitabina
300 mg / zi
Aceeași doză
Maraviroc 300 x 2
300 mg / zi
Aceeași doză
De evitat dacă este posibil
Co-administrarea cu rifabutină nu a fost studiată
Interacțunile cu metadona nu s-au
studiat; nu se așteaptă modificări
Maraviroc 150 x 2
+
Atazanavir/Darunavir
300 mg / zi
Aceeași doză
De evitat dacă este posibil.
Se modifică doza de Maraviroc (150 x 2)
Efavirenz 600
450 mg / zi
Se crește doza de metadonă până la dublarea dozei
De evitat dacă este posibil Interacțiuni ce necesită monitorizare
Nevirapina
Nerecomandată
Etravirina
300 mg / zi
Aceeași doză
Monitorizare pentru simptome de sevraj
Etravirina+Darunavir/ Lopinavir
Nerecomandată
1
Sevrajul la metadonă real se obiectivează prin pupile midriatice (relativ la pupilele examinatorului în aceleași condiții de lumină)
-
aderența la tratament este importantă, astfel că terapia de substituire pentru opiacee (ex: metadona) ar trebui să fie integrată în servicile de tratament pentru coinfecția TB/HIV deoarece crește aderența la tratamentul anti TB și ARV.
ART la utilizatorii de droguri
Managementul coinfecției TB/HIV la UDI este dificil și necesită un efort mai mare din cauza următorilor factori:
•
Interacțiunea între medicamentele anti TB și ARV cu drogurile consumate, care duce la creșterea hepatotoxicității la cei care primesc terapie opioidă de substituție
•
Scăderea nivelului metadonei (33-68%) sau sevraj cauzat de administrarea concomitentă a rifampicinei (doza de metadonă ar putea fi necesar să fie crescută)
•
Probabilitate mai mare de coinfecție cu hepatită B și C și, astfel, potențial de interacțiune crescut cu medicamentele utilizate în tratamentul hepatitei
•
Scăderea aderenței
•
Acces limitat la sistemul de asigurări de sănătate.
Tabel 21 Utilizarea concomitentă a terapiei de substituție și ARV la UDI
Metadona
Buprenorfina
Doza necesară prevenției sevrajului în conformitate cu gradul de dependență
10-300mg/zi
Relație de dependență lineară, max 24mg/zi
Interacțiunile cu terapia ARV
Concentrațiile plasmatice ale Metadonei sunt reduse în momentul utilizării concomitente a NNRTI și IP:
Concentrațiile plasmatice ale Buprenorfinei sunt reduse în momentul utilizării concomitente a NNRTI și crescute în asociere cu IP:
Risc supradozaj
Da
Nu, în coformulare cu Naloxona
Prelungirea intervalului QT
Da
Nu
Risc constipație
Crescut
Crescut
Mod de administrare
Tableta/sirop
Tabletă sublingual
Risc de progresie a afectării hepatice
Da
Da
-
NVP si EFV J 50%
-
ETV J<10%
-
LPV/r J 50%
-
SQV/r, DRV/r, FPV/r J15-25%
-
ATV,IDV J < 10%
-
EFV J până la 50%
-
ATV/r, IDV,SQV/r ț50- 100%
Rifampicina nu trebuie administrată cu IP pacienților care primesc metadonă ca tratament de substituție. Sunt necesare programe colaborative pentru organizarea eficientă a unor servicii în care să se realizeze educație, screening, tratament profilactic pentru TB, administrarea tratamentului anti TB ca DOT și
urmărirea recăderilor.
11
Monitorizarea și evaluarea activităților TB-HIV (indicatori)
Monitorizarea și evaluarea activităților TB-HIV se bazează pe datele colectate de cel două programe și compararea periodocă a acestora, în acest sens în cadrul activităților colaborative dintre cele două programe se colectează și raportează inidicatorii din tabelul 21. Compararea periodocă a indicatorilor colectați de cele două programe se face trimestrial iar raportarea se face anual. Indicatorii colectați de cele două programe sunt utilizați pentru monitorizarea și evoluția coinfecției TB/HIV în România.
Tabel 22 Indicatori monitorizare și evaluare a activități TB-HIV
Nr.
Indicator
PN care colectează datele
A.
Indicatori esențiali pentru monitorizarea și raportarea progresului la nivel national
A.1
Procentul cazurilor TB (noi și recidive) înregistrate cu status HIV cunoscut
PN TB/HIV
A.2
Procentul cazurilor TB (noi și recidive)înregistrate cu status HIV pozitiv
PN TB/HIV
A.3
Procentul cazurilor noi HIV înregistrate cu TB activă
PN HIV/HIV
A.4
Procentul cazurilor HIV cu coinfecție TB (cazuri noi și recidive) care se află în tratament ARV concomitant cu tratamentul anti TB.
PN HIV
A.5
Procentul cazurilor HIV nou înregistrate la serviciile de boli infecțioase care au început tratament preventiv anti TB.
PN HIV/TB
A.6
Mortalitatea în rândul pacienților HIV cu coinfecție TB (cazuri noi și recidive).
PN TB
A.7
Riscul de TB în rândul personalului medical comparativ cu populația general, pe grupe de vârstă și sex
PN TB
B
Indicatori cheie pentru monitorizarea și raportarea la nivel national
Indicatori care măsoară amploarea și intensitatea identificării cazurilor TB la PIHIV
B.1.
Procentul persoanelor care trăiesc cu HIV testate pentru TB în cadrul serviciilor de boli infecțioase
PN HIV/TB
B.2
Procentul persoanelor care trăiesc cu HIV care prezintă simptome de TB din totalul persoanelor evaluate
PN HIV/TB
B.3
Procentul persoanelor care trăiesc cu HIV testate pentru TB din totalul celor care prezintă simptome de TB
PN HIV/TB
B.4
Procentul persoanelor care trăiesc cu HIV diagnosticate cu TB activă din totalul persoanelor testate
PN HIV/TB
B.5
Procentul persoanelor care trăiesc cu HIV care au început tratament TB din totalul persoanelor care trăiesc cu HIV diagnosticate cu TB activă
PN HIV/TB
B.6
Procentul persoanelor care trăiesc cu HIV și care prezintă simptome de TB care sunt testate cu teste rapide moleculare ca prim test pentru TB
PN TB
B.7
Procentul persoanelor care trăiesc cu HIV și care prezintă simptome TB care au fost testate cu teste de cultură ca prim test pentru TB
PN TB
Indicatori care măsoară accesul la diagnostic TB al persoanelor care trăiesc cu HIV
B.8
Procentul cazurilor HIV cu coinfecție TB (cazuri noi și recidive) care au început tratamentul ARV în maxim 8 săptămâni de la diagnosticul de TB
PN HIV
B.9
Procentul cazurilor HIV cu coinfecție TB (cazuri noi și recidive) cu imunitate scăzută (nivel CD4 < 50) care au început tratamentul ARV în maxim 2 săpămâni de la diagnosticul TB
PN HIV
Alți indicatori
B.10
Procentul cazurilor HIV cu coinfecție TB (cazuri noi și recidive) identificate și notificate din numărul estimat de cazuri de coinfecție HIV TB
PN HIV/TB
B.11
Procentul cazurilor HIV cu coinfecție TB (cazuri noi și recidive) care primesc tratament preventiv cu cotrimoxazol
PN HIV
B.12
Procentul serviciilor medicale care furnizează servicii medicale HIV și care implementează măsuri de control al infecției TB
PN HIV
B.13
Procentul persoanelor care trăiesc cu HIV care au încheiat tratament profilactic anti TB
PN TB
Bibliografie selectivă
1.
A guide to monitoring and evaluation for collaborative TB/HIV activities, WHO, ISBN: 978 92 4 150827 8, WHO reference number: WHO/HTM/TB/2015.02
2.
Accessibility and integration of HIV, TB and harm reduction services for people who inject drugs in Portugal. A rapid assessment. April 2012. World Health Organization 2012
3.
Bahr N, Boulware DR, Marais S, Scriven J, Wilkinson RJ, Meintjes G. Central Nervous System Immune
Reconstitution
Inflammatory
Syndrome.
Current
infectious
disease
reports. 2013;15(6):10.1007/s11908-013-0378-5. doi:10.1007/s11908-013-0378-5.
4.
Bartlett JA. Addressing the challenges of adherence. Journal of Acquired Immune Deficiency Syndrome, 2002, 29:S2-S10.
5.
Benhamou Y, Bochet M, Thibault V, et al. Long-term incidence of hepatitis B virus resistance to lamivudine
in
human
immunodeficiency
virus-infected
patients.
Hepatology.
1999 Nov;30(5):1302-6.
6.
Carvalho AC, De Iaco G, Saleri N, Pini A, Capone S, Manfrin M, et al. Paradoxical reaction during tuberculosis treatment in HIV-seronegative patients. Clin Infect Dis. 2006 Mar 15;42(6):893-5. PubMed PMID: 16477577.
7.
Center for Disease Control and Prevention (CDC)-Latent Tuberculosis Infection: A Guide for Primary Health Care Providers, 2011.
8.
Centers
for
Disease
Control
and
Prevention.
Guidelines
for
Prevention
and
Treatment
of Opportunistic Infections in HIV-Infected Adults and Adolescents: Recommendations from CDC, the National Institutes of Health, and the HIV Medicine Association of the Infectious Diseases Society of America. April 10, 2009.
9.
Cheng VC, Yam WC, Woo PC, Lau SK, Hung IF, Wong SP, et al. Risk factors for development of paradoxical response during antituberculosis therapy in HIV-negative patients. European journal of clinical microbiology & infectious diseases : official publication of the European Society of Clinical Microbiology. 2003 Oct;22(10):597-602. PubMed PMID: 14508660.
10.
Clark RA, Squires KE. Gender-specific considerations in the antiretroviral management of HIV- infected women. Expert Rev Anti Infect Ther. 2005;3(2):213-227.
11.
Collazos J, Asensi V, Carton JA. Sex differences in the clinical, immunological and virological parameters of HIV-infected patients treated with HAART. AIDS. 2007;21(7):835-843.
12.
Currier J, Averitt Bridge D, Hagins D, et al. Sex-based outcomes of darunavir-ritonavir therapy: a single-group trial. Ann Intern Med. 2010;153(6):349-357.
13.
EACS Guidelines 8.0, 2015
14.
European AIDS Clinical Society (EACS) guidelines for the clinical management and treatment of HIV-infected adults.Version8.0. October 2015.
15.
European Centre for Disease Prevention and Control/WHO Regional Office for Europe. Tuberculosis surveillance and monitoring in Europe 2014. Stockholm: European Centre for Disease Prevention and Control, 2014.
16.
Fardet L, Mary-Krause M, Heard I, Partisani M, Costagliola D. Influence of gender and HIV transmission group on initial highly active antiretroviral therapy prescription and treatment response. HIV Med. 2006;7(8):520-529.
17.
Fitzgerald D, Sterling T, Haas D. Mycobacterium tuberculosis. In: Mandell GL, Bennett JE, Dolin R, editors. Principles and practice of infectious diseases. 7th edn. Philadelphia: Churchill Livingstone; 2010.
18.
Fontanilla JM, Barnes A, von Reyn CF. Current diagnosis and management of peripheral tuberculous lymphadenitis. Clin Infect Dis. 2011 Sep;53(6):555-62. PubMed PMID: 21865192. Epub 2011/08/26. eng.
19.
Galli M, Veglia F, Angarano G, et al. Gender differences in antiretroviral drug-related adipose tissue alterations. Women are at higher risk than men and develop particular lipodystrophy patterns. J Acquir Immune Defic Syndr. 2003;34(1):58-61.
20.
Geri G, Passeron A, Heym B, Arlet JB, Pouchot J, Capron L, et al. Paradoxical reactions during treatment of tuberculosis with extrapulmonary manifestations in HIV-negative patients. Infection. 2013 Apr;41(2):537-43. PubMed PMID: 23203899.
21.
Ghid Metodologic de implementare a Programului Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberculozei, 2015
22.
Ghidul TARV România 2013-2014
23.
Golden MP, Vikram HR. Extrapulmonary tuberculosis: an overview. Am Fam Physician. 2005 Nov 1;72(9):1761-8. PubMed PMID: 16300038. Epub 2005/11/23. eng.
24.
Grant PM, Komarow L, Andersen J, et al. Risk factor analyses for immune reconstitution inflammatory syndrome in a randomized study of early vs. deferred ART during an opportunistic infection. PLoS One 2010; 5:e11416.
25.
Guidance for national tuberculosis programmes on the management of tuberculosis in children - 2nd ed. World Health Organization 2014
26.
Guidelines for the programmatic management of drug-resistant tuberculosis.
«WHO/HTM/TB/2008.402 »
27.
Guidelines on the management of latent tuberculosis infection, WHO, 2015
28.
HIV treatment and care for children. Clinical Protocol for the WHO European Region (2012 revision), World Health Organization 2012
29.
HIV/AIDS treatment and care.Clinical protocols for the WHO European Region. Cap.4. Management of tuberculosis and HIV Coinfection World Health Organization 2007
30.
Kwara A, Flanigan TP, Carter EJ. Highly active antiretroviral therapy (HAART) in adults with tuberculosis: current status. Int J Tuberc Lung Dis. 2005 Mar;9(3):248 57
31.
Impementing ColaborativeTB-HIV Activities. A programmatic Guide. International Union Against Tuberculosis and Lug Disease,2012
32.
Lactic Acidosis International Study Group (LAISG). Risk factors for lactic acidosis and severe hyperlactataemia
in
HIV-1-infected
adults
exposed
to
antiretroviral
therapy.
AIDS. 2007;21(18):2455-2464.
33.
Leone S, Nicastri E, Giglio S, Narciso P, Ippolito G, Acone N. Immune reconstitution inflammatory syndrome associated with Mycobacterium tuberculosis infection: a systematic review. International journal of infectious diseases : IJID : official publication of the International Society for Infectious Diseases. 2010 Apr;14(4):e283-91. PubMed PMID: 19656712.
34.
Lorent N, Sebatunzi O, Mukeshimana G, Van den Ende J, Clerinx J. Incidence and risk factors of serious adverse events during antituberculous treatment in Rwanda: a prospective cohort study. PloS one. 2011;6(5):e19566. PubMed PMID: 21611117. Pubmed Central PMCID: 3097195.
35.
Manabe YC, Campbell JD, Sydnor E, Moore RD. Immune reconstitution inflammatory syndrome: risk factors and treatment implications. Journal of acquired immune deficiency syndromes. 2007 Dec 1;46(4):456-62. PubMed PMID: 18077835.
36.
Management of tuberculosis and HIV coinfection Clinical Protocol for the WHO European Region (2013 revision), World Health Organization 2013
37.
Marais S, Thwaites G, Schoeman JF, Torok ME, Misra UK, Prasad K, et al. Tuberculous meningitis: a uniform case definition for use in clinical research. Lancet Infect Dis. 2010 Nov;10(11):803-12. PubMed PMID: 20822958.
38.
Marais S, Wilkinson RJ, Pepper DJ, Meintjes G Management of patients with the immune reconstitution inflammatory syndrome Curr HIV/AIDS Rep. 2009 Aug;6(3):162-71
39.
Meintjes G, Wilkinson RJ, Morroni C, et al. Randomized placebo-controlled trial of prednisone for paradoxical tuberculosis-associated immune reconstitution inflammatory syndrome. AIDS. 2010; 24(15):2381-2390. [PubMed: 20808204]
40.
Muller M, Wandel S, Colebunders R, et al. Immune reconstitution inflammatory syndrome in patients starting antiretroviral therapy for HIV infection: a systematic review and meta-analysis. Lancet Infect Dis. 2010; 10:251-261. [PubMed: 20334848]
41.
Nathan Bahr, David R. Boulware, Suzaan Marais, James Scriven, Robert J. Wilkinson, Graeme Meintjes Central Nervous System Immune Reconstitution Inflammatory Syndrome Curr Infect Dis Rep. 2013 December; 15(6):10.1007/s11908-013-0378-5. doi: 10.1007/s11908-013-0378-5
42.
Ordinul ministrului sănătății nr. 386/2015 privind aprobarea Normelor tehnice de realizare a programelor naționale de sănătate publică pentru anii 2015 și 2016
43.
Ormerod P. Clinical Tuberculosis. Chapter on non-respiratory tuberculosis. Fourth ed. Davies P, Barnes P, editors. London: Hachette UK; 2008.
44.
Panel on Antiretroviral Guidelines for Adults and Adolescents. Guidelines for the use of antiretroviral agents in HIV-1-infected adults and adolescents. Department of Health and Human Services.
Available
at
http://www.aidsinfo.nih.gov/ContentFiles/AdultandAdolescentGL.pdf. Accessed [10.24.2015] [K-4, table 13]
45.
Protocol de colaborare Comisia de Luptă Anti-SIDA și Programul Național de control al Tuberculozei 2011
46.
Socaci Adriana, Nini Gheorghe, Marica Constantin, "Tuberculoza de la diagnostic la tratament" - Ed. Partoș Timișoara 2013. ISBN 978-606-8427-39-3
47.
Socaci Adriana, Popescu Georgeta Gilda, Marica Constantin, "Infecția tuberculoasă latentă- Întrebări și răspunsuri" - Ed. Partoș Timișoara 2014. ISBN 978-606-8427-74-4
48.
TB Infection Control Implementation Framework which is compiled to complement the 2009 WHO Policy on TB Infection Control in Health-Care Facilities1, CongregateSettings and Households.
49.
Use of tuberculosis interferon-gamma release assays (IGRAs) in low- and middle-income countries. Policy Statement, WHO 2011
50.
WHO Global tuberculosis report 2015, available at:
http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/191102/1/9789241565059 eng.pdf?ua=1
51.
WHO
Management
of
tuberculosis
and
HIV
coinfection,
2014
available
at
http://www.euro.who.int/en/health-topics/communicable-diseases/hivaids/publications/pre- 2009/hivaids-treatment-and-care2.-clinical-protocols-for-the-european-region/protocol-4.- management-of-tuberculosis-and-hiv-coinfection
52.
WHO
treatment
guidelines
for
drug-resistent
tuberculosis:
2016
update
available
at
http://www.who.int/tb/areas-of-work/drug-resistant-tb/treatment/resources/en/
53.
Yin M, Dobkin J, Brudney K, et al. Bone mass and mineral metabolism in HIV+ postmenopausal women.Osteoporos Int. 2005;16(11):1345-1352
150
ANEXA NR. 1
MANAGEMENTUL COLABORATIV TB-HIV
MS
UATM
UATM
PNPSCT
La nivel național
PNPSCHS
Comisie Națională comună PNPSCT-PNPSCHS
Centre Regionale
La nivel județean. Coordonatori tehnici județeni
PNPSCHS
PNPSCT
PNPSCHS
La nivel local
Spitale/secții de PF și DPF
Spitale/secții de boli infecțioase
(BI) și secții de zi
Testare HIV la
Screening TB la
pacienții TB
pacienții HIV
Pacienți TB
Pacienți TB
Anunțare*
Pacienți HIV
Pacienți HIV
HIV negativi
HIV pozitivi
caz TB/HIV
cu TB
fără TB
DPF teritorial
Spitale BI
Tratament
Tratament
Monitorizare
Monitorizare
Evaluare
Evaluare
TB
HIV
*Anunțare caz TB/HIV:
-
TBP la un pacient cu HIV/SIDA se face de către medicul pneumolog care a stabilit diagnosticul și schema terapeutică anti TB,
-
TBEP (ex.meningită, ganglionară etc) la un pacient cu HIV/SIDA se face de către medicul infecționist care îngrijește pacientul, împreună cu medicul pneumolog,
-
TBP negativă și TBEP se face de către medicul infecționist, impreună cu medicul penumolog care a efectuat consultul și s-a stabilit schema terapeutică, prin fișa de anunțare a cazului de TB, la DPF pe teritoriul căruia se află domiciliul real al pacientului, transmisă în termen de 7 zile de la inițierea tratamentului anti TB, prin fax sau poștă.
-
Cazul HIV se anunță prin fișa specială, prin fax, la DSPJ și la Centrele Regionale HIV/SIDA teritoriale
ANEXA NR. 2
FIȘA DE ANUNȚARE A CAZULUI TB
ANEXA NR. 3 TESTUL CUTANAT LA TUBERCULINĂ - TEHNICĂ ȘI INTERPRETARE
Această anexă oferă informații despre administrarea, citirea și interpretarea testului cutanat la tuberculină(TCT). Metoda standard de identificare a persoanelor infectate cu M. tuberculosis este TCT folosind metoda Mantoux
Administrarea TCT
1)
localizați și curățați locul de inoculare
de preferat
fața anterioară a antebrațului stâng, 1/3 medie , la 5-10 cm sub cot
plasați antebrațul pe o suprafață solidă, bine luminată
selectați o zonă în tegument sănătos (fără cicatrici, răni) pentru a putea efectua testul și citi
se dezinfectează cu un tampon cu alcool
2)
pregătiți seringa
verificati valabilitatea și calitatea produsului biologic și vă asigurați că flaconul conține tuberculină PPD (5U/0,1ml)
folosiți seringă etanșă de unică folosință de 1 ml divizată în 0,10 ml, prevăzută cu ac special pentru injectare intradermică (de 10 mm, cu bizou scurt)
curățați partea de sus a flaconului cu un tampon steril
introduceți în seringă 0,1ml tuberculină
3)
injectați tuberculina
se introduce acul încet, cu bizoul în sus, la 5-15 °
bizoul acului ar trebui să fie vizibil chiar sub piele
după injectare ar trebui să apară o papulă ischemică deasupra acului
4)
verificați locul de injectare
după injectare ar trebui să apară intradermic o papulă ischemică de 6-10 mm cu aspect de "coajă de portocală". TCT corect este confirmat de lipsa sângerării și de obținerea papulei.
5)
Înregistrarea informațiilor
se înregistrează : datele personale ale persoanei testate,data efectuării testului, numărul lotului de tuberculină
Citirea TCT . Citirea rezultatului estr cantitativă și se face la
72 de ore
de la administrare, când indurația este maximă și reacția nespecifică dispare, procedându-se astfel (figura nr.2):
verificare loc de inoculare
se verifică vizual la locul de injectare, sub lumină bună, mărimea diametrul transversal al zonei de indurație (îngroșarea a pielii), nu eritem (înroșirea pielii)
palpare indurație
utilizați vârfurile degetelor pentru a găsi limita de indurație
marcare indurație
utilizați vârfurile degetelor ca un ghid pentru a delimita exact punctele extreme ale diametrului transversal, marcați eventual limitele indurației
măsurare indurație folosind o riglă
se măsoară cu ajutorul unei rigle transparente diametrul transversal al zonei de indurație marcat
înregistrare diamentul indurației
nu înregistrați rezultatul ca fiind "pozitiv" sau "negativ" înregistrați rezultatul doar în "mm", notați data citirii rezultatului
în cazul în care nu găsiți nici o indurație, înregistrarea va fi de 0 mm.
Figura nr. 1.Administrare TCT folosind metoda Mantoux
1) localizați și curățați locul de inoculare
2) pregătiți seringa
3) injectați tuberculina
4) verificați locul de injectare
Figura nr.2. Citirea TCT
verificare loc de inoculare
palpare indurație
marcare indurație
măsurare indurație
Interpretarea testului.
Interpretarea TCT depinde de doi factori:
diametrul indurației (măsurat în mm)
riscul persoanei de a fi infectată și de a face boala, dacă a fost infectată
ReacJia TCT pozitivă : trei cut-offuri (recomandările OMS) definesc intervalele pentru o reacție pozitivă:
5 mm, 10 mm sau 15 mm , în funcție de riscul de infecție TB, bolile asociate sau populația testată.
Clasificarea reacției pozitive TCT, conform OMS
TCT (mm)
Grup de risc
2
5 mm
Risc înalt:
persoană infectată HIV
contact recent cu un caz TB
persoane cu modificări fibrotice pe radiografia toracică în concordanță cu TB în antecedente
beneficiarii de transplant de organe
pacienți cu medicație imunosupresoare (echivalentul a cel puțin 15 mg/zi de prednison timp de 1 lună sau mai mult, tratament cu citostatice sau antagoniști de TNF-alfa).
2
10 mm
Risc mediu:
imigranții recenți (<5 ani) din țările cu prevalență înaltă
utilizatorii de droguri injectabile
rezidenții și angajații instituțiilor cu risc înalt (penitenciare, facilități de îngrijire pentru bătrâni, spitale și alte facilități de îngrijire a sănătății, centre pentru persoane fără adăpost)
personalul din laboratoarele de microbiologie
persoanele cu condiții clinice care-i plasează la risc înalt (silicoză, diabet zaharat, insuficiență renală cronică sau hemodializă, gastrectomie, by-pass jejuno-ileal, transplant de organ, neoplasm, condiții care necesită utilizarea prelungită a corticosteroizilor sau alte imunosupresoare, cum ar fi TNF antagoniști)
copiii < 5 ani
copiii și adolescenții expuși la un risc înalt pentru TB
2
15 mm
persoanele care
nu au factori de risc cunoscuți
pentru TB
Virajul tuberculinic
constă în pozitivarea unei testări care succede uneia cu rezultat negativ și, dacă nu este consecința unei vaccinări BCG, traduce o infecție de dată recentă.
Saltul tuberculinic
reprezintă creșterea diametrului reacției tuberculinice cu peste 10 mm față de testarea anterioară.
ReacJia negativă
(anergia) reprezintă lipsa de răspuns la injectarea intradermică a tuberculinei și poate fi întâlnită în mai multe situații:
organismul testat este neinfectat;
organismul este infectat și se află în faza antealergică;
organismul este infectat, dar testul este efectuat după o boală anergizantă;
stingerea hipersensibilității după tratament sau spontan.
ReacJiile fals-negative
pot fi determinate de:
factori individuali (ex. imunodepresie);
factori legați de produsul utilizat: inactivarea produsului prin expunere la lumină și căldură, diluții improprii, denaturări biochimice, contaminare, adsorbție parțială pe pereții fiolei;
factori umani:
tehnică defectuoasă de administrare: prea puțin produs, tamponarea energică după injectare, sângerare;
erori de citire.
ReacJiile fals-pozitive
pot fi cauzate de :
tehnica sau citirea defectuoasă (interpretarea reacțiilor nespecifice, injectarea subcutanată a tuberculinei);
alte infecții micobacteriene atipice;
vaccinare BCG;
reacții încrucișate cu alți antigeni bacterieni (de exemplu, ASLO în cantitate mare).
Incidente, accidente.
Testul nu este însoțit de incidente și accidente grave. Se citează frecvent edemul marcat și inflamația produsă de introducerea subcutanată a tuberculinei.
ANEXA NR. 4
MĂSURI DE CONTROL AL INFECȚIEI TUBERCULOASE
ANEXA NR. 5
CLASIFICAREA ZONELOR DE RISC INFECȚIOS
Clasificarea unităților sanitare / secțiilor, pe grupe de risc, conform categoriilor de risc OMS
Locația din unitatea medicală
Risc scăzut
Risc mediu
Risc înalt
Risc foarte înalt
Zone administrative
(fără contact cu pacienți sau suspecți - de ex. clădiri separate de zona pacienților)
Zone administrative
(cu contact limitat cu pacienți sau
suspecți sau cu posibilitate redusă de inhalare a aerului de la pacienți)
MaternităJi, secJii de pediatrie
Ambulatorii pentru pacienții cu infecție HIV
Ambulatorii
(săli de așteptare, cabinete de consultații)
Camere de primiri urgențe
Secții de terapie intensivă sau de medicină internă
Dispensare TB
Secții cu compartimente de PF
Secții de tuberculoză multidrog-rezistentă (MDR TB )
Secții cu tuberculoză XDR
Clasificarea procedurilor în funcție de gradul de risc
Procedura efectuată în unitatea sanitară
Risc scăzut
Risc mediu
Risc înalt
Risc foarte înalt
Microscopie
Chirurgie
(la pacienți netuberculoși
)
Radiologie
Spirometrie, terapie respiratorie
Intubație oro-traheală
Bronhologie
Culturi și antibiograme pentru Mycobacterium tuberculosis
Teste moleculare cu specimene de Mycobacterium tuberculosis
Colectarea sputei
Inducția sputei
ANEXA NR. 6 ALGORITM DIAGNOSTIC MENINGITĂ/MENINGOENCEFALITĂ TB LA PIHIV
Meningita/Meningoencefalita
Unități BI
Semne/simptome frecvente TB-SNC
Debut subacut febră, Redoare de ceafă
Cefalee, Vărsături, Scădere ponderală
Unități BI
Convulsii, Confuzie/Coma
Paralizie nervi cranieni, Hemipareză
Continuare ARV
Monitorizare
LCR:
BAAR+/PCR MTB+
NU
DA
Meningită TB
SIGURĂ
2 din următoarele prezente:
1 factor risc pt TBEP- SNC
Condiție imunosupresivă -cu excepția HIV Născut/reședință actuală într-o țară cu prevalență înaltă TB/Contact recent TBP
3 caracteristici sugestive pt MeningităTB
DA
Meningită TB
Debutul simptomatologiei > 5 zile,
PROBABILĂ
Leucocitoza < 15.000/mm 3 , Nr. elemente SNC 5-750,
PMN-LCR < 50% și prezența limfocitelor mici, Glicorahie < 50% glicemie,
Imagistică cerebrală: hidrocefalie, infarct cerebral, abces/tuberculom,
Dovada TBEP- SNC
Pacient cu etiologie neprecizată a meningitei,
DA
Meningită TB
cu hipoglicorahie,
POSIBILĂ
GCS <8, simptomatologie neurologică nou apărută
Anunțare DPF
Declarare Continuare tratament Monitorizare Evaluare
ANEXA NR. 7 DEFINIREA CAZULUI DE TB, NOTIFICAREA, ÎNREGISTRAREA ȘI RAPORTAREA
Cazul de TB
este
:
bolnavul cu TB confirmată bacteriologic sau histopatologic (HP) sau
bolnavul care nu are confirmare, dar la care medicul pneumolog decide începerea tratamentului antituberculos.
Cazul de TB este definit în funcție de: localizarea bolii, istoricul terapeutic, confirmarea bacteriologică sau histopatologică și statusul HIV:
a)
Localizarea bolii
Tuberculoză pulmonară (TBP)
- dacă leziunile sunt în parenchimul pulmonar, în arborele traheo- bronșic sau în laringe.
Acestea sunt forme contagioase, importante din punct de vedere epidemiologic.
Tuberculoză extrapulmonară (TBEP)
-
dacă leziunile sunt în alte locuri decât cele de mai sus.
Cazul de TB
cu două sau mai multe localizări , dintre care cel puțin una pulmonară, va avea ca diagnostic principal pe cel al localizării pulmonare, iar ca diagnostic secundar (diagnostice secundare) pe cel (cele) al (ale) localizărilor extrapulmonare. Cazul se va înregistra ca TB pulmonară.
Dacă nici una dintre localizări nu este pulmonară, se va considera diagnostic principal cel al localizării celei mai grave, iar celelalte localizări vor fi înscrise ca diagnostice secundare. Cazul se va înregistra ca TB extrapulmonară.
TB
diseminată , dacă are și localizare pulmonară, se va considera ca localizare pulmonară. Se va înscrie la diagnostic principal forma anatomo-radiologică pulmonară, iar la diagnostice secundare localizările extrapulmonare.
TB
copilului
va fi considerată cu localizare pulmonară dacă se evidențiază leziuni ale parenchimului pulmonar, ale arborelui traheo-bronșic sau ale laringelui (diagnostic principal), respectiv cu localizare extrapulmonară dacă nu sunt leziuni în aceste structuri (diagnostic principal cel al localizării unice sau cel al localizării celei mai grave).
Adenopatia traheo-bronșică, neînsoțită de alte determinări va fi înregistrată ca diagnostic principal, iar localizarea se va considera extrapulmonară. Dacă însă la un astfel de caz, rezultatul examenului bacteriologic din spută sau dintr-un alt produs recoltat este pozitiv, se va presupune existența fistulei traheo- bronșice, chiar dacă aceasta nu a fost evidențiată, iar cazul va fi înregistrat cu localizare pulmonară.
b)
Istoricul terapeutic
Caz nou (N) -
este pacientul care nu a luat niciodată tratament cu medicamente antituberculoase în asociere pe o perioadă mai mare de o lună de zile. Cazurile de TB neconfirmate pot fi înregistrate în această categorie în baza deciziei colectivului medical. La încadrarea pacientului "Caz nou" nu se ia în considerare chimioterapia preventivă.
Caz cu retratament -
este unul din următoarele categorii:
Recidivă (R)
- pacientul care a fost evaluat vindecat sau tratament complet în urma unui tratament antituberculos și care are un nou episod de TB confirmat bacteriologic sau HP. Cazurile de TB neconfirmate pot fi înregistrate ca "recidive" în baza deciziei colectivului medical.
Retratament pentru eșec (E) -
pacientul care începe un retratament după ce a fost evaluat "eșec" al unui tratament anterior.
Retratament pentru abandon (A)
- pacientul care începe un retratament după ce a fost evaluat "abandon" sau "pierdut" la un tratament anterior și este bacteriologic pozitiv sau negativ, la care se decide reluarea tratamentului.
Cronic (Cr)
- pacientul care începe un nou retratament după ce a fost evaluat "eșec" al unui retratament anterior.
c)
Confirmarea bacteriologică/histopatologică.
Conform definițiilor ECDC această calsificare se bazează pe următoarele criterii:
Criterii clinice . Orice persoană care prezintă următoarele două criterii:
-
Semne, simptome și/sau semne radiologice compatibile cu tuberculoza activă care afectează orice sediu;
-
Decizia clinicianului de a trata pacientul printr-o cură completă de terapie anti TB,
sau
-
Cazul descoperit post mortem, prezentând modificări patologice comparabile cu tuberculoza activă și care ar fi necesitat tratament antituberculos, în cazul în care pacientul ar fi fost diagnosticat înainte de deces.
Criterii de laborator
■
Criterii pentru confirmarea cazului . Cel puțin una dintre următoarele situații:
-Izolarea complexului
Mycobacterium tuberculosis
(excluzând Mycobacterium bovis - BCG) dintr-o probă clinică;
-Depistarea de acid nucleic aparținând complexului
Mycobacterium tuberculosis
într-o probă clinică și microscopie pozitivă pentru BAAR.
■
Criterii de laborator pentru un caz probabil.
Cel puțin unul dintre următoarele trei:
-Microscopie pozitivă pentru BAAR;
-Depistarea de acid nucleic aparținând complexului
Mycobacterium tuberculosis
într-o probă clinică;
-Aspect histologic de granulom tuberculos.
Criterii epidemiologice
- neaplicabile
Clasificarea cazurilor:
A.
Caz posibil
Orice persoană care îndeplinește criteriile clinice.
B.
Caz probabil
Orice persoană care îndeplinește criteriile clinice și criteriile de laborator pentru un caz probabil.
C.
Caz confirmat
Orice persoană care îndeplinește criteriile clinice și de laborator pentru confirmare
d)
Statusul HIV
Cazul de TB HIV- pozitiv
este cazul cu TB confirmat bacteriologic sau diagnosticat pe criterii clinice și care este HIV- pozitiv la testarea efectuată cu ocazia diagnosticării TB, sau în orice altă ocazie anterioară (statusul HIV anterior trebuie susținut de documente medicale cum ar fi cele care atestă terapia ARV).
Cazul de TB HIV- negativ
este cazul cu TB confirmat bacteriologic sau diagnosticat pe criterii clinice și care este HIV- negativ la testarea efectuată cu ocazia diagnosticării TB. În cazul în care la o testare ulterioară este depistat HIV- pozitiv, va fi reclasificat.
Cazurile de TB MDR
vor fi încadrate atât într-o categorie de caz de TB, conform definițiilor cazurilor la înregistrare, cât și într-una din categoriile următoare, conform anamnezei terapeutice:
Caz nou de TB MDR:
pacientul care nu a primit înainte de episodul actual tratament antituberculos în asociere mai mult de o lună;
Caz de TB MDR tratat anterior numai cu medicamente de linia I:
pacientul care a primit anterior episodului actual tratament antituberculos mai mult de o lună, dar numai cu medicamente de linia I;
Caz de TB MDR tratat anterior cu medicamente de linia a II-a : pacientul care a primit în antecedente tratament antituberculos mai mult de o lună cu medicamente de linia a II-a, indiferent dacă a primit și medicație de linia I.
Suspectul TB MDR (caz MDR neconfirmat)
este pacientul la care se suspectează multidrug - rezistența, dar la care nu există temporar confirmarea prin ABG, de ex:
-
eșecul unui tratament/retratament pentru TB;
-
recidivă la un pacient care a avut în antecedente un tratament pentru TB MDR;
-
contactul apropiat al unui caz cunoscut cu TB MDR;
-
copii cu TB din focare TB MDR;
-
rezultat pozitiv cu rezistența RMP detectată GeneXpert.
Anunțarea . Pentru orice caz de TB la care se decide începerea tratamentului antituberculos se va completa "Fișa de anunțare a cazului de tuberculoză" (vezi Anexa nr.2) în cel mult 48 ore de la inițierea tratamentului. Fișa de anunțare este completată de către medicul pneumolog care a diagnosticat cazul și/sau care a inițiat tratamentul și este imediat trimisă (prin fax sau prin poștă) DPF de pe teritoriul căruia locuiește în fapt bolnavul, indiferent de adresa înscrisă în documentele sale de identitate. Pentru cazurile TB/HIV se acceptă transmiterea fișei de anunțarea a cazului de tuberculoză la DPF teritorial la 7 zile de la inițierea tratamentului anti TB.
Declararea și înregistrarea.
După depistarea/primirea fișei de anunțare a unui caz de TB (chiar decedat), dacă pacientul locuiește la adresa comunicată, DPF anunță în termen de 3 zile apariția cazului - prin scrisoare medicală - medicului de familie al teritoriului, pentru declanșarea AE. Totodată, pacientul este înregistrat atât în Registrul TB, cât și în baza de date electronică din calculatorul unității.
Infirmarea.
Dacă după înregistrare se constată că diagnosticul de TB activă nu a fost corect, cazul respectiv este infirmat de către medicul pneumolog din DPF care a înregistrat cazul. Când infirmarea este făcută de către o altă unitate, aceasta este comunicată DPF prin
„Fișa de anunțare a infirmării diagnosticului de TB " (existentă în unitățile PNF). Infirmarea (I) se poate opera numai între momentul declarării și cel al evaluării, iar după înscrierea sa atât în Registrul de TB, cât și în bazele de date electronice, va fi echivalentă cu o categorie de evaluare finală .
Decesul.
În cazul decesului unui bolnav de TB în spital, în termen de maxim 48 ore se completează
“Fișa de anunțare a decesului în spital”
(existentă în unitățile PNF) ,
care se trimite DPF. În cazul în care diagnosticul de TB este pus cu ocazia necropsiei, se completează fișa de anunțare a cazului de TB, în vederea efectuării anchetei epidemiologice și declarării post-mortem a cazului de către DPF.
ANEXA NR. 8
FIȘE CONSILIERE PRE/POST-TEST HIV
FIȘĂ DE CONSILIERE PRE TEST HIV
Cod testare voluntară confidențială anonimă ........ (ex. nr. /data)
Nume .................. Prenume ................... Vârstă ...... Adresă...................................................................................................................... Nr. telefon................................
Motiv testare HIV ...............................
Secția PNF.............Medic curant..............
Dacă solicitați sau dacă vi se propune o testare la HIV, este necesar să vă dați consimțământul după ce ați fost informat(ă) despre următoarele aspecte:
1.
Ce este infecția cu virusul HIV .
•
Este cauzată de un virus cunoscut sub numele de virusul imunodeficienței umane (HIV).
•
Oamenii infectați cu HIV pot trăi de obicei mulți ani fără nici un simptom, dar orice persoană infectată cu HIV poate transmite virusul altor persoane.
•
SIDA este ultima etapă a infecției cu HIV. Boala apare în medie după 7-10 ani de la momentul infectării. Ea nu poate fi vindecată, deși au fost obținute unele medicamente care pot prelungi și îmbunătăți calitatea vieții bolnavilor.
2.
Informații despre căile de transmitere și mijloacele de prevenire a infecției HIV
•
HIV se poate transmite de la o persoană la alta printr-un număr limitat de căi:
- calea sexuală (contacte sexuale neprotejate vaginale, anale sau orale);
- calea parenterală (transfuzii de sânge infectat, utilizarea instrumentelor medicale/nemedicale tăioase/înțepătoare nesterile;utilizarea în comun a drogurilor injectabile);
- expunerea profesională la sânge și produse din sânge, produse biologice, dacă sângele sau alte produse nu au fost testate pentru HIV
-
transmiterea virusului de la mamă la făt în timpul sarcinii, nașterii sau alăptării la sân.
ModalităJile de prevenire a infecJiei cu HIV vizează:
a)
Prevenirea transmiterii pe cale sexuală
-Fidelitatea reciprocă între partenerii neinfectați îi protejează pe ambii de infecția HIV.
-Dacă nu aveți contacte sexuale doar cu partenerul (a) D-voastră și dacă nu sunteți sigur(ă) că amândoi sunteți neinfectați, trebuie să reduceți riscul de a vă infecta cu HIV, practicând relații sexual protejate.
-Cu cât aveți mai mulți parteneri sexuali, cu atât este mai mare riscul ca unul dintre ei să vă infecteze și pe dvs. Cu cât partenerul dvs are mai mulți parteneri sexuali, cu atât crește riscul de a se infecta și de a vă infecta și pe dvs.
-Riscul de infectare cu HIV poate fi redus prin folosirea prezervativelor din latex cu spermicide. Acestea trebuie folosite corect în timpul tuturor relațiilor sexuale.
-Metodele de control al sarcinii (locale, orale) nu pot preveni transmiterea infecției HIV și a infecțiilor transmisibile sexual.
b)
Prevenirea transmiterii pe cale parenterală (injectabilă):
-
evitarea contactului direct cu sângele altei persoane;
-
folosirea seringilor și instrumentelor tăioase de unică folosință sau sterilizate corect;
-
folosirea individuală a obiectelor de igienă personală (periuța de dinți, lame de ras, trusa de unghii);
-
refuzarea tratamentelor chirurgicale, stomatologice fără să vă fi asigurat de sterilizarea corectă a instrumentarului folosit (cereți ca trusa cu instrumente chirurgicale/stomatologice să fie deschisă în fața dvs);
-practicarea unor manevre nemedicale sângerânde (găuri pentru cercei, tatuare sau acupunctură, bărbierit) poate prezenta riscuri, dacă instrumentele folosite nu sunt sterilizate;
-
evitarea transfuziilor atunci când nu există condiții de testare a sângelui folosit.
Riscul de transmitere a HIV prin utilizarea în comun a drogurilor injectabile este foarte mare. De aceea, este bine să abandonați aceste practici.
c)
Prevenirea transmiterii de la mamă la copil (verticală):
-Riscul de transmitere a infecției HIV de la mamă la făt este de aproximativ 30-40%. Transmiterea virusului se poate face în timpul sarcinii, la naștere și apoi prin alăptarea la sân. Aproape toți copii infectați cu acest virus vor muri înainte de a împlinii vârsta de 3 ani. De aceea înainte de a aduce pe lume un copil, este bine să vă testați pentru HIV. Există astăzi o serie de mijloace care pot reduce riscul de transmitere a infecției HIV (administrarea de medicamente antiretrovirale mamei în timpul sarcinii și apoi nou născutului, evitarea alăptării la sân, nașterea prin operație cezariană)
-In afară de protecția personală și a partenerului dvs, trebuie să contribuiți la protejarea copiilor dvs. împotriva HIV. Asigurațivă că știu ce este infecția HIV, cum se transmite și care sunt mijloacele de prevenire.
HIV nu se transmite prin: îmbrățișări, strângeri de mână, tuse sau strănut, folosirea grupurilor sanitare publice în condiții igienice, a telefonului, a farfuriilor, a paharelor, a tacâmurilor, a așternuturilor de pat, a bazinelor de înot sau a băilor publice.
Persoana infectată cu HIV nu prezintă un pericol public pentru sănătatea celorlalți
3.
Testarea HIV
Testul HIV cercetează prezența anticorpilor anti-HIV într-o probă de sânge. Recoltarea sângelui se face folosind ac și seringă sterile
4.
Ce reprezintă un test HIV negativ . În marea majoritate a cazurilor, un test negativ înseamnă că persoana testată nu este infectată.
5.
Ce reprezintă un test HIV pozitiv
•
Un test HIV-pozitiv arată că ați fost expus (ă) infecției cu HIV și sunteți infectat (ă). La rândul dvs. puteți infecta alte persoane prin căile prezentate mai sus.
•
Un test HIV-pozitiv nu înseamnă că aveți deja SIDA. Pentru precizarea stadiului infecției sunt necesare și alte teste și examene medicale.
6.
Tipuri de testare
•
Testarea confidenJială anonimă
- vor fi înregistrate datele dvs de identitate. Rezultatul testului va fi înscris în documentele dumneavoastră medicale și păstrat confidențial,. În cazul unui rezultat pozitiv veți fi îndrumat către servicii medicale și psiho-sociale specializate și veți putea beneficia de tratament specific gratuit.
•
Testarea anonimă confidenJială
- nu vi se cer datele de identitate, iar rezultatul nu va fi eliberat în scris (nu veți putea face dovada testării). În cazul unui rezultat pozitiv nu veți avea acces la servicii medicale și psiho-sociale.
Legislația română protejază informația HIV. Deconspirarea rezultatului pozitiv se va face cu acordul dvs. Există câteva excepții care permit medicilor care vă acordă îngrijiri medicale să-și comunice informații despre dvs. Infectarea unei alte persone cu bună știință este pedepsită prin lege
Am avut ocazia să pun orice întrebare și mi s-a răspuns înainte de a fi testat(ă). Sunt de acord sa fiu testat(ă) pentru HIV, motiv pentru care semnez.
Data................................ Semnătura persoanei consiliate..........
Numele, prenumele și funcția persoanei care a făcut consilierea și care a completat formularul pentru testare...........................
Semnătura consilierului........
Timpul acordat consilierii pre testare a fost de.
minute
Adaptare după „Fișa de consiliere pre-testare”, Ghid de consiliere în infecția HIV/SIDA, 2001 și Consilierea pre și post HIV, 2011.
FIȘĂ DE CONSILIERE POST -TEST HIV
(pentru un rezultat pozitiv)
Cod testare voluntară confidențială anonimă......... (ex. nr /data)
Nume................Prenume......... vârsta....
Adresa ..................................
Motiv testare HIV ......
Consiliat pre-test în data......recoltat sânge pentru testul HIV în data......
1.
Semnificația testului pozitiv pentru HIV
Un rezultat pozitiv al testului înseamnă :
-
că sunteți infectat cu HIV și că organismul dumneavoastră a produs anticorpi anti-HIV;
-
că sunteți contagios și puteți infecta și alte persoane prin sâinge și unele secreții Un rezultat pozitiv nu înseamnă că aveți în mod automat SIDA.
2.
Importanța unei supravegheri medicale adecvate
Este important să intrați într-o rețea medicală de îngrijire cât mai repede posibil, deoarece:
Investigațiile de laborator indică gradul de afectare a sistemului imunitar, existența unei infecții oportuniste sau a unor cancere.
Tratamentele existente pot încetini evoluția infecției cu HIV, pot preveni sau vindeca unele infecții asociate și pot rezolva o serie de alte manifestări din cadrul infecției cu HIV.
Nu există încă un tratament care să vindece complet infecția cu HIV .
Pentru a putea beneficia de o îngrijire medicală adecvată, este important să urmați sfaturile medicului dvs și să apelați la ajutorul acestuia ori de câte ori este nevoie.
Un test pozitiv înseamnă și posibilitatea infectării partenerului și chiar a copiilor. De aceea, vă sfătuim ca partenerul(a)/(partenerii) și copiii dumneavoastră să fie testați pentru HIV.
Adresați-vă celui mai apropiat serviciu de boli infecțioase. Medicii specialiști vă vor acorda asistența medicală de specialitate sau veți fi îndrumat/ă către serviciile necesare.
3.
Prevenirea transmiterii HIV la alte persoane
Chiar dacă nu prezentați semne de boală, puteți transmite infecția:
-pe cale sexuală
- prin contacte sexuale neprotejate sau prin utilizarea incorectă a prezervativului;
- pe cale parenterală
- împrumutând ace sau seringi (infectate, nesterilizate sau incorect sterilizate) altor persoane pentru a-și face injecții (cu droguri sau în scop terapeutic); prin tratamente cosmetice (manichiură, pedichiură etc.) și stomatologice în cazurile de nerespectare a regulilor de dezinfecție a instrumentarului.
-
perinatal
,
de la mama seropozitivă la copilul ei (în timpul sarcinii, nașterii sau prin alăptarea la sân;
HIV nu se transmite în cadrul relațiilor sociale obișnuite, în cursul vieții de familie, în colectivități, prin strângere de mână, prin practicarea în comun a sportului etc.
Transmiterea HIV poate fi prevenită prin abstinență: lipsa relațiilor sexuale vaginale, anale sau orale constiuie modalitatea cea mai sigură de prevenire.
Riscul de transmitere a infecției HIV în cadrul relațiilor sexuale poate fi redus în cadrul relațiilor sexual prin utilizarea corectă a prezervativelor de către parteneri (la fiecare contact sexual, corect aplicat/îndepărtat; nu se refolosește). Prezervativel reduc riscul, dar nu îl elimină 100%
Metodele de prevenire ale sarcinii (locale, orale) nu pot preveni transmiterea infecției HIV și a altor infecții cu transmitere sexuală.
Transmiterea HIV poate fi prevenită dacă se folosește corect instrumentarul cu care se fac injecții (ace și seringi) și respectiv dacă nu se împrumută.
Nu trebuie să donați sânge, țesuturi, spermă, lapte.
Nu împrumutați periuțe de dinți, aparate sau mașini de bărbierit, de epilat, instrumente de manichiură și pedichiură sau alte obiecte care pot fi contaminate (chiar dacă nu s-a demonstrate că acestea ar transmite HIV).
Sunteți sfătuit(ă) să spălați și să dezinfectați suprafețele murdărite de sânge sau de secreții care ar conține sânge sau spermă. Pentru aceasta, trebuie să folosiți cloramina sau hipocloritul.
Dacă sunteți sau doriți să deveniți gravidă, veți primi toate informațiile cu privire la riscul transmiterii infecției la copilul dumneavoastră. Veți putea decide dacă păstrați sarcina sau o întrerupeți. Dacă hotărâți să păstrați sarcina, veți primi tratament antiretroviral care reduce riscul de transmitere a infecției la copil.
Solicitați medicului dvs curant informații despre serviciile sociale din localitate, organizațiile non-guvernamentale cu programe în acest sens, numere de telefon pentru informații și suport psihologic cu respectarea confidențialității.
Puteți primi informații despre tratamentul specializat sau programe speciale pentru renunțarea la alcool sau droguri (dacă este cazul).
Este recomandabil să recomandați partenerilor sexuali pe care îi aveți de asemenea să se testeze. Este important ca partenerul (partenerii) dumneavoastră să-și cunoască statutul HIV, deoarece dacă sunt seropozitivi, pot beneficia de consult, evaluare clinică și de laborator, precum și de tratament adecvat.
Legislația română protejază informația HIV. Deconspirarea rezultatului pozitiv se face cu acordul dvs. Este obligația dvs să deconspirați sau să acceptați deconspirarea rezultaului în unele situații. Există unele exepții care permit medicilor ce vă acordă îngrijiri medicale să-și comunice informațiile despre infecția HIV pe care o aveți, fără a vi se cere consimțământul:
o
discutarea între specialiști a atitudinii terapeutice corecte, pentru a vă putea acorda îngrijirile medicale adecvate
o
medicul poate să-l informeze pe partenerul dvs. sexual fără a vă da numele, în scopul consilierii și testării acestuia.
Răspândirea infecției HIV cu bună știință(cu intenție) se pedepsește prin Codul Penal, indiferent de modalitatea de transmitere ainfecției.
Dacă refuzați să dați numele partenerilor sexuali, Departamentul de Medicină Preventivă al Poliției Sanitare va face investigații în acest sens, folosind numele dvs. fără a vă cere acordul.
Am citit și am înțeles fișa de consiliere.
Am avut ocazia să pun orice întrebare și mi s-a răspuns explicit.
Am primit rezultatul testului la HIV de la
...................................
(nume, prenume, funcția) Mi s-a explicat semnificația rezultatului la HIV - pozitiv.
Îmi asum responsabilitatea să respect măsurile de prevenire a transmiterii infecției HIV, motiv pentru care semnez.........................
Data.........Semnătura consilierului.................. Timpul acordat consilierii post-testare a fost de
minute
Adaptare după „Fișa de consiliere post-testare”, Ghid de consiliere în infecția HIV/SIDA, 2001 și Consilierea pre și post HIV, 2011.
ANEXA NR. 9
MEDICAMENTE ANTI TB DE LINIA I
Medicamentele
anti TB de linia I, utilizate în tuberculoza drogsensibilă (TB DS)
sunt: Izoniazidă (H), Rifampicină (R), Pirazinamidă (Z), Streptomicină (S) și Etambutolul (E); dozele administrate (la adult și copil) și calea de administrare sunt redate în tabel. Este recomandat un supliment de piridoxină de 250 mg/zi la adulții și 5-10 mg/Kgc/zi la copiii cu infecție HIV. Pentru fiecare pacient care începe un tratament anti TB se completează fișa de tratament (Anexa nr. 10).
Medicamente anti TB esențiale (de linia I) utilizate la pacienții TB/HIV
Medicamentul
Forma de prezentare
Modul de acțiune
Calea de administrare
Ritmul de administrare
7/7 (zilnic)
Adulți (mg/kgc/zi)
Copii* (mg/kgc/zi)
Izoniazida (H)
tb. de 100 mg și 300 mg; sol. inj (100 mg/ml fl a 5 ml);
sirop 100mg /5ml fl. a 200ml
bactericid
oral / inj
5 (4-6)
10 (7-15)
Rifampicina (R)
cps. de 150, 300 mg, sol. inj. 30mg/ml, fl. a 20ml
bactericid
oral / inj
10 (8-12)
15 (10-20)
Pirazinamida (Z)
tb. de 500 mg
bactericid
oral
25 (20-30)
35 (30-40)
Etambutol (E)
tb. de 400 mg, cps. de 250 mg
sol. inj. 100mg/ml, fl. a 10ml
bacteriostatic
oral / inj
15 (15-25)
20 (15-25)
Streptomicina (S)
sol. apoasă, fiole de 1 g
bactericid
i.m.
15 (12-18)
15
*dozele la copil trebuie ajustate în conformitate cu creșterea în greutate, la copii cu greutatea peste 25 kg se utilizează dozele recomandate la adult.
În caz de reacții adverse la medicamentele de linia I, monorezistență sau polidrogrezistență, se utilizează, conform recomandărilor PNPSCT, medicamentele redate în tabelul următor.
Regimuri pentru mono și polirezistență la pacienții TB/HIV
Tipul chimiorezistenței
Regim terapeutic
Durata minimă
a tratamentului (luni)
Comentarii
H (± S)
R, Z, E
6 - 9
FQ poate fi asociată în formele
extinse de boală
H, Z
R, E, FQ
9 - 12
Durata trebuie prelungită la
pacienții cu forme extinse de boală
H, E
R, Z, FQ
9 - 12
Durata trebuie prelungită la
pacienții cu forme extinse de boală
R
(mono;TDR/XDR)
Z ± E + FQ + injectabil
(8 luni) + medicamente orale de linia a II-a
20
Se tratează ca TB MDR/XDR
H, E, Z ( ±S)
R, FQ + medicament oral de
linia a II-a + injectabil (cel puțin 2-3 luni)
18
Se poate prelungi administrarea
injectabilului (6 luni) la pacienții cu boală extinsă
ANEXA NR. 10
FIȘA DE TRATAMENT ANTI TB
ANEXA NR.11.a GRUPURILE DE MEDICAMENTE UTILIZATE ÎN TRATAMENTUL TB DR
Grup
Medicamente antituberculoase
Grupul 1
Medicamente de linia întâi
Izoniazidă (H) Rifampicină (R) Pirazinamidă (Z)
Etambutol (E)
Grupul 2
Medicamente injectabile
Streptomicină (S) Kanamicină (K) Amikacină (AK)
Capreomicină (CM)
Grupul 3
Fluorochinolonele
Ofloxacină (OFX) Levofloxacină (LFX) Moxifloxacină (MFX)
Gatifloxacină
Grupul 4
Bacteriostaticele orale de linia a doua
Etionamidă / Protionamidă (ETM/PTM) Cicloserină / Terizidonă (CS/TRD)
Acid paraaminosalicilic (PAS)
Grupul 5
Medicamente nerecomandate de OMS pentru utilizarea de rutină
Bedaquilină Delamanid Linezolid (LZD) Clofazimină (CFM)
Amoxicilină / Clavulanat (AMX/CLV) Imipenem / Cilastatin (IPM / CLN) Meropenem
Izoniazidă - doze mari (H) Tiacetazonă (THZ)
Claritromicină (CLR)
ANEXA NR.11.b MEDICAMENTE ANTI TB DE LINIA A II-A UTILIZATE LA ADULȚI ȘI COPII
ÎN PREZENT ÎN CADRUL PNPSCT
Medicament
Mod de acțiune
Cale de administrare
Regim de admi istrare zilnic (7/7)
Adulți și
adolescenți (mg/kgc/zi)
Copii (mg/kgc/zi)
Aminoglicozide:
Kanamicina (K) Amikacina (AK)
Capreomicina (CM)
bactericide
Injectabilă
15-20 mg/kgc/zi
(1000 mg/zi)
15-30 mg/kgc/zi
(1000 mg/zi)
Tiamide:
Protionamida (PTM) Etionamida (ETM)
bactericide
orală
15-20 mg/kgc/zi
(750 mg-1g/zi)
15-20 mg/kgc/zi (1g/zi)
Fluoroquinolone(FQ):
Levofloxacina (LFX)
bactericide
orală
15-20 mg/kgc/zi
(500-1000 mg/zi)
15-25 mg/kgc/zi
(1000 mg/zi)
Ofloxacina (OFX)
15-20 mg/kgc/zi
(600-800 mg/zi)
15-20 mg/kgc/zi
(800 mg/zi)
Moxifloxacina (MFX)
7,5-10mg/kgc/zi (400-800 mg/zi)
7,5-10mg/kgc/zi (400 mg/zi)
Cicloserina (CS)
bacteriostatic
orală
15-20mg/kgc/zi
(750 mg/zi-1000 mg/zi)
10-20mg/kgc/zi (1000 mg/zi)
Acid paraaminosalicilic
(PAS)
bacteriostatic
orală
150 mg/kgc /zi
(10-12g/zi)
150 mg/kgc /zi
(8 g/zi)
Claritromicina (CLR)
bactericid
orală
15-20 mg/kgc/zi
1000 mg/zi
-
Bedaquilina
-
orală
2 săpt 400 mg/zi,
22 săpt 200 mg/doză, ritm 3/7; durată totală
tratament 24 săpt
-
171
ANEXA NR. 12 FIȘA DE TRATAMENT/DE MONITORIZARE A EVOLUȚIEI SUB TRATAMENT A PACIENTULUI CU TB MDR/XDR
ANEXA NR. 13
DOZE ARV
Medicament ARV
Doza/zi la adult
Doza/zi la copil
ABC
300 mgx2
600 mg
Numai peste vârsta de 3 luni 8mg/kgX2/zi
Doza adult când G> 25 kg
3TC
150 mgx2
300 mg
2mg /kg X2/zi sub vârsta de 4 săptămâni 4 mg/kgX2/zi peste vârsta de 4 săptămâni Doza adult când G> 25 kg
FTC
200 mg
Numai după vârsta de 4 luni. 3mg/kg/zi; doza adult când G> 33 kg
TDF
300 mg
Numai după vârsta de 2 ani
8 mg/kg/zi; Doza adult când G > 35 kg
ZDV
300 mgx2
Prematuri
Sub 30 săptămâni gestație
-2 mg/kgX2/zi - de la naștere până la vârsta de 4 săptămâni
-3 mg/kgX2/zi - Vârsta 4- 10 săptămâni
-12 mg/kgX2/zi după 10 săptămâni până la 9 kg
30 - 35 săptămâni gestație
2 mg/kgX2/zi - de la naștere până la vârsta de 2 săptămâni
-
3 mg/kgX2/zi - Vârsta 2-8 săptămâni
-
12 mg/kgX2/zi după 8 săptămâni până la 9 kg
Peste 35 săptămâni
-
4 mg/kg/zi - sub vârsta de 4 săptămâni
-
12mg/kgX2/zi peste vârsta de 4 săptămâni până la G= 9kg 9 mg/kgX2/zi dacă G= 9 - 30 kg
Doza adult când G > 30kg
EFV
600 mg
Numai peste 3 ani și 10 kg- 200 mg - 10- <15kg
250mg - 15- <20kg
300 mg - 20- < 25kg
350mg - 25- 32,5 kg
400 mg - 32,5- <40
600 mg >40 kg
NVP
200 mgx2
400 mg
6mg/kgX2/zi - sub vârsta de 4 săptămâni fără lead in 200mg/m2 X2 - 4 săptămâni - 8 ani maxim doza adult 150 - 200 mg/m2 X2 - peste 8 ani maxim doza adult
Peste 6 ani se poate folosi formularea cu eliberare lentă
RAL
400 mgx2
Numai dupa vârsta de 4 săptămâni 20 mgX2/zi - 3 <4kg
30mg X2/zi- 4- <6kg 40 mg x2/zi - 6- < 8kg 60mg x2/zi - 8- 11 kg
80 mgx2/zi soluție sau 75mx2/zit b masticabile - 11- <14 100mgX2/zi - soluție sau tb masticabile14-<20 kg
150 mgX2/zi 20-<28 kg tb masticabile
200 mgX2/zi 28 <40 kg tb masticabile
400 mgX2/zi >40 kg
DTG
50 mgx2
Doza adult la peste 12 ani și 40 kg
ANEXA NR. 14 REACȚII ADVERSE LA MEDICAMENTELE ANTITUBERCULOASE
DE LINIA I ȘI LINIA A-II-A
REACȚII ADVERSE LA MEDICAMENTELE ANTITUBERCULOASE DE LINIA I
Reacții adverse
Medicamente responsabile
Conduită
MINORE
Se continuă tratamentul, se verifică dozele
anorexie, greață, dureri abdominale
Z, R
Se va efectua controlul funcției hepatice
Se administrează tratamentul cu un prânz sau la culcare
dureri articulare
Z
Asipirină/AINS; se monitorizează acidul uric și dacă nivelurile sunt mari se administrează Allopurinol
senzația de arsură la nivelul membrelor
inferioare
H
Piridoxina 50-75 mg/zi (5-10 mg/ zi la copii)
colorarea în portocaliu a urinei
R
Se asigură pacientul că e un fenomen normal
flu syndrom
R - doze intermitente
Schimbarea ritmului de administrare din intermitent în zilnic
MAJORE
Se întrerupe medicamentul responsabil
prurit, rash cutanat, peteșii
S, H, R, Z
-
dacă nu este intens și nu influențează calitatea vieții, se va trata cu antihistaminice;
-
dacă este generalizat se oprește medicamentul responsabil și se reintroduc după remisiune la 2-3 zile în ordinea R, H, E și Z;
-
în cazul apariției rashului peteșial, se face controlul trombocitelor și dacă trombocitele sunt scăzute se întrerupe R.
surditate (fără dop de ceară)
S
Se întrerupe S, se folosește E
vertij sau nistagmus
S
Se întrerupe S, se folosește E
icter, hepatită (excluderea altor cauze)
H, Z, R
Hepatita medicamentoasă este atestată de creșterea AST de 3 ori în cazul asocierii simptomelor clinice (sindrom dispeptic, icter) sau când AST crește de 5 ori la pacientul asimptomatic.
Se întrerupe medicamentul cauzator și se utilizează medicamente cu hepatotoxicitate mică.
confuzie (suspiciune de insuficiență
hepatică acută)
majoritatea medicamentelor anti
TB
Se întrerupe tratamentul, se investighează funcția hepatică și protrombina
alterarea acuității vizuale
E
Se întrerupe E
șoc, purpură, IRA
R
Se întrerupe R
REACȚII ADVERSE ALE MEDICAMENTELOR ANTITUBERCULOASE DE LINIA A-II-A
Reacții adverse
Medicamente responsabile
Conduită
MAJORE
Întreruperea/înlocuirea medicamentului responsabil
Tulburări vestibulare, auditve Nefrotoxicitaie
Șoc anafilactic
Amikacina
Oprirea amikacinei
Toxicitate SNC: iritabilitate, instabilitate afectivă, anxietate, depresie, coșmaruri, convulsii, tremor,
tulburări de vorbire
Cicloserina
-psihotereapie individuală sau de grup
-administrat asociat antidepresive
-crește doza de piridoxină la 300 mg/zi
-scădere doza de cicloserină
-dacă simptomele sunt intense se intrerupe temporar medicamentul până la ameliorarea simptomatologiei
MINORE
Continuarea terapiei anti TB, verificarea dozelor
Parestezii periorale
Amikacina
-crește doza de piridoxină la 300 mg/zi
Hipersalivație, disconfort digestiv (greață, vărsături, diaree)
anorexie
Ofloxacina Moxifloxacina Claritomicina Protionamida
Se va efectua controlul funcției hepatice
-consum de lichide > 2 litri/zi
-monitorizarea nivelului de electroliti și inlocuirea lor în vărsături severe
-tratament antiemetic cu 30 minute înainte de administrarea tratamentului anti TB
-administrarea drogului fracționat în 2-3 prize
Rash, fotosensibilitate
Ofloxacina Moxifloxacina Cicloserina
-asociat tratament cu antihistaminice
-dacă manifestările sunt severe se întrerupe tratamentul anti TB și se administrază corticosteroizi, antihistaminice,
iar
când
simptomele
dispar
se
reintroduc treptat medicamentele anti TB
Rar artralgii
Ofloxacina Moxifloxacina
Protionamida
Asociere AINS, consum de lichide > 2 litri/zi
Cefalee, vertij Amețeli
Ofloxacina Moxifloxacina Claritomicina
Asociat tratament cu AINS, analgezice
Administrarea drogurilor seara, la culcare sau în 2 prize (dimineața și seara)
Neuropatie periferică
Cicloserina
Se crește doza de piridoxină la 300 mg/zi
+vitamine
ANEXA NR. 15.
REACȚII ADVERSE ALE MEDICAȚIEI ANTIRETROVIRALE
Efecte adverse
NRTI
(Inhibitori nucleozidici de revers transcriptază)
NNRTI
(Inhibitori nonnucleozidici de revers transcriptază)
IP
(Inhibitori de protează)
II
(Inhibitori de integrază)
IF
(Inhibitori de fuziune)
Hemoragii
Sângerări spontane- hemofilici;
TPV :hemoragie intracraniană
Afectarea densității
minerale osoase (DMO)
TDF : reducerea DMO,
osteomalacie
Reducerea DMO după inițierea medicației ARV
Supresie medulară
ZDV:
anemie, neutropenie
Afectare cardiovasculară
ABC,ddI : posibil risc crescut de infarct miocardic (IM)
Asociere cu IM și AVC în unele studii.
SQV/r,ATV/r,LP
V/r:
prelungirea intervalului PR.
SQV/r,LPV/r:
prelungirea
intervalului QT.
Litiaza biliară
ATV
Rezistența la insulină/ Diabet zaharat
ZDV,d4t, ddI
IDV,LPV/r
(raportări studii)
Dislipidemie
d4T>ZDV>ABC:
țLDL-Cho, TG
EFV
țTG,LDL-
Cho,HDL-Cho
IP/r :țLDL- Cho,TG,HDL-
Cho
LPV/r=FPV/r LPV/r>DRV/r,
ATV/r:
țTG
Afectare gastrointestinală (GI)
Greață,vărsături:
ddI, ZDV>restul NRTI
Pancreatită:
ddI
Intoleranță GI Diaree:
LPV/r > DRV/r și ATV/r
Afectare hepatică
Majoritatea NRTI
Steatoză:
ZDV,d4t,ddI
ddI: Hipertensiune portala
Exacerbări acute severe ale hepatitei la persoanele cu co- infecție VHB care întrerup
3TC,FTC,TDF
NVP >
restul NNRTI
NVP :
hepatotoxicitate severă. Riscul este mai mare pt femeile cu CD4 preNVP
>250cel/mm 3
și bărbații cu CD4 preNVP
>400cel/mm 3 . Nu se administrează
pacienților cu
IP:
Hepatita post- medicamentoasă și decompensarea hepatică au fost raportate: frecvență crescută TPV/r
IDV,ATV/r :icter secundar hiperbilirubinemie indirectă
MVC:
Hepato- toxicitate
Efecte adverse
NRTI
(Inhibitori nucleozidici de
revers transcriptază)
NNRTI
(Inhibitori nonnucleozidici de
revers transcriptază)
IP
(Inhibitori de protează)
II
(Inhibitori de integrază)
IF
(Inhibitori de fuziune)
insuficiență hepatică (Child- Pugh B/C)
TPV/r:
contraindicate pacienților cu insuficiență
hepatică (Child- Pugh B/C)
Reacții de hipersensibilitate
ABC:
Contraindicat dacă HLA-B5701
pozitiv
NVP:
Sdr
hipersensibilitate cu hepatotoxicitate și alergodermie
RAL:
Alergo- dermie
DTG:
<1%
raportări în studii
MVC:
Alergo- dermie
Acidoza lactică
d4T, ZDV,ddI
Femeile și pacienții cu obezitate au risc
crescut
Lipodistrofie
Lipoatrofie:
d4T>ZDV
Lipohipertrofie:
EFV, IP, RAL
Miopatie/țCK
ZDV:
Miopatie
RAL:
țCK,
rabdo- mioliza
Afectare SNC
Neuropatie periferică:
d4T>ddI
EFV:
Somnolență, insomnie, vertij,confuzie, cefalee, tulburări de vedere, depresie, ideație suicidală
II:
Insomnie
RAL:
Depresie și ideație suicidală (rar)
Rash
FTC:
Hiperpigmentare
Toti NNRTI
ATV, DRV, FPV, LPV/r, TPV
RAL
MVC
Afectare renală/ nefrolitiază
TDF:
Insuficiență renală, sd Fanconi
ATV,LPV/r:
risc afectare
renală
cronică într-un studiu de cohortă.
IDV:
Insuficiență renală, piurie, hidronefroză.
IDV,
ATV:
nefrolitiază
Sdr Steven- Johnson/ Necroliza toxică
epidermică
ddi,ZDV: cazuri raportate
NVP>EFV, ETR
FPV, DRV, IDV,
LPV/r, ATV:
cazuri raportate
RAL
Abrevieri: 3TC = Lamivudina; ABC = Abacavir; ATV = Atazanavir; ATV/r =Aatazanavir/Ritonavir; d4T = Stavudina; ddI = Didanozina; DRV = Darunavir; DRV/r = Darunavir/Ritonavir; DTG = Dolutegravir; EFV = Efavirenz;
ETR = Etravirina; FPV = Fosamprenavir; FPV/r = Fosamprenavir/Ritonavir; FTC = Emtricitabina; IDV =Indinavir; MVC = Maraviroc; NFV = Nelfinavir; NVP = Nevirapina; RAL = Raltegravir; RTV = Ritonavir; SQV = Saquinavir; SQV/r = Saquinavir/Ritonavir; TDF = Tenofovir ; TPV = Tipranavir; TPV/r = Tipranavir/Ritonavir; ZDV = Zidovudina.
ANEXA NR. 16 CATEGORIILE DE EVALUARE A REZULTATULUI TRATAMENTULUI
PENTRU CAZUL DE TB DS
Categorie
Descriere
Vindecat (V)
Pacientul cu TBP confirmat bacteriologic, care a urmat o cură completă de tratament și care este negativ la cultură la sfârșitul tratamentului și cel puțin la încă un control
anterior.
Tratament complet (Tc)
Pacientul care a urmat o cură completă de tratament, dar care nu are criteriile pentru a fi evaluat ca vindecat (fie nu a fost confirmat bacteriologic, fie nu are două controale bacteriologice, din care unul la sfârșitul tratamentului și celălalt cu o ocazie
anterioară), sau localizarea bolii a fost extrapulmonară.
Eșec (E)
-
Cazul care rămâne pozitiv la examenul bacteriologic în cultură sau redevine pozitiv în cultură în luna a 5-a de tratament corect administrat va fi evaluat ca "Eșec".
Pacientul va continua tratamentul în fază intensivă până la reluarea schemei pentru "Eșec".
-
Pacienții care sunt identificați cu o tulpina MDR
în orice moment
în timpul respectivului episod de tratament sunt evaluați "Eșec".
-
Cazurile evaluate ca "Eșec" vor fi reînregistrate imediat ca "Retratament pentru eșec" (sau cazuri "Cronice" dacă eșecul a fost constatat în cursul sau la sfârșitul unui retratament) și vor începe o cură de retratament cu regimul II sau
individualizat în funcție de rezultatul ABG.
Abandon (A)
-
Pacientul care a întrerupt tratamentul mai mult de 2 luni consecutive sau mai mult de 20% din totalul prizelor indicate.
-
Pacienții cu întreruperi ale tratamentului mai scurte de 2 luni, dar care nu au pierdut mai mult de 20% din numărul total al prizelor recomandate, vor recupera prizele omise la sfârșitul fazei de tratament în care acestea au fost înregistrate.
Decedat (D)
-
Pacientul care decedează din orice cauză în timpul tratamentului pentru TB.
La aceste cazuri se va menționa într-o rubrică specială cauza decesului: TB sau altă cauză.
-
Cazurile declarate post-mortem vor fi evaluate ca decese prin TB.
Transferat (T)
Pacientul transferat după înregistrare și declarare, în timpul tratamentului anti TB, într-un alt DPF pentru continuarea tratamentului.
Pierdut (P)
Pacientul care a abandonat tratamentul și care nu mai este găsit la adresa cunoscută pentru a fi recuperat.
Continuă tratamentul (C)
Pacientul care are o evoluție favorabilă sub tratament , dar care trebuie să continue tratamentul peste 12 luni (TBEP, monorezistență).*
ANEXA NR.17 CATEGORIILE DE EVALUARE FINALĂ A PACIENȚILOR CU MDR-TB
Categorie
Descriere
Vindecat (V)
Un pacient MDR care:
a efectuat o cură completă de tratament conform protocolului țării (continuarea tratamentului încă 18 luni după conversie în cultură) și
a avut minimum 5 culturi negative consecutive recoltate la minim 30 de zile, în ultimele 12 luni de tratament.
Ca excepție, un pacient poate fi considerat vindecat chiar dacă are numai o cultură
pozitivă în acest interval, dar nu în ultimele trei produse recoltate.
Tratament complet (Tc)
Un pacient MDR care:
a încheiat o cură de tratament complet dar nu îndeplinește criteriile pentru a fi evaluat vindecat sau eșec ca urmare a lipsei sau numărului insuficient de rezultate bacteriologice.
Eșec (E)
Un pacient care prezintă:
mai mult de o cultură pozitivă în ultimele 12 luni de tratament, dintr-un minimum de 5 culturi efectuate în ultimele 12 luni; sau
una dintre ultimele 3 culturi finale este pozitivă; sau
absența connversiei în cultură la sfârșitul fazei intensive de tratament; sau
decizia colectivului medical pentru întreruperea definitivă a tratamentului, mai devreme decât prevede protocolul, din cauza evoluției clinico-radiologice defavorabile sau/și a intoleranțelor la medicamente, sau/și a dobândirii de noi
chimiorezistențe la fluorochinolone și/sau injectabile de linia a II-a.
Abandon (A)
Un pacient care:
a întrerupt tratamentul pentru 2 luni consecutiv sau mai mult;
este pierdut din evidență mai mult de 2 luni și care nu este transfer.
Decedat (D)
Pacientul cu TB MDR care decedează pe parcursul tratamentului, indiferent de cauză (pentru aceste cazuri se va înscrie în rubrica specială din soft cauza decesului: TB sau
altă cauză).
Transferat (T)
Pacientul cu TB MDR care se mută într-o altă unitate teritorială în timpul tratamentului.
Pierdut (P)
Pacientul cu TB MDR care întrerupe tratamentul și care nu mai poate fi recuperat,
întrucât nu mai locuiește la adresa cunoscută.
Continuă
tratamentul (C)
Pacientul având o evoluție favorabilă la tratament și care nu a îndeplinit criteriile unei
evaluări finale pe parcursul ultimelor 12 luni.
ANEXA IV
GHIDUL NAȚIONAL PENTRU REȚEAUA LABORATOARELOR TB 2017
Autori:
Daniela HOMORODEAN , medic primar microbiologie, doctor în științe medicale, coordonator al rețelei naționale a laboratoarelor de micobacteriologie, șef Laboratorul Național de Referință Cluj Napoca, Spitalul Clinic de Pneumoftiziologie Leon Daniello Cluj Napoca.
Adriana MOISOIU , medic primar medicină de laborator, doctor în științe medicale, șef Laboratorul Național de Referință București, Institutul Național de Pneumoftiziologie Marius Nasta București.
Anexa 1 Prepararea reactivilor
Abrevieri
ABG: antibiogramă ADS: Apă Distilată Sterilă Ag: antigen
AS: supliment antibiotic BAAR: bacili acido-alcoolo-rezistenți CAP: Capreomicină
CC: controlul creșterii
CIC-M: control intern al calității pentru examenul microscopic CPM: Cabinet de Protecție Microbiologică
EDTA: Etilen-Diamina Tetra-Acetică EMB: Etambutol
ENC: Extraction Negative Control FRC: forță relativă de centrifugare
GS: supliment de creștere IL: instrucțiune de lucru INH: izoniazidă
LBS3: laborator cu nivel 3de biosiguranță LBS2: laborator cu nivel 2 de biosiguranță LJ: mediul de cultură Lowenstein Jensen
LPA: (Line Probe Assay), metodă de hibridizare pe suport de nitroceluloză MGIT: Mycobacterium Growth Indicator Tube
MOX: Moxifloxacină
MTB:
Mycobacterium tuberculosis
NTM: micobacterii netuberculoase
OADC: Oleic acid, Albumină, Dextroză, Catalază OFL: Ofloxacină
PANTA: Polymixin B, Amphotericin B, Nalidixic Acid, Trimethoprim, Azlocillin PCR: (Polimerase Chain Reaction) reacție de polimerizare în lanț
PNPSCT: Programul Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberculozei RIE: RMP, INH, EMB
RMP: rifampicină
RT-PCR: (Real Time PCR) reacție de polimerizare în lanț în timp real SFS: Ser Fiziologic Steril
SIRE: SM, INH, RMP, EMB
TB: tuberculoză
TB-MDR: tuberculoză multidrog rezistentă TDD: timp de detecție
UC: unități de creștere
UFC: unități formatoare de colonii U.V.: ultra-violet VT:VersaTREK
VTM: VersaTREK Myco ZN: colorația Ziehl Neelsen
1.
Recoltarea, păstrarea și transportul probelor la laborator
Se pot obține rezultate de laborator de calitate bună doar dacă probele de la pacienți sunt de calitate bună, recoltate de personal instruit, iar pacienții au fost instruiți asupra recoltării corecte. Probele trebuie să fie corect identificate și etichetate, păstrate și apoi transportate la laborator în condiții corespunzătoare 1,2, 2b .
Recoltarea sputei de la persoanele suspecte de tuberculoză (TB) se face înainte de începerea tratamentului specific antituberculos. În cazul terapiei intermitente din faza de continuare a tratamentului, când medicația anti-TB se administrează de 2 sau 3 ori pe săptămână, se va recolta sputa în dimineața dinaintea administrării medicației anti-tuberculoase
3,4,55a .
Se recoltează câte două eșantioane de spută de la pacienții suspecți de TB atât pentru diagnostic, cât și pentru monitorizarea tratamentului, la intervale de timp stabilite pentru fiecare categorie de bolnavi 5 . Pentru recoltare vor fi respectate recomandările din Ghidul metodologic de implementare a PNPSCT 5 , prezentate în continuare.
1.
Recoltarea și mânuirea produselor patologice se fac astfel încât să fie evitată:
contaminarea cu bacterii și fungi a produsului patologic;
diseminarea germenilor în mediul ambiant;
infectarea personalului medical implicat.
2.
Recoltarea și mânuirea produselor patologice se face sub supravegherea unui cadru medical instruit pentru practicile referitoare la Controlul infecției, care trebuie să se asigure că produsul recoltat provine de la un pacient corect identificat și corespunde recomandărilor naționale și internaționale.
3.
Respectarea
normelor generale de recoltare
și anume:
în cazul persoanelor suspecte de TB, produsele se recoltează înainte de începerea tratamentului antituberculos.
repetarea examenului bacteriologic în zile succesive. La suspecții de TB pulmonară, dacă primele două examinări au fost negative iar suspiciunea de TB se menține, se poate solicita recoltare și examinare pentru încă 2 eșantioane de spută (dar până la maxim 4 spute suplimentare).
caracteristicile
recipientelor
pentru recoltarea sputei:
o
confecționate din material plastic, incasabil, transparent - pentru a putea aprecia cantitatea și calitatea produsului patologic fără a deschide recipientul;
o
cu deschidere largă (minim 35 mm diametru) - pentru evitarea contaminării pereților exteriori ai recipientului în timpul recoltării;
o
capacitate de 30-50 ml pentru spută și adaptată pentru fiecare tip de produs patologic;
o
cu capac cu filet care închide etanș recipientul;
o
cu posibilitatea de a fi marcate cu ușurință pe corpul recipientului.
Laboratorul poate să primească spre prelucrare pentru examen bacteriologic o varietate de produse biologice. Acestea se pot împărți în 2 categorii:
Produse biologice polimicrobiene care conțin floră normală de colonizare (spută, urină, secreții din leziuni cutanate, sau produse care nu au fost recoltate aseptic).
Material biologic steril, de obicei fără microorganisme de contaminare, provenit din colecții închise.
Factorii care pot influența viabilitatea micobacteriilor
trebuie cunoscuți și evitați, indiferent de categoria de produs care va fi recoltat:
administrarea de antibiotice cu efect antituberculos: rifampicină, streptomicină, kanamicină, amikacină, ciprofloxacină, ofloxacină, levofloxacina, moxifloxacină, claritromicină, amoxicilină + acid clavulanic, azitromicina, imipenem, clofazimina, tetracicline, sulfonamide, minociclina.
conservarea în formol sau recoltarea pe EDTA;
contactul prelungit cu sucul gastric (peste 3-4 ore);
păstrarea probelor la căldură sau lumină;
întârzierea prelucrării produselor patologice (peste 5 zile);
congelarea prelevatelor.
Recoltarea sputei expectorate spontan
se efectuează ori de câte ori se suspectează TB pulmonară;
se efectuează în spațiu special amenajat, "camera de recoltare";
se face după instruirea prealabilă a pacientului;
se face sub supravegherea unui cadru medical (geam/vizor la camera de recoltare);
se respectă măsurile de control al infecțiilor și condițiile optime de păstrare a produselor patologice: ventilație corespunzătore (fereastră), lămpi U.V., măști, frigider pentru păstrarea probelor (până la maximum 4 zile), ușă cu geam pentru supravegherea recoltării.
Pacientul trebuie instruit cu privire la etapele recoltării, înaintea acesteia:
clătirea gurii cu apă pentru îndepărtarea resturilor alimentare și a bacteriilor contaminante;
efectuarea a 2 inspirații profunde urmate de reținerea respirației după fiecare dintre ele timp de câteva secunde, apoi o a treia inspirație profundă, urmată de un expir forțat vor declanșa tusea care va ușura expectorația;
depunerea sputei în recipientul/flaconul care se ține sub buza inferioară.
spălarea mâinilor după recoltare
Cadrul mediu sau persoana instruită
care asistă recoltarea:
instruiește pacientul asupra modului de recoltare a sputei, deschiderea și închiderea flaconului;
înmânează pacientului flacon etichetat cu numele acestuia, scris clar (pe corp, nu pe capac);
dacă sputa recoltată este insuficientă cantitativ, pacientul trebuie încurajat să expectoreze din nou până la obținerea rezultatului dorit (la unii pacienți este nevoie de timp mai îndelungat pentru această manevră);
dacă nu se obține o expectorație de calitate, ci salivă, recipientul folosit va fi considerat deșeu infecțios și trebuie îndepărtat ca atare;
dacă s-a recoltat corect, asigurați-vă că recipientul este bine închis.
spălați-vă mâinile cu apă și săpun;
dați un alt recipient etichetat pacientului și asigurați-vă că acesta a înțeles că a doua zi va recolta un nou produs imediat după trezirea de dimineață (în caz de recoltare nesupravegheată, la domiciliu);
arătați pacientului cum se închide etanș recipientul.
se
recoltează
2
probe
pentru
fiecare
examinare
bacteriologică,
ambele
sub supraveghere medicală sau una dintre ele emisă spontan în dimineața zilei următoare, după instruirea pacientului suspect de TB asupra recoltării corecte. 6,7
Sputa de bună calitate este: în cantitate de 3-5 ml, cu particule purulente; este frecvent vâscoasă și mucoidă; poate fi fluidă, dar să conțină fragmente de țesut necrozat; poate fi stratificată în culori de la alb mat la verde 4 .
Metode speciale de recoltare în caz de suspiciune de tuberculoză pulmonară
În cazul pacienților care nu expectorează, dar sunt suspecți de TB pulmonară activă se folosesc alte metode de recoltare:
sputa indusă cu aerosoli expectoranți;
lavajul laringo-traheal cu ser fiziologic steril (SFS);
aspiratul gastric;
aspiratul bronșic sau lavajul bronho-alveolar prin bronhoscopie.
Pe buletinul de solicitare se menționează metoda de recoltare/produsul biologic.
Sputa indusă
Inhalarea de aerosoli calzi salini-hipertoni (soluție de NaCl 5-10%) irită căile respiratorii și determină tuse cu expectorarea unui produs apos, cu aspect asemănător salivei, dar provenit din profunzimea arborelui bronșic.
Recoltarea:
se începe cu o primă ședință de aerosoli cu durata de 10 minute;
dacă nu este provocată tusea, se recomandă bolnavului să facă efort de tuse voluntară în următoarele 10 minute.
în caz de insucces, se reia aerosolizarea cu durata de încă 10-20 minute sau se recurge la altă procedură de recoltare.
Lavajul laringo-traheal
pacientul face gargară cu xilină 1%, repetat de 2 ori;
cu o seringă cu canulă curbă, sub controlul oglinzii laringiene se introduc 5-10 ml ser fiziologic steril;
tusea productivă apare în cursul manevrei sau după dispariția anesteziei;
se recoltează proba, se verifică volumul și calitatea ei (aspect grunjos, tulbure);
se va recolta și sputa eliminată spontan în următoarele 24 ore.
Aspiratul bronșic și lavajul bronho-alveolar
Se efectueză numai în unitățile care au instrumentarul necesar (bronhoscop) și personal cu competență în acest domeniu. Produsul se recoltează direct în recipiente sterile, în timpul manevrei de lavaj, prin bronhoscop. Se va recolta și sputa eliminată spontan în următoarele 24 de ore.
Lavajul laringo-traheal (spălătura bronșică), lavajul bronho-alveolar și aspiratul bronșic au avantajul că ulterior acestora este posibil să se elimine spontan spută de bună calitate, care se colectează pentru examinare de laborator.
Lavajul gastric / aspiratul gastric
este recomandat atunci când niciuna dintre metodele menționate anterior nu este posibilă, pentru următoarele categorii de pacienți suspecți de TB:
pacienți necooperanți sau care își înghit sputa;
pacienți care nu expectorează din cauza unor condiții coexistente: comă, boli neurologice etc.;
copiii mici care nu știu să expectoreze.
Recoltarea
se face dimineața la trezire, după repaus alimentar de 8-10 ore, înainte ca pacientul să mănânce, de către personal instruit pentru această procedură.
se aspiră conținutul stomacului dimineața la trezirea din somn (aspirat gastric) cu sondă de unică folosință adaptată la seringă (sonda Nelaton la copii sau sonda Einhorn la adulți);
dacă volumul de lichid recoltat este redus, se introduc pe sondă 5-10 ml SFS la copii, respectiv 20-30 ml la adulți;
se aspiră conținutul gastric cu o seringă sterilă de 50 ml;
lichidul aspirat se colectează în recipient steril, cu capac filetat, cu capacitate adecvată.
Proba trebuie prelucrată cât mai curînd după recoltare deoarece micobacteriile sunt distruse rapid datorită acidității gastrice. Dacă nu se poate prelucra în primele 4 ore, se ajustează pH- ul fluidului la valori neutre cu bicarbonat de sodiu sau fosfat disodic. Neutralizarea se face prin amestec în părți egale de aspirat gastric și fosfat disodic 15 % steril sau bicarbonat de sodiu 10%, steril, în prezența unui indicator de pH. Sensibilitatea metodei scade cu creșterea vârstei.
Combinarea inducerii sputei prin folosirea de aerosoli urmată în 30 de minute de lavaj/aspirat gastric crește procentul de culturi pozitive, comparativ cu utilizarea fiecăreia dintre cele două metode separat. 5a
Recoltarea de produse biologice pentru diagnosticul tuberculozei extrapulmonare
ColecJiile închise
Fluidele (cefalorahidian, pleural, pericardic, sinovial, ascitic, sânge), precum și alte produse (puroi, măduvă osoasă), sunt recoltate de către medic, utilizând tehnici de aspirație sau proceduri chirurgicale.
În majoritatea cazurilor de TB extrapulmonară numărul micobacteriilor din leziuni este mic, dar însămânțarea pe medii de cultură cu calități nutritive diferite poate crește șansa izolării acestora. Se folosesc mediul solid Lowenstein - Jensen și, în funcție de dotarea laboratorului, mediul lichid Middlebrook 7H9 în sistem automat de cultivare.
Dacă produsele patologice cu consistență lichidă nu pot fi însămânțate imediat pe medii de cultură, pentru a preveni formarea flocoanelor de fibrină, la 10 ml lichid biologic se va adăuga o picătură de citrat de sodiu 20% steril sau 0,2 mg/ml heparină 2
. Nu se va folosi EDTA , care inhibă creșterea micobacteriilor.
Transportul la laborator trebuie făcut cât mai repede.
Dacă nu se poate asigura transportul imediat către laborator sau se întârzie prelucrarea, se vor păstra la frigider la 4-8 0
C, dar nu se vor congela.
Hemocultura, măduva osoasă
Izolarea micobacteriilor din sânge sau măduvă osooasă, în mod particular la cazurile cu infecție HIV, la care șansa infecției diseminate cu micobacterii este mare, se face prin prelucrare specială, folosind sisteme de recoltare și cultivare dedicate. Este vorba de sistem de centrifugare -liză, în care se realizează liza celulelor sanguine, urmată de centrifugare și însămânțarea pe medii de cultură, preferabil lichide tip Middlebrook 7H9 (dar nu în sistem MGIT 960).
Fragmente tisulare (piese de biopsie)
Produsul recoltat trebuie pus după recoltare în recipient steril, fără soluție de fixare sau conservare. Pentru a preveni deshidratarea în cazul fragmentelor mici, se admite adăugarea unei cantități de 0,5 ml ser fiziologic steril, cu menținerea la temperatură sub +10 0
C
2,2b .
Urina
Examinarea mai multor eșantioane (3-4) crește șansa izolării micobacteriilor. Recoltarea urinei pentru suspiciunea de TB uro-genitală trebuie să fie precedată de:
excluderea unei infecții urinare netuberculoase prin efectuarea de uroculturi pentru microbii cu creștere rapidă.
cu 24-48 ore înaintea recoltării se recomandă regim hiposodat, reducerea cantității de lichide ingerate și suspendarea administrării de produse care acidifiază urina și influențează viabilitatea MTB (vitamina C, aspirină, streptomicină, amikacină, kanamicină,
chinolone,
rifampicină,
claritromicină,
amoxicilină-clavulanat, imipenem).
Recoltarea urinei:
se face toaleta riguroasă a organelor genitale externe prin spălare cu apă și săpun;
se recoltează prima urină de dimineață, în 2-4 zile succesive;
se aruncă primul jet de urină, apoi se colectează într-un recipient steril de 120 ml restul urinii eliminate;
se transportă imediat la laborator pentru a fi prelucrat;
dacă nu se poate prelucra imediat se admite păstrarea urinei la frigider (+4 -8 0
C) cel mult 24 ore.
Păstrarea probelor
Dacă nu pot fi prelucrate imediat după recoltare, probele sunt păstrate la sediul recoltării (până la organizarea transportului la laborator) sau în laborator după recepționare și pâna la momentul prelucrării, în frigider special dedicat păstrării produselor biologice, la temperatura de +4-8 0
C, pentru cel mult 3-4 zile de la recoltare, în tăvi sau cutii care pot fi usor dezinfectate. Urina trebuie prelucrată cât mai curând posibil după recoltare, în aceeași zi.
Nu se folosesc nici un fel de substanțe cu rol de conservare a probelor păstrate în vederea expedierii pentru prelucrare. Pentru evitarea deshidratării pieselor mici de biopsie, acestea se pot umecta cu câteva picături de SFS.
Trimiterea probelor la laborator
se face:
împreună cu formularul de solicitare standardizat, ultima revizuire aprobată în uz (anexa 8 din Ghidul metodologic de implementare a PNPSCT
5
sau revizia comunicată ulterior), completat la toate rubricile;
un singur formular pentru toate probele, cu date de identificare identice pe recipient și pe formular.
etichetarea flacoanelor cu numele și prenumele bolnavului pe corpul recipientului, nu pe capacul acestuia.
de către persoana desemnată, instruită, în cutii speciale din plastic, prevăzute cu compartimente pentru separarea și fixarea flacoanelor cu spută sau alte produse.
transportul probelor către laborator trebuie realizat imediat după recoltare sau, dacă nu este posibil, acestea se păstrează la frigider (la +4 0 -8 0 C maxim 3-4 zile (pentru a minimaliza multiplicarea florei de asociație). Face excepție urina, care trebuie recoltată și prelucrată în aceeași zi.
Transportul la distanță a probelor de la pacienți sau al culturilor
Produsele recoltate de la pacienți și culturile de
M. tuberculosis
destinate testării pentru sensibilitate se încadrează în categoria B de marfă din punctul de vedere al riscului pe care îl reprezintă, fiind necesară ambalarea în sistem triplu stratificat 8 .
La pregatirea unui transport de material categoria B este necesar să fie verificate etapele menționate în tabelul I. 8
Tabel I Verificarea ambalării corecte a materialelor din categoria B în vederea transportului
Verifică
Activitate
1
Recipientul PRIMAR, care CONȚINE PROBA (sputa, cultura etc.) este bine închis cu capac filetat
2
Fiecare capac este înfășurat cu bandă adezivă
3
Fiecare flacon este numerotat cu numărul complet din tabelul însoțitor
4
Pentru probele lichide, recipientul este incasabil și conține maxim 500 ml.
5
Pentru probele solide (ex. cu mediu de cultură solid) recipientele primare să fie rezistente, să conțină maxim 500g
6
Recipientele primare să fie învelite individual sau separat și plasate în RECIPIENTUL SECUNDAR. Acesta trebuie să fie complet închis, să nu permită scurgerea în caz de spargere accidentală sau prelingere din recipientul primar.
7
Recipientul secundar să fie certificat de producător înainte de folosire.
8
Materialul absorbant a fost plasat între recipientele primar și secundar în cantitate suficientă ca să poată absorbi tot conținutul tuturor recipientelor primare.
9
Recipientul secundar nu este prea plin (poate fi introdus un creion între recipientele primare după introducerea materialului absorbant).
10
Între ambalajul secundar și terțiar se plasează acumulatorul rece furnizat odată cu cutia.
11
Este inclusă o listă cu conținutul pentru fiecare transport. Lista (tabel) să includă și nr. de telefon, fax, adresa de e-mail a expeditorului și destinatarului
12
AMBALAJUL EXTERIOR, care conține ambalajul primar și secundar să fie robust, incasabil, rezistent, cu dimensiuni adecvate conținutului.
13
Ambalajul exterior nu trebuie să fie mai mare de 4 litri pentru transportul de lichide.
14
În cazul probelor solide, ambalajul extern să nu fie mai mare decât pentru un total de 4 kg, iar fiecare din recipientele primare să nu conțină mai mult de 500 g.
15
Pachetele se plasează în pungile de plastic oferite de transportator.
16
Se vor folosi doar ambalaje autorizate, care au inscripționată categoria B de material biologic și marca UN 3373. Nu mai este necesară adăugarea pictogramei de pericol biologic.
17
În afara ambalajului terțiar se plasează punga/plicul cu documentele însoțitoare.
Notă: Pentru situațiile în care este necesar transportul internațional, acesta se face pe cale aeriană și se consideră ca material infecțios de categorie A (UN2814), recipientul primar și secundar trebuie să reziste fără spargere, la o diferență de presiune internă de până la 95kPa (14psi), la temperaturi de la -40°C la 55°C (-40°F la 130°F).
Sistemul de bază al ambalajului triplu
Se utilizează pentru toate substanțele infecțioase și se compune din trei straturi, astfel:
Recipientul primar . Conține proba învelită într-o cantitate suficientă de material absorbant care ar putea absorbi întreaga cantitate de lichid în caz de spargere.
Ambalajul secundar . Rezistent la șocuri mecanice și înțepare, etanș, care conține si protejează recipientul (ele) primar(e). Mai multe recipiente primare protejate cu material de amortizare pot fi plasate într-un singur ambalaj secundar, cu suficient material suplimentar absorbant pentru a absorbi întreaga cantitate de lichid în caz de spargere.
Ambalajul exterior . Ambalajele secundare sunt introduse în ambalaje exterioare de transport, protejate cu material adecvat de amortizare. Ambalajele exterioare protejează conținutul lor de influențele externe, respectiv deteriorarea fizică în timpul transportului și trebuie să fie rigid. Cel puțin una dintre suprafețele exterioare trebuie să aibă dimensiunea de minim 10x10 cm.
Pe ambalajul exterior trebuie să fie scrise clar numele și adresa completă a destinatarului și expeditorului, inclusiv numerele de telefon. Trebuie să fie menționat faptul că are în interior material infecțios din categoria B 9,10,11,12 .
Refolosirea ambalajelor și expedierea ambalajelor goale
Ambalajele de transport pot fi refolosite numai după ce au fost dezinfectate corespunzător. Înainte de reutilizarea ambalajului, expeditorul trebuie să se asigure că toate marcajele și etichetele indică substanțele care sunt expediate în acel transport.
Dacă expeditorul trimite un colet gol, acesta trebuie să fie dezinfectat/sterilizat în prealabil, iar toate marcajele și etichetele care nu mai sunt necesare trebuie să fie îndepartate sau acoperite.
Transportul trebuie să fie planificat , destinatarul fiind înștiințat despre intenția de expediere a coletului, iar destinatarul trebuie să confirme primirea lui.
La recepția probelor în laborator acestea sunt verificate.
Nu vor fi prelucrate și vor fi raportate ca
neconformități
care se comunică imediat medicului solicitant, următoarele situații 2,2b :
Prezintă recipiente sparte sau fisurate, sau din care s-a scurs prelevatul clinic.
Recipientul este neetichetat sau datele de pe eticheta prelevatului nu corespund cu datele de pe buletinul de cerere de analiză.
Recipientul cu prelevat clinic nu este însoțit de buletin cu cererea de analiză.
Prelevatul clinic a fost recoltat într-un recipient neconform (tub de medicamente, tub destinat recoltării sângelui etc.).
Prelevatul clinic a fost recoltat pe formalină sau EDTA.
Cantitatea de prelevat clinic este mult prea mică pentru efectuarea analizelor solicitate sau este uscat.
Nu este corespondență între prelevatul clinic trimis și prelevatul menționat în foaia de cerere de analiză.
Timpul scurs de la recoltarea sputei până la predarea la laborator este mai mare de 4 zile.
Timpul scurs de la recoltarea urinei până la predarea la laborator este mai mare de 1 zi.
Vor fi respinse de la prelucrare doar sputele intens sanghinolente deoarece există șanse mici de a obține un rezultat de calitate.
Criterii de acceptare a produselor pentru prelucrare 2,2b
Spută în cantitate de 3-5 ml, cu aspect purulent sau muco-purulent
Produs recoltat în recipient adecvat produsului recoltat, fară conservanți
Recipient corect etichetat
Transportul s-a realizat în condiții care nu au afectat proba
Formularul de însoțire este corect completat
Se acceptă spre prelucrare proba, dar este necesară menționarea situației particulare pe formularul de solicitare 2b :
Spută cu striuri discrete de sânge - consemnată pe formular
Spută în cantitate mai mică de 2 ml, dar cu aspect purulent - menționare pe formular
Aspect apos al produsului trimis ca spută, fără particule în suspensie - când se scie pe formularul de solicitare aceasta și se solicită un eșantion corespunzător de spută sau recoltarea prin altă metodă.
Piesele de biopsie recoltate pe formalină pot fi folosite doar pentru metodele de biologie moleculară 2a
LCR în cantitate mai mică de 2 ml
2.
Măsuri de biosiguranță și controlul infecțiilor
M. tuberculosis
este inclus în grupa III de risc, care cuprinde microorganisme asociate căii aeriene de pătrundere în organism. Controlul infecției în laborator presupune ansamblul măsurilor de reducere a producerii și răspândirii aerosolilor și particulelor infecțioase (1-5 µm diametru), cu prevenirea inhalării în timpul activității profesionale 2 .
Măsurile pentru controlul infecției se pot grupa în:
Administrative: reguli, reglementări și practici pentru reducerea riscului de expunere la infecție;
Ecologice (sau inginerești): reducerea concentrației aerosolilor infecțioși prin ventilație naturală sau artificială, filtrare, iradiere;
Protecția personală folosind echipament adecvat;
Evaluarea riscului și instruirea personalului.
Fiecare unitate sanitară trebuie să aibă reguli pentru controlul infecției în conformitate cu reglementările naționale, iar acestea să fie cunoscute de către toți angajații.
La recoltarea probelor de la pacient este necesar să fie asigurate șanse maxime ca acestea să fie de bună calitate, dar în același timp să fie redus la minim riscul contaminării mediului ambiant sau al persoanelor care asistă recoltarea. Nu este acceptată recoltarea sputei în laborator 6 .
Camerele/ boxele de recoltare trebuie să fie prevăzute cu sistem de exhaustare/aerisire, lampă UV, chiuvetă cu apă curentă, fereastră pentru observarea recoltării din exterior.
Pe tot traseul probelor recoltate de la pacienți până la laborator, iar aici pe toată durata prelucrării lor până la eliminarea ca deșeu inactivat, fiecare persoană trebuie să respecte normele de protecție colectivă și individuală pentru prevenirea infecției.
Când se mânuiește material infecțios este obligatorie folosirea echipamentului de protecție individuală (halat cu mâneci lungi, mănuși, mască cu filtru HEPA- FFP2 cu supapă, capelină).
Probele care conțin sau ar putea conține micobacterii se mânuiesc exclusiv în cabinet de protecție microbiologică (CPM) de clasă II sau I 2 . Se include aici și deschiderea coletelor cu probe primite din alt laborator/spital. Nu este permis lucrul cu material potențial infecțios la masă.
Infectarea cu micobacterii se poate produce pe cale aeriană, digestivă sau cutanată 13 . Cunoscând căille posibile de infectare, personalul se poate proteja prin folosirea corectă a echipamentului adecvat de protecție individuală, prezentat în tabelul II 2b .
Infectarea pe cale aeriană în laborator
are loc atunci când se produc aerosoli infecțioși iar personalul nu are protecție respiratorie adecvată. Următoarele activități sunt generatoare de aerosoli infecțioși:
deschiderea bruscă a recipientelor cu produs patologic sau/și deschiderea lor imediat după agitare sau scoaterea din centrifugă;
etalarea produsului pe lamă (prin strivire între 2 lame, cu pipeta sau cu ansa bacteriologică);
însămânțarea cu pipeta a produsului patologic dar mai ales a suspensiei bacteriene apoase pentru antibiogramă, inclusiv realizarea diluțiilor pentru aceasta;
pipetarea eșantionului extras pentru identificarea micobacteriilor;
descărcarea flacoanelor / supernatantului în recipientul pentru colectare și autoclavare;
lucrul cu produs infecțios în fața ferestrei deschise;
centrifugarea, dar mai ales deschiderea centrifugii imediat după spargerea unui tub în interiorul centrifugii care nu are protecție anti-aerosoli;
extragerea acului seringii din dopul de cauciuc al flacoanelor de cultură în mediul lichid;
spargerea/vărsarea unui recipient cu suspensie micobacteriană apoasă;
recoltarea sputei în laborator;
Infectarea pe cale digestivă (prin inghițire)
pipetarea cu gura a suspensiei bacteriene;
ingestia de alimente și lichide în laboratorul de micobacteriologie;
răsfoirea documentelor cu degetele umezite în gură;
sugerea de bomboane sau gumă de mestecat;
Infectarea pe cale cutanată
(prin înțepare)
înțepare cu ace infectate, pipete Pasteur, cioburi de sticlă;
plăgi cutanate (ale mâinilor în mod special) neprotejate.
Tabel II. Protecția individuală a personalului din laboratorul de diagnostic al TB
Echipament
Caracteristicile echipamentului
Protejează și previne
Comentarii
Salopetele de laborator, halatele sau uniformele
Să aibă mâneci lungi, să fie încheiate la spate dacă se lucrează la CPM.
Contaminarea îmbracăminții
Purtate tot timpul cât se lucrează în laborator.
Halatul cu care se lucrează în LBS3/LBS2 nu trebuie să părăsească încăperea. Se pun în cuier diferit de cel în care se țin halatele purtate în restul laboratorului.
Șorț
Impermeabil
Contaminarea îmbracăminții
Purtate când se lucrează cu soluții și există riscul de stropire
Mănușile de protecție
Impermeabile, să acopere manșeta halatului
Contaminarea tegumentelor mâinilor, zgârierea
Purtate în timpul tuturor procedurilor care pot implica contactul direct sau accidental cu sânge, alte fluide sau materiale potențial infecțioase.
Mănușile se scot aseptic și apoi se spală mâinile.
Ochelarii de protecție, ecranele de protecție facială
Să nu distorsioneze imaginea, să aibă corecția optică necesară operatorului
Contaminarea ochilor și a feței
Purtate ori de câte ori este necesară protecția ochilor și a feței de stropi, obiecte impactante și surse artificiale de radiații ultraviolete.
Încălțăminte de laborator
Talpă flexibilă, închisă în față
Protejarea degetelor și a labei piciorului
Purtată exclusiv în laborator
Mască respiratorie
FFP2, cu filtru HEPA, cu supapă, pliantă
Purifică aerul inspirat și previne contaminarea pe cale aeriană
Purtată când se prelucrează material înfecțios în proceduri cu risc de generare de aerosoli sau stropi infecțioși.
Se recomandă:
diminuarea generării de aerosoli infecțiosi, prin manopere corecte, efectuate cu calm
lucrul în CPM.
purtarea măștilor tip HEPA - (high efficiency particulate air) - "respirator", FFP2 cu supapă. Masca obișnuită, chirurgicală, nu conferă protecție.
exhaustarea aerului (6-12 schimbări ale aerului/oră) și evitarea formării curenților turbulenți de aer în încaperea de lucru. Aerisirea încăperilor în pauzele de lucru.
folosirea perelor de cauciuc pentru aspirare / pipetare.
se va mânca și bea numai în încapere special amenajată în acest scop.
personalul trebuie să se spele pe mâini după mânuirea materialelor infecțioase și după scoaterea mănușilor de protecție, înainte de părăsirea zonei de lucru a laboratorului.
dezinfectarea meselor la sfârșitul fiecărei etape de lucru.
toate materialele (biologice, chimice, toxice) din laborator care ar putea pune în pericol sănătatea personalului trebuie să fie înregistrate în lista de inventariere, cu informații relevante despre fiecare agent în parte și pericolul pe care îl poate produce.
în laborator trebuie să existe scrise și cunoscute de tot personalul procedura și conduita în caz de accident, indiferent de natura lui.
Sunt interzise:
purtarea îmbrăcăminții protectoare de laborator în afara laboratorului (în cantine, camera pentru personal, saloane cu bolnavi, biblioteci, toalete etc) - pentru a evita eventuale contaminari ale spatiilor respective.
încălțămintea decupată în partea din față (sandale) sau cu talpă rigidă și alunecoasă - pentru protejarea degetelor în caz de accident, respectiv pentru prevenirea alunecării.
pipetarea cu gura- pentru evitarea contaminării pe cale digestivă.
consumul de alimente, băuturi, machiajul și mânuirea lentilelor de contact în zonele de lucru ale laboratorului - pentru a nu se produce contaminare pe cale digestivă sau cutanată.
depozitarea de alimente sau băuturi oriunde în zona de lucru a laboratorului - pentru evitarea contaminării acestora
mestecatul gumei, sugerea bomboanelor, a capetelor creioanelor în laborator, umezirea degetelor pe limbă - pentru evitarea contaminării digestive.
ghivece cu flori în laborator - pentru a nu constitui surse de micobacterii non- tuberculoase sau alti microbi/mucegaiuri.
folosirea cutiilor din carton ca suport de transport pentru recipientele cu material infecțios, în locul celor din material plastic deoarece acestea nu pot fi dezinfectate, iar in cazul prelingerii materialului infectios se poate contamina transportatorul sau / și mediul ambiant.
folosirea stativelor din lemn sau carton pentru incubarea culturilor deoarece acestea nu pot fi dezinfectate.
depozitarea îmbrăcăminții și încălțămintei care a fost utilizată în laborator în aceleași dulapuri cu îmbrăcămintea și încălțămintea de stradă.
Cabinetele de protecție microbiologică (CPM)
și modul de folosire a lor sunt descrise în "Standarde pentru laboratoarele de tuberculoză - condiții minime pentru asigurarea siguranței și eficienței activităților din laborator".
Accidente posibile în laborator și conduita
Îndiferent de natura accidentului, nu trebuie să se producă panică. Se oprește imediat lucrul, se anunță șeful de laborator și se aplică masurile de mai jos, în funcție de cantitatea estimată de aerosoli generați. Accidentele se notează în caietul special pentru acest tip de eveniment.
Indiferent de natura lor (chimice, infecțioase), toate accidentele se consemnează în documente destinate acestei categorii de evenimente, cu consecințele și măsurile care au fost luate, numele persoanelor expuse. Se interzice accesul în zonă până la finalizarea neutralizării infecțiozității.
Accidentele se pot produce în spațiul laboratorului sau în incinta CPM 13 .
În laborator (în afara CPM)
Accident cu producere de aerosoli în cantitate mică : spargerea unui tub cu cultură în mediul solid, vărsarea unui produs patologic.
acoperă imediat cu prosop, șervete din hârtie sau halat pentru a limita aerosolizarea.
umezește cu dezinfectantul aflat la îndemână (soluție hipoclorit de sodiu 3-5%, soluție de fenol 5% în apă).
lasă să acționeze cel puțin 2 ore, completând cu dezinfectant.
strânge materialul - folosind echipament de protecție (halat, mănuși, mască HEPA, botoșei) și pune-l în sac autoclavabil.
șterge cu dezinfectant mesele și dușumeaua.
Accident cu producere de aerosoli în cantitate mare:
spargerea unuia sau mai multor tuburi care conțin bacili în suspensie în mediul lichid în cantitate mare, spargerea unui tub în centrifugă.
părăsește încăperea,
nu deschide centrifuga mai repede de 30 de minute,
oprește exhaustarea (dacă există),
nebulizează dezinfectant - lasă să acționeze cel puțin 2 ore,
intră în încăpere cu echipament de protecție (halat, mănuși, mască HEPA, botoșei),
acoperă cu prosop de hârtie, apoi îmbibă spărturile cu dezinfectant și lasă 30 min,
strânge resturile și pune-le în sac autoclavabil,
șterge cu dezinfectant mesele și dușumeaua.
În cabinetul de protecție microbiologică
Accident cu producere de aerosoli în cantitate mică : spargerea unui tub cu cultură în mediul solid, vărsarea unui produs patologic.
NU opri funcționarea cabinetului,
acoperă imediat cu prosop, cârpă, șervete din hârtie,
îmbibă cu dezinfectant,
lasă să acționeze cel puțin 30 de minute,
strânge resturile, cu atenție la cioburi și pune-le în sac autoclavabil,
șterge interiorul cabinetului cu dezinfectant, dar și mesele și dușumeaua.
Accident cu producere de aerosoli în cantitate mare
(vărsare suspensie bacteriană, cultură în mediul lichid)
NU opri funcționarea cabinetului,
părăsește încăperea imediat și nu reveni mai repede de 4 ore,
nebulizează dezinfectant: hipoclorit de sodiu 3-5%, lasă să acționeze cel puțin 2 ore,
intră în încăpere cu echipament de protecție (mască HEPA, halat, mănuși, botoșei),
strânge resturile și pune-le în sac autoclavabil,
șterge cu dezinfectant mesele și dușumeaua,
Toate intervențiile necesare pentru anularea efectelor unui accident cu potențial infecțios în laborator se fac de către personal instruit, echipat special pentru a-i fi asigurată protecția personală.
formolizează cabinetul.
Toate materialele folosite la neutralizarea focarului, deșeurile, echipamentul de protecție folosit se autoclavează sau se dezinfectează la sfârșitul operațiunii.
Departamentul de epidemiologie al spitalului trebuie să fie informat despre producerea accidentului și să supravegheze împreună cu medicul de medicina muncii starea de sănătate a personalului expus, timp de 12 luni.
Instruirea referitoare la aspectele legate de biosiguranța și biosecuritatea în laboratorul de TB trebuie să se adreseze întregului personal din laborator și să fie organizată anual.
3.
Recepționarea și înregistrarea probelor în laborator
În laborator trebuie să fie amenajat un spațiu special pentru recepția probelor 15 .
Persoana cu calificarea și instruirea corespunzatoare, desemnată pentru recepția probelor trebuie să:
verifice buletinul de solicitare dacă este corect întocmit și cuprinde toate datele de identificare ale pacientului, probelor, solicitantului și ale locului prelevarii;
înregistreze proba în Registrul de recepție a probelor;
verifice dacă proba este corespunzătoare cantitativ și calitativ pentru analizele care se solicită;
verifice dacă proba este ambalată corespunzător și nu prezintă semne de depreciere datorate ambalării și transportului necorespunzător.
noteze ora primirii probei.
Dacă
proba nu corespunde
calitativ (ex. semne vizibile de contaminare bacteriană sau fungică, recipient fisurat, spart, produs intens hematic etc.) sau cantitate insuficientă pentru prelucrarea prin metodele solicitate, ea se respinge de la prelucrare și se menționează în registrul de recepție ca
probă neconformă , cu menționarea neconformităților constatate la receptie, se informează clientul, solicitându-se, dacă este posibil, repetarea prelevării altei probe. Nu se returnează curierului, ci se consideră deșeu infecțios și va fi gestionată ca atare de către laborator. Se acceptă spre prelucrare sputa cu striuri rare de sânge, dar nu cea intens hematică (a se vedea mai sus, pag 17-18).
Când există îndoieli referitoare la adecvarea unei probe sau atunci când aceasta nu este conformă cu descrierea furnizată pe buletinul de solicitare, ori analiza solicitată nu este descrisă cu detalii suficiente, laboratorul se consultă cu clientul pentru informații adiționale, înainte de a respinge proba.
Rezultatul discuției se va înregistra în documentele laboratorului 4,15 .
Laboratorul trebuie să aibă un
sistem pentru identificarea unică a probelor . Probele se codifică prin alocarea cronologică a numărului de ordine a comenzii din Registrul de laborator de Tuberculoză, care începe cu numărul 1 în fiecare an 5 , sau se recurge la sistemul local de identificare unică a probelor. Se acordă un indice (A;B) fiecărui eșantion provenit de la un bolnav, care este înregistrat la un anumit număr. Numărul și indicele este scris și pe ambalajul probei prin inscripționare cu marker care nu se poate șterge în timpul mânuirii și transportului.
Identificarea alocată inițial este păstrată pe toată durata existenței probei în laborator, inclusiv a culturilor pozitive rezultate și antibiogramelor efectuate.
Sistemul trebuie proiectat și aplicat astfel încât să asigure că probele nu pot fi confundate fizic sau atunci cand se face referire la acestea în înregistrări sau documente.
Păstrarea probelor și contraprobelor
Din momentul recepției până la repartizarea pentru analiză, probele se păstrează pentru maxim 1 oră în condiții care să nu afecteze rezultatele obținute (frigider, masă), să nu se deterioreze probele, sau să nu se piardă.
Dacă probele ajung târziu în laborator și nu mai pot fi prelucrate în aceeași zi, ele trebuie să fie depozitate în frigiderul destinat păstrării lor, la temperatură cuprinsă între +4 0 C și + 8 0 C, iar condițiile de păstrare trebuie menținute, monitorizate și înregistrate.
La mânuirea probelor trebuie avut în vedere că ambalajul și etichetele ar putea fi contaminate și se va evita orice diseminare în laborator a contaminării microbiene prin folosirea de suporturi/tăvi care pot fi dezinfectate, atât pentru depozitarea în frigider cât și pe masa de lucru. Este recomandabil să fie păstrate contraprobe (produsul rămas în recipientul original după preluarea porțiunii de prelucrat) pentru cel puțin pentru 24 de ore, în frigider, separat de probele neprelucrate încă. Fiecare contraprobă este identificată cu numărul din registrul de laborator de TB. Aceasta poate fi folosită pentru repetarea aceleiași analize, în cadrul CIC, sau pentru efectuarea de teste adiționale.
4.
Prelucrarea probelor pentru microscopie și cultură Examenul microscopic
Examinarea microscopică are avantajul că este simplă, rapidă, economică și contribuie la identificarea surselor de infecție 6 . Chiar dacă specificitatea este înaltă, sensibilitatea metodei este limitată, rezultatul pozitiv fiind obținut doar atunci când produsul examinat conține mai mult de 5000 bacili/ml de produs patologic. Între limite trebuie amintit faptul că identifică bacilii acido-alcoolor rezistenți dar nu identifică specia de micobacterii, nu face distincție între bacilii viabili și cei neviabili, nici între cei sensibili și cei cu rezistență 16 .
În anul 1938 Hagemann crește sensibilitatea examinării microscopice cu 10% prin colorarea fluorescentă cu auramină (și examinare la microscopul cu lumină ultravioletă-UV), cu păstrarea aceleiași specificități cu colorația ZN. Devine astfel posibilă citirea unui număr mai mare de frotiuri (peste 35/zi). Microscopia fluorescentă tradițională (examinarea în lumină ultravioletă emisă de lampi cu mercur) este scumpă, dar folosind microscoape cu LED-UV (light-emitting diodes) devine mai ieftină și este la fel de sensibilă 17 .
Principiul metodei : Conținutul bogat în acizi micolici din structura peretelui micobacterian face ca aceste bacterii să fixeze la cald compușii de anilină (fuchsina), sau substanțe fluorescente
-
fără
încălzire
(auramina,
auramina-rhodamina)
colorantul
rezistând
la decolorarea cu alcool acidulat, de aici și denumirea de bacili acido-alcoolo-rezistenți (BAAR) 18 . Pentru ușurarea examinării este necesară colorarea fondului preparatului (albastru de metilen în cazul colorației ZN). În cazul colorației fluorescente este necesară cuparea fluorescenței preparatului (cu albastru de metilen sau permanganat de potasiu).
După recepție, probele recoltate de la pacienți sunt înregistrate și identificate prin numerotare unică și predate executanților de analiză.
Indiferent dacă laboratorul folosește metoda directă sau metoda cu centrifugare /concentrare, la
pregătirea spațiului de lucru
se parcurg aceiași pași:
1.
executantul trebuie să poarte echipamentul de protecție individuală (halat cu mâneci lungi, închis la spate, mănuși, mască FFP2 cu supapă, capelină),
2.
pregătește suprafața de lucru din CPM prin ștergere cu alcool 70% și așteaptă cel puțin 3 minute, după care poate șterge cu un șervet de hârtie,
3.
așează în toată aria de lucru din interiorul CPM hârtie îmbibată cu dezinfectant tuberculicid (fără acoperirea orificiilor pentru recircularea aerului),
4.
pune în interiorul CPM strict materialele necesare, fără aglomerare inutilă,
5.
marchează lamele cu numărul complet din registru și așează-le în ordine în interiorul CPM,
6.
pornește funcționarea CPM și așteaptă stabilizarea fluxului de aer 3-5 min,
7.
nu ține mai multe tuburi deschise la un moment dat - pentru a evita contaminarea încrucișată între probe
8.
ține înclinate tuburile deschise, la cel puțin 15 cm de fanta frontală.
9.
așază la îndemână recipientul pentru colectarea deșeurilor infecțioase.
Prepararea frotiurilor pentru examinarea directă 1
1.
așează în ordinea numerelor flacoanele cu produsele de prelucrat,
2.
așează în ordine lamele numerotate,
3.
ia cu ansa bacteriologică de unică folosință sau cu pipeta de unică folosință porțiuni purulente din produs (spută), cca 100 µl și etalează cât mai uniform pe centrul lamei
pe o arie de 1x 2 cm, maxim 1x2,5 cm. Întinde produsul uniform pe lamă, în strat subțire astfel încât atunci când este uscat să permită să se vadă prin el literele unui text,
4.
pentru uscare și fixare așează lamele cu frotiuri pe plita cu termostatare (65-75 0 C) și așteaptă cel puțin 2 ore înainte de etapa următoare.
Prepararea frotiurilor pentru examinarea după concentrare/centrifugare: Petroff (NaOH/ HCl sau KH 2 PO 4 ) 1,2,16
1.
așează în ordinea numerelor flacoanele cu produsele de prelucrat în interiorul CPM,
2.
așează în interiorul CPM stativul cu tuburi de centrifugă (tip Falcon, de 50 ml) marcate cu numerele care corespund probelor de prelucrat,
3.
transferă cu pipetă Pasteur sterilă, de unică folosință, cu pară integrată o cantitate cât mai mare din produsul de prelucrat (ideal 10 ml, minim 2 ml) în tubul de centrifugă, Pentru fiecare probă folosește câte o pipetă. Este de dorit să nu fie atinsă cu pipeta gura tubului pentru centrifugă,
4.
repartizează în fiecare tub o cantitate egală cu cea a produsului, din soluția de NaOH 4% (ținută cel puțin 30 minute la temperatura camerei înainte de folosire) fără să atingi cu dispenserul gura sau peretele interior al tubului. Concentrația finală a NaOH este de 2% în această etapă,
5.
închide bine tuburile și agită manual energic sau cu vortex la 2500 rpm. 15-30 secunde, pentru lichefiere. Inversează de câteva ori tubul astfel încât soluția să vină în contact și cu produsul de pe pereții tubului. Reașează tuburile în stativ,
6.
fixează ceasul să sune la 15 minute de la adăugarea soluției decontaminante la prima probă,
7.
verifică după 10 minute dacă proba este complet lichefiată. Dacă este necesar, mai agită manual sau la vortex timp de 15-30 secunde. Trebuie ca timpul total de contact produs/decontaminant să nu depășească 20 minute,
8.
la expirarea timpului de decontaminare/lichefiere se neutralizează conținutul tuburilor cu soluție HCl 8% sau soluție de Na 2 KPO 4 , în prezența unui indicator de pH (albastru de bromtimol),
9.
completează cu tampon fosfat sau apă distilată până la 50 ml (capacitatea tubului) așează tuburile în centrifuga cu răcire setată la temperatura cuprinsă între 4-12 0
C, la FRC 3000xg și durata de 20 minute,
10.
la terminarea centrifugării scoate tuburile din centrifugă, decantează atent și complet supernatantul (în recipient cu pâlnie, care conține substanță tuberculicidă) apoi adaugă 2,5 ml apă distilată sau tampon fosfat (pH 6,8) în care resuspenzi sedimentul prin agitare ușoară și prin pipetare fără barbotare. Lucrează steril, cu pipetă nouă pentru fiecare probă. Folosește o parte din sediment pentru prepararea frotiului, iar restul pentru cultură,
11.
însămânțează mai întâi 2 tuburi cu mediul LJ și un tub cu mediul lichid, apoi, cu aceeași pipetă, efectuează frotiul,
12.
ia cu pipeta una-două picături (cca 100 µl) și dispersează lichidul pe partea centrală a lamei marcate cu numărul corespunzător al probei, pe o arie de 1x2 cm, maxim 1x2,5 cm. Suprafața pe care se usucă lamele trebuie să fie orizontală pentru a nu se prelinge lichidul,
13.
pentru uscare completă și fixare așează lamele cu frotiuri pe plita cu termostatare (65-75 0 C) și așteaptă cel puțin 2 ore înainte de etapa următoare.
Dacă laboratorul nu este dotat cu centrifugă conformă, se sare de la punctul 8 la 12.
Prepararea frotiurilor pentru examinarea după concentrare/centrifugare: NALC-NaOH 1,
16,19,20,22
1.
așează în ordinea numerelor flacoanele cu produsele de prelucrat în interiorul CPM,
2.
așează în interiorul CPM stativul cu tuburi de centrifugă marcate cu numerele care corespund probelor de prelucrat,
3.
transferă cu pipetă Pasteur sterilă, de unică folosință, cu pară integrată o cantitate cât mai mare din produsul de prelucrat (ideal 10 ml, minim 2 ml) în tubul de centrifugă. Pentru fiecare probă folosește câte o pipetă. Este de dorit să nu fie atinsă cu pipeta gura tubului pentru centrifugă,
4.
repartizează în fiecare tub o cantitate egală cu cea a produsului, din soluția de NALC- NaOH proaspăt preparată, fără să atingi gura tubului sau peretele interior al lui. Concentrația finală a NaOH este de 1% în această etapă. Închide bine tuburile și agită
manual, blând, prin inversarea tubului de 3-4 ori sau cu vortex la 60-maxim 80 rpm
(deoarece aerarea puternică determină oxidarea și pierderea calității lichefiante a NALC), timp de 15-30 secunde pentru lichefiere. Inversează de câteva ori tubul astfel încât soluția să vină în contact și cu produsul de pe pereții tubului sau de pe capac. Reașează tuburile în stativ,
5.
fixează ceasul să sune la 15 minute de la adăugarea soluției decontaminante la prima probă,
6.
verifică după 10 minute dacă proba este complet lichefiată. Dacă este necesar, mai adaugă 50 mg pudră NALC și agită la vortex 15-30 secunde. Trebuie ca timpul total de contact produs/decontaminant să nu depășească 20 minute,
7.
la expirarea timpului de decontaminare/lichefiere, la conținutul tuburilor se adaugă tampon fosfat steril (pH 6,8) până la marca de 50 ml (capacitatea tuburilor),
8.
așează tuburile în centrifuga cu răcire setată la temperatura cuprinsă între 4-12 0
C, la FRC 3000xg și durata de 20 minute,
9.
la terminarea centrifugării, scoate tuburile din centrifugă, decantează atent și complet supernatantul (în recipient cu pâlnie, care conține substanță tuberculicidă) apoi adaugă 2,5 ml tampon fosfat (pH 6,8) în care resuspenzi sedimentul prin agitare ușoară și prin pipetare fără barbotare. Lucrează steril, cu pipetă nouă pentru fiecare probă. O parte se folosește pentru prepararea frotiului, iar restul pentru cultură. Însămânțează mai întâi 2 tuburi cu mediul LJ și un tub cu mediul lichid (sau 3 tuburi LJ), apoi, cu aceeași pipetă efectuează frotiul,
10.
ia cu pipeta una-două picături (cca 100 microlitri) și dispersează lichidul pe partea centrală a lamei marcate cu numărul corespunzător al probei, pe o arie de 1x2 cm, maxim 1x2,5 cm. Suprafața pe care se usucă lamele trebuie să fie orizontală pentru a nu se prelinge lichidul, iar grosimea frotiului rezultat să fie uniformă,
11.
pentru uscare completă și fixare așează lamele cu frotiuri pe plita cu termostatare (65-75 0 C) și așteaptă cel puțin 2 ore înainte de etapa următoare.
Etapa de centrifugare este obligatorie dacă se folosește această metodă de decontaminare.
Metoda este rezervată laboratoarelor care au în dotare centrifugă conformă.
Este recomandată pentru folosire în cazul cultivării pe mediul lichid Middlebrook 7H9.
Este necesară validarea metodei în laborator înainte de folosirea de rutină.
Colorarea frotiurilor
Colorația Ziehl Neelsen 18,19
1.
pune lamele cu frotiurile fixate pe suportul de colorare fară să se atingă între ele.
2.
acoperă complet frotiurile cu soluție 0.3% de fuchsină fenicată proaspăt filtrată.
3.
treci pe sub frotiuri flacăra unui bec de gaz pâna la emiterea de vapori, fără să fiarbă colorantul. Repetă acțiunea de 3-4 ori în primele 3 minute. Completează cu fuchsină dacă aceasta s-a uscat sau s-a scurs de pe lamă. Lasă până la 10 minute.
4.
spală cu jet slab de apă de robinet și scurge apa.
5.
acoperă frotiul cu alcool-acidulat 3% și lasă-l pentru decolorare maxim 3 min. Repetă decolorarea dacă frotiul ramâne roșu.
6.
spală din nou cu jet slab de apă de robinet și scurge apa.
7.
acoperă frotiul cu albastru de metilen 0,3% timp de 30 sec., maximum 1 minut.
8.
spală blând sub jet de apă de robinet și scurge apa.
9.
șterge colornatul de pe dosul lamei cu șervet îmbibat în alcool medicinal.
10.
usucă frotiurile în pozitie înclinată în suport de lame la temperatura camerei. Nu încălzi lamele pentru grăbirea uscării.
Examinează la microscop optic: ocular 10x, obiectiv cu imersie 100x (mărire 1000x).
Colorația fluorescentă (Auramină O, sau Auramină-Rhodamină) 2,16
1.
acoperă frotiul fixat cu soluție 0,1% auramină O (sau Auramină-Rhodamină)
2.
lasă 15 minute la temperatura camerei,
fără încălzire
3.
spală blând cu
apă distilată,
apoi scurge apa de pe lamă,
4.
acoperă frotiul cu acid - alcool 3% și lasă pentru decolorare 2 minute,
5.
spală blând cu apă distilată, apoi scurge excesul de apă,
6.
acoperă frotiul cu permanganat de potasiu 0,5% sau albastru de metilen 0,3% timp de
2 minute (pentru eliminarea fluorescenței nespecifice a fondului). Prelungirea contactului cu permanganatul de potasiu peste 4 minute determină scăderea fluorescenței BAAR!
7.
spală cu apă distilată apoi scurge excesul de apă,
8.
lasă la uscat în poziție înclinată în suportul de lame, la aer. Nu forța uscarea.
Examinează la microscopul cu fluorescență (UV) imediat după uscare folosind oculare de 10x și obiective de 20-25x și 40-45x.
Note:
În toate etapele de spălare pentru colorația cu fluorocromi
se folosește numai apa distilată . Nu se folosește apa de la robinet deoarece clorul conținut de aceasta poate interfera cu fluorescența.
Indiferent de metoda de preparare a frotiurilor, ele trebuie lăsate să se usuce la aer, ferite de raze UV, pe plita cu termostatare din interiorul CPM, de unde sunt scoase pentru colorare.
Toate materialele folosite (pipete, anse, tuburi) se colectează în recipente pentru materiale infecțioase și se autoclavează înainte de îndepărtarea din laborator.
Frotiurile pozitive BAAR în fluorescență se pot recolora ZN, pentru confirmarea rezultatelor. Nu este necesară decolorare prealabilă.
Dacă nu pot fi examinate imediat, frotiurile colorate cu fluorocromi se pot păstra la întuneric, la 4-8 0
C pentru 24 ore. Fluorescența scade după 24 de ore.
Odată colorate prin metoda ZN, frotiurile nu mai pot fi recolorate fluorescent.
Se colorează zilnic frotiu de control pozitiv BAAR, iar la schimbarea lotului de colorant se colorează și frotiuri de control negativ BAAR.
Examinarea frotiurilor
La microscopul optic
•
numără BAAR (care apar ca bastonașe roșii pe fondul albastru al preparatului), din 100 câmpuri microscopice examinate (2 cm lungime).
•
grupurile compacte de mai mulți bacili se numără ca UFC și se consemnează ca atare în caietul de lucru.
•
examinează obligatoriu cu ocular 10x și obiectiv 100x, folosind ulei pentru imersie.
•
dacă nu vizualizezi nici un BAAR la 100 câmpuri examinate, consideră rezultat negativ BAAR doar după ce ai examinat 300 câmpuri microscopice.
•
rezultatele se exprimă semicantitativ. (tabelul III)
La microscopul cu fluorescență (UV)
•
numără BAAR (care apar ca bastonașe galben fluorescent pe fondul întunecat al preparatului).
•
numără grupurile compacte de mai mulți bacili ca UFC.
•
examinează cu ocular de 10x și obiectiv de 20 - 25x pentru orientare și cu obiectiv 40- 45x pentru detalii.
•
dacă nu vizualizezi nici un BAAR la 1000 câmpuri examinate (obiectiv 20-25x și o lungime de 2 cm frotiu), consideră rezultat negativ BAAR. Rezultatele se exprimă semicantitativ. (tabelul III)
Interpretarea și raportarea rezultatelor
Rezultatele se exprimă semicantitativ, conform tabelului III, iar raportarea se face pe buletinele de solictare tip PNPSCT, conform recomandărilor. Se marchează obligatoriu metoda folosită.
2,4
Tabel III. Exprimarea semicantitativă a rezultatelor examenului microscopic și raportarea rezultatelor
Scala IUATLD/ WHO
Ziehl-Neelsen, mărire 1000x:
1 lungime = 2 cm =100 CME a
Mărirea în examinarea fluorescentă
Mărire 200-250x: 1 lungime = 2 cm
= corespund la 1000 CME a
din mărirea de 1000x
Mărire 400-x: 1 lungime = 2 cm
= corespund la 400 CME a
din mărirea de 1000x
Rezultat
NEGATIV BAAR
0 BAAR/1 lungime
0 BAAR/1
lungime
0 BAAR/1
lungime
Numărul exact de BAAR
/ 1 lungime
1-9 BAAR/1 lungime
Împarte numărul BAAR observați la 10
Împarte numărul BAAR observați la 4
POZITIV BAAR 1+
10-99 BAAR / 1 lungime
POZITIV BAAR 2+
1-10 BAAR / câmp, în medie
POZITIV BAAR 3+
> 10 BAAR / câmp, în medie
a. CME: câmpuri microscopice examinate
Rezultatul cu 1-3 BAAR se va interpreta cu prudență, fiind necesară repetarea examinării dintr-un alt eșantion de spută.
La examinarea cu microscopul UV, la mărire de 200-250x, lungimea de 2 cm este acoperită de 30 câmpuri microscopice, care corespund la 1000 câmpuri examinate în microscopie optică; la mărire de 400x, lungimea de 2 cm este acoperită de 40 câmpuri microscopice, care corespund la 400 câmpuri examinate în microscopie optică. 2, 16
Pentru a nu se crea confuzii la raportarea rezultatelor, în cazul folosirii colorației fluorescente trebuie aplicat un factor de corecție, astfel: se împarte numărul BAAR citiți la 10 dacă citirea s-a făcut la mărirea 200- 250x, sau se împarte la 4, dacă citirea s-a făcut la mărire de 400-450x. 16
Pentru frotiurile intens pozitive se citesc cel puțin 25 câmpuri microscopice înainte de formularea rezultatului (la mărire de 1000x).
Toate rezultatele eliberate trebuie să aibă calitatea asigurată, dar uneori este posibil să se producă erori, începând de la momentul recoltării produselor de la bolnavi, până la eliberarea rezultatelor. Erorile posibile constituie elemente de risc pentru calitate și trebuie cunoscute de către personalul de laborator pentru a le putea preveni 2,4,16,20
(tabelul IV).
Tabel IV. Evaluarea riscului examenului microscopic pentru
evidențierea BAAR
Etapa
Sursa erorii
Prevenirea erorii
Recoltarea produsului patologic, transportul
Produs patologic necorespunzător calitativ și/sau cantitativ.
Neglijență în etichetarea recipientului cu produsul patologic.
Recipient inadecvat.
Instruirea personalului care recoltează sau supraveghează recoltarea.
Instruirea pacienților.
NU eticheta capacul. Lipește eticheta cu date de identificare pe corpul flaconului înainte de recoltare.
Completează toate rubricile din biletul de solicitare tip.
Recepție Înregistrare
Etichetă lipită pe capac. Date incomplete în biletul de solicitare.
Eticheta cu datele de identificare să fie lipită
pe corpul
flaconului.
Înregistrează datele în registrul laboratorului, și alocă fiecărui prelevat un număr unic, scris obligatoriu pe corpul flaconului.
Lama
Lamă refolosită, zgâriată, nedegresată sau cu fluorescență proprie.
Folosește lame noi, cu calitate verificată. Degresează lamele înainte de folosire.
Marcarea lamei
Cu tuș solubil în alcool- tip marker permanent, cu ștergerea în timpul colorării. Cu creion de ceară,
pe dosul lamei, cu număr incomplet sau numărul zilei.
Marcare cu creion de grafit, pe fața lamei, în porțiunea matisată de la capătul ei.
Numărul complet din registru, cu indicele prelevatului (A,B)
Prin zgârierea cu diamant a numărului.
Efectuarea frotiului
Frotiu prea subțire, prea gros.
Frotiu prea mic, prea mare. Grosime neuniformă
Selectează fragmente purulente din spută. Etalează pe o arie de 1x2 cm, maxim1x3cm, în porțiunea centrală a lamei.
Lucrează cu calm și atenție.
Fixarea
Fixarea la flacără înainte ca frotiul să fie complet uscat.
Așteaptă uscarea completă a frotiurilor înainte fixarea la flacără.
Uscarea și fixarea folosind plită termostatată, la 65-75 0 C, timp de 2 ore.
Colorarea
Lame puse lipite unele de altele pe suportul de colorare.
Colorant nefiltrat. Soluție de lucru cu
Așează distanțat lamele pe suportul de colorare, soluția de colorant să nu se prelingă de pe o lamă pe cele invecinate.
Filtrează soluția de lucru înainte de folosire. Schimbă zilnic hârtia folosită la filtrare.
Etapa
Sursa erorii
Prevenirea erorii
concentrație greșită. Capacitate colorantă slabă. Soluția de fucsină fierbe sau se usucă pe lamă (ZN).
Încălzire insuficientă a soluției de fucsină (ZN).
Încălzirea soluției fluorescente.
Balanță etalonată, verificată metrologic, sticlărie etalonată.
Respectă rețetele de preparare a soluțiilor. Folosește soluțiile în termenul de valabilitate. Folosește reactivi cu certificat de calitate, cu puritate cunoscută.
Colorează cu auramină fără încălzire.
Decolorare
Decolorant în concentrație necorespunzătoare.
Decolorare neuniformă sau insuficientă.
Scurge complet apa rămasă pe lamă după fiecare spălare.
Verifică calitatea reactivilor folosiți. Respectă rețeta de preparare a soluțiilor.
Acoperă complet lama cu soluția de decolorare.
Recolorare/ colorarea fondului
Concentrație necorespunzătoare a soluției.
Colorare prea intensă. Colorare insuficientă. Lame cu fluorescență proprie.
Scurge complet apa rămasă pe lamă după spălare. Verifică calitatea reactivilor folosiți.
Respectă rețeta de preparare și timpii de colorare. Respectă instrucțiunile de colorare furnizate de producător împreună cu chitul de colorare.
Verifică data preparării soluției și folosește în termenul de valabilitate.
Folosește reactivi cu certificat de calitate, cu puritate cunoscută.
Acoperă complet lama se cu soluția de albastru de metilen (sau permanganat).
Verifică fluorescența lamelor înainte de folosirea unui lot nou.
Spălarea între etapele de colorare și la final
Spălare energică, cu jet de apă pe mijlocul lamei, cu dezlipirea de fragmente de frotiu.
Folosirea apei de robinet în cazul colorației fluorescente.
Spală cu jet slab de apă, lăsat să se prelingă de la un capăt spre celălalt al lamei.
Folosește apă distilată pentru colorația fluorescentă.
Uscarea finală
La termostat
În suport pentru lame, în poziție înclinată, la temperatura camerei.
Examinarea la microscop
BAAR rămași pe obiectiv de la o examinare anterioară.
Uleiul de imersie conține BAAR (ZN).
Numărul de identificare șters în timpul colorării. Citirea unui număr mic de câmpuri microscopice.
Curățarea obiectivului după fiecare examinare. La aplicarea picăturii de ulei de imersie nu se atinge frotiul cu aplicatorul (ZN).
Marcarea corectă a lamei.
Pentru rezultat negativ se citesc cel puțin 300 câmpuri microscopice.
Personal instruit și verificat periodic. Sistem pentru CIC-M implementat.
Raportarea rezultatului
Transcrierea greșită a rezultatului în registru, în buletinul de analiză, în baza de date.
Lucrează cu calm și atenție.
Instruirea personalului referitoare la consecințele erorilor.
Cultivarea micobacteriilor
Cultura are sensibilitate mai mare decât microscopia (10-100 bacili/ml produs patologic) 24 , distinge bacilii viabili și este necesară pentru monitorizarea tratamentului tuturor pacienților, dar în mod particular al celor cu multirezistență (TB-MDR), oferă diagnosticul definitiv de TB, crește numărul cazurilor diagnosticate cu 30-50% (mediul LJ), permite detectarea cazurilor înainte ca ele sa devină infecțioase, oferă izolate pentru ABG 2,25 . Cultivarea micobacteriilor necesită condiții de biosiguranță de nivel 2 14,21 .
Pentru cultivare sunt folosite medii solide, pe bază de ou sau pe bază de agar, dar și medii lichide, care pot aduce un plus de pozitivitate de până la 10% față de mediul solid. Dintre mediile solide pe bază de ou amintim mediul LJ, folosit în țara nostră, iar dintre cele lichide, mediul Middlebrook 7H9, folosit în sisteme automate de cultivare Bactec MGIT 960, BacT/ALERT(MB/BacT) și mai recent la noi, VersaTREK.
Cultura în mediul lichid este complexă, costisitoare, necesită personal instruit, nu oferă informații asupra numărului de colonii precum mediul LJ, fiind calitativă, are o rată mai mare de contaminare decât cultura în mediul solid și este mai scumpă decât aceasta. 25,26
Metode de decontaminare
Sputa, produsul de elecție pentru diagnosticul TB pulmonare, dar și alte produse recoltate sunt contaminate cu microbi din microbiocenoza traseului de eliminare. Prezența acestora afectează calitatea mediilor folosite pentru cultură și este necesară eliminarea lor înainte de însămânțare, prin prelucrare corespunzătoare.
Când cultivăm micobacteriile trebuie să avem în vedere trei aspecte importante 25 :
Eliberarea bacililor din mucusul și detritusurile celulare care îi înconjoară,
Viabilitatea bacteriilor nu trebuie să fie afectată mai mult decât este necesar nici prin omogenizare, nici prin decontaminare sau centrifugare,
La omogenizare și decontaminare trebuie să avem în vedere: rezistența MT la soluții de baze și acizi; durata expunerii la aceste substanțe; temperatura din timpul centrifugării; eficiența centrifugii pentru sedimentarea bacililor.
Nici una dintre metodele de decontaminare folosite nu reușește să conserve micobacteriile în totalitate, chiar în condițiile unei tehnici de lucru impecabile, de aceea trebuie să stabilim un echilibru între pierderea unei părți a bacililor și rata acceptabilă de contaminare a culturilor.
Alegerea tehnicii pentru decontaminare trebuie să țină seama de dotarea tehnică a laboratorului și de calificarea personalului. Vor fi folosite doar metode verificate și validate.
Metoda de decontaminare cu NaOH (Petroff) 3,4,20,22,25
Principiu
NaOH în soluție 4% (concentrație finală 2%) are atât efect mucolitic cât și bactericid asupra majorității microbilor. Înainte de însămânțare este necesară neutralizarea NaOH cu soluție de HCl 8% sau fosfat monopotasic 15% în prezența unui indicator de pH.
Avantaj : Metoda este accesibilă din punct de vedere tehnic, reactivii sunt ieftini și stabili câteva luni.
Dezavantaje:
timpul de contact cu hidroxidul trebuie să fie strict respectat; este destul de agresivă, distrugând până la 60% din bacilii tuberculozei, la care se adaugă bacilii omorâți în timpul centrifugării (efectul încălzirii și eficiența centrifugii).
.
Timpul necesar prelucrării unei probe este de aproximativ 60 minute, iar prelucrarea a 20 de probe durează aproximativ 120 minute, capacitatea centrifugii fiind elementul limitativ. 25
Pregătirea spațiului de lucru
este aceeași indiferent de metoda folosită:
1.
executantul trebuie să poarte echipamentul de protecție individuală (halat cu mâneci lungi, închis la spate, mănuși, mască FFP2 cu supapă, capelină),
2.
pregătește suprafața de lucru din CPM prin ștergere cu alcool 70%, și asteaptă cel puțin 3 minute, după care se șterge cu un șervet de hârtie,
3.
așează pe toată aria de lucru din interiorul CPM hârtie îmbibată cu dezinfectant tuberculicid (fără acoperirea orificiilor pentru recircularea aerului),
4.
pune în interiorul CPM strict materialele necesare, fără aglomerare inutilă,
5.
pornește funcționarea CPM și așteaptă 3- 5 min stabilizarea fluxului de aer,
6.
nu ține mai multe tuburi deschise la un moment dat pentru a evita contaminarea încrucișată între probe,
7.
ține înclinate tuburile deschise, la cel puțin 15 cm de fanta frontală.
Prelucrarea probelor biologice pentru cultivarea după concentrare/centrifugare: metoda Petroff (NaOH/ HCl sau KH 2 PO 4 ) 1,2,20,25
este descrisă în capitolul "Examinarea microscopică"
Metoda de decontaminare/omogenizare cu NALC-NaOH 2,20,22,25
Principiu
N-acetil-L-cisteina (NALC) este un agent mucolitic utilizat pentru digestia rapidă, care permite ca agentul decontaminant, NaOH, să aibă o concentrație finală de 1%. Tamponul fosfat neutralizează NaOH și diluează omogenatul pentru a reduce vâscozitatea anterior centrifugării.
Avantaj : sunt omorâte doar circa 30% din micobacteriile din proba clinică.
Dezavantaje:
NALC își pierde activitatea destul de repede, de aceea soluția de lucru trebuie preparată zilnic. Ionii metalelor grele prezenți în spută afectează efectul mucolitic al NALC și pentru legarea lor este necesar adaosul de soluție de citrat de sodiu. Agitarea prea energică, cu aerarea soluției NALC îi scade activitatea mucolitică.
Pentru centrifugarea probei se folosește o FRC de 3000xg, timp de 20 minute pentru sedimentarea micobacteriilor, în centrifugă cu răcire, la 4-12 0
C.
Timpul necesar procesării unei probe este de aproximativ 40 minute, iar procesarea a 20 de probe durează aproximativ 60 minute, elementul limitativ fiind capacitatea centrifugii.
Metoda NALC-NaOH poate fi folosită doar dacă laboratorul este dotat cu centrifugă conformă, personalul a fost instruit, iar metoda a fost verificată și validată în laborator, acest lucru trebuind să fie documentat.
Etapa de centrifugare este obligatorie dacă se folosește această metodă de decontaminare.
Este recomandată pentru folosire în cazul cultivării pe mediul Middlebrook 7H9.
Prelucrarea probelor biologice după concentrare/centrifugare: metoda NALC-NaOH 1, 2,20,25
este escrisă în capitolul "Examinarea microscopică".
Însămânțarea
Probe prelucrate/ decontaminate cu NaOH 4%
Însămânțează câte 4 picături (0,2 ml) în câte 2 tuburi cu mediul LJ și 0,5 ml într-un tub cu mediul lichid, (sau 3 tuburi cu mediul LJ) apoi, cu aceeași pipetă efectuează frotiul, în cazul metodei cu centrifugare.
Dacă nu s-a folosit centrifugarea, ci metoda „cu picătura", însămânțează din omogenatul rezultat câte 4 picături (0,2 ml) în câte 2 tuburi cu mediul LJ și 0,5 ml într-un tub cu mediul lichid (sau 3 tuburi cu mediul LJ).
Probe prelucrate/decontaminate cu NaOH/NALC
Însămânțează 2 tuburi cu mediul LJ cu câte 4 picături (0,2 ml) și 0,5 ml sau până la maxim 1 ml, într-un tub cu mediul lichid, în funcție de recomandarea producătorului pentru fiecare tip de echipamentul folosit, (sau 3 tuburi cu mediu LJ).
Incubarea
Mediul LJ
Inundă suprafața mediului cu lichidul însămânțat și așează tuburile înclinat, cu suprafața mediului în sus, într-un suport special pentru incubare în primele 48-72 ore, cu capacul parțial deșurubat (o spiră).
După 48-72 ore examinează tuburile, elimină-le pe cele cu contaminare (scriind în caietul de lucru) și incubează celelalte tuburi în poziție verticală până la pozitivare sau până la maxim 60 de zile de la însămânțare. Se închid complet capacele.
Mediul lichid Middlebrook 7H9
Incubarea se face în sistem automat și se respectă instrucțiunile producătorului, prezentate în continuare.
Citirea
Mediul LJ
manual, la 21, 30, 45, 60 zile. Dacă volumul de lucru permite, se poate face și citire săptămânală.
Mediul lichid
automat, indiferent de sistemul de cultivare, cu raport pozitiv (la 1-42 zile) sau negativ (la 42 zile).
Interpretarea rezultatelor
Apreciază morfologia macroscopică a coloniilor (descrie în caietul de lucru pentru citirea culturilor),
Prepară frotiu colorat ZN pentru a evidenția prezența BAAR,
Efectuează
obligatoriu
test
imunocromatografic
rapid
AgMPT64
pentru confirmarea apartenenJei la complexul M. tuberculosis 2,26
.
Raportarea rezultatelor
Rezultatele culturilor pe mediul LJ se exprimă semicantitativ (tabel V ) iar cele ale culturilor în mediul lichid, calitativ: pozitiv/negativ.
Raportarea se face pe buletinele de solictare tip PNPSCT, conform recomandărilor. Trebuie menționată/ marcată metoda folosită.
Tabel V. Exprimarea semicantitativa a rezultatelor culturii pe mediul solid tip Lowenstein Jensen
CRESTEREA MICOBACTERIILOR a
NOTAREA REZULTATULUI
Creștere bacteriană absentă b
NEGATIV
Sub 30 colonii
POZITIV- număr exact de colonii
30-100 colonii
POZITIV 1+
Peste 100 colonii izolate
POZITIV 2+
Colonii confluente nenumarabile
POZITIV 3+
Creșterea altor microbi decât micobacterii
Cultură contaminată
Legenda: a- Complexul
M. tuberculosis
identificat sau NTM (cu precizarea speciei după identificare); b- Mediul sa nu fie deshidratat în exces, iar aspectul său să nu fie modificat.
Pe buletin se scrie doar dacă cultura pozitivă aparține complexului
M. tuberculosis
sau este NTM, fără a specifica testele folosite pentru identificare, care rămân doar în documentele laboratorului. Persoana care validează rezultatul și semnează buletinul este răspunzătoare pentru corectitudinea rezultatului.
Asemeni examenului microscopic, prin cultură trebuie să oferim rezultate cu calitate asigurată. În toate etapele de lucru sunt posibile erori care pot afecta calitatea rezultelelor finale, de aceea personalul trebuie să fie instruit, să cunoască greșelile posibile și modalitățile de evitare a lor. (Tabelul VI)
Tabel VI. Riscuri de eroare la cultivarea în mediul solid Lowenstein Jensen
Etapa
Greșeli posibile
Prevenirea greșelii
Recoltarea produsului patologic, transportul
Produs patologic necorespunzător calitativ și/sau cantitativ Neglijență în etichetarea recipientului în care s-a
recoltat produsul patologic. Recipient inadecvat prelevatului.
Instruirea personalului care recoltează sau supraveghează recoltarea.
Instruirea pacientilor.
Nu eticheta capacul, ci corpul flaconului cu produs. Completează toate rubricile din biletul de solicitare tip.
Recepția Înregistrarea
Etichetă lipită pe capac. Date incomplete în biletul de solicitare
Eticheta cu datele de identificare să fie lipită
pe corpul
flaconului.
După scrierea datelor în registrul laboratorului, fiecărui prelevat i se alocă un număr, care va fi scris pe corpul flaconului și nu pe capac.
Mediul Lowenstein Jensen
Mediu neverificat calitativ. Neefectuarea CIC-C.
Folosește medii verificate, cu certificat de calitate și conformitate.
Efectuează CIC pentru mediul de cultură. Participă la programe de CEC.
Marcarea tuburilor cu mediul de cultură
Număr incomplet, fără precizarea indicelui produsului, ștergerea lui de pe tub în timpul mânuirii. Scrisul maschează zona de
creștere a coloniilor.
Scrie cu tuș solubil în alcool- tip marker permanent numărul complet din registru, cu indicele prelevatului ( A,B).
Scrie numărul pe spatele tubului sau în partea de sus a lui.
Transferul sputei/produsu lui în tubul pt decontaminare
Cantitate insuficientă
Selectează fragmentele purulente din spută, cu evitarea părții salivare.
Prelucrează minim 2 ml de spută. Lucrează cu calm și atenție.
Decontaminare
Proporție neadecvată între produs și substanța folosită pt. decontaminare.
Concentrație greșită a decontaminantului.
Decontaminant nesteril. Agitare insuficientă, sau prea energică.
Folosirea de soluții reci (neechilibrate termic înainte de folosire)
Respectă rețeta de preparare și condițiile de lucru.
Verifică data preparării soluțiilor și folosește-le în termenul de valabilitate.
Folosește reactivi cu calitate și puritate verificate.
Instruirea și supravegherea personalului. Etalonare echipamente.
Folosește materiale de unică folosință sterile. Dacă se dorește o decontaminare mai agresivă poți crește cantitatea de decontaminant de până la de 2 ori mai mult decât sputa, dar nu prelungi timpul de contact peste 20 de minute. Lucrează cu calm și atenție.
Neutralizare
Concentrație sau cantitate neadecvată a substanței neutralizante
Instruirea și supravegherea personalului. Etalonare balanță, greutăți, cilindri, pipete. Folosește materiale consumabile sterile, de unică folosință.
Respectă rețetele de preparare.
Verifică data preparării soluțiilor și folosește-le în termenul de valabilitate.
Etapa
Greșeli posibile
Prevenirea greșelii
Folosește reactivi cu certificat de calitate, cu puritate cunoscută. Nu amâna neutralizarea mai mult de 20 de minute de la contactul decontaminantului cu produsele de prelucrat.
Lucrează cu calm și atenție.
Centrifugare
Forța relativă de centrifugare neadecvată. Nerespectarea timpului de centrifugare.
Folosește centrifugă cu răcire, cu forța relativă de centrifugare verificată (3000xg), 20 minute.
Însămânțare
Cantitate prea mică sau prea mare a inoculului.
Contaminare.
Însămânțează cu pipete gradate. Lucrează calm, cu atenție.
Folosește pipete sterile, medii verificate.
Incubare
Închiderea necorespunzătoare a flaconanelor.
Temperatură neadecvată, cu fluctuații.
Respectă recomandările referitoare la gradul de strângere a dopurilor pentru fiecare metodă.
Etalonează termometrele și monitorizează temperaturile.
Examinarea culturilor
Necunoașterea morfologiei micobacteriilor.
Nerespectarea planificării examinării/citirii culturilor
Instruirea și reinstruirea personalului.
Raportarea rezultatului
Transcrierea greșită a rezultatului în registru, în buletinul de analiză, în baza de date.
Concentrarea atenției executantului. Instruirea și reinstruirea personalului. Lucrează cu calm și atenție.
Sisteme automate de cultivare în mediul lichid
Principiu:
micobacteriile consumă în timpul creșterii oxigenul dizolvat în mediul de cultură. Sistemul MGIT 960 folosește tuburi cu mediu de cultură care au la bază un buton de silicon care conține substanță fluorescentă, mascată de oxigenul dizolvat în mediu. Pe măsura consumării oxigenului în timpul creșterii bacteriene, fluorescența poate fi măsurată, iar sistemul declanșează semnalul pozitiv.
Sistemul VersaTREK monitorizează modificarea presiunii parțiale a gazelor din tubul de creștere (oxigen, azot, CO 2 ); consumul de oxigen determină scăderea presiunii din flacon. Figura 1 prezentă algoritmul de cultivare în mediul lichid 27 .
Avantaj:
scuratrea timpului de obținere a rezultatului pozitiv.
Dezavantaj:
rată de contaminare mai mare decât pentru cultivarea în mediul solid. Necesită personal bine instruit și antrenat.
Precauții generale la folosirea sistemelor automate de cultivare
Pentru sistemele automate de cultivare se va folosi exclusiv aplicația furnizată de producătorul echipamentului,
Nu se fac modificări în aplicație fără acordul producătorului,
Orice disfuncționalitate se comunică reprezentantului național al producătorului,
Se vor respecta întocmai instrucțiunile de lucru și de întreținere furnizate de producător,
Este obligatorie respectarea precauțiilor universale referitoare la mânuirea probelor biologice, corespunzător clasei de risc 3,
Nu se folosesc materiale consumabile sau reactivi cu termenul de expirare depășit.
Toate tuburile (culturile) semnalate pozitive se verifică microscopic după colorarea ZN a preparatului pentru vizualizarea BAAR, iar dacă sunt prezenți BAAR se efectuează obligatoriu testul imunocromatografic pentru identificarea micobacteriilor din complexul
M. tuberculosis .
Scoate flaconul din echipament
Echipament cu flacoane la incubat
Conectare la PC: Informații despre pacient, produs
“Rezervat” Examinare macroscopică și microscopică
Scoate flaconul din echipament
Semnal negativ la 42 zile
Nu se observă microbi
MTB
Flacoane în curs de monitorizare
Semnal pozitiv la 1-42 zile
Identifică cultura “Rezervat”
Finalizare raport pozitiv
Prelucrare, reincubare sau Finalizare raport negativ
Finalizare raport contaminare
sau decontaminare și reânsămânțare
Microbi de contaminare
Reincubează în aceeași celulă
Finalizare raport negativ
Se reia monitorizarea
Figura 1. Algoritmul de lucru pentru cultivarea în mediul lichid
"Rezervat" semnifică faptul că flaconul poate fi reintrodus în echipament, în poziția inițială.
Instrucțiune de lucru pentru folosirea sistemului automat MGIT 960 1
Produsele biologice din care pot fi cultivate micobacteriile în sistemul BACTEC MGIT 960:
probe respiratorii (spută, aspirat bronșic, lavaj bronșic), aspirat gastric, și alte fluide ale corpului.
Nu se însămânțează în MGIT 960:
sputa hemoptoică, sânge, măduvă osoasă, urină, fecale, țesut de biopsie.
Prelucrarea probelor biologice
se face ca și pentru cultivarea în mediul solid, folosind metoda de decontaminare cu NaOH-NALC (sau Petroff, cu centrifugare).
Pregătirea și însămânțarea culturii
1.
Reconstituie MGIT PANTA cu 15 ml supliment MGIT (aseptic). Amestecă până se dizolvă complet. Scrie data reconstituirii pe flacon. Este valabil 5 zile la 2-8°C.
2.
Pune câte 0,8 ml din acest mediu de îmbogățire în fiecare tub MGIT numerotat/etichetat cu cod de bare specific probei pentru cultură, înaintea inoculării probei.
3.
Adaugă 0,5 ml din proba prelucrată (decontaminată).
4.
Strânge capacul cât mai bine și inversează-l de câteva ori pentru a omogeniza conținutul, fără să facă spumă.
5.
Decontaminează tuburile pe exterior cu alcool.
Introducerea tuburilor în aparatul MGIT:
1.
Deschide sertarul dorit
2.
Apasă "tub entry" (tub cu săgeata spre tub)
3.
Scanează codul de bare al
tubului,
apoi codul de bare al
pacientului
(semnal sonor la scanare)
4.
Introdu tubul acolo unde indică led-ul verde.
5.
Repetă punctele de mai sus pentru fiecare tub care trebuie introdus
6.
Închide sertarul și apasă "exit" (simbol ușă), când ai terminat.
Culturile vor rămâne în echipament până când vor fi semnalate ca pozitive sau până la finalul protocolului pentru culturile negative (42 zile). Vezi algoritmul din
Fig 1 .
Dacă un tub va fi semnalat ca pozitiv dar frotiul colorat ZN este negativ pentru BAAR sau contaminanți, acesta
se poate reintroduce în aparatul MGIT cu condiția să nu fi trecut mai mult
de 5 ore de la scoaterea acestuia din aparat
(se scanează tubul atunci când e scos și din nou când e reintrodus iar echipamentul va recunoaște codul de bare și va continua citirea de unde a rămas anterior scoaterii din aparat, cu condiția să deschizi același sertar din care a fost scos).
Dacă trec cele 5 ore se va reintroduce în aparat, dar echipamentul îl va înregistra ca probă nouă. Se poate incuba în continuare și în incubatorul obișnuit pentru culturi, la 37 0
C, încă 24 ore, după care se repetă verificarea macroscopică și microscopică.
Scoaterea tuburilor negative (mai multe odată fără să se scaneze tub cu tub):
1.
Deschide sertarul care are aprind ledul verde
2.
Apasă "remove negative tubes"
3.
Apasă "remove negative batch".
Se dezactivează scanerul de cod de bare și tuburile nu mai pot fi scanate individual.
4.
Celulele cu tuburi negative au led verde corespondent. Scoate toate tuburile negative înainte de a închide sertarul. Dacă rămân tuburile în continuare în sertar, aparatul le va percepe ca nou introduse.
5.
Când au fost scoase toate tuburile negative se aude "beep" de 3 ori, dispar led-urile verzi, scanner-ul se oprește și apare pictograma "ok". Apasă "ok"
6.
Închide sertarul și apasă "exit"
Recomandată inspecția vizuală a tuturor tuburilor negative scoase iar dacă se constată turbiditate sau prezența de grunji ori flocoane se prepară un frotiu colorat ZN.
Scoaterea tuburilor negative (pe rând):
1.
Deschide sertarul unde este aprins ledul verde.
2.
Apasă "remove negative tubes"
3.
Celulele cu tuburi negative au led verde și se activează scanerul de cod de bare.
4.
Imediat ce se scoate un tub, se scanează înainte de scoaterea următorului și se stinge automat led-ul corespunzător.
Scoaterea probele pozitive:
1.
Apasă "silence" pentru a dezactiva alarma
2.
Deschide sertarul cu ledul roșu (+) aprins
3.
Apasă " remove positive tubes"
4.
Toate tuburile pozitive vor fi indicate cu led verde ( verde în dreptul celulei și roșu pe ușă!)
5.
Scoate tub cu tub și scanează-l pe fiecare.
6.
Se vor dezactiva automat led-urile verzi din sertare și cel roșu de pe mânerul ușii.
7.
Când au fost scoase toate probele pozitive, aparatul va emite un semnal sonor de 3 ori.
Managementul probelor pozitive:
1.
Inspectează vizual tuburile: ca orientare, cele cu creștere micobacteriană vor avea granule/grunji, iar cele cu contaminanți vor fi tulburi lăptoase.
2.
Agită tubul MGIT și extrage 200 µl (cca 4 picături), 2 picături pentru însămânțare pe mediul de cultură și 1-2 picături pentru frotiu.
3.
Prepară câte un frotiu pentru fiecare cultură, astfel: pregătește o lamă pentru o cultură cu câte două spoturi și pune albumina adezivă în strat subțire, apoi, peste ea, câte o picătură din cultură, lasă la uscat pe uscătorul de lame, la 65-75 0
C cel puțin două ore, apoi colorează ZN și examinează microscopic pentru prezența BAAR.
4.
Însămânțează câte un tub cu mediul LJ pentru fiecare cultură pozitivă. Opțional, inoculează o placă cu mediu cu sânge (Agar Columbia cu sânge) pentru confirmarea prezenței contaminanților.
5.
Reintrodu tubul MGIT în aparat în maxim 5 ore, dacă nu vizualizezi microbi în frotiu.
6.
Incubează la 36,5- 37°C tubul cu mediul LJ și placa cu mediu geloză sânge și urmărește creșterea bacteriană, în funcție de caz (până la creștere, dar maxim 42 zile în cazurile BAAR pozitiv, sau 72 ore în cazul prezenței altor microbi în frotiu).
Citirea probelor MGIT
Un tub pozitiv este semnalat automat prin algoritmi interni când UC (unitățile de creștere) au trecut de valoarea de 75. Această valoare este identificată ca probă pozitivă și este confirmată prin teste suplimentare precum colorație ZN, identificare imunocromatografică și verificări de contaminare.
Dacă tubul este semnalat pozitiv în primele 2 zile de incubare înseamnă creștere foarte rapidă și se suspectează o contaminare. Se poate produce semnal pozitiv precoce și când pH -ul inoculului nu este cel corect.
Un tub pozitiv pe MGIT conține în mod obișnuit o biomasă de cca 10 5
până la 10 6
UFC/ml.
Totuși, un tub poate fi semnalat pozitiv pe MGIT și atunci când numărul UFC este prea mic pentru a se putea obține frotiu pozitiv BAAR în colorația ZN.
Interpretarea rezultatelor pe MGIT:
1.
Rezultat ZN
Rezultat mediul de cultură Agar sânge
TDD (timp de detecție) MGIT
Negativ BAAR
Creștere bacteriană
Mai mult de 7 zile
Interpretare : Tubul este contaminat. Cultura MGIT contaminată. Se comunică clinicianului cultura contaminată.
2.
Rezultat ZN
Rezultat mediul de cultură Agar sânge
TDD (timp de detecție) MGIT
Negativ BAAR
Creștere bacteriană
Mai puțin de 7 zile
Interpretare/conduită:
Reincubează tubul pentru încă 14 zile și repetă colorația ZN și însămânțarea pe agar sânge.
Dacă ZN este pozitiv BAAR, urmează pct 3, dacă ZN este negativ, este confirmată cultura contaminată.
3.
Rezultat ZN
Rezultat mediul de cultură Agar sânge
TDD (timp de detecție)
Pozitiv BAAR
Creștere bacteriană
Oricare
Interpretare/conduită:
Prepară un frotiu colorat ZN și însămânțează pe mediul LJ pentru a verifica dacă nu este o micobacterie cu creștere rapidă ca sursă de contaminare. Se face un test rapid de identificare Ag MPT64 din tubul MGIT pentru a confirma dacă aparține complexului
M. tuberculosis.
Dacă ZN din mediul de cultură este pozitiv BAAR:
a.
iar testul imunocromatografic este negativ, reincubează tubul MGIT pentru încă 48 ore și retestează pentru Ag MPT64.
b.
iar testul imunocromatografic este pozitiv, se raportează proba pozitivă pentru complexul
M. tuberculosis
și contaminare.
c.
iar Ag MPT64 este negativ se identifică genetic specia de micobacterie (MTBC, CM).
Dacă ZN din mediul de cultură
lichid este negativ BAAR
se ia în considerare rezultatul testului Ag MPT64:
a.
Dacă testul rapid este pozitiv, cultura este pozitivă pentru
M. tuberculosis
și contaminare.
Interpretare cu extremă prudență! . Preferabilă așteptarea creșterii subculturii pe LJ, cu repetarea identificării.
b.
Dacă testul rapid este negativ, se reincubează și se retestează ca mai sus (a).
4.
Rezultat ZN
Rezultat mediul de cultură Agar sânge
TDD (timp de detecție)
Pozitiv BAAR
Fără creștere
Oricare
Interpretare/conduită : Testează pentru Ag MPT64 pentru confirmarea MT
.
a.
Dacă este confirmat
complex M. tuberculosis , raportează rezultatul ca atare.
b.
Dacă testul este negativ sau invalid, reincubează proba pentru încă 48 ore și retestează pentru Ag MPT64.
■
Dacă acum testul rapid este pozitiv se raportează
complex M. tuberculosis
Dacă este în continuare negativ, se continuă pentru identificare genetică a speciei.
5.
Rezultat ZN
Rezultat mediul de cultură Agar sânge
TDD (timp de detecție)
Negativ BAAR
Fără creștere
Oricare
Interpretare/conduită:
Deși rară, această situație poate să apară și necesită investigații suplimentare. Reincubează tubul pentru încă minim 3 zile sau până când este semnalat din nou pozitiv. Repetă ZN și cultura pe mediul agar sânge.
a. Dacă ZN este pozitiv și cultura pe mediul agar sânge negativ, procedează ca la pct. 4.
b. Dacă ZN este pozitiv și cultura pe mediul agar sânge denotă contaminare, procedează ca la pct.3.
c.
Dacă ZN este negativ și cultura pe mediul agar sânge denotă contaminare, procedează ca la pct.2.
d.
Dacă ZN este negativ și cultura pe mediul agar sânge este fără creștere, reincubează tubul MGIT până la finalul protocolului de 42 zile. Dacă este semnalat din nou pozitiv, repetă ZN și cultura pe mediul agar sânge.
Decontaminarea tuburilor MGIT contaminate:
Se aplică în următoarele situații
Probă pozitivă pentru complex
M. tuberculosis
și contaminare.
Probă unică care nu se poate repeta (aspirat bronșic, gastric, LCR etc.)
a.
Vortexează tubul MGIT contaminat
b.
Transferă aseptic întregul volum de mediu într-un tub de centrifugă de 50 ml
c.
Adaugă o cantitate egală de MycoPrep sau NAOH 4% (vezi decontaminarea).
d.
Amestecă bine și lasă în repaus 15-20 min (periodic se inversează tubul)
e.
Adaugă tampon fosfat pH 6.8 până la marcajul de 50 ml și omogenizează bine; sau neutralizează cu HCl 8%, apoi adaugă SFS până la 50 ml.
f.
Centrifughează (centrifuga cu răcire) la 3000xg pentru 20 minute
g.
Îndepărtează supernatantul.
h.
Resuspendă sedimentul în 0.5 ml tampon fosfat sau SFS și agită bine.
i.
Inoculează 0.5 ml într-un tub nou MGIT care deja conține suplimentul nutritiv și PANTA.
Instrucțiune de lucru pentru folosirea sistemului VersaTREK
Produsele biologice din care pot fi cultivate micobacteriile în sistemul VersaTREK:
probe respiratorii (spută, aspirat bronșic, lavaj bronșic), aspirat gastric, sânge, măduvă osoasă și alte fluide ale corpului, urină, fecale, țesut de biopsie.
Prelucrarea probelor biologice,
altele decât sângele sau măduva osoasă, se face ca și pentru cultivarea în mediul solid, folosind metoda de decontaminare cu NaOH-NALC sau Petroff.
Probele de
sânge și măduvă osoasă
trebuie să fie prelucrate prin una din următoarele metode înainte de inocularea flacoanelor VersaTREK Myco (VTM):
a.
Tuburi izolatoare: Urmează instrucțiunile producătorului tuburilor izolatoare pentru liză și concentrare. Inoculează 1 ml de sediment în flaconul (VTM).
b.
Liza celulelor sanguine integrale cu ADS:
Recoltează 5-10 ml de sânge integral într-o eprubetă Vacutainer care conține polianetol- sulfonat de sodiu (SPS) sau heparină (eșantion minim de cel puțin 5 ml).
Răstoarnă tubul de mai multe ori, fără agitare.
Transferă steril tot conținutul într-o eprubetă conică de 50 ml (tub Falcon) pentru centrifugă.
Adăugă ADS până la marcajul de 40 ml de pe eprubetă. Se vor liza celulele.
Centrifughează la 3000 x g timp de 20 de minute, temperatură 4-12
0 C.
Decantează supranatantul.
Adăugă 1-2 ml de tampon fosfat la sediment și resuspendă-l.
Însămânțează 1 ml din proba rezultată în flaconului VTM pregătit.
Însămânțarea flacoanelor de cultură VersaTREK Myco 27
1.
Dezinfectează dopul flaconului VTM AS (sau îndepartează-l cu atenție).
2.
Reconstitue aseptic
VTM AS
injectând 25 ml de ADS prin septul dezinfectat folosind ac și seringă ( sau pipetează aseptic ADS ). Va fi suficient reactiv pentru 50 de flacoane.
3.
Scrie data reconstituirii pe flacon. Poate fi folosit 5 zile cu păstrare la frigider, sau 3 luni prin congelare la -20 0
C (scrie data reconstituirii și a expirării, pentru că termenul de păstrare trebuie să se incadreze în termenul de valabilitate menționat pe flaconul original). Dacă nu folosești în 5 zile, repartizează pentru 5-10 culturi în tuburi pentru că odată decongelat nu se recongelează.
4.
Etichetează flaconul de cultură VTM cu informațiile pacientului.
5.
Dezinfectează dopul flaconului VTM cu alcool. Așteaptă să se evapore.
6.
Adăugă aseptic
1 ml de VTM GS
(supliment de creștere) injectând prin dop cu o seringă cu ac, sau deșurubează dopul și pipetează aseptic, apoi strânge dopul.
7.
Adăugă aseptic
0.5 ml de soluJie VTM AS
(supliment antibiotic) prin injectare prin membrana cauciucată cu o seringă cu ac, sau deșurubează dopul și pipetează aseptic, apoi strânge dopul.
8.
Însămânțează
cel mult 1 ml de probă clinică decontaminată
, concentrată, cu o seringă cu ac, sau cu pipetă. Strânge bine dopul și amestecă prin inversarea flaconului de 5-6 ori, fără agitare.
Însămânțează suplimentar 0.1 ml de probă pe o placă de agar - sânge pentru aprecierea decontaminării în cadrul CIC, pentru probe selectate randomizat.
Supraumplerea semnificativă a flaconului poate cauza rezultate fals pozitive, iar în cazul probelor de sânge prelucrate cu tuburi izolatoare este posibilă inhibarea creșterii micobacteriilor.
Alternativ, etapele 2 și 6-8 pentru pot fi efectuate prin deschiderea flacoanelor și adăugarea de reactivi și probe cu ajutorul pipetelor sterile. Trebuie avut grijă să se mențină tehnologia aseptică. Membrana cauciucată și capacul trebuie să fie înșurubate bine pentru a garanta închiderea etanșă. Dacă membrana cauciucată și capacul nu sunt așezate corespunzător, se va produce eroare de scurgere a flaconului.
9.
Dezinfectează flaconul de cultură și gâtul lui cu dezinfectant micobactericid (alcool).
10.
Îndepărtează sigiliul din partea de jos a unui conector VT. Așează capătul conectorului cu ac pe gâtul flaconului de cultură și apasă-l în jos pe verticală pentru a puncționa membrana cauciucată a flaconului de cultură.
Nu mai este permisă răsturnarea flaconului de cultură după montarea conectorului VT pe el. Lichidul din ac poate interfera cu citirile de presiune pentru flacon.
11.
Înregistrează informațiile despre pacient în calculatorul VersaTREK/ESP Culture System II.
12.
Scanează codul de bare al flaconului și așează-l cu conectorul VT într-o poziție liberă din instrument, pentru incubare, prin apăsare. Rotește conectorul după poziționare corectă.
13.
Când instrumentul indică cu led roșu constant că o anumită locație de flacon conține cultură pozitivă, îndepărtează flaconul și urmează algoritmul de identificare (fig 1).
14.
Lucrează în CPM. Scoate conectorul VT din flacon și îndepărtați-l în recipientul pentru deșeuri infecțioase tăietoare-înțepătoare. Dezinfectează dopul de cauciuc cu alcool.
15.
Agită flaconul temeinic cu vortexul sau manual pentru a disloca organismele din materia spongioasă conținută în flacon.
16.
Urmează algoritmul de identificare: frotiu ZN, test imunocromatografic, subcultură LJ:
Dacă sunt prezenți BAAR pe frotiu, continuă identificarea cu testul imunocromatografic AgMPT64.
Pe frotiu nu se vizualizează microbi, atașează un nou conector VT, reintrodu flaconul în instrument, în aceeași poziție și continuă incubarea.
Pe frotiu sunt organisme non-acido-rezistente, conținutul flaconului poate fi decontaminat (vezi la MGIT) și inoculat într-un nou flacon VTM, sau poate fi considerat deșeu infecțios și se prelucrează un alt produs. Rezultatul va fi cultură contaminată.
17.
La finalul perioadei de incubare (42 de zile), un flacon care nu a prezentat răspuns pozitiv de creștere bacteriană trebuie să fie inspectat vizual pentru a vedea dacă este tulbure sau are grunji. Dacă lichidul este tulbure sau cu grunji ori flocoane prepară un frotiu și colorează ZN, însămânțează pe agar-sânge și LJ. Dacă mediul este limpede, flaconul poate fi debarasat/ autoclavat. Rezultat: cultură negativă.
REZULTATE
Semnal pozitiv:
Cu identificare de microbi din
complexul M. tuberculosis
: Există aproximativ 10 6
unități formatoare de colonii (UFC)/ml de micobacterii la momentul de detecție.
BAAR prezenți, dar nu este identificat complexul M. tuberculosis.
Subcultură și identificare genetică a NTM în LNR. Rezultat:
M. spp , cultură în curs de identificare la LNR.
Cultură contaminată : sunt prezenți microbi de contaminare. Semnal negativ: la sfârșitul perioadei de incubare.
Adăugarea informațiilor pacientului DUPĂ scanarea flaconului
1.
La computer, selectează pictograma de căutare (lupa)
2.
FILTER (Filtrare)
3.
PENDING (Așteaptă)
4.
ALL IN THE INSTRUMENT (Introdu toate flacoanele în instrument)
5.
SPLIT (Împărțire ecran - se poate să fie deja împărțit)
6.
Fă click pe bara colorată albastru din partea de sus a ecranului, de căutare, pentru a deschide un tabel, dacă acesta nu este deja deschis.
7.
Introdu codul de acces în câmpul
Accession Id
din tabel (numărul din registru).
8.
Fă click pe primul raport din partea stângă a ecranului.
9.
Introdu numele și CNP pacient, împreună cu alte detalii.
Pentru
înregistrări multiple:
dă click pe
următorul
(next),
(jos, în partea stângă a ecranului, pentru a salva informațiile înregistrate anterior.
Pentru o singură înregistrare : selectează și dă click pe butonul
REFRESH
(reîncărcare pagină).
Introducerea informațiilor pacientului ÎNAINTE de scanarea unui flacon
1.
La computer , selectează pictograma pentru
introducere probă
2.
NEW
(Nou)
3.
Introdu codul ID de acces (numărul din registru)
4.
Selectează tipul testului (Myco)
5.
Mergi la câmpul ID pacient
6.
Scrie CNP-ul pacientului
7.
Scrie numele pacientului
8.
Scrie alte detalii necesare (produs, cine solicită, unitate sanitară)
9.
Selectează NEW (Nou) din nou, pentru adăugarea datelor pentru următorul pacient și repetă pașii de mai sus.
SAU
Dacă ai terminat de introdus informațiile, închide fereastra pentru a salva modificările făcute.
ERORI POSIBILE ȘI SOLUȚII PENTRU CORECTARE
Ca pentru orice metodă folosită, în timpul funcționării echipamentului VersaTREK pot să apară probleme care ar putea conduce la rezultate cu calitate slabă.
Verifică și remediază problemele imediat ce survin. Sursele problemelor pot fi asociate cu componente hardware, temperatură, sertare sau flacoane.
Semnalele de atenționare pot fi acustice sau vizuale . Erorile constituie surse de risc pentru calitate și trebuie să fie cunoscute de personalul care lucrează cu echipamentul VersaTREK pentru a le preveni, sau dacă ele au apărut, pentru a le recunoaște și corecta imediat.
Sunt prezentate în continuare succint, problemele care pot să apară, cauzele și modul de rezolvare a lor.
a.
Probleme întâlnite la flacoanele VersaTREK
Problemă
Cauză posibilă
Soluție
În flacon este prea mult sânge (sau fluid corporal)
Flaconul nu a fost umplut corespunzător de către utilizator
Rezultatul poate fi fals-pozitiv. Confirmă rezultatul pozitiv prin examinarea frotiului ZN și a subculturii.
Respectă protocolul de lucru și introdu în
flacon cantitățile corecte pentru fiecare componentă necesară.
Problemă
Cauză posibilă
Soluție
Flaconul figurează activ în sistem, după înlăturarea lui din echipament
Defecțiuni de ordin hardware sau la întrerupător
Apasă butonul întrerupător; urmărește pe ecran dacă flaconul dispare. Dacă nu obții nici un rezultat, contactează reprezentantul tehnic.
Apar erori repetate pentru același locaș
Conectare incorectă la senzor, de la întrerupător sau conexiune internă.
Printează graficul pentru locașul respectiv; anuntă reprezentantul tehnic. Dezactivează locașul.
Locația flacoanelor nu coincide cu locația testului.
Flaconul VTM nu are garnitură de etanșare.
Pune garnitura de etanșare în locașul respectiv.
Arcul este blocat sau nu se află la nivelul adaptorului.
Apasă adaptorul și arcul pentru a le aduce la același nivel.
Este utilizat alt tip de flacon decât cel autorizat.
Foloseșt flacoane VT. Anunță medicul; însămânțează altă probă în flacon nou VTM și incubează separat flaconul neacceptat sau
incompatibil
b.
Probleme la citirea codurilor de bare
Factori ce pot afecta scanarea
Soluții
Etichetă aplicată peste codul de bare al flaconului.
Dacă găsești un flacon al cărui cod de bare a fost acoperit sau distrus, folosește un alt flacon de același tip, din același lot, pentru scanare. Folosește eticheta unică a flaconului original pentru codul de acces.
Flaconul poate fi prea aproape sau prea departe de lentila de citire.
Ține flacoanele cu etichete mici aproape de lentila de citire, iar cele cu etichete mai mari la 1-2 cm de lentilă.
Calitatea codului de bare de pe etichetă poate fi slabă.
Verifică dungile negre care formează codul de bare să nu aibă întreruperi sau imperfecțiuni. Verifică imprimanta pentru coduri de bare dacă printează corespunzător.
Eticheta cu codul de bare trece prea rapid prin fața lentilei laser.
Laserul de citire funcționează cel mai bine dacă eticheta este ținută staționar în fața acestuia.
Lentila de citire poate fi murdară.
Praful si murdăria de pe mănușile din latex pot obtura parțial lentila de citire. Curățată lentila folosind numai produse de curățare corespunzătoare (lavetă din silicon).
Nu se folosesc șervetele de hârtie sau șervețele umede pentru curățarea lentilei.
Laserul nu poate citi codul de bare întreg.
Laserul citește pe linie verticală, de sus în jos. Ține flaconul în așa fel încât eticheta să poată fi încadrată pe toată suprafața ei de raza laserului.
c.
Probleme de alimentare cu energie.
Cauze posibile
Acțiuni corective
Cablul conectat.
de
alimentare
nu
este
Conectează la o priză cu împământare.
Siguranța circuitului principal este ridicată (deconectată).
Îndepărtează panoul de protecție; resetează siguranța.
Clapeta
siguranței are inscripția On/Off pe partea dreaptă.
Dacă siguranța sare din nou, apelează la reprezentantul tehnic TREK.
Siguranța circuitului de alimentare electrică a clădirii este ridicată.
Contactează personalul de la serviciul tehnic al spitalului.
d.
Probleme la tastatură (tastatura nu funcționează).
Cauze posibile
Acțiuni corective
Cablul de rețea nu este conectat la computer.
Oprește alimentarea, reconectează cablul, reia alimentarea.
Computerul este defect.
Apelează la reprezentantul tehnic TREK.
Tastatura este defectă.
În tastatură sunt blocate obiecte străine (agrafe de hârtie, etc.)
Întoarce tastatura și bate ușor pe spatele acesteia sau aspiră ușor pentru a înlătura obiectele străine.
e.
Monitorul / ecranul tactil nu funcționează.
Cauze posibile
Acțiuni corective
Pană de curent electric.
Apasă întrerupătorul pe poziția ON.
Cablul nu este conectat la sursa de alimentare.
Reconectează cablul.
Contrastul/ luminozitatea au un nivel scăzut.
Ajustează opțiunile de contrast/ strălucire.
Cablul nu este conectat la PC
Reconectează cablul.
Imaginea nu este calibrată.
Calibrează imaginea.
Monitorul este defect.
Apelează la reprezentantul tehnic TREK
f.
Mouse-ul nu funcționează.
Cauze posibile
Acțiuni corective
Cursorul se află în afara imaginii.
Mișcă mouse-ul pentru a readuce cursorul în câmpul vizual.
Cablul mouse-ului nu este conectat la computer.
Oprește PC-ul, reconectează cablul, repornește computerul.
Mouse-ul nu este compatibil cu PC
Utilizeață dispozitivul recomandat de TREK.
Mouse-ul este defect.
Apelează la reprezentantul tehnic TREK.
g.
Imprimanta nu funcționează.
Cauze posibile
Acțiuni corective
Imprimanta nu este pornită.
Pornește imprimanta.
Cablul nu este conectat la imprimantă.
Reconectează cablul.
Cablul nu este conectat la PC
Reconectează cablul la PC.
Imprimanta nu are hârtie.
Realimentează cu hârtie.
Imprimanta este defectă.
Apelează la reprezentantul tehnic TREK
Imprimanta nu este configurată ca imprimantă principală.
h.
Probleme legate de temperatura VersaTREK
Problemă
Cauză posibilă
Soluție
Este declanșată alarma pentru temperatură
Temperatura în laborator este prea mare
Verifică termostatul încăperii. Resetează-l dacă trebuie.
Punctul de încălzire este ales greșit sau calibrarea este
incorectă.
Apelează la reprezentantul tehnic TREK
Temperatura sistemului este prea mare.
Defecțiuni ale sistemului de alarmă.
Apasă butonul reset al alarmei. Dacă sună iar, apelează la reprezentantul tehnic TREK
Ventilatoarele nu funcționează
Apelează la reprezentantul tehnic TREK
S emnalul luminos pentru temperatură are culoarea chihlimbarului
Temperatura în laborator este prea mare.
Verifică termostatul. Resetați-l dacă este necesar.
Punctul de încălzire ales este greșit sau calibrarea este
incorectă.
Apelează departamentul tehnic TREK.
Temperatura sistemului este prea înaltă.
Sistem de alarmă defect.
Apasă butonul reset al alarmei. Dacă alarma sună din nou, apelează
departamentul de suport tehnic TREK.
Ventilatoarele nu funcționează.
Apelează departamentul tehnic TREK.
Ecranul de control pentru temperatură afișează valoare scăzută în interiorul
echipamentului.
Sertar(e) deschise.
Închide sertar(e).
Punctul de încălzire este prea mic.
Apelează departamentul tehnic TREK.
Garnitura de izolare este crăpată/ nu izolează ermetic.
Defect placă AT.
Alarma pentru temperatură nu se aude când comutatorul audio este pe poziție
deschis.
Temperatura este adecvată.
Nici o acțiune.
Defecțiune alarmă acustică.
Apelează departamentul tehnic TREK.
i.
Erori de sistem VersaTREK
Problemă
Cauze posibile
Acțiuni corective
Sertar deschis, lumină LED nefuncțională
LED ars.
Apelează departamentul tehnic TREK.
Defecțiuni ale circuitului electric.
Întrerupătorul magnetic este îndoit sau rupt.
Senzorul de activare pentru sertar nu este aliniat corespunzător.
Lumină LED activată când sertarul pare să fie închis
Obiect care împiedică închiderea sertarului.
Inspectați ușa și garnitura pentru a îndepărta orice fel de obiect străin.
LED-ul indicator nu funcționează.
Apelează departamentul tehnic TREK.
Senzorul de activare pentru sertar nu este aliniat corespunzător.
j.
Erori la sertare
Problema
Cauze posibile
Acțiuni corectoare
Sertarele nu pot fi închise
Șinele sertarului sunt îndoite.
Apelează departamentul tehnic TREK.
În spatele sertarului se află obiecte străine.
Sertarul nu a fost reintrodus adecvat, după înlăturarea lui din echipament.
Mecanismul de blocare a fost repoziționat greșit, după înlăturarea sertarului din
echipament.
Sertarele nu pot fi deschise
Șinele sertarului sunt îndoite.
Apelează departamentul tehnic TREK.
Șinele nu sunt aliniate.
În spatele sertarului se află obiecte străine
Sertarele nu rămân deschise
În spatele sertarului se află obiecte străine.
Apelează departamentul tehnic TREK.
Garnitura de etanșare lipsește sau este deteriorată.
Sertarul nu este aliniat la unitate.
Curge lichid în sertare
Flacoane sparte sau crăpate.
Atenție! Aplică măsuri de protecție adecvate: mănuși, mască FFP2, ochelari de protecție. Adună cioburile, curăță și dezinfecteazăi suprafețele afectate.
Apelează departamentul tehnic TREK pentru scurgeri semnificative.
Aerosoli produși de flacoane.
Folosește măsuri de protecție adecvate (halat, mască, mănuși)! Curăță și
Problema
Cauze posibile
Acțiuni corectoare
dezinfectează suprafețele afectate. Schimbă tamponul de absorbție.
Senzorul sau întrerupătorul sunt defecte
Senzorul sau întrerupătorul sunt defecte.
Dezactivează locașul și apelează departamentul tehnic TREK..
k.
Semnale luminoase
Problemă
Cauze posibile
Acțiuni corective
Luminile LED pentru locașuri continuă să clipească și după ce flacoanele au fost introduse
Flacoanele nu au fost introduse corespunzător în locașuri.
Înlătură flaconul; atașează conectorul VersaTREK. Repetă procesul de încărcare pentru flacoane. Aliniază conectorul
VersaTREK la senzor.
LED-urile nu funcționează.
Apelează departamentul tehnic TREK.
Senzorul pentru flacoane nu funcționează.
Unul sau mai multe LED-uri sunt aprinse în mod constant: lumină continuă sau intermitentă
Flacon pozitiv.
Procesează flaconul pozitiv.
Senzor flacon blocat.
Apasă întrerupătorul pentru ca lumina să
dispară. Dacă semnalul luminos persistă, apelează departamentul tehnic TREK.
Eroare de motor, convertor sau EEPROM.
Verifică detaliile locașului și tipul de avarie. Dezactivează locașul.
LED defect.
Apelează departamentul tehnic TREK.
LED-urile nu emit semnale luminoase pentru introducere/ înlăturare flacon după câteva încercări
repetate.
LED-uri defecte.
Apelează departamentul tehnic TREK.
Eroare de conexiune.
Luminile pentru status unitate nu funcționează atunci când LED-ul roșu pentru sertar este
activ.
În sistem nu se află nici un flacon pozitiv.
Verifică inventarul flacoanelor din sistem.
Conexiunea/ comunicarea dintre sertar și placa centrală este defectuoasă.
Apelează departamentul tehnic TREK.
Pictograma pentru
Introducere flacon
nu activează cititorul
pentru coduri de bare.
Cititorul pentru coduri de bare nu funcționează.
Ecranul LCD este defect.
Identificarea culturilor
Fie că sunt culturi pe mediul LJ, pentru care citirea se face manual, fie că sunt culturi în mediul lichid obținute prin cultivare în sisteme cu semnalare automată a pozitivării, finalizarea rezultatului este posibilă doar după parcurgerea etapelor de identificare a microbilor crescuți 26 :
Examinare macroscopică (aspectul coloniilor, culoarea/aspectul mediului)
Examinarea microscopică în colorația ZN.
Test imunocromatografic rapid Ag MPT64, dacă pe frotiul colorat ZN sunt prezenți BAAR.
Morfologia macroscopică a coloniilor
În funcție de compoziția mediului de cultură, morfologia macroscopică a coloniilor de micobacterii din complexul
M. tuberculosis
poate varia, de aceea vom descrie mai jos aspectul orientativ pe care îl putem vedea cel mai des pe mediile folosite în țara noastră, la examinarea cu ochiul liber sau/și cu lupa:
Morfologia macroscopică a coloniilor pe mediul LJ
care conține glicerol
4,18,22
colonii rugoase (R), de 1-4 mm diametru, crem-gălbui conopidiforme, uscate, cu margini bine definite, crenelate, ușor bombate sau uneori plate ( M. tuberculosis ). Coloniile tinere, pe mediu bine hidratat pot fi netede, bombate.
colonii netede (S), de 1-2 mm diametru, alb-gălbui ( M. bovis )
culoarea mediului nu este modificată sau cel mult pare discret decolorat.
dacă mediul este intens decolorat sau verde-albăstrui se va suspecta contaminare cu alți microbi; se face totuși frotiu pentru verificare. Nu se face frotiu dacă mediul este lichefiat.
Morfologia macroscopică a coloniilor crescute în mediul lichid Middlebrook 7H9.
mediul rămâne limpede și are un depozit fin la fundul tubului; după agitarea tubului lichidul are suspensii granulare de dimensiuni diferite.
mediul este tulbure uniform sau se tulbură după agitare.
Morfologia microscopică a coloniilor ,3,4
:
La prepararea frotiurilor se apreciază modul de emulsionare; grunjoasă-poate sugera MT; uniformă-poate sugera NTM sau alți microbi.
colorează ZN și examinează la microscopul optic
descrie în caietul de lucru:
■
așezarea în frotiu : corzi-serpentine, cu număr mic de BAAR izolați (PC = pozitiv corzi); grămezi de bacili, respectiv bacili aglomerați în mai multe zone, fără să se poată vedea continuitatea corzilor, cu puțini BAAR izolați (PG = pozitiv grămezi); BAAR distribuiți nesistematizat, uniform (PN = BAAR pozitiv, nesistematizați); prezența de corzi laxe.
■
lungimea bacililor : bacili mai lungi de 7 µm. Verifică dacă sunt și bacili
ramificați; bacili cu lungimea între 3-6 µm; bacili de 2 µm sau forme cocoide.
■
tinctorialitatea bacililor: BAAR colorați uniform; BAAR colorați granular; BAAR incomplet colorați, albaștri, cianofili.
■
Prezența altor microbi, singuri sau în asociere cu BAAR.
Înregistrarea/Raportarea rezultatelor
Rezultatul examinării microscopice efectuate pentru verificarea/identificarea culturii rămâne înregistrat doar în documentele laboratorului.
În registrul laboratorului și în buletinul eliberat către clinician va figura doar diagnosticul final, după
caz:
complex
M.
tuberculosis ,
sau
NTM
(micobacterii
netuberculoase),
cultură contaminată.
În cazul culturilor din mediul lichid, pentru creșterea aderenței microbilor la lamă se folosește albumină adezivă 1 , care ajută la fixarea preparatelor lichidiene cu celularitate săracă, pe lamă.
Aplică pe lamă o peliculă foarte fină din unul din preparatele de mai jos. Pelicula groasă împiedică uscarea și favorizează desprinderea preparatului de pe lamă.
a.
Albumina glicerinată Mayer 28
50 ml albuș de ou (de la 2 ouă)
50 ml glicerină anhidră
1 g salicilat de sodiu umectat cu ADS
Amestecă prin mișcări circulare, aseptic, într-un balon steril cu perle de sticlă. Filtrează prin hârtie de filtru sterilă. Rezultă un lichid translucid, slab gălbui, limpede.
Verifică sterilitatea. Păstrează la temperatura camerei 2 - 6 luni. Lucrează steril, cu pipetă sau tampon.
b.
Albuș de ou acetic
1 albuș de ou agitat puternic câteva minute, prin mișcări circulare cu
150 ml ADS
adaugă apoi 3 ml acid acetic.
filtrează prin hârtie de filtru sterilă.
Verifică pentru sterilitate. Conservare indefinită, la temperatura camerei. Lucrează steril, cu pipetă sau tampon.
Etapele examenului microscopic pentru examinarea culturilor pozitive
sunt descrise mai sus la "Examenul microscopic", colorația ZN.
Prepararea frotiurilor.
a.
Cultură pe mediul LJ
1.
marchează lama cu numărul culturii
2.
pune o picătură de apă distilată sau albumină adezivă pe lamă folosind pipetă
3.
ia cu ansa bacteriologică din 2-3 colonii și amestecă blând în lichidul de pe lamă, fără să stropești
4.
usucă la aer, pe plita cu termostatare (65-70 0 C) și așteaptă cel puțin 2 ore înainte de etapa următoare
b.
Cultură din mediul lichid Middlebrook 7H9
1.
marchează lama cu numărul culturii
2.
agită tubul cu cultură manual sau prin vortexare. Așteaptă 5 minute să sedimenteze aerosolii infecțioși.
3.
pune o picătură de albumină adezivă pe lama folosind pipetă
4.
ia cu pipeta cca 100 µl din cultură și amestecă blând în lichidul de pe lamă, fără barbotare.
5.
usucă la aer, pe plita cu termostatare (65-75 0 C) și așteaptă cel puțin 2 ore înainte de etapa
următoare.
Colorarea frotiurilor. Colorația Ziehl Neelsen 16
1.
pune lamele cu frotiurile fixate pe suportul de colorare fară să se atingă între ele.
2.
acoperă complet frotiurile cu soluție 0.3% de fuchsină fenicată proaspăt filtrată.
3.
treci pe sub frotiuri flacăra unui bec de gaz pâna la emiterea de vapori, fără să fiarbă. Repetă acțiunea de 3-4 ori în primele 3 minute. Completează cu fuchsină dacă aceasta s-a uscat sau s-a scurs de pe lamă. Lasă până la 10 minute.
4.
spală cu jet slab de apă de robinet și scurge apa.
5.
acoperă frotiul cu alcool-acidulat 3% și lasă-l pentru decolorare maxim 3 min. Nu insista cu decolorarea dacă preparatul este efectuat din cultură (în peste 90 % din aceste preparate sunt prezenți BAAR, care nu se vor decolora)
6.
spală din nou cu jet slab de apă de robinet și scurge apa.
7.
acoperă frotiul cu albastru de metilen 0,3% timp de 30 sec., maximum 1 minut.
8.
spală blând sub jet de apă de robinet.
9.
Usucă la aer, fără să forțezi uscarea.
Frotiurile din culturi se colorează exclusiv ZN.
Culturile pentru care frotiul indică prezența BAAR se testează obligatoriu pentru confirmarea apartenenței la complexul
M. tuberculosis,
folosind test rapid imunocromatografic Ag MPT64.
Culturile cu rezultat negativ Ag MPT64 se trimit imediat la LNR pentru identificare de specie.
Indiferent de metoda de preparare a frotiurilor, ele trebuie lăsate să se usuce la aer, ferite de raze UV, pe plita cu termostatare din interiorul CPM, de unde sunt scoase pentru colorare.
Toate materialele folosite (pipete, anse, tuburi) se colectează în recipente pentru materiale infecțioase și se autoclavează.
După colorare usucă frotiurile în poziție înclinată pe suport de lame la temperatura camerei.
Nu încălzi lamele pentru grăbirea uscării pentru că frotiul se poate crăpa și se dezlipește de pe lamă.
•
La prepararea frotiurilor din culturi se pot genera o cantitate mare de aerosoli infecțioși.
•
Se respectă obligatoriu precauțiile de prevenire a generării și răspândirii aerosolilor infecțioși.
•
Chiar dacă se prepară mai multe spoturi pe aceeași lamă, acestea trebuie să fie din aceeași cultură, nu din culturi diferite, pentru a nu se contamina încrucișat în etapele de colorare, prin prelingere de pe un spot pe altul, cu rezultat fals pozitiv.
Testul imunocromatografic pentru identificarea complexului
M.tuberculosis
în cultură
Principiul testului
Caracterizarea biochimică, imunologică și moleculară a MTB a dus la evidențierea mai multor antigene utile în identificarea bacteriilor aparținând complexului
M. tuberculosis . 1,29,30
Testul de identificare a Ag MPT64, pus în evidență în lichidul culturilor bacteriene de MTB, foloseste anticorpi monoclonali anti-MPT64 proveniți de la șoareci, în test de tip sandwich.
Descrierea testului
Testul conține un godeu pentru probă și o porțiune absorbantă cu liniile
T
= test și
C
= control
Linia control se folosește pentru validarea reacției, fiind colorată în roșu doar dacă tehnica a fost corect aplicată și reactanții sunt funcționali
Linia test se colorează în roșu în cazul prezenței de Ag MPT64 în suspensia bacteriană
Păstrare
La temperatura camerei, între 1-30
0 C (nu se congelează)
Nu se ține la lumină directă, este sensibil la căldură și umiditate
Testul se va folosi imediat după scoaterea din pachet
Nu se va utiliza după expirarea valabilității
Prepararea suspensiei bacteriene
Culturile în mediu
lichid
pot fi folosite ca atare, depunând 100 µl în godeul pentru probă
Culturile în mediu
solid
se prepară astfel: se suspendă 3-4 colonii în 200 µl soluție de extracție; dacă există lichid de condens la baza pantei mediului solid, se folosesc 100 microlitri din acesta.
Procedura de lucru
Se scoate caseta din pachet și se așează pe o suprafață netedă, uscată
Se marchează cu numărul culturii de cercetat
Se depun 100 µl (mediu lichid sau suspensie bacteriană în soluția de extracție) în godeul pentru probă
Se urmărește colorarea în roșu-violet a benzilor test și control pe măsura absorbției probei
Interpretarea rezultatului are loc la 15 minute de la depunerea probei
Rezultat negativ
: se colorează doar linia control C. Pot fi NTM (dacă frotiul colorat ZN arată prezența de BAAR) sau microbi de contaminare (colorați albastru).
Rezultat pozitiv
: complexul
M. tuberculosis , se colorează ambele linii, test T și control
C. Test invalid, neinterpretabil : nu se colorează linia C. Necesită repetare pe o altă casetă.
Înregistrări
Rezultatele testului
se
înregistrează
în
caietul
de
lucru
pentru
identificare.
În
registrul laboratorului și în buletinul de rezultate se scrie doar rezultatul final, concluzia: MTB sau NTM, sau/și cultură în curs de identificare, dacă cultura a fost trimisă la LNR pentru identificare de specie în cazul rezultatului negativ la cultura cu frotiu BAAR pozitiv la verificarea microscopică, ori cultură contaminată.
TEHNICA EFECTUĂRII ANTIBIOGRAMEI MICOBACTERIILOR
Principiu : Se compară creșterea MTB însămânțat în mediul care conține substanțe anti-TB (tuburi test) cu creșterea pe tuburile de control (martor), care nu conțin aceste substanțe și se apreciază creșterea, respectiv lipsa creșterii pe tuburile test 2,4 . Testarea se face pentru concentrații diferite de substanțe anti-TB, denumite concentrații critice care, cel puțin teoretic, corespund concentrațiilor realizate de substanța respectivă în sângele pacienților 32 . Pentru ca o cultură să fie considerată cu rezistență la o substanță anti-TB, trebuie să fie depășită proporția critică de creștere, care este stabilită pentru majoritatea substanțelor testate, la 1% din populația totală testată.
Rezultatele ABG au valoare orientativă și exprimă comportamentul
in vitro
al micobacteriilor, cu puține dovezi referitoare la relevanța clinică a rezultatelor
32 .
Dintre tehnicile standardizate recomandate de OMS 26 , prezentăm mai jos metoda concentrațiilor absolute, metoda proporțiilor în mediul LJ și metoda proporțiilor în mediul lichid Middlebook 7H9. Concentrațiile critice față de care se face testarea sunt revizuite, aprobate și comunicate de către OMS periodic și trebuie adoptate de către laboratoarele care fac ABG 32 .
Metoda concentrației absolute 3,4
1.
Numerotarea tuburilor
martor și test cu numărul din registru al tulpinii de testat. Odată cu numerotarea se verifică și aspectul macroscopic al mediului, lotul și data expirării. Tuburile se scot din frigider cu cel puțin 30 minute înainte de însămânțare, pentru echilibrare termică.
2.
Prepararea inoculului bacterian
Folosește cultura de 21-30 zile de la data însămânțării:
cultura primară cu creștere de 2+ sau3+,
subcultura în cazul culturii primare îmbătrânite sau sărace, dar nu mai puțin de 10 colonii pe cultura inițială. Pentru subcultură, indiferent de motiv, se prelevează din cât mai multe colonii pentru o cât mai bună reprezentare a populației bacteriene.
3.
Prepararea suspensiei bacteriene
Încarcă o ansă bacteriologică cu bacterii prelevate din cât mai multe colonii (cca 5 mg)
Emulsionează în 2 ml ADS
Așteaptă 30 minute să sedimenteze
Trece supernatantul în alt tub, cu pipetă sterilă
Ajustează turbiditatea prin adăugare de ADS în timp ce compari cu etalon de turbiditate McFarland nr 1 (corespunde la 1 mg/ml masă micobacteriană, aproximativ 1x10 8
UFC/ml) 32a .
Folosește pentru prepararea suspensiei bacteriene același tip de tub cu tubul etalon. Păstrează etalonul la întuneric și agită-l înainte de folosire. Înlocuiește-l dacă apar grunji.
4.
Diluarea suspensiei bacteriene
Ia din suspensia bacteriană de 1mg/ml (punct 3) o picătură (0.05ml) și diluează în 10 ml ADS (rezultă o diluție de 1/200 ).
Schimbă pipeta la fiecare nouă diluție. Pipetează numai cu para.
5.
Însămânțează
câte 0.2 ml (4 picături) în fiecare tub martor și în fiecare tub test.
6.
Inundă
suprafața mediului și incubează la 36,5-37 C , timp de 48-72 ore înclinat, astfel încât suprafața pantei să fie orizontală, cu lichidul pe ea, cu capacul semi-înfiletat.
7.
Ridică
tuburile în poziție verticală și incubează în continuare până la 21 zile, când vei face citirea / interpretarea rezultatelor. Dacă creșterea pe tuburile martor este slabă, cu colonii punctiforme, rare, prelungește incubarea până la 28 zile, când faci citirea finală.
8.
Citirea și interpretarea rezultatelor ABG micobacteriilor.
verifică seria de tuburi corespunzătoare tulpinii de control
M. tuberculosis ATCC.
Pe tuburile martor creșterea trebuie să fie cu colonii numeroase, dar numărabile. Pe tuburile test să nu crească colonii.
examinează
tuburile martor
ale tulpinilor de testat și notează creșterea bacteriană:
•
50-100 colonii = 1+,
•
100-200 colonii = 2+,
•
creștere > 200 colonii până la colonii confluente = 3+.
Dacă sunt sub 50 colonii pe tubul martor sau nu s-au dezvoltat germeni (NSDG),
ABG este neinterpretabilă.
Interpretează cu prudență a rezultatele în cazul creșterii a >20 colonii pe tuburile test și creștere de 3+ (confluent) pe tuburile martor.
Contaminarea cu microbi cu creștere rapidă se consemnează ca atare (denotă deficiențe de tehnică).
Examinează creșterea de pe
tuburile test
și se compară cu cea de pe tuburile martor.
Rezultate:
SENSIBIL = absența creșterii bacteriene sau < 20 colonii pe tubul test.
REZISTENT = mai mult de 20 colonii pe tubul test, la o anumită concentrație de substanță antituberculoasă, creșterea fiind egală, comparabilă cu cea de pe tubul martor.
NEINTERPRETABIL = creștere pe tubul martor a mai puțin de 50 colonii.
CONTAMINAT = cresc microbi de contaminare.
Metoda proporțiilor, mediul LJ, tehnica indirectă 2,3,4
1.
Numerotează tuburile
martor și test cu numărul din registru al tulpinii de testat. Odată cu numerotarea verifică și aspectul macroscopic al mediului, lotul și data expirării. Scoate din frigider tuburile cu cel puțin 30 minute înainte de însămânțare, pentru echilibrare termică.
2.
Prepararea inocului bacterian .
Folosește cultura de 21-30 zile de la data însămânțarii:
cultura primară cu creștere de 2+-3+,
sau subcultura în cazul culturii primare îmbătrânite sau sărace dar nu mai puțin de 10 colonii. Pentru subcultură, indiferent de motiv, se prelevează din cât mai multe colonii.
3.
Pregătirea materialelor
scoate din frigider mediile corespunzătoare numărului de tulpini care urmează să fie testate
numerotează cu marker permanent câte o serie de tuburi pentru fiecare tulpină, cu numărul din registru al culturii și cu diluția inoculului, astfel: câte două tuburi martor pentru fiecare diluție a inoculului și câte un tub cu fiecare substanță antituberculoasă pentru fiecare diluție a inoculului.
numerotează tuburile pentru prepararea suspensiei bacteriene, tuburile pentru prepararea inoculului standardizat și tuburile pentru prepararea diluției de însămânțat (câte 5 tuburi pentru diluții).
repartizează câte 1 ml ADS în tuburile pentru prepararea suspensiei bacteriene și câte 9 ml în tuburile pentru prepararea diluțiilor. Pregătește și 2-3 tuburi ca rezervă.
numerotează câte o lamă de microscop pentru fiecare cultură
așează la îndemână: - Flacon cu ADS
-
Pipete sterile de 1 ml sau 2 ml cu pară
-
Substanțe dezinfectate - alcool medicinal
4.
Prepararea și etalonarea suspensiei bacteriene
Deoarece toate manoperele sunt generatoare de aerosoli infecțioși, se va lucra în CPM, cu echipament pentru protecție personală. Pipetează numai cu pară. Schimbă pipeta la fiecare nouă diluție.
încarcă o ansă bacteriologică cu bacterii prelevate din cât mai multe colonii (cca 5 mg) de pe mediul LJ, fără să fie antrenat și mediul.
emulsionează în 1 ml ADS. La sfârșit etalează un spot pe lama cu numărul corespunzător al culturii. După uscare, fixează și colorează ZN frotiul
completează cu ADS până la cca 3 ml. Omogenizează fără a barbota.
așteaptă 30 minute să sedimenteze flocoanele mari.
ia cu o pipeta sterilă supernatantul și trece-l intr-un tub care are dimensiunile etalonului de turbiditate.
ajustează turbiditatea prin comparare cu etalonul standard nr.1 McFarland. Suspensia micobacteriană astfel etalonată corespunde la aproximativ 1x10 8 UFC/ml. 32a
păstrează etalonul în condițiile specificate de producător. Este îndepărtat în momentul în care apar grunji de aglutinare. Înainte de utilizare etalonul este omogenizat prin agitare.
Etalonarea suspensiei bacteriene:
•
suspensia bacteriană din cele 2 eprubete (etalon și test) se compară ținându-le în fața unei hârtii albe cu linii negre de 2-3 mm, paralele și orizontale. Liniile trebuie să se vadă cu aceeași claritate prin cele 2 eprubete.
•
dacă suspensia bacteriană are turbiditatea diferită de a etalonului, se adaugă masă
bacteriană sau ADS, după caz.
•
se poate folosi aparat (densimat) pentru aprecierea turbidității date de bacterii
Citirea frotiurilor colorate ZN pentru confirmarea purității culturilor se face imediat după efectuare și nu se vor însămânța suspensiile bacteriene care conțin microbi de contaminare.
5.
Diluarea suspensiei bacteriene
ia 1 ml din suspensia bacteriană de 1mg/ml cu o pipetă sterilă și diluează în 9 ml ADS (diluție 10 -1 ).
omogenizează cu altă pipetă, fără barbotare și ia 1 ml din diluția 10 -1 , transvazează în 9 ml ADS (diluție 10 -2 ).
continuă în același fel până la realizarea diluției de 10 -5 .
Schimbă pipeta după fiecare diluție.
6.
Însămânțează
din diluția 10 -3
câte 0.2 ml în fiecare din cele două tuburi martor și în fiecare tub test marcat pentru această diluție.
Însămânțează
din diluția 10 -5
câte 0.2 ml în fiecare din cele două tuburi martor și în
fiecare tub test marcat pentru această diluție.
inundă toată suprafața mediului cu atenție, astfel încât inoculul să nu ajungă la dop,
incubează la 36,5-37 C, timp de 48-72 ore înclinat astfel încât suprafața pantei să fie orizontală, orientată în sus, cu capacul semi-înfiletat.
după evaporarea lichidului, ridică tuburile în poziție verticală, închide-le complet și incubează în continuare până la 28 zile, când se face prima citire/interpretare a rezultatelor.
7.
Citirea și interpretarea rezultatelor ABG prin metoda proporțiilor, pe mediu LJ
Citire la 28 și la 42 de zile (dacă este necesar).
Citirea antibiogramei . Prima citire se face după 28 de zile de la însămânțare. Se începe cu citirea rezultatelor pentru tulpina
M. tuberculosis
ATCC 25177, H37 Ra pusă în lucru pentru fiecare lot nou de mediu.
În interpretarea rezultatelor tuturor ABG care folosesc același lot se va face referire la această citire.
numără coloniile crescute pe tuburile de control corespunzătoare diluțiilor 10 -3
și 10 -5
notând media numărului de colonii.
numără coloniile crescute pe tuburile test corespunzătoare diluțiilor 10 -3
și 10 -5 .
scrie numărul exact de colonii în registru și calculează proporția dintre numărul coloniilor crescute pe tuburile test și pe tuburile de control cu aceleași diluții. Scrie proporția calculată. În cadrul aceleiași diluții: nr colonii de pe tubul test x 100/ media numărului de colonii de pe tuburile martor.
Citire la 28 zile:
Dacă pe tuburile test la nici una din diluțiile bacteriene nu este creștere bacteriană, se consideră tulpina SENSIBILĂ și se poate elibera rezultatul. Se notează S.
Dacă creșterea pe tuburile test este mai mare decât 1% din media numărului coloniilor de pe tuburile martor se consideră că tulpina este REZISTENTĂ la acea substanță antituberculoasă. Se notează R.
Citire la 42 zile:
Dacă pe tuburile test creșterea este mai mică decât 1% din media numărului coloniilor de pe tuburile martor se vor reincuba tuburile corespunzătoare tulpinii respective până la 42 de zile, când se face citirea finală și interpretarea rezultatelor ca la 28 de zile.
Metoda proporțiilor modificată, în sistem MGIT 960, tehnica indirectă
Testarea se poate face din cultura obținută în mediul lichid sau pe mediul solid LJ. Etapele de lucru sunt identice de la momentul însămânțării inoculului, însă acesta se prepară diferit, în funcție de mediul de creștere a culturii primare, fiind necesară parcurgerea etapelor prezentate în diagramele de mai jos (Tabel VII - X). Testarea folosind MGIT 960 se poate face pentru RMP, INH, SM, EMB, PZM, Ofl, CAP, MOX, K. Testarea substanțelor anti-TB de linia a 2-a se face doar în LNR.
Tabel VII. Diagrama de lucru pentru testarea substanțelor anti-tuberculoase de linia întâi în sistem MGIT, din cultura pozitivă în mediul solid
Etape
MGIT SIRE - din cultura pe mediul solid
Reconstituire SIRE
1.
Adaugă
câte 4 ml ADS la fiecare flacon cu substanță anti-TB. (40 ABG)
2.
Împarte câte 1 ml în criotuburi sterile (pt 10 ABG). Scrie data reconstituirii și data expirării. Se pot distribui cantități diferite, în funcție de volumul de lucru.
3.
Congelare la - 20 0
C maxim 6 luni.
4.
Decongelează pentru folosire și ce rămâne se aruncă. Nu se recongelează!
Pregătire
1.
Numerotează câte 5 tuburi MGIT pentru fiecare cultură și scrie: CC, S, I, R, E.
2.
Plasează tuburile în această ordine în suportul de incubare.
3.
Adaugă aseptic câte 0,8 ml supliment de creștere pentru SIRE (același lot cu kitul anti-TB), la fiecare tub.
4.
Pipetează aseptic câte 100 µl din soluțiile stoc de SIRE în tuburile corespunzătoare.
Preparare inocul
1.
Pune
4 ml mediu Middlebrook
7H9 în 1 tub steril cu dop, care conține 8- 10 perle de sticlă (2-3 mm).
2.
Prelevează
cu ansa din cât mai multe colonii tinere
(nu mai veche de 14- 21 zile), evitând antrenarea mediului și descarcă în mediu.
3.
Agită 2-3 minute
pentru ruperea corzilor. Suspensia să fie cu turbiditate mai mare de 1 McFarland.
4.
Lasă să sedimenteze 20 minute .
5.
Transferă supernatantul
în alt tub steril cu dop și
lasă alte 15 minute
să sedimenteze.
6.
Transferă supernatantul
(să nu mai aibă grunji sau corzi)
în al treilea tub steril
cu dop. Suspensia să fie mai intensă decât 0,5 McFarland.
7.
Ajustează cu SFS la 0,5 McFarland prin comparare vizuală , dar nu mai puțin de 0,5 McFarland.
8.
Diluează 1 ml din suspensia etalonată cu 4 ml SFS, și rezultă
DILUȚIE
1:5 din suspensia 0,5 McFarland, care reprezintă INOCULUL
Prepara Control creștere CC
Pipetează aseptic 0,1 ml din suspensia bacteriană
INOCUL
în 10 ml SFS și rezultă
suspensia pentru control: 1:100.
Omogenizează atent.
Însămânțează 0,5 ml din diluția 1:100 în CC.
Etape
MGIT SIRE - din cultura pe mediul solid
Inocul tuburi SIRE
Însămânțează în fiecare tub cu substanțe anti-TB câte 0,5 ml (500 µl) din
suspensia bacteriană preparată:
INOCUL = DILUȚIE 1:5 din suspensia 0,5 McFarland.
CIC
Tulpina
M. tuberculosis ATCC
25177. Preparată identic cu tulpinile test.
Control puritate cultură
Însămânțează 0,1 ml din suspensia bacteriană în placă cu agar sânge, pune în pungă de plastic și incubează la 35-37 0
C, timp de 48 ore.
Verifică placa cu agar sânge după 48 ore de incubare. Absența contaminării- corect, se lasă ABG în continuare la incubat în MGIT.
Dacă este contaminare, se scoate ABG din incubator și se repetă din cultură pură.
Incubare
În suport cu 5 poziții, cu controlul în partea stângă.
Citire
Automată
Interpretare
Automată
Lucrează respectând precauțiile pentru protecția personală și a mediului (CPM, mască FFP2, mănuși, ochelari).
Folosește pipete calibrate.
Tabel VIII. Diagrama de lucru pentru testarea substanțelor anti-tuberculoase de linia întâi în sistem MGIT, din cultura pozitivă în sistem MGIT
Etape
MGIT SIRE - din cultura Pozitivă în sistem MGIT 960
Reconstituire SIRE
1.
Adaugă câte 4 ml ADS la fiecare flacon cu substanță anti-TB. (40 ABG)
2.
Împarte câte 1 ml în criotuburi sterile (pt 10 ABG). Scrie data reconstituirii și expirării. Se pot distribui cantități diferite, în funcție de volumul de lucru.
3.
Congelare la - 20 0
C, maxim 6 luni.
4.
Decongelează pentru folosire și ce rămâne se aruncă. Nu se recongelează!
Pregătire
Numerotează câte
5 tuburi MGIT pentru fiecare cultură și scrie: CC, S, I, R, E.
Plasează tuburile în această ordine în suportul de incubare.
Adaugă aseptic câte
0,8 ml supliment de creștere pt SIRE
(același lot cu kitul anti-TB), la fiecare tub.
Pipetează aseptic câte 100 µl din soluțiile stoc de SIRE în tuburile
corespunzătoare.
Prepararea inoculului
1.
Prima zi de pozitivare se consideră ziua 0. Nu se face ABG în ziua 0!
2.
Se face ABG doar în zilele 1-5 după pozitivare. Cultura mai veche de 5 zile se subcultivă în alt tub.
Ziua de
pozitivare
Conduita
0
Nu se face ABG
1 și 2
Se folosește
cultura ca atare, după agitare = INOCUL
3, 4, 5
După agitare se
diluează 1:5
(1 ml cultură la 4 ml SFS) =
INOCUL
6 sau mai
mult
Nu se face ABG. Necesită subcultură în tub nou pentru
cultură, pronind de la cultura primară.
Prepară CC
Pipetează aseptic 0,1 ml din suspensia bacteriană
INOCUL
în 10 ml SFS și rezultă
suspensia pentru control: 1:100.
Omogenizează atent.
Însămânțează 0,5 ml din diluția 1:100 în CC.
Inocul tub SIRE
Însămânțează în fiecare tub cu substanțe antiTB câte 0,5 ml (500 µl) din suspensia bactriană preparată =
INOCUL
CIC
Tulpina
M tuberculosis ATCC
25177. Preparată identic cu tulpinile test
Control puritate cultură
Însămânțează 0,1 ml din suspensia bacteriană în placa cu agar sânge, pune în pungă de plastic și incubează la 35-37 0
C, timp de 48 ore.
Verifică placa cu agar sânge după 48 ore de incubare. Absența contaminării- corect, se lasă ABG în continuare la incubat în MGIT.
Dacă este contaminare, se scoate ABG din incubator și se repetă din cultură pură.
Incubare
În suport cu 5 poziții, cu controlul în partea stângă. La introducerea în incubator se
verifică ordinea tuburilor pe monitor.
Citire
Automată
Interpretare
Automată
Tabel IX. Diagrama de lucru pentru testarea pirazinamidei în sistem MGIT
Etape
MGIT PZM- din cultura Pozitivă MGIT
Reconstituire SIRE
Adaugă
2,5 ml ADS la flaconul cu PZM. (25 ABG)
Împarte câte 0,5 ml în criotuburi sterile (pt 5 ABG). Scrie data reconstituirii și data expirării.
Congelare la - 20 0
C maxim 6 luni.
Decongelează pentru folosire și ce rămâne se aruncă! Nu se recongelează.
Pregătire
Numerotează câte
2 tuburi MGIT PZM pentru fiecare cultură și scrie: CC, Z.
Plasează tuburile în această ordine în suportul de incubare cu 2 poziții. Adaugă aseptic câte
0,8 ml supliment de creștere pentru PZM
(același lot cu kitul PZM), la fiecare tub.
Pipetează aseptic
100 µl din soluția reconstituită de PZM
în tubul corespunzător.
Prepararea inoculului
1.
Prima zi de pozitivare se consideră ziua 0. Nu se face ABG în ziua 0.
2.
Se face ABG doar în zilele 1-5 după pozitivare. Cultura mai veche de 5 zile se subcultivă în alt tub.
Ziua de pozitivare
Conduita
0
Nu se face ABG
1 și 2
Se folosește cultura ca atare, după agitare. Se folosește ca inocul.
3, 4, 5
După agitare se
diluează 1:5
(1 ml cultură la 4 ml SFS). Se folosește ca
inocul.
6 sau mai mult
Nu se face ABG. Necesită subcultură în tub nou.
Prepară CC
Pipetează aseptic 0,5 ml din suspensia bacteriană
INOCUL
în 4,5 ml SFS și rezultă
suspensia pentru control: diluție 1:10.
Omogenizează atent.
Însămânțează 0,5 ml din diluția 1:10 in CC.
Inocul tubul PZM
Însămânțează în tubul cu PZM 0,5 ml (500 microlitri) din suspensia bactriană preparată =
INOCUL
CIC
Tulpina
M tuberculosis ATCC
25177. Preparată identic cu tulpinile test.
Control puritate cultură
Însămânțează 0,1 ml din suspensia bacteriană în placa cu geloză sânge, pune în punga de plastic și incubează la 35-37 0
C, timp de 48 ore.
Verifică placa cu geloză sânge după 48 ore de incubare. Absența contaminării- corect, se lasă ABG în continuare la incubat în MGIT.
Dacă este contaminare, se scoate ABG din incubator și se repetă din cultură pură.
Incubare
În suport cu 2 poziții, controlul în partea stângă.
Citire
Automată
Interpretare
Automată
Tabel VII. Diluarea culturii pozitive pe MGIT între zilele 3-5 după pozitivare
Cultura MGIT 3-5 zile
Diluarea culturii
Însămânțare
Diluție 1:5
4 ml SFS + 1 ml cultură
SIRE P test
Diluție 1:10
4,5 ml SFS +0,5 ml
Dil 1:5
0,5 ml CC- PZM
Diluție 1:100
10 ml SFS + 0,1 ml
Dil 1:5
0,5 ml CC- SIRE
Antibiograma în sistem VersaTREK
Kit-ul VersaTREK Myco este destinat testării sensibilității calitative
in vitro
a culturilor de
M. tuberculosis
la Rifampicină, Etambutol și Izoniazidă, cu ajutorul instrumentului VersaTREK.
27
Se pot testa culturi obținute pe mediul LJ sau culturi crescute în mediul lichid Middlebrook 7H9.
Pentru ABG în sistemul VT se utilizează simultan un mediu de cultură lichid (VersaTREK Myco Broth), un factor de creștere (VersaTREK Myco GS), concentrații precise de antibiotice anti-TB și un sistem de detecție care permite incubarea automatizată și monitorizarea continuă a tuburilor inoculate, cu citire a consumului de oxigen la fiecare 24 de minute. La finalul perioadei de incubare specifice, stabilită pentru fiecare probă testată, în funcție de timpul de
pozitivare al flaconului martor (fără antibiotic), proba este evaluată manual ca fiind sensibilă sau rezistentă la substanța anti-TB.
Fiecărui flacon i se atașează un conector VersaTREK, realizându-se astfel un sistem închis de monitorizare a flaconului cu instrumentul. O membrană hidrofobă din conectorul VersaTREK previne aerosolizarea. Informațiile clinice sunt introduse în calculator, iar flacoanele sunt așezate în instrument pentru incubare la temperatura de 35° C, în condiții staționare.
În tabelele XI- XV sunt detaliate instrucțiunile de lucru pentru antibiograma în sistem VersaTREK.
Tabel XI. Diagrama de lucru pentru testarea substanțelor anti-tuberculoase de linia întâi în sistem VersaTREK, din cultura pozitivă pe mediul solid
Etape
VersaTREK RIE - din cultura pe mediul solid
Reconstituire IRE
Adaugă câte 25 ml ADS la fiecare flacon cu substanțăa antiTB (40 ABG)
Păstrează maxim 4 săptămâni la 2-8 0
C, sau împarte câte 5,5 ml în tuburi sterile (pt 10 ABG). Scrie data reconstituirii și data expirării. Se pot distribui cantități diferite, în funcție de volumul de lucru estimat
Congelare la - 20 0
C și folosește în maxim 3 luni. Decongelează pentru folosire și aruncă ce rămâne. Nu se recongelează!
Pregătire
Numerotează câte 4 tuburi VTM pentru fiecare cultură. și scrie: CC, R, I, E. Plasează tuburile în această ordine în suport.
Adaugă aseptic câte 1ml supliment de creștere (Myco GS) pentru RIE (același lot cu kitul anti-TB), la fiecare tub, inclusiv CC.
Pipetează aseptic câte 0,5 ml din soluțiile stoc de RIE în tuburile test și 0,5 ml ADS în tubul CC (controlul creșterii)
Prepararea inoculului bacterian
Pune
4 ml ADS
în 1 tub steril cu dop, care conține 8-10 perle de sticlă (2-3 mm). Prelevează
cu ansa din cât mai multe colonii tinere
(nu mai veche de 14-21 zile), cultură pură, evitând antrenarea mediului și descarcă în ADS.
Agită 2-3 minute
pentru ruperea corzilor. Suspensia să fie cu turbiditate mai mare de 1 McFarland.
Lasă să sedimenteze 20 minute .
Transferă supernatantul
în alt tub steril cu dop și
lasă alte 15 minute
să sedimenteze.
Transferă supernatantul
(să nu mai aibă corzi!)
în al treilea tub steril
cu dop. Suspensia să fie mai intensă decât 1 McFarland.
Ajustează cu ADS la
1 McFarland
prin comparare vizuală , dar nu mai puțin de 1 McFarland ( 1 (aproximativ 3x10 7
UFC/ml),
Diluează 1:10
din suspensia etalonată: 9 ml ADS+ 1 ml suspensie etalonată)
=
INOCULUL.
Inoculare Control creștere
Însămânțează 0,5 ml din diluția 1:10
în tubul marcat CC.
Inoculare tuburi RIE
Însămânțează în fiecare tub cu substanțe anti-TB câte 0,5 ml (500 microlitri) din suspensia bacteriană preparată: INOCUL = DILUȚIE 1:10 din suspensia 1 McFarland.
Amesctecare prin inversarea tubului de 3-5 ori.
CIC
Tulpina
M. tuberculosis ATCC
25177. Preparată identic cu tulpinile test.
Etape
VersaTREK RIE - din cultura pe mediul solid
Control puritate cultură
Însămânțează 0,1 ml din suspensia bacteriană în placă cu geloză sânge, pune în pungă de plastic și incubează la 35-37 0
C, timp de 48 ore.
Verifică placa cu geloză sânge după 48 ore de incubare. Absența contaminării-corect, se lasă ABG în continuare la incubat în VT.
Dacă este contaminare, se scoate ABG din incubator și se repetă din cultură pură.
Incubare
În sertarele sistemului, după montarea conectorului la fiecare flacon. Tuburile nu se mai inversează după montarea conectorului!
Citire
Automată, la fiecare 24 minute. CC trebuie să fie pozitiv între > 3 zile, dar < de 10 zile, cu semnal pozitiv acustic și luminos.
După pozitivarea CC testul mai durează 3 zile- cu urmărire de către executant (vezi detelii mai jos, la rezultate).
Consemnare în caietul de lucru.
Interpretare
Rezistent: creștere pe tub test în interval de 3 zile după CC, Sensibil: fără creștere pe tub test în interval de 3 zile după CC. Creșterea
după 3 zile
nu indică rezistență.
Dacă se dorește efectuarea ABG în sistem VT din cultură din mediul solid sau din mediul lichid, pentru obținerea culturii de testat se procedează astfel:
Pune 4 ml ADS în 1 tub steril cu dop, care conține 8-10 perle de sticlă (2-3 mm).
Prelevează cu ansa din cât mai multe colonii, cultură pură, evitând antrenarea mediului și descarcă în ADS.
Agită 2-3 minute pentru ruperea corzilor. Suspensia să fie cu turbiditate mai mare de 1 McFarland; sau agită tubul cu cultura în VTM pe care dorești să o testezi.
Lasă să sedimenteze 20 minute.
Transferă supernatantul în alt tub steril cu dop.
Ajustează cu ADS la 1 McFarland prin comparare vizuală.
Pipetează 0,5 ml suspensie în flacon VTM marcat și 1 ml supliment GS.
Montează conectorul și incubează în sistem până la pozitivare.
Efectuează ABG în interval de maxim 72 de ore de la pozitivare.
Agită flaconul 1-2 minute, transferă 1 ml din cultură în tub care conține 9 ml ADS: diluție 1:10 = INOCUL.
Pipetează 0,5 ml din inocul la tuburile pregatite ca mai sus (CC, RIE)
Pentru măsurarea tuturor cantităților se folosesc pipete calibrate.
Se lucrează în condiții de asigurare a protecției personalului și mediului (CPM, mască, halat de protecție, mănuși).
Dizolvarea substanțelor antiTB și concentrațiile rezultate este prezentată în tabelul XI.
Tabel VIIIII. Dizolvarea substanțelor antiTB și concentrațiile rezultate
Conc finală a substanței în flaconul VTM
ADS pentru dizolvare/ rehidratare
Concentrație după rehidratare
Cantitate introdusă în flacon VTM
Număr teste/flacon
(x2= nr teste/chit)
RMP 1 µg/ml
25 ml
30 µg/ ml
0,5 ml
50
INH 0,4 µg/ml
12 µg/ ml
40
EMB 8 µg/ ml
240 µg/ ml
30
Notă: INH este substanța cu rol limitativ. Chiar dacă mai sunt disponibile celelalte substanțe dizolvate din același lot, ele se vor debarasa. Nu se amestecă substanțe din loturi diferite.
Tabel IXII. Adăugarea reactivilor și a substanțelor de inoculare la flacoanele de testare
VTM etichetat, numerotat
Volum de GS de pipetat
Volum de
substanță antiTB de pipetat
Diluție 1:10
din cultură, INOCUL
1 µg/ ml Rifampicină
1 ml
0,5 ml RMP
0,5 ml
0,4 µg/ ml Izoniazidă
1 ml
0,5 ml INH
0,5 ml
5 µg/ ml Etambutol
1 ml
0,5 ml EMB
0,5 ml
Control creștere
1 ml
0,5 ml
ADS
0,5 ml
Introducerea flacoanelor în sistem:
Scrie pe fiecare flacon numărul de identificare si substanța anti-TB.
Formatul pentru numărul de acces este „Acces " XY, unde „Acces" va fi echivalent cu numărul de accesări pentru o cultură; X este codul substantei (R, I, E), iar Y este concentrația sa.
Exemplu:
Control creștere
Număr de acces = 1234 CC Rifampicină 1,0 µg/ml
Număr de acces = 1234 R1
Izoniazidă 0,4 µg/ ml
Număr de acces = 1234 I0.4
Etambutol 8 µg/ ml
Număr de acces = 1234 E8
Plasează pe rând flacoanele de cultură cu conectorul VersaTREK în instrument.
Creșterea va fi semnalată de instrument. Momentul acesteia poate fi aflat prin urmărirea graficului cu rezultatul testării.
Rezultate
Testul trebuie finalizat în maxim 13 zile, în funcție de flaconul de control.
După
ce
CC
se
pozitivează,
urmărește
pe
graficul
de
la
flacoanele
test corespunzătoare tulpinii, timpul scurs până la pozitivarea lor. Scrie și în caietul de lucru.
După trei zile suplimentare de incubație, rotunjit la cel mai apropiat număr întreg, ulterior
pozitivării
CC,
caută
și
înregistrează
rezultatele
celorlalte
flacoane corespunzătoare culturii.
Sensibil : cultura pură într-un flacon care conține substanță anti-TB, fără semnal pozitiv in intervalul de 3 zile după pozitivarea CC este considerată sensibilă la concentrația de substanță testată.
Rezistent : cultura pură într-un flacon care conține substanță anti-TB, este considerată rezistentă la acea concentrație de substanță testată atunci când timpul pana la semnal pozitiv este egal, sau în intervalul de trei zile (rotunjit până la cel mai apropiat număr întreg) de timpul până la pozitivare al CC.
În Tabelul XIII este prezentat un exemplu de evaluare și interpretare a rezultatelor ABG TREK, cu identificarea erorilor posibile și acțiunilor corective.
Flacoanele care au generat semnale pozitive trebuie confirmate cu frotiu ZN. Dacă se identifică organisme non-BAAR, se va efectua o subcultură pe o placă cu mediul geloză sânge, care se va incuba pentru cel puțin 18 ore într-un incubator obișnuit la temperatura de 35-37 o C, pentru a verifica puritatea izolatului.
Tabel X. Observații asupra testării și evaluarea testării
Flacon test
Rezultat obținut
Cauze posibile
Acțiune
Control CC
< 3 zile de la însămânțare
Contaminare sau inocul prea bogat; verifică puritatea plăcilor și
graficele de creștere
REPETĂ TESTUL
din cultură pură
Control CC
> 10 zile de la însămânțare
Organism neviabil; inocul prea slab
REPETĂ TESTUL,
cu atenție la realizarea inocului
Control CC
Creștere detectată în interval între 3 și 10 zile după
inoculare
TEST VALID -
verifică flacoanele test
Verificare puritate
Nu s-a observat nici un contaminant pe placa cu geloză sânge în intervalul de 18 ore
Frotiu ZN: doar BAAR Nu s-a observat nici o variație colonială pe LJ
Variație a morfologiei coloniiilor pe LJ
Cultura nu a fost pură
Este prezentă mai mult de o specie de Mycobacterium
Test valid
REPETAȚI TESTUL
pentru a verifica rezultatele; anunțați medicul că rezultatul
nu se poate finaliza.
Întotdeauna
revedeți graficul corespunzător fiecărei culturi pure înainte de a raporta un rezultat. Citiți Manualul de Operare VersaTREK pentru detalii legate de analiza graficelor.
Verificați rezultatele subculturilor pe mediu LJ pentru a confirma prezența unei singure specii de
Mycobacterium.
Se testează exclusiv complexul
M. tuberculosis .
Tabel XI. Exemplu de rezultate pentru orientarea
interpretării rezultatelor ABG VersaTREK
Control creștere
Substanța antiTB
Izoniazidă
Rifampicină
Etambutol
Concentrație substanță
0
0,4µg/ ml
1,0 µg/ ml
8 µg/ ml
Zile până la semnalul pozitiv
6
12
fără creștere
6
10
fără creștere
Interpretare
---
Sensibil
Rezistent
Sensibil
Comentarii
la exempul dat: Termenul de încheiere a testării este de 9 zile, raportat la CC care a generat semnalul pozitiv după 6 zile (timpul de Control pentru detecție + 3 zile). Orice creștere observată după perioada de testare de 9 zile trebuie ignorată deoarece aceasta nu reprezintă un indicator al rezistenței.
Remarci ale producătorului
Kit-ul pentru ABG VTM nu ar trebui să fie utilizat cu izolate obținute direct din flacoanele cu specimene pozitive (flacoane primare).
Producătorul este responsabil pentru autorizarea componentelor sistemului.
Testarea fiecărui antibiotic din kit se va realiza numai cu loturi de mediu VersaTREK Myco și VersaTREK Myco GS iar activitatea fiecărei substanțe va fi evaluată cantitativ.
În Certificatul de analiză al produsului este menționat un interval pentru limitele de activitate pentru fiecare substanță antiTB.
Producătorul va aproba și furniza loturi de mediuVersaTREK Myco și VersaTREK Myco GS care urmează să fie utilizate împreună cu fiecare lot al kit-ului pentru ABG Myco VersaTREK iar utilizatorul va folosi aceste loturi la efectuarea testării în laborator.
Utilizatorul va verifica dacă loturile de mediu VersaTREK Myco și VersaTREK Myco GS au fost aprobate pentru a fi utilizate împreună cu kit-ul de ABG Myco VersaTREK înainte de începerea testării. Loturile aprobate sunt enumerate în Certificatul de analiză pentru fiecare kit în parte. Examinați vizual toate flacoanele pentru a detecta contaminarea, fisuri sau alte semne de deteriorare. Nu folosiți flacoane care par tulburi sau deteriorate. Inocularea se poate realiza prin deschiderea flacoanelor și adăugarea probelor cu ajutorul pipetelor sterile.
5.
Metode de biologie moleculară
Pentru diagnosticul TB prin metode de biologie moleculară sunt disponibile mai multe metode bazate pe principii diferite, care pot identifica secvențe genetice micobacteriene diverse. Dintre acestea, în laboratoarele rețelei naționale de micobacteriologie se folosesc în condiții de program de control al TB două sisteme. Unul bazat pe revers-hibridizare pe suport de nitroceluloză- LPA (GenoType-HAIN), celălalt bazat pe reacție cantitativă de polimerizare în lanț a ADN în timp real - RTPCR (GeneXpert MTB-Rif- Cepheid).
Metodele moleculare de hibridizare pe suport permit detecția rapidă a rezistenței la RMP (singura sau în asociere cu INH) și au fost aprobate de către OMS încă din anul 2008, când s-au emis ghiduri de introducere a lor la nivel național 32,33 . Dezavantajul metodelor de hibridizare este că la INH rezistența poate fi subestimată, se detectează doar MDR, fiind necesară ABG convențională pentru detecția TB extrem de rezistentă (XDR), iar pentru monitorizarea tratamentului cazurilor MDR este necesară cultura
și ABG convențională pentru aflarea spectrului complet de rezistență 33.
Dacă se confirmă rezistența la RMP sau TB-MDR prin unul din testele de biologie moleculară folosit, se recomandă efectuarea imediată a testului GenoType MTBDRsl direct pentru identificarea rapidă a rezistenței la aminoglicozide și fluorochinolone. 33a
Sistemul
GenoType
folosește un ansamblu de echipamente, specifice pentru fiecare etapă de lucru, cu chituri de reacție diferite în funcție de scopul testării:
MTBDR
plus
este kitul de analiză genetică folosit pentru identificarea simultană a complexului
M.tuberculosis
și evidențierea mutațiilor de rezistență la RMP și INH, iar în cazul
MTBDR
sl
,
pentru identificarea cazurilor de TB-XDR prin evidențierea mutațiilor de rezistență la aminoglicozide și fluorochinolone.
Kiturile
MTBC și CM
sunt folosite pentru identificarea speciilor de
Mycobacterium
în culturile pozitive pe mediul solid LJ și mediul lichid în sistem MGIT.
Deoarece producătorul are o politică de îmbunătățire continuă a performanțelor metodelor, acesta include o
fișă de avertizare
în ambalajul care conține reactivii dintr-o versiune nouă și este necesar să se acorde atenție acestor informații. În această fișă se face trimitere la instrucțiunea de lucru care va trebui folosită în noile condiții.
Instrucțiune de lucru pentru GenoType 34,35
EXTRACȚIA ADN
Pregătirea materialului în vederea extracției ADN-ului micobacterian
produsul patologic (specimen clinic), în cazul MTBDR plus
și
sl
cultura în mediul lichid
cultura în mediul solid.
Produsul patologic
Produsele patologice (spută, lavaj bronho-alveolar, aspirat bronșic) trebuie păstrate la frigider la 2-8°C până la maximum 4 zile.
După decontaminarea prin metoda Petroff sau NALC-NaOH se resuspendă sedimentul în 1 ml SFS până la un volum total maxim de 1,5 ml. Sedimentul astfel prelucrat poate fi păstrat la congelator la -20°C până la -80°C maxim 5 zile.
Pregătirea extracției ADN
Din sedimentul rezultat după decontaminare:
transferă 500 µl în microtuburi conice de 1,5 ml cu capac înfiletat
centrifughează 15 min la 10 000 x g
îndepărtează complet cu pipeta supernatantul și resuspendă sedimentul în 100 µl tampon Lys (A-Lys) prin vortexare scurtă.
colectează materialul infecțios rezultat în timpul lucrului în recipiente dedicate care conțin dezinfectant micobactericid.
Din cultura în mediu lichid
transferă 1000 µl din cultura în mediul lichid omogenizat în prealabil prin agitare ușoară, în microtuburi conice de 1,5 ml cu capac înfiletat
centrifughează 15 min la 10 000 x g
îndepărtează complet supernatantul și resuspendă sedimentul în 100 microlitri Lys Buffer (A-Lys) prin vortexare scurtă.
colectează materialul infecțios rezultat în timpul lucrului în recipiente dedicate care conțin dezinfectant micobactericid.
Din cultura în mediu solid
prepară suspensia bacteriană prin colectarea cu ansa bacteriologică de unică folosință din cât mai multe colonii.
resuspendă coloniile direct în 100 µl Lys Buffer (A-Lys), în microtuburi conice de 1,5 ml cu capac înfiletat, urmat de vortexare scurtă.
În cazul kitului Mycobacterium CM ver 2.0, pentru fiecare probă se amestecă cei 100 microlitri Lysis Buffer (A-Lys) cu câte 2 microlitri control intern (IC) prin vortexare.
Extracția propriu-zisă a ADN
se continuă cu următoarele etape, indiferent de natura produsului prelucrat în vederea extracției, prin metodă chimică sau fizică (ultrasonicare).
Extracție chimică
incubează 5 min probele la 95°C în baie de apă
agită puțin în microcentrifugă (spin-down)
adaugă 100 µl tampon pentru neutralizare (A-NB) și vortexează minim 5 sec.
apoi pune pentru 5 min la viteza maximă a microcentrifugii (14 500 rpm)
5 µl supernatant (soluție ADN)
se folosesc în reacția PCR.
Extracție prin ultrasonicare
Dacă ai resuspendat coloniile în apă PCR, incubează 25 minute în THERMOBLOCK pentru denaturare la 95°C.
pornește baia de ultrasonicare și pune probele pentru 20 minute
apoi pune pentru 5 min la viteza maximă a microcentrifugii (14 500 rpm)
5 µl supernatant (solutie ADN)
se folosesc în reacția PCR.
Pentru păstrarea de durată (indefinită) a ADN-ului extras, supernatantul rămas se transferă într-un tub nou, ADN free și se congelează la -80 ° C. Alicotare dacă se consideră necesar.
AMPLIFICAREA PCR
În cazul kiturilor MTBDR plus , MTBDR sl,
CM ver 2.0 și MTBC se va prepara amestecul de nucleotide (mastermix) prin amestecarea Mixului de amplificare A cu B din componenta 2 a kitului, păstrată la -20°C. AM-A conține tampon, nucleotide și ADN polimeraza; AM-B conține primeri biotinilați și colorant.
După reechilibrarea termică a soluțiilor în aria prePCR, se amestecă pentru fiecare probă de testat câte 10 µl AM-A cu 35 µl AM-B (conform tabelului XVI).
Amestecul este instabil și este necesară preparare de fiecare dată când se lucrează, într-o zonă fără sursă posibilă de ADN contaminant.
Se verifică de fiecare dată etichetele de pe flacoanele cu reactivi pentru amplificare astfel încât ampliconul rezultat să corespundă cu stripul specific folosit pentru testul dorit.
Conținutul unui flacon AM-A cu al unui flacon AM-B în amestec este suficient pentru 26 probe.
Calcul AM-A+AM-B = număr probe + număr controale + rezervă o probă Control negativ, pentru controlul extracției (ENC): 5 µl apă PCR (în loc de ADN)
Control pozitiv MTBC sensibil (H37 Ra) sau MTBC cu rezistență cunoscută: 5 µl ADN
Prepararea amestecului de amplificare
(tabelul XVI):
GenoType MTBDR plus
ver 2.0
GenoType MTBDRsl ver 2.0
GenoType MTBC ver 1.x
Tabel XVI. Cantitățile necesare pentru realizarea amestecului de nucleotide în funcție de numărul de probe de testat
Pipeta de folosit
AM-A
AM-A
(µl)
NR.
PROBE
AM-B
(µl)
Pipeta
AM-B
Pipeta Mix
10-100
10
1
35
10-100
10-100
50
5
175
100-1000
100-1000
100-1000
100
10
350
120
12
420
150
15
525
200
20
700
240
24
840
480
48
1680
Mix: amestec de nucleotide. Polimeraza este inclusă în reactivi.
În cazul kitului CM versiunea 2.0 (Common Mycobacterium-specii comune, altele decât TB) prepararea amestecului de nucleotide se face tot conform tabelului XVI.
Adu amestecul pregătit în camera pre-PCR spre
camera de amplificare
în cutii separate pentru fiecare tip de test și
aici adaugi ADN-ul extras în microtuburi și începi amplificarea .
Conectează aparatul
GTQ-Cycler 96
la rețeaua electrică. Așează microtuburile de 0,2 ml cu probe în locașurile centrale. Închide capacul.
Pornește programul:
MDR-DIR.scr pentru testul MTBDR plus
direct și pentru testul MTBDR sl
direct
MDR-CUL.scr pentru testul MTBDR plus
indirect, MTBDR sl
indirect MTBC sau CM
La volum/probă se introduce valoarea de 50 µl. Selectează RUN PROGRAM.
După terminarea ciclurilor scoate tuburile cu amplicon și pastrează-le până a doua zi la frigiderul din camera de amplificare, în cutii separate, etichetate.
HIBRIDIZAREA PROBELOR CU GT-BLOT 48
Reactivii au dopuri colorate diferit pentru prevenirea confuziilor. În tabelul XVII sunt prezentate codurile de culori ale reactivilor folosiți pentru hibridizare.
Tabel XIII. Codul de culori al reactivilor
Reactiv
Culoare
Reactiv
Culoare
HIBRIDIZANT
VERDE
CONJUGAT
PORTOCALIU
STRINGENT
ROȘU
APA
ALBASTRU
RINSE
ALB
SUBSTRAT
GALBEN
1.
Desfă tija de susținere a tăviței pentru stripuri (bandeletele de nitroceluloză)
2.
Ridică senzorul central și poziționează-l în interiorul tăviței
3.
Apasă butonul START și selectează
GT FAST V2
4.
Pipetează 20 µl sol
DEN
în fiecare godeu și 20 µl
amplicon , începând cu primul godeu de sus, amestecând ușor cu vârful pipetei, fără barbotare.
5.
Pune reactivii
HYB, STR
și
RIN
cu flaconul original în suportul aparatului și imersează sonda corespunzătoare în soluție.
6.
Apasă butonul START și
selectează numărul de godeuri de lucru
cu săgeata < > (rândul 1 sus, rândul 2 jos)
7.
Dacă numărul de probe este mai mic de 22 și senzorul nu are strip în godeul respectiv, aici trebuie puși 5 µl soluție HYB. Godeurile fără stripuri vor fi umplute cu apă de către sistem.
8.
Pune ADS în flaconul cu capac albastru.
9.
START. Închide capacul protector cu atenție. Se pornește automat pipetarea soluției
HYB .
10.
Când pe ecran apare
'Add amplicon'
ridică capacul, imersează cu pensa stripurile specifice fiecărui test în godeuri în sol
HYB,
fără contaminarea pensei.
11.
Închide capacul și dă START.
12.
În partea stânga jos a GT Blot apare cu
led verde temperatura de lucru setată și cu led roșu temperatura realizată.
13.
Introdu sonda corespunzătoare în flaconul cu soluția
STR preîncălzită la 37°C
în ultimele 10 minute de HYBRIDIZATION.
14.
Prepară amestecul de
CON-C
cu
CON-D
(amestec instabil, de preparat proaspăt de fiecare dată) și
SUB-C
cu
SUB-D
(stabil 4 săptămâni la temperatura camerei, protejat de lumină). Calcularea volumului de reactivi se face conform tabelului XVIII:
Tabel XVIII. Calcularea volumului de reactivi necesari în funcție de numărul probelor
Nr probe
Plus necesar de reactivi
CON-D
ml
CON-C
Ml
SUB-D
ml
SUB-C
µl
1
1
10
1
10
<10
Calculat ca pt.
20 probe
20
200
20
200
10-15
+10
25
250
25
250
16-25
+12
37
370
37
370
26-35
+14
49
490
49
490
36-39
+16
55
550
55
550
40-43
+22
65
650
65
650
44-48
+24
72
720
72
720
15.
În ultima etapă de reacție cu substratul, stinge lumina pentru a proteja godeurile de lucru.
16.
După terminarea spălărilor scoate stripurile cu grijă, păstrând ordinea lor, usucă-le pe suport de hârtie absorbantă apoi lipește-le pe formularul pentru teste.
C urățarea aparatului
1.
După ultima spălare, scoate sondele din toate flacoanele de lucru și spală în recipientul cu ADS caldă; după uscare așează-le înapoi în flacoanele aparatului, marcate în prealabil.
2.
Îndepărtează la deșeuri CON de lucru, spală flaconul aparatului cu ADS și usucă.
3.
SUB de lucru rămas se poate păstra până la 4 săptămâni într-un flacon cu pereți opaci, la temperatura camerei în spațiu întunecos.
4.
Spală cu ADS flaconul aparatului, usucă și așează sonda în interior.
La terminarea ciclurilor de spălare se poate începe o nouă serie de hibridizare, pentru alte probe. În cazul în care nu se dorește o nouă hibridizare, aparatul se oprește din butonul START/STOP de pe panoul din spate stânga.
Cu ajutorul unei pensule se înlătură orice urmă de reactiv din godeurile de lucru ale aparatului și ale tăviței folosite.
Scoate tăvița din aparat și pulverizeaz-o cu reactiv decontaminant LTK și ADS. Un șir de godeuri al tăviței se folosește de maxim două ori la hibridizare, de accea trebuie marcat pe laterală fiecare folosire.
Spălarea aparatului
Programul de spălare se poate porni doar după parcurgerea tuturor etapelor de lucru, folosind ADS caldă în loc de reactivi și scurtând diferitele etape, după cum urmează:
În etapele cu încălzire, apasă pe tasta QUIT, întrerupe alarma sonoră apăsând pe tasta START de două ori.
În etapele fără încălzire, apasă lung pe tasta săgeată dreapta.
Control intern al GT Blot 48
(aparatul atenționează necesitatea)
Din 3 în 3 luni se derulează ciclul de control OQ. În panoul SETTINGS, apasă pe OPEN în 'Cycler information', în 'Cycler Management' apasă pe CYCLER TESTS și pe ENGINE TEST până când apare OK.
Disfuncționalitățile aparatelor se consemnează în fișele tehnice și se comunică reprezentantului furnizorului.
EVALUAREA ȘI INTERPRETAREA REZULTATELOR
Pentru evaluarea și interpretarea reacției, stripurile trebuie uscate și fixate în poziție corectă pe fișa de lucru.
La fiecare probă se verifică:
apartenența la Complexul
M.tuberculosis
(banda TUB pozitivă),
martorul reacției de amplificare (AC) și
martorul reacției de conjugare (CC).
Lipsa uneia dintre aceste benzi indică erori în cadrul procesului de amplificare, testul nu este validat și se impune retestarea folosind altă probă.
În cazul controlului negativ (ENC - extraction negativ control) pe strip trebuie să apară doar benzile CC și AC. Prezența de benzi suplimentate semnalează contaminarea, iar rezultatele pentru pacienți nu pot fi interpretate corect. Se analizează sursa contaminării și se fac corecțiile necesare.
Rezultate pentru GenoType MTBDR plus
După ce testul a fost validat, urmează verificarea prezenței benzilor de control pentru genele
rpo/J, katG, inhA , a benzilor pentru tipurile sălbatice și pentru mutații:
locus control ( rpoB, katG, inhA )
wild type WT (lipsa acestora semnifică deleție sau mutație în secvența respectivă)
mutații existente MUT atât la
rpo/J
(pentru RMP), cât și la
katG
și
inhA
(pentru INH).
Locus control (rpo/J, katG, inhA)
Prezența benzilor este obligatorie dacă zona TUB atestă prezența
M. tuberculosis .
În cazul unui rezultat pozitiv, semnalul acestor zone poate fi slab sau, în unele cazuri, inexistent. În cazuri rare, locusul
katG
poate lipsi complet (inclusiv banda Locus Control) semnificând rezistență la INH a tulpinii testate.
Dacă benzile
rpo/J
și/sau
inhA
nu sunt evidente, testul nu poate fi evaluat pentru aceste gene.
Secvențe tip sălbatic (wild type - WT)
RMP
Se iau în considerare doar benzile al căror semnal este la fel de puternic sau mai puternic decât semnalul din zona de control (AC). Sunt 8 secvențe sălbatice notate de la WT1 până la WT8.
Sondele
rpo/J
WT reprezintă o excepție de la această schemă de evaluare.
Un semnal mai slab decât zona (AC) în zona
rpo/J
WT8 trebuie considerat pozitiv dacă banda corespunzătoare mutației
rpo/J
MUT3 nu este evidentă, (deci nu semnifică rezistență la RMP).
INH
Sunt luate în considerare doar benzile al căror semnal este la fel de puternic sau mai puternic decât semnalul exprimat în zona de control (AC). În zona
katG
există un singur WT, iar la
inhA
WT1 și WT2.
Rezistența de nivel înalt este indicată de mutațiile în
katG
(codifică enzima activatoare: catalaza). Rezistența de nivel jos este indicată de mutațiile în
inhA
(codifică enzima enoyl-ACP reductaza) și regiunea promoter (gene reglatoare).
Sonde de tip mutant
Sondele tip mutant detectează cele mai frecvente mutații de rezistență.
Sunt luate în considerare doar benzile al căror semnal este la fel de puternic sau mai puternic decât semnalul exprimat în zona AC.
Comparativ cu alte sonde, semnalele pozitive pentru mutațiile
rpop
MUT2A
și
rpop
MUT2B
pot apărea mai slabe ca intensitate.
Dacă banda
rpop
MUT3
este pozitivă, un semnal slab detectat în zona
rpop
WT8 trebuie considerat negativ (cu semnificație de rezistență la RMP).
Variantele de rezultat la testul Genotype MTBDRplus:
•
MTBC nedetectat - în cazul absenței benzii TUB
•
MTBC detectat cu rezultat invalid pentru mutații de rezistență la RMP și/sau INH (absența benzilor locus/WT la
rpo/J
și/sau
inhA )
•
MTBC detectat cu prezența benzilor TUB și WT fără mutații; rezistențe nedetectate.
•
MTBC detectat cu prezența benzilor TUB cu absența WT și prezența MUT la
rpo/J
și
katG
sau
inhA ; rezistențe detectate (MDR)
•
MTBC detectat, cu test invalid pentru
rpo/J , valid pentru
katG
și
inhA
•
MTBC detectat, cu test valid pentru
rpo/J
și invalid pentru
inhA .
Rezultate pentru GenoType MTBDR sl
După ce testul a fost validat, urmează verificarea prezenței benzilor de control pentru genele
gyrA, gyrB, rrs
și
eis , a benzilor pentru tipurile sălbatice și pentru mutații:
locus control ( gyrA ,
gyrB ,
rrs
și
eis )
wild type WT (lipsa acestora semnifică modificări în secvența respectivă)
mutațiile MUT existente, la
gyr A
și/sau
gyr B
(pentru fluoroquinolone),
rrs
(pentru aminoglicozide),
eis
(pentru kanamicină)
Locus control (gyr A, gyr B, rrs și eis)
Prezența lor este obligatorie dacă zona TUB atestă prezența
M. tuberculosis .
În cazul unui rezultat pozitiv, semnalul acestor zone poate fi slab sau, în unele cazuri, inexistent.
Secvențe tip salbatic (wild type - WT)
Se iau în considerare doar benzile a căror intensitate este la fel de puternică sau mai puternică decât semnalul exprimat în zona de control pentru amplificare (AC).
gyrA : 3 secvențe notate de la WT1 la WT3.
gyr B : 1 secvență notată WT1.
rrs:
2 secvențe WT1 și WT2.
eis : 3 secvențe notate de la WT1 la WT3.
Sonde tip mutant
Sondele tip mutant detectează cele mai frecvente mutații de rezistență. Se iau în considerare doar benzile al căror semnal este la fel de puternic sau mai puternic decât semnalul exprimat în zona AC.
Variantele de rezultat pentru testul Genotype MTBDRsl:
MTBC nedetectat - în cazul absenței benzii TUB
MTBC detectat cu rezultat invalid pentru mutații de rezistență la Q și/sau AG și/sau K (absența benzilor locus/WT la
gy r și/sau
rrs
și/sau
eis )
MTBC detectat cu prezența benzilor TUB și WT fără mutații
MTBC detectat cu prezența benzii TUB cu absența WT și prezența MUT la
gyrA
și/sau
gyrB , la
rrs
și/sau
eis .
MTBC detectat cu prezența benzilor TUB și WT pentru
gyrA ,
gyrB
și absența WT cu prezența MUT la
rrs
și/sau
eis
MTBC detectat cu QrAGn - prezența benzilor TUB și WT la
rrs
și
eis
și absența WT cu prezența MUT la
gyrA
și/sau
gyrB
Rezultate pentru GenoType MTBC și CM
În cazul acestor teste de identificare a speciei de Mycobacterium se verifică:
Prezența benzilor control de CC și UC
Prezența benzii de conjugare MTBC în cazul testului GenoType MTBC
Prezența benzii de conjugare GC în cazul testului GenoType CM
După identificarea benzilor de control se citește combinația benzilor de conjugare cu intensitatea cel puțin egală cu a benzii control UC, se notează pe fișele de lucru și se compară cu tabelul conținând combinațiile de benzi pentru speciile identificate.
Figura 2. Algoritmul pentru sistemul GenoType
Pe parcursul efectuării testelor pot să apară probleme care pot afecta calitatea rezultatelor, de aceea trebuie cunoscute și prevenite sau corectate, în funcție de situație. (tabelul XIX)
Tabel XIII. Probleme care pot să apară și rezolvarea lor
Problema aparută
Etapa de lucru
Cauză posibilă
Rezolvarea problemei
Colorare neomogenă
a stripurilor
hibridizare
Stripuri acoperite incomplet de soluțiile de reactivi în timpul etapelor de incubare.
Repetă hibridizarea
Tavița de hibridizare incorect agitată.
Fondul colorat puternic
hibridizare
Reactivii CON-C și/sau SUB-C nu au fost diluați corespunzător.
Repetă hibridizarea
Etape de spălare necorespunzătoare.
Soluția de spălare a fost prea rece.
Lipsă benzi sau benzi slabe
(inclusiv CC)
hibridizare
Temperatura camerei prea scăzută sau reactivi neechilibrați termic.
Repetă hibridizarea
Lipsa sau o cantitatea prea mică de CON-C si/sau SUB-C.
Lipsa benzi sau benzi slabe (cu excepția zonei CC)
extracția ADN
Calitatea ADN-ului extras nu permite o amplificare eficientă.
Repetă extracția.
preparare mix
Mixurile de amplificare (AM-A și AM-B) au fost inversate, ori adăugate în cantități greșite, nu au fost agitate corespunzător.
Prepară un nou mix și repetă testul.
hibridizare
Temperatura de incubare prea ridicată.
Repetă hibridizarea
Rezultate neașteptate
etapa pre- analitică
Condiții necorespunzătoare pentru
recoltarea, stocarea, transportul sau pregătirea probei.
Solicită altă probă și repetă testarea
extracția ADN
Erori în timpul extracției ADN.
Repetă extracția .
Contaminarea ADN extras cu ADN extras sau amplificat anterior.
Folosirea unor culturi mixte.
amplificare
Contaminarea reactivilor de extracție. În acest caz, controlul negativ (ENC) arată benzi suplimentare în afară de benzile CC si
AC.
Repetă amplificarea
folosind reactivi proaspeți.
Atenție la pipete!
hibridizare
Temperatura de incubare necorespunzătoare.
Repetă hibridizarea
Hybridization Buffer și/sau Stringent Wash Solution necorespunzător preâncălzite sau
agitate.
Problema aparută
Etapa de lucru
Cauză posibilă
Rezolvarea problemei
Contaminarea probelor alăturate prin stropirea cu soluția de hibridizare.
hibridizare
În funcție de cantitatea ADN amplificată folosită în condiții specifice de reacție, apare colorare puternică și rapidă a benzilor.
Întrerupe incubarea substratului îndată ce benzile devin evidente pentru prevenirea apariției benzilor de cross-hibridizare
Lipsă semnal în zona TUB
Culturi mixte de
M tuberculosis
și specii NTM, zona TUB rămâne cu semnal slab/lipsă din cauza competiției dintre
diferitele specii bacteriene.
Reia cultura pentru a obține cultură pură.
Pentru fiecare lot de reactivi recepționați în laborator se verifică dacă producătorul a adus îmbunătățiri (fișa de alertare este inclusă în cutia cu reactivi), etapele de lucru fiind obligatoriu adaptate recomandărilor din instrucțiunea de lucru actualizată de către producător.
GeneXpert MTB-Rif
GeneXpertMTB/Rif este un sistem genetic pentru detectarea simultană a MTB și a rezistenței la RMP (prin mutații în gena
rpo/J ) prin metoda de amplificare semi-cantitativă în lanț în timp real (RT-PCR).
36
Este un sistem complet integrat, cu cartușe de unică folosință în care proba pregătită în prealabil este introdusă și procesată în aparat.
Cartușul conține sisteme de control a procesării probei:
SPC: (sample processing control), control pentru prelucrarea probei care verifică prelucrarea adecvată a ei și monitorizează prezența inhibitorilor reacției de polimerizare în lanț (PCR)
PCC: (probe check control), verifică rehidratarea reactivilor, nivelul de umplere al cartușului, integritatea probei și stabilitatea colorantului.
Primerii (secvențe de ADN) conținuți amplifică porțiunea „core" de 81 perechi de baze a genei
rpo/J . Testul are capacitatea să facă distincție între secvențele de tip sălbatic (fără mutații) și secvențele cu mutații din această regiune.
Considerații generale
Înainte de a începe folosirea echipamentului trebuie să te asiguri că ai citit instrucțiunile de lucru și ai înțeles informațiile oferite în timpul instruirii.
Nu este permis lucrul fără instruire prealabilă . Se pot produce daune care conduc la pierderea garanției.
Prelucrarea tuturor probelor clinice trebuie să se facă respectând standardele de biosiguranță.
Consideră toate sputele, inclusiv cartușele folosite, ca potențial infecțioase.
Folosește echipament personal de protecție (halat, mănuși) când mânuiești sputa sau reactivii.
Spală mâinile cu grijă după mânuirea sputei sau reactivilor.
Toate mesele trebuie decontaminate la sfârșitul lucrului sau după scurgerea sau prelingerea din cartuș cu dezinfectant tuberculicid (hipoclorit de sodiu 1% urmat de stergere cu alcool 70%).
Nu deschide capacul cartușului decât pentru introducerea probei.
Nu refolosi cartușele.
Îndepărtează cartușele folosite conform procedurii de colectare a materialului infecțios.
Echipament și materiale
Sistem GeneXpert Dx echipat cu GX2.1 software/computer/printer/cititor manual de cod de bare (Cepheid Inc, Sunnyvale, USA) (Cat Item N o
GXIV-4N1-6).
CPM (cabinet de protecție microbiologică) de clasa II
Kitul Xpert MTB/RIF conține câte 10 cartușe ambalate împreună:
o
Păstrează cartușele și reactivii Xpert MTB/RIF la 2-28°C.
o
Nu deschide cartușele decât atunci când ești pregătit să faci testul.
o
Folosește cartușul în maxim 30 de minute după ce i-ai deschis capacul.
o
Cartușele sunt stabile până la 7 zile după deschiderea pachetului (notează data deschiderii pe ambalaj)
Reactivul furnizat în kit conține câte 8 ml pentru fiecare cartuș. Soluția este limpede dar poate fi de la incoloră până la galben auriu.
Folosește marker permanent pentru numerotarea cartușelor.
Folosește pipete sterile ambalate individual pentru prelucrare.
Încarcă cartușul cu pipetă de unică folosință furnizată odată cu kitul, marcată pentru volumul minim de pipetat (2 ml).
Sputa trebuie să fie recoltată în recipient steril cu capac înfiletat.
Toate materialele folosite și sputa rămasă se îndepărtează urmând procedura de îndepărtare a deșeurilor infecțioase.
Trebuie planificată prelucrarea ținând cont că pot rula la un moment dat maxim 4 probe, cu durata testului de 2 ore.
Datele pacientului se introduc în fișa de lucru.
Procedura de lucru
a.
Sputa expectorată
Ia 1ml spută din recipientul de colectare cu pipetă sterilă și pune-l în tubul de lucru; după folosire pune-o în recipientul de colectare a materialui infecțios.
Adaugă cu altă pipetă reactivul din kit în proporție de 2:1 (2 ml reactive la 1 ml spută). Se pot prelucra 2-3 ml spută, dar trebuie să fie respectată proporția reactiv: spută.
Strânge bine dopul tubului de lucru (să nu se scurgă).
Agită tubul prin inversare de 10-20 x.
Incubează la temperatura camerei până la 15 minute.
În perioada incubării agită cel puțin odată tubul, ca mai sus.
La sfârșitul incubării sputa trebuie să fie lichefiată complet, fără fragmente sau filamente vizibile.
Scrie pe cartuș, cu marker, numărul de registru (un cartuș pentru fiecare probă).
Scrie la baza frontală a tubului sau pe lateral, dar
niciodată pe capac sau peste codul de bare.
b.
Sediment (aspirat gastric, aspirat bronșic, lavaj bronșic, spută indusă)
•
proba clinică trebuie centrifugată pentru concentrare, la 3000x g, 20 minute.
•
Decantează supernatantul și reține 1 ml (sau 0,5 ml).
•
Ia 1ml din sediment cu pipetă sterilă și pune-l în tubul de lucru; după folosire pune pipeta în recipientul de colectare a materialui infecțios
•
Adaugă cu altă pipetă reactivul din kit în proporție de 3:1 (3 ml reactiv la 1 ml sediment. Dacă se prelucrează 0,5 ml sediment, se adaugă 1,5 ml reactiv, dar trebuie să fie respectată proporția dintre reactiv și sediment.
•
Strânge bine dopul tubului de lucru (să nu se scurgă)
•
Agită tubul prin inversare de 10-20 x.
•
Incubează la temperatura camerei până la 15 minute.
•
În perioada incubării agită cel puțin odată tubul, ca mai sus.
•
La sfârșitul incubării sputa trebuie să fie lichefiată complet, fără fragmente sau filamente vizibile
•
Scrie pe cartuș, cu marker numărul de registru (un cartus pentru fiecare probă).
•
Scrie la baza frontală a tubului sau pe lateral, dar
niciodată pe capac sau peste codul de bare.
Prepararea cartușului
Note:
a.
introdu cartușul în aparat în maxim 30 de minute după deschiderea lui și adăugarea probei.
b.
când mânuiești cartușul nu atinge niciodată partea din spate. Ține-l din laterale.
Procedura de lucru
Folosește pipetă sterilă furnizată cu kitul, aspiră proba lichefiată astfel ca meniscul format să depășească marcajul minim.
Nu se procesează proba în continuare dacă volumul este insuficient - sub marcajul de pe pipetă!
Evită atingerea pipetei sterile. Deschide ambalajul pipetei la extremitatea cu pară și scoate atent pipeta. Păstrează ambalajul pipetei.
Deschide capacul cartușului și transferă lent proba în cartuș prin orificiul de încărcare din colțul din dreapta, față. Minimizează riscul de formare de aerosoli prin pipetarea lentă.
Pune pipeta cu atenție în ambalajul de plastic și descarc-o în recipientul de colectare a materialului infecțios.
Închide ferm capacul cartușului.
Proba lichefiată rămasă după umplerea cartușului poate fi păstrată până la 12 ore la 2-8°C, pentru repetarea testului, dacă se consideră necesar. Pentru aceasta trebuie să ne asigurăm că a fost prelucrată cantitate suficientă din proba primară, adică cel puțin 2 ml spută.
Important:
Asigură-te că introduci cartușul în aparat în maxim 30 de minute după adăugarea probei și că ai încărcat minim 2 ml de probă prelucrată.
Pornirea testului
Important:
Înainte de începerea testului asigură-te că sistemul este conectat la o sursă de curent neîntreruptibilă (UPS).
Pornește instrumentul
Pornește computerul, cu parola "xxxx" , în fereastra cphd.
Dă dublu clic pe pictograma "GeneXpert Dx" de pe ecranul monitorului.
În fereastra GeneXpert Dx dă clic pe
"Create Test"
și apare fereastra de dialog "Scan Cartridge Barcode". Dă cancel sau ignoră introducerea manuală și scanează codul de bare prin poziționarea scanerului în zona centrală a acestuia.
Scrie numărul probei în fereastra "Sample ID" și asigură-te că este corect.
Dă clic pe "Start test"
Se aude un clinchet și la unul dintre module apare lumină verde. Deschide ușița respectivă și introdu cu grijă cartușul.
Închide ferm ușița modulului, încât să auzi un click.
Lumina verde nu mai pâlpâie ci rămâne aprinsă atunci când începe testul. La terminarea testului lumina verde se stinge.
Se introduc toate cartușele urmând aceiași pași. "Create test"..
Un test complet durează 1 oră și 55 minute. Rezultatul este generat automat, la terminarea testului.
Așteaptă până când sistemul deblochează ușița la sfârșitul testului, deschide-o și îndepărtează cartușul folosit.
Depune cartușul în recipientul pentru colectarea materialului infecțios.
Folosește formularul tipărit sau transcrie rezultatul în caietul de lucru pentru Xpert și introdu rezultatul în buletinul de solicitare, semnează, parafează, datează.
Controlul calității
Fiecare cartuș are inclus un
control pentru prelucrarea probei
(Sample processing control - SPC) și
control pentru probă
(Probe Check control - PCC) care ne asigură că proba a fost prelucrată corect.
SPC =
control pentru prelucrarea probei
verifică prelucrarea adecvată a MTB.
ar trebui să fie pozitiv pentru un produs negativ sau poate fi negativ sau pozitiv la un produs pozitiv.
se consideră că testul de control al probei a trecut atunci când este validat criteriul de acceptare. Testul este "INVALID" dacă SPC nu este detectat în testul negativ.
PCC =
control pentru probă
înainte de începerea reacției PCR sistemul măsoară semnalul fluorescent al probei pentru monitorizarea hidratării particulelor, umplerea tuburilor de reactivi, integritatea probei și stabilitatea colorantului.
Testul este trecut dacă întrunește criteriile de acceptare.
Erori
MTB-NO RESULT
SPC-NO RESULT
PCC-NA (ne aplicabil)
Motive pentru repetarea probei
Repetă testul folosind un cartuș nou dacă:
rezultatul "INVALID" indică faptul că testul SPC de
control pentru prelucrarea probei
nu a fost trecut.
Apare eroarea SPC când proba nu a fost prelucrată corect sau PCR a fost inhibată.
"ERROR": mesaj care indică eșuarea controlului pentru probă (PCC) și testul s-a înterupt datorită umplerii necorespunzătoare a cartușului, sau a fost detectată o problemă de integritate a reactivilor, sau limita de presiune a fost depășită sau modulul GeneXpert a eșuat.
"NO RESULT", lipsa unui rezultat, indică faptul că au fost colectate prea puține informații. De exemplu, operatorul a oprit testul care era în desfășurare.
Interpretarea rezultatelor GeneXpert MTB/RIF
Fiind un test bazat pe detectarea ADN-ului MTB se adresează doar cazurilor noi de TB. Trebuie să ne asigurăm că nu se prelucrează probe la monitorizarea tratamentului.
Rezultatele sunt interpretate de sistemul GeneXpert Dx prin măsurarea semnalului fluorescent și calculul algoritmilor care apar în fereastra
"View Results".
Cea mai mică valoare Ct (numarul ciclurilor de amplificare) la pornire reprezintă cea mai mare concentrație de ADN a matricei; cea mai mare valoare a Ct reprezintă cea mai mică concentrație de ADN a matricei.
MTB DETECTED = Mycobacterium tuberculosis detectat
Dacă este detectat ADN țintă în probă, rezultatul MTB afișat va fi "High, Medium, Low sau Very Low", respectiv în cantitate mare, medie, mică sau foarte mică, depinzând de valoarea Ct a țintei MTB prezentă în spută (tabel XX).
Tabel XX. Valorile rangului Ct corespunzătoare rezultatelor MTB afișate
Rezultat MTB
Rangul Ct
High = mare
<16
Medium = mediu
16-22
Low = mic
22-28
Very Low = foarte mic
>28
Când MTB este detectat, rezultatele pentru RMP pot fi:
o
Rezistență la RMP DETECTATĂ
(Rifampicin resistance DETECTED): a fost detectată mutație în gena
rpo/J
în intervalul valid de variație a Ct.
o
Rezistență la RMP NEDETECTATĂ
(Rifampicin resistance NOT DETECTED): nu a fost detectată nici o mutație în gena
rpo/J .
o
Rezistență la RMP INDETERMINATĂ (Rifampicin resistance INDETERMINATE): concentrația MTB a fost foarte mică și rezistența nu poate fi detectată.
MTB NEDETECTAT (MTB NOT DETECTED)
Ținta ADN - MTB nu este detectată. SPC are criterii de acceptare.
o
MTB NOT DETECTED - MTB NEDETECTAT - ținta AND- MTB nu este detectată.
o
SPC - testul de verificare trecut dar variația Ct și valoarea finală sunt sub nivelul minim stabilit.
o
PCC - testul de verificare trecut: toate rezultatele verificate au fost acceptate.
RIF NEDETECTAT (RIF NOT DETECTED)
Ținta ADN pentru Rif (RMP) nu este detectată, SPC - are criteriu de acceptare.
o
Rifampicină nedetectată (RIF NOT DETECTED) - ținta ADN pentru RMP nu este detectată
o
SPC - test trecut dar variația Ct și valoarea finală sunt sub nivelul minim stabilit.
o
PCC - testul de verificare trecut: toate rezultatele verificate au fost acceptate.
INVALID - nu se poate lua în considerare
Prezența sau absența MTB nu poate fi determinată. Repetă testul din alt produs. SPC nu întrunește criteriile de acceptare, proba nu a fost prelucrată corect sau PCR este inhibată.
o
MTB INVALID- prezența sau absența ADN- MTB nu poate fi determinată.
o
SPC-nu a trecut testul, a eșuat; rezultatul țintei pentru MTB este negativ și Ct pentru SPC nu se situează în limitele de acceptare.
o
PCC- a trecut testul; toate verificarile pentru probă au trecut testul.
Limitările testului de diagnostic
in vitro
Testele se efectuează folosind această procedură și instrucțiunile din kituri.
Calitatea rezultatelor depinde de recoltarea corectă a sputei, mânuirea și păstrarea ei.
Rezultatul pozitiv nu indică neapărat MT viabil. Este doar un test prezumptiv pentru prezența MT și a rezistenței la RMP.
Rezultatul poate fi afectat de terapie anti-TB precedentă, sau terapie cu efect asupra micobacteriilor.
Figura 3. Algoritmul pentru sistemul GeneXpert MTB-Rif
6. Asigurarea calității
Asigurarea calității este un proces continuu care are ca scop îmbunătățirea și menținerea performanțelor laboratorului 15 .
Componentele unui program de asigurare a calității sunt:
controlul intern al calității
control extern al calității, comparare între laboratoare
îmbunătățirea calității
Existența unui
sistem de asigurare a calității
garantează că rezultatele oferite de laborator sunt exacte, de încredere și reproductibile.
Laboratorul trebuie să monitorizeze toate activitățile și să păstreze înregistrări referitoare la acestea.
Controlul calității constituie parte integrată în activitatea laboratorului și este în responsabilitatea tuturor celor care lucrează în laborator.
Pentru
aprecierea tendințelor 37
în privința performanțelor laboratorului, acesta trebuie să-și monitorizeze și analizeze periodic
indicatorii de calitate , cu referire la ținta propusă.
Un program de asigurare a calității nu se poate derula fără
personal
suficient numeric, instruit, interesat și motivat, care folosește corect procedurile de lucru recomandate, care își recunoaște greșelile și acceptă să le corecteze, când activitatea din laborator se desfășoară în atmosferă de calm și bună-înțelegere, fără stres.
În fiecare laborator trebuie să existe scrise și accesibile toate
tehnicile de lucru
corespunzătoare nivelului de competență a laboratorului.
Toate laboratoarele trebuie să respecte tehnicile de lucru recomandate și să facă dovada participării la controlul extern al calității pentru toate tehnicile și metodele folosite.
ANEXA 1
Prepararea reactivilor
1.
Metoda de decontaminare cu hidroxid de sodiu (metoda Petroff modificată)
Materiale:
dezinfectant tuberculicid: etanol 70%
tuburi de 10 - 12 ml, 50 ml cu capac cu filet, în funcție de dimensiunea cuvelor centrifugii
soluție sterilă de NaOH 4%
soluție sterilă de HCl 8% sau KH 2 PO 4
15%
balanță analitică
vortex
stative adecvate pentru tuburi
centrifugă cu răcire, cu rotor pentru tuburi de 10 - 12 ml, sau 50 ml
ceas de laborator
pipete din material plastic, de unică folosință, sterile, ambalate individual, de 3 ml
plită pentru uscat lame
etichete pentru tuburi
marker permanent
lame pentru microscop 26x76x1mm, cu un capăt mătuit, curate și degresate
Reactivi
3 :
Soluție de NaOH 4%.
Se dizolvă 4 g NaOH în 100 ml apă distilată și se sterilizează prin autoclavare timp de 30 minute la 121°C.
Soluție de HCl 8%.
Se diluează 8 ml de acid clorhidric în 92 ml apă distilată (prin turnarea acidului în apă și nu invers!). Dacă se folosește metoda cu centrifugare, se poate neutraliza cu fosfat monopotasic ( KH
2
PO
4 ) în soluție 15% (15 g KH 2 PO 4
în 85 ml apă distilată).
Soluție de albastru de bromtimol ( indicator). Albastrul de bromtimol se prepară adăugând 0,1 g albastru de bromtimol la 3,2 ml sol. NaOH N/2 și 250 ml apă distilată. Soluția de NaOH N/2 se prepară amestecând 1 ml NaOH 4% în 19 ml apă distilată. Se sterilizează prin autoclavare la 121°C timp de 30 minute. Se păstrează în sticlă brună. Culoarea albastră indică pH alcalin culoarea galbenă indică pH acid, iar o culoare galben-verzuie indică pH neutru. Soluția de albastru de bromtimol poate fi înlocuită cu soluție de roșu fenol (8 mg roșu de fenol se dizolvă în 20 ml NaOH 4% și se adaugă apă distilată până la 1000 ml). Culoarea roșie indică pH alcalin; culoarea galbenă persistentă indică pH acid.
Dacă există centrifugă conformă, cu cuve pentru tuburi Falcon de 50 ml se recomandă utilizarea acestora cu folosirea întregii probe clinice colectate și, implicit, recuperarea unei cantități mai mari de bacili.
2.
Metoda de decontaminare NALC - NaOH 20
Materiale
dezinfectant tuberculicid: etanol 70%
tuburi Falcon de 50 ml, gradate, cu capac cu filet, sterile
N-acetil L-cisteină (NALC), pulbere
soluție NaOH 4%
citrat de sodiu soluție 2,9%
tampon fosfat, pH 6,8
balanță analitică
vortex
stative pentru tuburi de 10-12 ml, 50 ml
centrifugă cu răcire și rotor pentru tuburi de 10-12 ml sau 50 ml
ceas de laborator
pipete de plastic, de unică folosință, sterile, ambalate individual, de 3 ml
pH metru
plită pentru uscat lame
etichete pentru tuburi
marker permanent
agitator plan
Soluție de NaOH 4%.
Dizolvă 4 g NaOH în 100 ml ADS și sterilizează prin autoclavare timp de 20 minute la 115°C. Etichetează.
Soluție citrat de sodiu 2,9%
Dizolvă 2,9g citrat de sodiu hidratat (2H 2 O) în 100 ml ADS. Sterilizează prin autoclavare timp de 20 minute la 115°C. Etichetează.
Pentru lucru, cele două soluții se amestecă în cantități egale și se adaugă în ziua de lucru cantitatea necesară de NALC pulbere, în funcție de numărul de produse de prelucrat, astfel:
Volum de lucru final
NaOH 4%
Citrat de sodiu 2,9%
NALC
(g)
50 ml
25 ml
25 ml
0,25
100 ml
50 ml
50 ml
0,5
200 ml
100 ml
100 ml
1
NALC în soluție este instabil și trebuie folosit în ziua preparării. Cantitatea nefolosită se îndepărtează.
Bibliografie
1.
Mycobacteriology laboratory manual. GLI. First edition,April 2014, StopTB Partnership.
2.
European Centre for Disease Prevention and Control. Mastering the basics of TB control: Development of a handbook on TB diagnostic methods. Stockholm: ECDC; 2011.
2a. I Solovic, J Jonsson, M Korzeniewska- Kosela, D I Chiotan, A Pace-Asciak, E Slump, R Rumetshofer, I Abubakar, S Kos, P Svetina-Sorli, W Haas, T Bauer, A Sandgren, M J van der Werf s in
www.eurosurveillance.org
diagnosing extrapulmonary tuberculosis i
2b. European Centre for Disease Prevention and Control. Handbook on TB laboratory diagnostic methods for the European Union. Stockholm: ECDC; 2015.
3.
Diaconescu C, Homorodean D, Popa MI, Banica D, coord. Bercea O- Ghid de diagnostic bacteriologic al tuberculozei, Bucuresti, 1998.
4.
Daniela Homorodean, Olga Moldovan, Daniela Diculencu, Grațiela Chiriac, Ionela Muntean, revizie tehnică de specialitate IM Popa. Îndrumar de tehnici de laborator de bacteriologie BK- București 2005, ISBN 973-0-04173-3
5.
Ghid metodologic de implementare a programului național de prevenire, supraveghere și control al tuberculozei. București, 2015. ISBN 978 - 973 - 139 - 325 - 4.
5a. Meenu Singh, N.V. Ahsan Moosa, Lata Kumar and Meera Sharma. Indian Pediatrics 2000;37: 947-951
6.
Lumb R., Van Deun A., Bastian I, Fitz-Gerald M. Laboratory Diagnosis of Tuberculosis by Sputum Microscopy. The handbook. Global edition. 2012
7.
TB diagnostics and laboratory straeghtening - WHO policy, 2007. Proposed reduction of number
of
smears
for
the
diagnosis
of
pulmonary
TB:
background
document.
www.who.int
8.
Ghid de reglementari pentru Transportul Substantelor Infecțioase 2011 - 2012. WHO/HSE/IHR/2010.8
9.
IATA Packing Instruction 650 - Biological Substances, Category B (http ://www.iata.org/NR/rdonlyres/9C7E382B-2536-47CE-84B4-9A883ECFA040/0/ Guidance Doc62DGR 50.pdf)
10.
DOT 49 CFR Parts 171-180
(http://ecfr.gpoaccess.gov/cgi/t/text/text- idx?c=ecfr&tpl=/ecfrbrowse/ Title49/49cfrv2 02.tpl)
11.
DOT Pipeline and Hazardous Materials Safety Administration: How to transport infectious substances
(https://hazmatonline.phmsa.dot.gov/services/publication documents/ Transporting.Infectious.Substances.Safely.pdf)
12.
Vessel Sanitation Program Operations Manual 2005 ( http://www.cdc.gov/nceh/vsp/ operationsmanual/OPSManual2005.pdf)
13.
I.N. de Kantor, S. Jae Kim, T. Frieden, A. Laszlo, F. Luelmo, P-Y. Norval, H. Rieder, P. Valenzuela, K.Weyer. Laboratory services in tuberculosis control. Organization and management. Part I. WHO/TB/98.258
14.
Tuberculosis laboratory biosafety manual. WHO/HTM/TB/2012.11
15.
SR EN ISO 15189. Laboratoare medicale- cerințe pentru calitate și competență. ASRO.
16.
De Kantor IN, Kim SJ, Frieden T, Laszlo A, Luelmo F, Norval P-Y, Rieder H, Valenzuela P, Weyer K. Laboratory services in tuberculosis control, part II: Microscopy, WHO/TB/98.258, 1998
17.
WHO. Policy statement on fluorescent light-emitting diode (LED) microscopy for diagnosis of tuberculosis. Geneva,
2010.htt p://www.who.int/tb/laboratory/policy statements/en/
18.
Vincent Levy-Frebault V, Portaels F, Proposed minimal standards for the genus Mycobacterium and for description of new slowly growing Mycobacterium species, Int. j. of Systematic Bacteriology, Apr, 1992, 315-323
19.
Kent PT, Kubica GP. Public Health Mycobacteriology. A guide for the level III laboratory, 1985, Atlanta Georgia.
20.
Cornaglia G., Courcol R., Herrmann J-L. et al. European
Manual
of Clinical Microbiology. ESCMID, ed 1, 2012.
21.
Daniela Homorodean, Olga Moldovan,
Mihaela Stoian, Mihaela Brojboiu, Grațiela Chiriac, Ionela Sorina Muntean, Domnica Ioana Chiotan, Iuliana Nicolae, Constantin Marica, Nicolae Galie. Organizarea și managementul laboratorului de micobacteriologie. București 2008. ISBN: 978-973-0-05558-0
22.
Murray P.R. et al. Manual of Clinical Microbiology, vol. I, ed. 9, 2007. American Society of Microbiology, Washington D.C.
23.
Francis Varaine, Michael L. Rich. Tuberculosis. Practical guide for clinicians, nurses, laboratory technicians and medical auxiliaries, 2013, Medicins sans Frontieres and Partners in Health.
24.
De Kantor IN, și col-Laboratory services in tuberculosis control, part III: Culture, WHO/TB/98.258, 1998
25.
K.M. Kam. Laboratory issues in the context of MDR TB. Malaysia, 2007.
26.
WHO. Policy Framework for Implementing New Tuberculosis Diagnostics. March 2010.
http://www.who.int/
27.
R.Brown. Trek diagnostic systems. The new energy in microbiology.
28.
http://www.publicbookshelf.com
29.
Hyeon-Seop Byeon1, Mi Jung Ji, Shin-Seok Kang, Sang Woo Kim, Seung-Cheol Kim, Song-Yong Park, Geehyuk Kim, Jiro Kim, Jang-Eun Cho, Bok Kyung Ku, Jae-Myung Kim, Bo-Young Jeon. Performance of the SD Bioline TB Ag MPT64 Rapid test for quick confirmation of Mycobacterium bovis isolates from animals.JVet Sci 2015, 16(1), 31-35.
30.
Mi Young Park, Young Jin Kim, Sang Hyun Hwang, Hyoung Hoi Kim, Eun Yup Lee, Seok Hoon Jeong, Chulhun L. Chang. Evaluation of an Immunochromatographic Assay
Kit for Rapid Identification of Mycobacterium tuberculosis Complex in Clinical Isolates. J Clin Microbiol, Feb. 2009, Vol. 47, No. 2: 481-484.
31.
Dominguez J, EC Boetger, D Cirillo, F Cobelens, KD Eisenach, S Gagneaux, D Hilleman, R Horsburgh, B Molina-Moya, S Nieman, E Tortoli, A Whitelaw, C Lange. Clinical
implications
of
molecular
drug
resistance
testing
for
Mycobacterium tuberculosis: a TBNET/RESIST TB consensus statement. Int J Tuberc Lung Dis 20(1):24-42.
32.
Guidelines
for
surveillance
of
drug
resistance
in
tuberculosis
-
4th
ed. WHO/HTM/TB/2009.422
32a. M. LIGOZZI, E. PELOSI and R. FONTANA. Development of a rapid method for quantitative evaluation of Mycobacterium tuberculosis growth based on competitive polymerase chain reaction-technical note. J. Med. Microbiol. - Vol. 47 (1998), 933-936
33.
World Health Organization. Policy statement. Molecular line probe assay for rapid screening of patients at risk of multidrug-resistant (MDR) TB. Geneva, 2008.
33a.
WHO
treatment
guidelines
for
drug
resistant
tuberculosis-2016
update, WHO/HTM/TB/2016.04.
34.
Marinus Barnard, Linda Parsons, Paolo Miotto, Daniella Cirillo, Knut Feldmann, Cristina Gutierrez, Akos Somoskovi. Molecular Detection of Drug-Resistant Tuberculosis By Line Probe Assay. Laboratory Manual for Resource-Limited Settings. FIND, 2012.
www.finddiagnostics.org
35.
IFU-3174-01/02.2015. GenoType MTBDRsl.
www.hainlifescience.com
36.
Procedură dezvoltată de FIND pentru adoptarea și folosirea în laboratoarele TB. Xpert MTB-Rif TB 06-03 V1.0.doc
37.
New technologies for tuberculosis control. A framework for their adoption, introduction and implementation. WHO/HTM/STB/2007.40
ANEXA V PLANUL CENTRALIZAT AL NECESARULUI DE ECHIPAMENTE ȘI
CONSUMABILE PENTRU REȚEAUA LABORATOARELOR TB 2017
AUTORI:
Daniela HOMORODEAN , medic primar microbiologie, doctor în științe medicale, coordonator al rețelei naționale a laboratoarelor de micobacteriologie, șef Laboratorul Național de Referință Cluj Napoca, Spitalul Clinic de Pneumoftiziologie Leon Daniello Cluj Napoca.
Andreea MELINDA JODAL , medic primar medicină de laborator, Laboratorul Național de Referință Cluj Napoca, Spitalul Clinic de Pneumoftiziologie Leon Daniello Cluj Napoca.
Abrevieri
Lab TB: laborator de micobacteriologie LNR: Laborator Național de Referință LRR: Laborator Regional de Referință MS: Ministerul Sănătății
OMS: Organizația Mondială a Sănătății
PNPSCT: Programul Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberculozei Rif sau RMP: Rifampicină
Structura rețelei de laboratoare pe nivele de competență și responsabilități
Structura rețelei este prezentată în Ghidul metodologic de implementare a Programului național de prevenire, supraveghere și control al tuberculozei, așa cum a funcționat în anul 2014 și 2015 1
, cu 105 laboratoare.
Pentru o cât mai bună organizare a activităților la nivelul rețelei, în vederea obținerii rezultatelor de calitate, în acord cu prevederile din Strategia Națională de Control al Tuberculozei în România 2015-2020 2 , până în anul 2020 rețeaua de laboratoare va trebui să fie constituită din 2 laboratoare Naționale de Referință, 8 laboratoare Regionale de Referință și 30-35 laboratoare de nivel II (Fig 1), adică un total de 40-45 laboratoare.
30/35
Nivel II
8 LRR
2LNR
Fig. 1. Structura rețelei naționale a laboratoarelor de micobacteriologie în anul 2020
Nivel II: laboratoare de nivel II, așa cum sunt ele definite în Ghidul metodologic al PNPSCT
Dotarea cu aparate, instrumentar în funcție de nivelul laboratorului
Datorită schimbării responsabilităților unora dintre laboratoare și a faptului că o parte dintre echipamentele/aparatele disponibile în acest moment nu întrunesc caracteristicile prevăzute în standardele
internaționale
în
privința
performanțelor
tehnice
sau
a
cerințelor
de biosiguranță 3,4 , este necesar ca la procurarea echipamentelor să fie respectate câteva cerințe minimale, prezentate în lucrarea de față.
În necesarul de dotare a laboratoarelor cu echipamente, mobilier și materiale de folosință îndelungată pe nivele de competență a lor, se ține seama de recomandările Strategiei Naționale 2 , care au fost formulate în acord cu recomandările experților Organizației Mondiale a Sănătății, dar și de Ghidul de implementare a PNPSCT 1 , prezentate (în ordine alfabetică) în tabelele I și II.
Tabel I. Dotarea cu echipament în funcție de nivelul laboratorului
1,2,6,7
Denumire
Laborator Nivel
II
LRR
LNR
Autoclav vertical pentru bacteriologie, cu anexe
1-2
1-2
1-2
Balanță
1
1
1
Balanță pentru echilibrarea tuburilor pentru centrifugă
1
1
1
Bec Bunsen
1
1-2
2-3
Cabinet de protecție microbiologică clasa II
1
1
2
Centrifugă
1
2
2
Distilator pentru apă
1
1
1
Etuvă
1-2
1-2
1-2
Frigidere cu capacitate 140-240 litri
2-3
4-6
5-6
Incubator 36,5-37 o
C,
1
1
1
Lampă UV
2-3
3-4
3-4
Microscop binocular (obiective plan acromate)
1-2
1-2
2-3
Microscop UV (obiective plan acromate)
*
1-2
1-3
PC (computer) cu imprimantă
da
da
da
pHmetru
1
1
1
Sistem de cultivare în mediul lichid
da
da
da
Sistem genetic tip Line Probe Assay (GenoType)
da
da
Sistem genetic pentru metode de epidemiologie moleculară
-
-
da
Uscător pentru lame cu termostat, temperatura 65-75 C, pentru curent alternativ
1
1-3
1-3
GeneXpert (chit MTB/Rif)
da
da
da
* În laboratoarele în care se efectuează mai mult de 35 - 50 frotiuri zilnic; da - cantitate în funcție de volumul de lucru
Tabel II. Materiale de laborator și mobilier în funcție de nivelul laboratorului 1,2,6,7
Denumire
Laborator Nivel
II
LRR
LNR
Ceas semnalizator cu cadran gradat în minute până la 60 min.
3
3
4
Cilindri gradați de diferite capacități
da
da
da
Cutii cu capac pentru lame
da
da
da
Dispozitiv de pipetare cu cremalieră (10 ml)
3
3-4
4-5
Dulap pentru reactivi și sticlărie
da
da
da
Lupă 6x, 8x
1
1
1-2
Mese de laborator
da
da
da
Pipetă automată
da
da
da
Recipiente pentru colectarea materialului infecțios
da
da
da
Scaune rotative, cu înălțime reglabilă
da
da
da
Stativ pentru uscat lame
da
da
da
Sticlărie de laborator
da
da
da
Suporturi pentru incubarea înclinată a tuburilor de cultură
5-10
5-15
10-15
Suporturi pentru incubarea verticală a tuburilor de cultură
5-10
20-30
25-50
Suport pentru colorare
1
1
1
Etapele procesului de achiziție
Indiferent dacă achiziția de echipamente și materiale de laborator se face la nivel local sau centralizat, trebuie respectată legislația în vigoare referitoare la acest domeniu de activitate, cu parcurgerea etapelor următoare:
8,9,10,12
Întocmirea listei
cu echipamente sau/ și materiale necesare, cu stabilirea cantităților necesare și estimarea costurilor.
Elaborarea documentației
cu specificațiile tehnice ale produselor de către grupul de experții de laborator desemnați pentru această activitate.
Selectarea
din ofertele prezentate pentru ca produsele achiziționate să realizeze condițiile de eligibilitate, să corespundă cerințelor tehnice formulate, deci scopului pentru care se achiziționează.
Procurarea
propriu-zisă
și distribuirea
(dacă achiziția este centralizată), cu finalizarea contractelor de atribuire.
Supravegherea folosirii
bunurilor achiziționate, inclusiv instruirea personalului pentru folosirea corectă, activitățile de service și garanție (dacă este vorba de echipamente).
LNR trebuie să stabilească standardele, să ofere servicii pentru asigurarea calității, să stabilească sistemul de evaluare a calității și performanțelor echipamentelor și materialelor și a modului de raportare pentru aceste activități
5 .
Caracteristicile echipamentelor
Toate aparatele folosite în laboratoarele rețelei naționale trebuie să aibă caracteristici care să permită obținerea rezultatelor așteptate, care să poată susține rețeaua clinică a PNPSCT.
Prezentăm în continuare, în ordine alfabetică, echipamentele de laborator cu caracteristicile lor.
1.
Aparat de cântărire (balanJă)
Utilizare : cântărirea reactivilor necesari pentru prepararea soluțiilor necesare în laboratorul de micobacteriologie (lab TB).
Specificații tehnice 5
Cântar electronic cu capacitate de măsurare a greutăților între 0,02 g și 250-300 g. Sensibilitate 1 mg.
Timpul necesar stabilizării :S5 secunde.
Carcasă din material rezistent la acțiunea substanțelor chimice și a soluțiilor de curățare. Talerul din oțel inoxidabil, cu diametru de 110-120 mm.
Picioare de susținere cu înălțimea reglabilă.
Afișaj și tastatură rezistentă la apă, acoperită cu membrană flexibilă. Afișaj iluminat, cu mărimea cifrelor de cel puțin 15 mm.
Meniu de operare ușor de utilizat, în limba română, sau engleză. Capacitate de calibrare internă automată a măsurării.
Electricitate 11-14 :
Curent alternativ de 220 V, 50 Hz. Sistem de conectare la rețeaua de curent.
Conform cu standardele de siguranță electrică.
Clasa de protecție (în conformitate cu EN 60529), fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Lista cu standardele pentru cerințele de calitate și de siguranță referitoare la produs.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni de instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Certificat de garanție al calibrării aparatului la producător. Listă cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii
Set de greutăți etalonate pentru calibrarea aparatului (1 g și 5 g). Husă de protecție anti-praf.
Lingură de măsurare de 90 mm din oțel inoxidabil.
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare). Garanție: 5 ani.
Notă pentru utilizator: Trebuie plasată pe suprafață antistatică, în cameră cu temperatură și umiditate relativă constante ( 20-25 0
C, respectiv peste 65%).
2.
Autoclav vertical
Utilizare:
decontaminarea deșeurilor infecțioase, sterilizarea soluțiilor și materialelor.
Specificații tehnice 5,15
Construcție, cu pereți simpli, alcătuită dintr-o cameră,
Capac din metal rezistent, cu garnitură care să asigure închiderea etanșă, și șuruburi confecționate din material rezistent la coroziune și presiune.
Vasul de presiune conform cu cerințele standardelor internaționale. Capacitate de 2 70-90 litri.
Dispozitivul de încălzire, generatorul de aburi montat orizontal, de preferat separat de restul interiorului printr-un volum minim de apă de 4-7 litri.
Deplasare progresivă în sus a aerului din interior. Alimentare automată de la sursă de apă demineralizată.
Pompă integrată pentru egalizarea variațiilor de presiune la liniile externe de alimentare. Funcție automată de control al nivelului de apă înainte, în timpul și după terminarea ciclului de sterilizare.
Întrerupător în caz de nivel insuficient de apă.
Posibilitate de blocaj rapid al capacului de siguranță, cu garnitură circulară, cu rezistență de durată la căldură și presiune.
Comutator pentru oprirea ciclului de sterilizare dacă sesizează capac neînchis etanș.
Sistem de control care să nu permită deschiderea capacului înainte de depresurizarea incintei. Limitator pentru protecție de supraîncălzire sau suprapresiune.
Presiunea maximă admisă: 2.5 bar. Temperatura maximă de utilizare: 134 °C Alarmă acustică, cu afișarea disfuncționalității
În cazul eșuării totale a controlului electric, componentele siguranței mecanice trebuie să rămână intacte..
Contor timp de sterilizare: 1- 120 minute.
Posibilitate de identificare a presiunii din interior în lipsa sursei de curent electric (în caz de întreruperea curentului).
Sistem de control operat prin microcalculator, montat astfel încât să fie protejat de căldură și aburi.
Afișaj LCD al tuturor parametrilor sterilizării:
-temperatura,
-presiunea aburilor
-timpul sterilizării
-etapa ciclului de sterilizare
-semnale de alarmă
Preselectare în limba romană pentru instrucțiuni sau în limba engleză. Tastatură protejată cu semnal acustic pentru confirmare.
Acces controlat la meniu prin parolă pentru prevenirea modificărilor de parametri de către persoane neautorizate. Fără blocarea tastaturii.
Preselectare de cel puțin 4 programe: două pentru lichide, unul pentru materiale solide și unul pentru deșeuri.
Capacitatea de încărcare: aproximativ 25 kg deșeuri sau materiale solide și 20 litri lichide.
Înregistrări
ale lotului sterilizat (număr lot sterilizare, data, temperatura/presiunea/faza sterilizării), cu imprimantă montată sau dispozitiv de stocare date (RS 232).
Filtrarea aerului evacuat, cu sterilizarea condensului pentru a nu răspândi patogeni infecțioși; cartuș cu filtru cu pori de 0.2 µm, ușor de înlocuit.
Supape de siguranță (suprapresiune).
Electricitate 11-14 :
curent alternativ de 220 V, 50 Hz. Putere consumată: 3kW
Siguranțe de rezervă
Întrerupător resetabil pentru protejare de supracurent. Conform cu normele de securitate electrică
Clasa de protecție: conform EN 60529. Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității ISO 9001.
Certificat de garanție al calibrării autoclavului la producător.
Certificate de model și conformitatea cu cerințele de calitate și de siguranță referitoare la produs.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Listă cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii
Carcasă din metal, cu strat protector anticoroziune sau din oțel inoxidabil.
Coșuri de sârmă din oțel inoxidabil în număr de 3, cu diametrul și înălțimea potrivită astfel încât două dintre ele să se potrivească în interiorul autoclavului la același ciclu de sterilizare.
Găleți cu capac din oțel inoxidabil în număr de 3, cu diametrul și înălțimea potrivită astfel încât două dintre ele să se potrivească în interiorul autoclavului la același ciclu de sterilizare. Dispozitiv de deschidere forțată a capacului în caz de pană de curent.
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare). Substanțe lubrifiante pentru părțile mobile și garnitură.
Siguranțe de rezervă.
Garnituri pentru etanșare.
Garanție:
pentru vasul de presiune și pentru supape cel puțin 5 ani, pentru componentele de încălzire cel puțin 3 ani.
Note pentru utilizator.
Pentru fiecare ciclu de sterilizare se verifică eficiența sterilizării cu Teste chimice indicatoare ale sterilizării, iar periodic, cu Teste biologice indicatoare ale sterilizării.
3.
Cabinet de protecJie microbiologică clasa I
Utilizare:
incintă pentru prelucrarea produselor biologice potențial infecțioase și mânuirea culturilor bacteriene. Protejează operatorul și mediul ambiant, dar
nu și produsul prelucrat .
Specificații tehnice 5,15-17
Cu filtru HEPA în onformitate cu cerințele EN 12469.
Înălțimea maximă de <2200 mm, cu o distanță de minim 400 mm până la tavan (pentru a permite măsurarea vitezei aerului deasupra filtrului de exhaustare, schimbarea filtrelor și lucrările de racordare a tubulaturii de exhaustare).
Suprafața internă de lucru variabilă în funcție de spațiul disponibil și de volumul de lucru al laboratorului:
-Dimensiuni orientative 1150 mm (lungime) x 630 mm (adâncime) x 650-750 mm (înălțime), care asigură suprafața minimă necesară pentru lucru.
-Dimensiuni: 1450 mm (lungime) x 630 mm (adâncime) x 650-750 mm (înălțime)
Suprafața internă netedă, confecționată din oțel inoxidabil, rezistent la acțiunea corozivă a dezinfectantelor și altor substanțe chimice.
Carcasa externă și șuruburile confecționate din oțel inoxidabil sau tablă zincată, rezistentă la căldură, cu grosime de minim 80 µm, rezistentă la abraziune și acțiunea corozivă a dezinfectantelor și a altor substanțe chimice.
Deschiderea frontală prevăzută cu geam glisant vertical, securizat, confecționat din material rezistent la aerosoli, transparent, de grosime >6,7 mm. Geamul confecționat din material acrilic nu este acceptat.
Deschiderea frontală de 2170 mm măsurată de la suprafața de lucru până la partea de jos a geamului.
Deschiderea maximă a geamului glisant de 500 mm.
Posibilitate de închidere etanșă a geamului glisant în cursul decontaminării filtrelor. Nivelul de zgomot :S 60 dbA.
Două prize interioare pentru curent alternativ de 220 V, 50Hz, diferite de cea necesară pentru racordarea la electricitate.
Sursă de lumină caldă, fără pâlpâire, de >1000 lux.
Afișaj electronic pe panoul frontal, cu contorizarea indicatorilor.
Control electronic al ventilației.
Debitmetru pentru măsurarea vitezei fluxului de aer la intrare. Contorizarea funcționării în ore.
Sistemul de filtre: cu sistem de prefiltru accesibil, ușor de schimbat.
Filtre HEPA în cadran metalic pentru exhaustare, cel puțin clasa H14, conform standardului EN 1822.
Viteza fluxului de aer 20,38 m/s.
Volumul de aer evacuat/ volumul de aer din interior: 300-600 m 3 /h. Sistemul de ventilație neinfluențat de mici fluctuații de tensiune.
Sistem de alarmă (vizuală și acustică) în caz de avarie a sistemului de evacuare. Posibilitate de oprire a semnalelor de alarmă în timpul activităților de curățare și întreținere.
Electricitate 11-14 :
Curent alternativ de 220 V, 50 Hz. Sistem de conectare la rețeaua electrică.
Putere consumată: de 600W- 800W, în funcție de capacitate. Prizele interioare cu consum energetic de aproximativ 1000W.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Specificații tehnice opționale:
Prevăzut cu lampă UV (UV-C), de 30 W (lungime de undă 253.7 nm), cu posibilitate de contorizare a funcționării în ore. Funcționare posibilă doar când sursa de lumină este închisă.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sistemul de management al calității conform ISO 9001.
Producătorul trebuie să verifice individual fiecare cabinet de protecție în parte și să livreze copia testelor de verificare. Testele utilizate la calibrare trebuie să se refere la:
-viteza fluxului de aer la intrare
-integritatea și eficiența filtrului
-protecția operatorului conform cerințelor standardelor EN 12469.
Manual de operare, mentenanță și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Lista cu accesoriile si piesele de schimb furnizate.
Accesorii incluse
Suport cu picioare, cu înălțime ajustabilă la 78 ± 2 cm (telescopic).
Scaun de laborator, cu înălțime ajustabilă la 400-490 mm, spătar cu unghiul ajustabil, fără suport pentru brațe, picior cu 5 roți, cu toate părțile metalice cromate, ușor de dezinfectat cu compuși conținând alcool.
Conducta de evacuare a aerului din cabinetul de protecție să aibă construcție solidă și să se potrivească la acesta.
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare).
Un set sau două de filtre HEPA și 3-5 prefiltre, cu accesorii necesare pentru schimbarea filtrelor.
Testele de verificare la instalare trebuie efectuate de persoană autorizată (penetrarea de aerosoli în aerul evacuat, măsurătorile vitezei fluxului de aer) și înregistrate pentru întreținere.
Garanție: 3 ani începând de la data certificării la fața locului, cu excepția lămpii UV și a filtrelor.
Note pentru utilizator.
Nu se folosește în cazul manipulării substanțelor chimice cu emitere de vapori toxici și radionuclidelor.
Este de preferat legarea la un UPS de capacitate mică în caz de întreruperi frecvente de curent. Înainte de dotarea cu cabinete de protecție microbiologică trebuie verificate cerințele inginerești și facilitățile laboratorului (spațiul disponibil, amplasarea laboratorului).
Re-certificarea periodică a cabinetelor se face de către firme autorizate.
4.
Cabinet de protecJie microbiologică clasa II
Utilizare : pentru protecția personalului, a mediului și a materialului infecțios prelucrat.
Specificații tehnice 5,15-17
Sistem de filtre HEPA conforme cu cerințele EN 12469.
Debitul fluxului de aer în interiorul cabinetului de >0,40 m/s (conform EN 12469:2000). Înălțimea maximă de <2200 mm, cu o distanță de minim 400 mm până la tavan (pentru a permite măsurarea vitezei aerului deasupra filtrului de exhaustare, schimbarea filtrelor și lucrările de racordare a tubulaturii de evacuare).
Suprafața internă de lucru varianbilă în funcție de spațiul disponibil și de volumul de lucru al laboratorului:
-Dimensiuni: 1150 mm (lungime) x 630 mm (adâncime) x 650-750 mm (înălțime), care asigură suprafața minimă necesară pentru lucru.
-Dimensiuni: 1450 mm (lungime) x 630 mm (adâncime)x 650-750 mm (înălțime)
-Dimensiuni: 1700 mm (lungime) x 630 mm (adâncime)x 650-750 mm (înălțime)
Suprafața internă netedă, confecționată din oțel inoxidabil, rezistent la acțiunea corozivă a dezinfectantelor și a altor substanțe chimice, detașabilă cu ușurință pentru curățare. Poate fi compusă din mai multe segmente, de preferat dintr-o singură bucată, cu grilaj pentru fluxul de aer vertical.
Carcasa externă și șuruburile confecționate din oțel inoxidabil sau tablă zincată, rezistentă la căldură, cu grosime de minim 80 µm, rezistentă la abraziune și acțiunea corozivă a dezinfectantelor și a altor substanțe chimice.
Deschiderea frontală prevăzută cu geam glisant vertical, securizat, confecționat din material rezistent la aerosoli, transparent, cu reflexie minimă, de grosime >6,7 mm, ce permite transmitere optică, dar absoarbe lumina UV.
Deschiderea frontală de 2170 mm măsurată de la suprafața de lucru până la geam. Deschiderea maximă a geamului glisant de 500 mm.
Posibilitate de închidere etanșă a geamului glisant în cursul decontaminării filtrelor cu vapori. Nivelul de zgomot :S 60 dbA.
Două prize interioare pentru curent alternativ de 220 V, 50Hz, diferite de cea necesară pentru racordarea la electricitate.
Sursă de lumină caldă, fără pâlpâire, de >1000 lux.
Afișaj electronic pe panoul frontal, de contorizare a indicatorilor. Control electronic al ventilației.
Debitmetru pentru măsurarea vitezei fluxului de aer (la intrare și cel descendent).
Contorizarea funcționării în ore.
Sistemul de filtre: cu sistem de prefiltru accesibil, ușor de schimbat.
Filtre HEPA în cadran metalic pentru evacuare, clasa cel puțin H14, conform standardului EN 1822.
Viteza fluxului de aer vertical:
- Viteza fluxului de aer la intrare să fie de cel puțin 0.4 m/s (standard EN 12469) Sistemul de ventilație neinfluențat de mici fluctuații de tensiune.
Sistem de alarmă (vizuală și acustică) în caz de avarie a sistemului de evacuare.
Posibilitate de oprire a semnalelor de alarmă în timpul activităților de curățare și mentenanță.
Electricitate 11-14 :
Curent alternativ de 220 V, 50 Hz.
Accesorii pentru conectarea la rețeaua de curent.
Putere consumată: de 600W- 800W, respectiv 1000W, în funcție de capacitate. Prizele interioare cu consum energetic de aproximativ 1000W.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Prevăzut cu lampă UV (UV-C), de 30 W (lungime de undă 253.7 nm), cu posibilitatea de contorizare a funcționării în ore. Funcționare posibilă doar când lumina este închisă.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Producătorul trebuie să verifice individual fiecare cabinet de protecție în parte și să livreze copia testelor de verificare. Testele utilizate la calibrare trebuie să fie conform cerințelor standardelor EN 12469 sau NSF 49 și trebuie să conțină cel puțin informațiile referitoare la:
-viteza fluxului de aer la intrare
-viteza fluxului de aer vertical
-verificarea integrității și eficienței filtrelor.
Manual de operare, mentenanță și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Lista cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii incluse:
Suport cu picioare, cu înălțime ajustabilă la 78 ± 2 cm (telescopic), pe roți.
Scaun de laborator, cu înălțime ajustabilă la 400-490 mm, spătar cu unghiul ajustabil, fără suport pentru brațe, picior cu 5 roți, cu toate părțile metalice cromate, ușor de dezinfectat cu compuși conținând alcool.
Conducta de evacuare a aerului din cabinetul de protecție de construcție solidă, să se potrivească la acesta, prevăzută cu o clapetă motorizată sau alt dispozitiv de reglare la nivelul ventilatorului extern.
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare).
Un set sau două de filtre HEPA și 3-5 prefiltre, cu accesorii necesare pentru schimbarea filtrelor.
Testele de verificare la instalare trebuie efectuate de o persoană autorizată (penetrarea de aerosoli, filtrarea aerului recirculat, filtrarea aerului exhaustat, măsurătorile vitezei fluxului de aer) și înregistrate pentru întreținere.
Garanție: 3 ani începând de la data certificării la fața locului, cu excepția lămpii UV și a filtrelor.
Note pentru utilizator.
Nu se folosește în cazul manipulării substanțelor chimice cu emitere de vapori toxici și radionuclidelor.
Este de preferat legarea la un UPS de capacitate mică în caz de întreruperi frecvente de curent. Înainte de dotarea cu cabinete de protecție microbiologică trebuie verificate cerințele inginerești și facilitățile laboratorului (spațiul disponibil, amplasarea laboratorului).
Re-certificarea periodică a cabinetelor se face de către firme autorizate.
5.
Centrifugă de laborator cu răcire
Utilizare : pentru concentrarea micobacteriilor în probele biologice prelucrate.
Specificații tehnice
5,18
Forța relativă de centrifugare 2500- 3000xg, la durata de centrifugare de 20 minute. Nivelul de zgomot la viteză maximă sub 60 dbA.
Pornire lină, accelerare și frânare în mai multe etape (1-9).
Capacitatea de răcire la 4-12°C la viteză maximă, cu menținerea temperaturii pe toată durata funcționării.
Rotor basculant cu cel puțin 4 brațe pentru cuve prevăzute cu capac transparent de protecție împotriva răspândirii aerosolilor infecțioși. Fiecare cuvă să poată fi încărcată cu 4 tuburi de lucru.
Capacitate de încărcare simultană a 16-32 tuburi.
Accesorii pentru adaptarea cuvelor la tuburi conice de 15 ml și 50 ml, cu lungimea de 12cm. Camera interioară confecționată din oțel inoxidabil.
Motor de inducție, fără perii.
Posibilitate de programare a forței relative (vitezei) și a duratei de centrifugare. Posibilitate de programare și memorare a 3- 5 programe diferite.
Afișaj LCD al tuturor parametrilor centrifugării, protejat de stropirea cu lichide. Protecție împotriva supraîncălzirii motorului și a carcasei centrifugii.
Capac cu închidere etanșă în timpul funcționării centrifugii. Oprire automată în caz de dezechilibrare.
Posibilitate de deschidere mecanică a capacului în caz de întrerupere a curentului electric.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ 220 V, 50 Hz.
Accesorii pentru racordarea la rețeaua electrică. Putere consumată: 1800W
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Certificat de garanție al calibrării centrifugii la producător.
Listă cu standardele pentru cerințele de calitate și de siguranță referitoare la produs.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Listă cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii:
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare). Piesă pentru deschiderea manuală a capacului în caz de blocare.
Substanțe lubrifiante pentru părțile mobile și garnitură. Siguranțe de rezervă.
Garanție 3 ani de la punerea în funcțiune.
6.
Congelator
Utilizare:
păstrarea culturilor bacteriene și reactivilor sensibili la temperatură.
Specificații tehnice 5 :
Clasa energetică A+.
Agent de răcire 100% fără freon
Model cu o singură ușă, stând pe picioare proprii, fără suport de susținere.
Capacitatea de încărcare: 500-1500 litri, în funcție de numărul probelor care trebuie păstrate. Interiorul din material plastic.
Sistem static de răcire.
Decongelarea manuală.
Intervalul de temperatură de la -20°C până la -80°C. Carcasa exterioară și ușa din oțel acoperit, de culoare albă. Posibilitate de fixare a ușii în dreapta sau stînga, cu lacăt. Garnitura de la ușă tratată anti-fungic.
Picioare reglabile pentru ajustarea înălțimii.
Sertare 4-6 bucăți, cel puțin 3 din ele închise cu ușiță.
Dispozitiv de măsurare a temperaturii interioare cu termometru cu fir. Semnal acustic al disfuncționalității.
Clasa de protecție climatică SN-T.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ de 220 V, AC, 50 Hz. Putere consumată: aproximativ 150W.
Accesorii pentru racordarea la rețeaua electrică.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Certificat de conformitate cu standardele pentru cerințele de calitate și de siguranță referitoare la produs (gazul folosit pentru răcire, clasa energetică și climatică).
Certificat de garanție al calibrării aparatului la producător.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Listă cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare). Garanție: 3 ani.
7.
Distilator apă
Utilizare:
îndepărtarea mineralelor din apa necesară la prepararea soluțiilor în laborator, deoarece calitatea soluțiilor, reactivilor și mediilor de cultură preparate în laborator depinde de calitatea apei utilizate.
Specificații tehnice:
Distilator montat pe perete, cu pereți dubli. Debitul minim de distilat: 0,8...1,2 l/ora;.
Debitul maxim al apei de racire (temperatura max.20°C): 22 l/ora.
Carcasa metalica de protectie din tablă de oțel rezistentă la rugină (galvanizată, cu rășini epoxidice).
Constructie integrala din sticla pe traseul de distilare. Rezervor cu capacitatea de până la 6 litri.
Bobina de răcire ușor accesibilă în cazul în care este necesară schimbarea.
Reglator al nivelului de apă prin posibilitatea de deconectare când rezervorul este plin și de pornire când nivelul apei distilate este în scădere.
Posibilitate de oprire a distilării în cazul detectării unor impurități (indicator alarmă luminoasă sau sonoră pentru oprire).
Furtun prevăzut cu robinet ușor accesibil pentru drenaj. Componenta de încălzire din oțel inoxidabil.
Sistem de filtrare și de control al scurgerii integrat. Oprire automată în caz de probleme în alimentarea cu apă.
Compoziția apei distilate corespunzătoare cerințelor, fără pirogeni și cu o conductibilitate de
:S2.3 µS/cm la 20 °C. Greutate distilator: max.7 kg
Dimensiuni de gabarit (HxlxL): 470-500x250-300x170-200 mm; Capacitatea utila a evaporatorului: 0,8 l
Furtunul de alimentare să fie prevăzut cu filtru de apa din PE pentru retinerea impuritatilor mecanice.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ de 220 V, AC, 50 Hz. Accesorii pentru conectarea la rețeaua de curent. Putere consumată: 700- 750 W.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Lista cu standardele pentru cerințele de calitate și de siguranță referitoare la produs.
Manual de operare, mentenanță și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Lista cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii incluse în ofertă:
Componenta de măsurare a conductibilității electrice.
Furtun flexibil, rezistent la presiune (până la 10 bar) și cleme pentru instalare. Rezervoare pentru apa distilată obținută.
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare). Garanție: 12 luni.
8.
Etuvă
Utilizare: uscarea și sterilizarea sticlăriei de laborator după spălare, respectiv înainte de reutilizare.
Specificații tehnice:
Interiorul confecționat din oțel inoxidabil ușor de curățat.
Carcasa din oțel inoxidabil sau cel puțin din metal cu strat protector, rezistent la coroziune (tablă galvanizată, tratată termic).
Capacitatea de încărcare: 200- 250 litri. Ușă dublă, cu blocare separată.
Interval de temperatură: reglabil între 40°C și 200°C. Ventilare forțată a aerului.
Ventilatorul pentru aer cu viteza reglabilă, nivel de zgomot <58 dB la viteza maximă. Clapetă de aer ajustabilă pentru aportul de aer proaspăt preîncălzit.
Orificiu de ventilare cu clapetă restrictivă. Alarmă acustică, cu afișarea disfuncționalității.
Funcție de oprire a ciclului de sterilizare la depășirea cu 10°C a temperaturii setate. Limitator mecanic de temperatură la valoarea ce depășește cu 10°C cea maximă (200°C). Control al temperaturii ajustabil electronic.
Temporizator programabil integrat.
Programe memorizate în cazul întreruperii curentului electric. Afișaj al temperaturii.
Semnale ale funcțiilor în modul de operare.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ de 220 V, AC, 50 Hz. Accesorii pentru conectarea la rețeaua de curent.
Putere consumată: 2400W în timpul încălzirii și cu adaptarea consumului în funcție de temperatura presetată.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică. Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Certificat de garanție al calibrării la producător.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Listă cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii:
Un set de rafturi perforate, din oțel inoxidabil, fixabile în interiorul etuvei (dacă sunt mai puțin de două rafturi în etuvă).
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare). Siguranțe de rezervă dacă sunt folosite pentru reglări.
Garanție:
5 ani pentru bobinele de încălzire și 3 ani pentru sistemul de reglaj.
9.
Frigider cu compartiment de congelator
Utilizare:
ca frigider pentru soluții pe bază de apă, cu capacitate adaptată necesităților laboratorului, iar congelatorul pentru păstrarea soluțiilor congelate, reactivi care necesită congelare.
Specificații tehnice:
Clasa energetică A.
Sistem de răcire 100% fără freon Capacitatea de încărcare: 2 300±20 litri
Compartimentul de frigider reglabil pentru 4-8°C.
Compartimentul de congelator reglat pentru cel puțin -22°C, cu un volum de 50±10 litri. Dispozitive de măsurare a temperaturilor pentru toate compartimentele.
Funcție automată a decongelării. Rafturi din sticlă securizată, 4 bucăți. Reglarea umidității.
Posibilitate de fixare a ușii în dreapta sau stânga. Funcționabil la temperatură ambientală de până la 40°C. Picioare reglabile pentru ajustarea înălțimii.
Garnitura de la ușă tratată anti-fungic.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ de 220 V, AC, 50 Hz. Accesorii pentru conectarea la rețeaua de curent. Putere consumată: aproximativ 150W.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Certificat de conformitate cu standardele pentru cerințele de calitate și de siguranță referitoare la produs (gazul folosit pentru răcire, clasa energetică și climatică).
Certificat de garanție al calibrării aparatului la producător.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținerea de rutină și periodică.
Listă cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii:
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare).
Garanție : 3 ani.
10.
Incubator termostat pentru culturi bacteriene
Utilizare : pentru realizarea condițiilor termice necesare creșterii culturilor micobacteriene.
Specificații tehnice:
Interiorul confecționat din material ușor de curățat, rezistent la acțiunea substanțelor dezinfectante, preferabil oțel-inox.
Carcasă rezistentă la coroziune și căldură, din tablă de metal (oțel inoxidabil sau zinc galvanizat).
Prevăzut cu ușă dublă, cu securizare.
Cu rafturi (preferabil perforate) din material ușor de curățat, rezistent la căldură și acțiunea corozivă a dezinfectantelor utilizate în laborator.
Capacitate de 6000- 8000 litri (6-8 m 3 ) (care asigură incubarea pentru aproximativ 8000, respectiv 12 000 culturi /an). (1000 litri corespund la 1m 3 ). Capacitatea solicitată trebuie să țină seama de volumul de lucru al laboratorului.
Rezistența componentelor la temperaturi de până la 70°C, cu temperatura reglabilă la 36,5 +/- 1°C, necesară pentru creșterea culturilor micobacteriene.
Variația de <1°C a temperaturii asigurate la 37°C. Interval de reglare a temperaturii: între 30°C și 40°C.
Sistem de protecție împotriva supraîncălzirii, cu decuplare la 38°C, sau cu limitator de temperatură electronic.
Asigurarea uniformității temperaturii în incintă, cu deviație de :S0.2 °C. Senzori de temperatură de clasa A, 2 bucăți.
Afișaj electronic al temperaturii măsurate. Sistem de alarmă în cazul disfuncționalităților. Semnale funcționale în timpul operațional.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ de 220 V, AC, 50 Hz. Accesorii pentru conectarea la rețeaua de curent. Putere consumată: aproximativ: 2000W
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Opțional:
Capacitate variabilă în funcție de volumul de lucru al laboratorului (a se vedea mai sus). Sistem de înregistrare a datelor (temperaturi, erori înregistrate), eventual interfață cu software pentru stocarea datelor.
Documente însoțitoare
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Certificat de garanție al calibrării incubatorului la 37°C de la producător.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Lista cu accesoriile si piesele de schimb furnizate.
Accesorii:
Unul sau două rafturi perforate de rezervă, din oțel inoxidabil, fixabile în incubator. Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare).
Siguranțe de rezervă.
Garanție : 2 ani.
11.
Lampa UV bactericidă
Utilizare:
inactivarea și omorârea microorganismelor de pe suprafețe și din aer după activitățile generatoare de aerosoli infecțioși. Efectul bactericid este produs de radiații ultraviolete cu lungimea de undă de 254 nm (UV-C). Acțiune directă (în absența omului) sau indirectă, ecranată, fără emitere de ozon (în prezența omului).
Specificații tehnice 5-7,19
:
Carcasă exterioară din oțel acoperit, de culoare albă. Suport cu posibilitatea ajustării înălțimii, pe roți.
Accesorii: tuburi UV cu putere 15-30 W.
Nivelul germicid al radiației de minimum 10 UV Watts pentru o suprafață de 218.6 m 2 .
La funcționarea indirectă, în prezența omului: limita maximă admisă de radiație la nivelul ochilor să fie de 0,4µW/cm 2 , iar înălțimea de montare a tuburilor trebuie să fie mai sus de 2,44 metri.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ de 220 V, AC, 50 Hz. Accesorii pentru conectarea la rețeaua de curent. Putere consumată: 15- 30 W pentru un tub.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Certificat de conformitate cu standardele pentru cerințele de calitate și de siguranță referitoare la produs.
Certificat de garanție al calibrării radiației la producător.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținerea de rutină și periodică.
Listă cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
12.
Microscop optic binocular
Utilizare : examinarea frotiurilor colorate Ziehl Neelsen pentru evidențierea BAAR.
Specificații tehnice:
Corpul microscopului cu baza stabilă, acoperit cu material rezistent la acțiunea corozivă a reactivilor, solvenților și dezinfectantelor folosite, cu plasarea optimă a tuturor componentelor necesare pentru focalizarea imaginii.
Sistemul optic binocular, cu distanța parafocală de 45mm și lungimea tuburilor de 180±20 mm.
Toate elementele sistemului optic prevăzute cu strat anti-reflex și tratate anti-fungic cu valabilitate de cel puțin un an.
Oculare adăpostite în tuburi cu înălțimea ajustabilă și distanța interpupilară reglabilă între 50- 75 mm, cu unghiul pentru vizualizare de 30°, acromatice cu mărire de 10x, acoperind 18- 20 câmpuri microscopice; cu ajustarea dioptriilor la cel puțin un ocular.
Obiective plan-acromate în număr de 3, în sistem cu arcuri, identificate pe corpul lor:
- 10x, NA: 0.25
- 40x, NA: 0.65
- 100x, NA: 1.25 (examinarea cu imersie)
Obiectivele neatașate microscopului trebuie livrate în recipiente transparente, rezistente la spargere.
Port-obiectiv rotativ pentru 3-4 obiective cu mărire diferită, pozițiile cu obiectiv neatașat acoperite cu un opercul (din metal sau material plastic). Schimbarea ușoară și precisă a poziției obiectivelor, astfel încât în cazul reîntoarcerii la același obiectiv, imaginea din centrul câmpului microscopic să nu se deplaseze în nici o direcție mai mult de 0,02 mm.
Masa microscopului cu suprafața netedă, orizontală, latura de 140 ± 5 mm, prevăzută cu mecanism port-lamă cu arc pentru fixarea sigură și deplasarea exactă a lamelor pe o distanță de cel puțin 75 mm x 30 mm.
Condensator reglabil tip Abbe 0.9/1.25 prevăzut cu iris-diafragmă.
Sursa de lumină: - bec tip halogen de 20-30W și 6V sau LED 20
de 3W și 6V cu lumină albă, într-un locaș ușor accesibil în caz de înlocuire, cu protecție la supratensiune. Intensitatea luminii ajustabilă. Carcasa proiectată pentru prevenirea dispersiei luminii și a supraîncălzirii corpului microscopului.
Macroviza și microviza de precizie, cu sensibilitatea de cel puțin 500 µm la învârtirea totală a microvizei și de cel puțin 15 mm pentru macroviză, poziționate în ambele părți ale microscopului și cu dispozitiv de oprire.
Toate elementele din metal să fie rezistente la acțiunea corozivă a acizilor și coloranților. Prevăzut cu sistem de conectare la sursa de curent, inclusiv acumulator de 6 V și adaptoare pentru prize, dacă este cazul.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ de 220 V, AC, 50 Hz.
Accesorii pentru conectarea la rețeaua de curent și acumulator de 6V incluse. Putere consumată: aproximativ 30 W.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Certificarea părților optice și mecanice relevante ale microscopului.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținerea de rutină și periodică.
Lista cu accesoriile si piesele de schimb furnizate.
Accesorii:
Husă de protecție din material antistatic.
Perie antistatică pentru curățarea microscopului. Cel puțin un filtru de culoare albastră.
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare). Siguranțe de rezervă pentru sursa de lumină.
Becuri halogen de rezervă, mai puțin în cazul sursei de iluminare cu LED.
Garanție : cel puțin un an de la data instalării.
13.
Microscop binocular LED-UV pentru epifluorescenJă
Utilizare:
examinarea frotiurilor colorate cu auramină sau auramină-rhodamină pentru evidențierea BAAR.
Specificații tehnice 20,21
:
Corpul microscopului cu baza stabilă, acoperit cu material rezistent la acțiunea corozivă a reactivilor, solvenților și dezinfectantelor folosite, cu plasarea optimă a tuturor componentelor necesare pentru focalizarea imaginii.
Sistemul optic binocular, cu distanța parafocală de 45mm și lungimea tuburilor de 180±20 mm.
Toate elementele sistemului optic prevăzute cu strat anti-reflex și tratate anti-fungic cu valabilitate de cel puțin un an.
Oculare adăpostite în tuburi cu înălțimea ajustabilă și distanța interpupilară reglabilă între 50- 75 mm, cu unghiul pentru vizualizare de 30°, acromatice cu mărire de 10x, acoperind 18-20 câmpuri microscopice; cu ajustarea dioptriilor la unul din oculare.
Obiective plan-acromate în număr de 3, în sistem cu arcuri, identificate pe corpul lor:
- 20x, NA: 0.40
- 40x, NA: 0.65
- 50-60x, NA: 0.80 (îl poate înlocui pe cel de 40x)
Obiectivele neatașate microscopului trebuie livrate în recipiente transparente, rezistente la spargere.
Port-obiectiv rotativ pentru 3-4 obiective cu mărire diferită, pozițiile cu obiectiv neatașat acoperite cu un opercul (din metal sau plastic). Schimbarea ușoară și precisă a poziției obiectivelor, astfel încât în cazul reîntoarcerii la același obiectiv, imaginea din centrul câmpului microscopic să nu se deplaseze în nici o direcție mai mult de 0,02 mm.
Masa microscopului cu suprafața netedă, orizontală, latura de 140 ± 5 mm, prevăzută cu mecanism port-lamă cu arc pentru fixarea sigură și deplasarea exactă a lamelor pe o distanță de cel puțin 75 mm x 30 mm.
Condensator reglabil tip Abbe 0.9/1.25 prevăzut cu iris-diafragmă. Set de filtre de excitație și baraj.
Funcționare în fluorescență:
-LED cu lumină albastră cu lungime de undă de maxim 450 nm, încorporat pentru examinarea în lumină reflectată, cu acumulator.
-LED cu lumina albastră cu lungime de undă de maxim 450 nm atașat sistemului propriu de iluminare și filtru pentru 510 nm pentru examinarea în lumină transmisă.
Macroviza și microviza de precizie, cu sensibilitatea de cel puțin 500 µm la învârtirea totală a microvizei și de cel puțin 15 mm pentru macroviză, poziționate în ambele părți ale microscopului și cu dispozitiv de oprire.
Toate elementele din metal rezistente la acțiunea corozivă a acizilor și coloranților.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ de 220 V, AC, 50 Hz.
Alimentare electrică și accumulator de 6 V (folosit și ca UPS). Cabluri pentru conectarea la sursa de alimentare cu energie electrică.
Putere consumată: aproximativ 30 W.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Certificarea părților optice și mecanice relevante ale microscopului.
Manual de operare, mentenanță și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținerea de rutină și cea periodică.
Lista cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii:
Husă de protecție din material antistatic. Oculare prevăzute cu operculi de protecție. Perie antistatică pentru curățarea microscopului. Cel puțin un filtru de culoare albastră.
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare). Siguranțe de rezervă pentru sursa de lumină.
Garanție : cel puțin un an.
14.
pH metru
Utilizare : măsurarea pHului soluțiilor tampon sau diferitelor componente ale mediilor de cultură.
Specificații tehnice
Aparat de măsurare pH portabil, cu carcasă din material rezistent la apă (conform clasei de protecție 67).
Rezoluție: :S 0.01 unități pH.
Acuratețe de măsurare pH: ± 0.001 unități pH la 20 0 C.
Calibrare internă (de preferat ca funcție automată): cu cel puțin 3 tampoane standard (pH 4.0, pH 7.0 și pH 10.0).
Funcție automată de reamintire a calibrării interne, cu perioada ajustabilă între 1 și 999 zile. Capacitate de ajustare la temperatură, de preferat automată.
Afișaj electronic iluminat, multifuncțional, cu indicator al măsurătorii finale.
Carcasă de transport, compartimentat pentru componentele din sticlă cu electrodul de pH și senzorul de temperatură integrat, pentru brațul mobil al electrodului și pentru soluțiile tampon.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ de 220 V, 50 Hz. Sistem de conectare la rețeaua de curent.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Lista cu standardele pentru cerințele de calitate și de siguranță referitoare la produs.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținerea de rutină și periodică.
Certificat de garanție al calibrării aparatului la producător.
Lista cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii:
Husă de protecție anti-praf.
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare). Soluții tampon rezervă.
Garanție : 2 ani.
15.
Uscător pentru lame
Utilizare : pentru uscarea și fixarea frotiurilor înainte de colorare.
Specificații tehnice :
Rectangulară, cu suprafața plitei de 25-27cm x 40-42 cm. Înalțimea totală 8-15 cm.
Carcasa construită din material rezistent la coroziune.
Suprafața plitei confecționată din material rezistent la coroziune și variații de temperatură, de culoare meagră.
Reglaj digital al temperaturii, încălzire între 50-80 0 C, cu afișarea temperaturii realizate. Temperatura de lucru stabilă la valoarea programată, între 65-75 0 C.
Precizie de 0,5 0 C.
Buton de pornire/oprire, cu indicator luminos al funcționării.
Semnal sonor și decuplare automată la depășirea temperaturii programate. Greutate 2-5 kg
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Lista cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii:
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare).
Garanție:
2 ani.
Electricitate 11-14
:
Curent alternativ de 220 V, AC, 50 Hz. Accesorii pentru conectarea la rețeaua de curent. Putere consumată: 800-1000 W.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică. Fără interferențe cu undele radio.
16.
Vortex - Agitator
Utilizare : omogenizarea probelor în cabinetul de protecție microbiologică.
Specificații tehnice:
Carcasă robustă, din metal, acoperită cu strat rezistent la acțiunea substanțelor dezinfectante. Construcție plană.
Cu mișcări orbitale puternice. Viteza de rotație: 0-2500 rpm. Traiectorie de 24 mm.
Cu 4 picioare de cauciuc pentru prevenirea alunecării în timpul funcționării. Moduri de operare: funcție continuă sau prin atingere.
Vârf de aproximativ 20 mm. Suport rezistent la alunecare. Protecție supraîncălzire.
Variația factorilor de mediu: temperatura ambientală între 5-40°C și umiditatea relativă :S80%. Greutatea de 1,5- 3 kg.
Electricitate 11-14
Curent alternativ de 220 V, AC, 50 Hz. Accesorii pentru conectarea la rețeaua de curent. Putere consumată: 50-100W.
Să fie conform cu normele de protecție și securitate electrică Fără interferențe cu undele radio.
Documente însoțitoare:
Producătorul să dețină certificare pentru sitemul de management al calității conform ISO 9001.
Manual de operare, întreținere și service în limba română, cu instrucțiuni referitoare la instalare, curățare, întreținere de rutină și periodică.
Lista cu accesoriile și piesele de schimb furnizate.
Accesorii:
Piese de schimb pentru întreținere și curățare (număr specificat din fiecare). Siguranțe de rezervă.
Garanție:
2 ani.
Pentru toate echipamentele:
Ofertantul trebuie să asigure personal calificat pentru instalare și să comunice cumpărătorului cerințele preliminare dinainte de instalare.
Ofertantul trebuie să asigure instruirea personalului utilizator (referitor la folosirea corectă a aparatului și întreținerea lui).
Costurile de întreținere să fie garantate de furnizor pe perioada de garanție.
Furnizorul să asigure service pentru toate aparatele existente în țară, cu personal competent, infrastructură corespunzătoare și suficiente piese de schimb încât să poată răspunde eficient la toate solicitările și să fie capabil să repare sau să înlocuiască orice aparat defect în maxim14 zile.
Necesarul de materiale consumabile și substanțe chimice pentru examinare microscopică și o cultură pe mediul solid
Se poate calcula necesarul cantitativ de materiale și substanțe chimice pentru o examinare, cunoscând consumul pentru fiecare tip de analiză. Știind prețul de achiziție, se poate calcula și consumul valoric pentru o analiză. În tabele III și IV sunt prezentate consumurile cantitative pentru examenul microscopic, respectiv, pentru cultură 7,22,23
.
Tabel III. Necesarul de materiale consumabile și substanțe chimice pentru o examinare microscopică
Denumirea
Unit. măs.
consum/examinare
Acid clorhidric 37% p.a.
ml
0.15
Albastru de metilen
g
0.015
Alcool etilic 96
ml
5
Alcool medicinal
ml
0.01
Ambalaj de unică folosință pentru deșeuri infecțioase
buc
0.1
Ansă bacteriologică de unică folosință
buc
1
Container izoterm pentru transportul sputei
buc
0.0006
Creion grafit
buc
0.01
Cutii pentru lame (frotiuri)
buc
0.0014
Fenol
g
0.25
Formular solicitare
buc
1
Fuxină bazică
g
0.015
Halat examinare, unică folosință
buc
0.01
Hârtie de filtru-coale
buc
0.0008
Lamă port obiect
buc
1
Mănuși protecție
buc
0,02
Mască HEPA 3M FFP2
buc
0.02
Pâlnie sticlă diametru 80 mm
buc
0.001
Pipetă Pasteur (3 ml, sterilă)
buc
1
Pisetă (sticlă pentru spălare)
buc
0.001
Recoltor spută
buc
0.5
Registru de laborator
buc
0.0004
Saci autoclavabili
buc
0.01
Stative pentru lame, din aluminiu
buc
0.0001
Sticlă picurătoare albă 100 ml
buc
0.0001
Sticlă picurătoare brună 100 ml
buc
0.0002
Ulei imersie
ml
0.1
Xilen
ml
1
Tabel IV. Necesarul de materiale consumabile și substanțe chimice pentru o cultură pe mediul Lowenstein Jensen
Denumirea
Unit. măs.
consum/cultură
Acid clorhidric p.a.
ml
1
Albastru de bromtimol
g
0.02
Alcool etilic 96
ml
5
Amoniac sol 35 %
ml
0.05
Cabinet de protecție microbiologică clasa II (sau I)
buc
0.001
Ceas semnalizator
buc
0.002
Cilindru gradat
buc
0.0001
Creioane (Marker) permanente
buc
0.0013
Criotub steril (2 ml)
buc
0.003
Distilator apă
buc
0.00001
Dispozitiv de pipetare repetitivă pentru soluție HCl
buc
0.0016
Dispozitiv de pipetare repetitivă pentru soluție NaOH
buc
0.003
Dispozitiv de pipetare cu cremalieră, pentru 10 ml
buc
0,001
Eprubete sterile adaptabile la centrifugă
buc
1
Fenol
g
1
Frigider pentru medii de cultură
buc
0.0002
Recipient pentru colectare material infecțios
buc
0.0014
Halate examinare
buc
0.01178
Hârtie de filtru calitativă
coale
0.0008
Incubator pentru culturi
buc
0.001
Indicator eficiență sterilizare
buc
0.00001
Lampă UV
0.00001
Mănuși pentru protecție
buc
0,04
Mască HEPA 3M FFP2
buc
0.2
Mediu Lowenstein - Jensen
tub
3
Hidroxid de sodiu, pa
g
5
Pâlnie sticlă diametru 80
buc
0.01
Pipetă sticlă
buc
0.01
Pipete Pasteur (3 ml, sterile)
buc
2
Recoltor spută
buc
0.5
Pipete gradate 2 ml, sticlă
buc
0.001
Lupă
buc
0.0003
Saci autoclavabili
buc
0.05
Suporturi pentru incubare culturi
buc
0.08
Test imunocromatografic AgMPT64*
buc
0,1
*S-a considerat o rată medie de pozitivitate de 10% pentru calculul consumului.
Specificații tehnice pentru principalele materialele de laborator necesare pentru examenul microscopic, cultura în mediul solid și lichid, antibiograma în mediul solid și lichid, teste genetice
Toate mediile de cultură și materialele menționate în tabelul de mai jos trebuie să fie însoțite de următoarele documente: Lotul, să dețină certificate de calitate și conformitate. Producătorul să fie certificat ISO 9001 și ISO 13485.
Furnizorul să asigure condiții termice de transport care să nu influențeze calitățile mediului sau reactivilor.
Furnizorul să fie autorizat de Ministerului Sănătății să comercializeze produsul în România. Livrarea materialelor și reactivilor se va face eșalonat, în funcție de consum și stocurile existente în laborator.
Să nu fie condiționată în nici un fel achiziția sau și distribuirea.
1.
Lame port obiect
Utilizare:
examenul microscopic
Caracteristici:
Lame din sticlă fără fluorescență proprie.
Mătuite la un capăt.
Dimensiuni: 76x26x1m
2.
Kit pentru colorația Ziehl Neelsen
Utilizare:
examenul microscopic
Caracteristici 22 :
Soluție fuxină bazică fenolată 1%: Concentrația de lucru 0,3% fuxină bazică (85-88%).
Soluție albastru de metilen: Concentrația de lucru 0,3%
Soluție pentru decolorare alcool-acid:Concentrația de lucru de 3% (3 ml acid clorhidric concentrat adăugat la 97 ml alcool etilic 95%)
Fiecare soluție ambalată în flacon de 1000 ml.
3.
Kit pentru colorația fluorescentă
Utilizare:
examenul microscopic
Caracteristici 22 :
Soluția de auramină O fenolată 1%: Concentrația de lucru 0,1% auramină O, sau Auramină O și Rhodamină.
Soluția de permanganat de potasiu (poate fi înlocuit cu albastru de metilen 0,3%): Concentrația de lucru 0,5%.
Soluția pentru decolorare alcool-acid: Concentrația de lucru de 0,5%, ( 0,5 ml acid clorhidric concentrat adăugat la 100 ml alcool etilic 70%)
4.
Ulei pentru imersie
Utilizare:
examenul microscopic al preparatelor colorate Ziehl Neelsen
Caracteristici:
Ulei mineral
Indice de refracție 1,513+/-0,005. Vâscozitate 800- 1000 cSt.
5.
Hidroxid de sodiu
Utilizare:
examenul microscopic, metoda cu concentrare, decontaminare în vederea cultivării
Caracteristici:
NaOH, in rotulis, pa.
6.
Acid clorhidric
Utilizare:
examenul microscopic, metoda cu concentrare, decontaminare în vederea cultivării
Caracteristici:
HCl 36% pa
7.
Fosfat monopotasic
Utilizare:
examenul microscopic, metoda cu concentrare, decontaminare în vederea cultivării (în loc de HCl)
Caracteristici:
KH 2 PO 4,
pa
8.
Albastru de bromthimol
Utilizare:
indicator de pH în etapa de decontaminare în vederea cultivării
Caracteristici:
C27H28BR2O5S. Masa moleculară 624,4 g/mol.
Interval de viraj 6-7,6 (galben- albastru).
Garanție 36 luni.
9.
Mediu Lowenstein -Jensen pentru izolarea/cultivarea micobacteriilor
Utilizare:
cultivarea micobacteriilor
Caracteristici:
Compoziție: L-asparagina 3,6 g, fosfat monopotasic 2,4 g, sulfat de magneziu 0,24 g, citrat de magneziu 0,6 g, amidon de cartofi 30 g, verde malachit 0,4 g, glicerină 12 ml, apă distilată 600 ml, adaos de 1000 ml de omogenat de ouă întregi de găină. pH 7 +/- 0,2.
Condiționat în eprubete cu deschiderea de 1,5-1,6 cm, înalte de 10,5-11 cm din borosilicat, cu fund plat, închise cu capac filetat.
Cantitate de 7-8 ml de mediu/tub. Mediul solidificat în pantă cu lungimea de 7-8 cm.
Tuburile etichetate cu denumire, lot, data expirării, condiții de păstrare.
Termenul de valabilitate să fie de cel puțin 120 de zile de la data livrării.
Respingere
dacă tuburile au gura mai strâmtă de 1,5 cm, sau/ și cantitatea mediului /tub mai mică de 7 ml.
10.
Test imunocromatografic AgMPT64
Utilizare:
identificarea rapidă a complexului
M. tuberculosis
din culturi
Caracteristici:
Prezentat sub formă de casetă cu membrană de nitroceluloză pentru identificarea complexului
M. tuberculosis
din culturi prin metoda imunocromatografică, bazată pe anticorpi monoclonali specifici pentru proteina MPT 64.
Să diferențieze Complexul
Mycobacterium tuberculosis
de micobacteriile non TB, cu sensibilitate și specificitate de 99%.
Să permită obținerea unui rezultat rapid, în 15 minute.
Utilizabil pentru culturi din mediul solid sau lichid.
Furnizorul să asigure condiții termice de transport care să nu influențeze calitățile mediului și ale suplimentelor necesare pentru teste.
Fiecare transport/ lot să fie însoțit de certificat de calitate.
Furnizorul să fie autorizat de MS să comercializeze produsul în România.
Producătorul să fie certificat pentru sistemul de management al calității ISO 9001
Prezentare:
Chit cu 10-25 casete (cartușe) ambalate individual și Tampon de extracție.
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
11.
Trusa pentru antibiograma substanțelor anti-tuberculoase de linia întâi (Izoniazidă- Rifampicină)
Utilizare:
testarea sensibilității
M. tuberculosis
la substanțele anti-tuberculoase de linia întâi prin metoda concentrațiilor absolute.
Caracteristici:
Mediul Lowenstein Jensen. Compoziție:
600 ml mediu de bază (același ca pentru izolare) + 1000 ml omogenat de ouă întregi de găină, pH 7 +/- 0,2, 8 ml/tub, condiționat în eprubete de 1,5-1,6 cm x
10,5-11 cm
din borosilicat, cu fund plat, închise cu capac filetat. Solidificat în pantă cu lungimea de 7-8 cm.
Etichetat cu denumire, lot, data expirării, condiții de păstrare.
Termen de valabilitate cel putin 60 de zile de la data livrării.
trusă conține 2 tuburi control și câte un tub pentru fiecare substanță anti-TB cu concentrația exprimată în
micrograme / ml : Rifampicină 40, Izoniazidă 0,2
Comentariu : se acceptă cu sau fără amidon de cartofi.
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
Respingere : dacă gura eprubetei este cu diametrul mai mic de 1,5 cm.
12.
Trusa pentru antibiograma extinsă (linia 1 și linia 2)
Utilizare:
testarea sensibilității
M. tuberculosis
la substanțele anti-tuberculoase de linia întâi și linia a doua prin metoda proporțiilor.
Caracteristici :
Mediul Lowenstein Jensen. Compoziție: 600 ml mediu de bază + 1000 ml omogenat de ouă întregi de găină, pH 7 +/- 0,2, 8 ml/tub. Solidificat în pantă cu lungimea de 7-8 cm.
Etichetat cu denumire, lot, data expirării, condiții de păstrare.
Termen de valabilitate cel puțin 60 de zile de la data livrării. O trusă conține 2 tuburi control și câte un tub pentru fiecare substanță anti-TB cu concentrația exprimată în
micrograme / ml
de mediu: Izoniazida (INH) 0,2; Rifampicina (RMP) 40; Streptomicina 4; Etambutol 2; Ofloxacina 2; Kanamicina 30; Amikacina 30; Capreomicina 40;
Ethionamida 40.
Comentariu : se acceptă cu sau fără amidon de cartofi. Concentrațiile substanțelor se pot schimba în funcție de recomandarea experților OMS la un moment dat. Vor fi anunțate furnizorului imediat după ce suntem informați asupra modificărilor survenite.
Respingere : dacă gura eprubetei este cu diametrul mai mic de 1,5 cm.
Valabilitate:
cel puțin 2 luni de la data livrării.
13.
Medii și reactivi pentru cultivare în sistem automat MGIT 960
Utilizare:
cultivarea rapidă a micobacteriilor în mediul lichid, în sistem automat de cultivare MGIT 960.
Caracteristici :
Tuburi BBL MGIT pentru folosire în sistem automat BACTEC MGIT 960. Compoziție: Mediul de cultură lichid care conține Middlebrook 7H9 modificat, bază și peptone din caseină. pH 7 +/- 0,2. Condiționat câte 7 ml mediu /tub de plastic de 16x100 mm, cu fund rotund, care au fixat la bază, în interior, silicon care poate emite fluorescență. Împachetare 100 tuburi/cutie. Tuburile etichetate cu denumire, lot, data expirării, condiții de păstrare. Termenul de valabilitate să fie de cel puțin 120 de zile de la data livrării. Să permită însămânțarea produselor prelucrate standard prin tehnica de decontaminare cu NaOH/acetilcisteina sau/și Petroff.
Să asigure detecția micobacteriilor în 7-14 zile. Rezultat negativ în maxim 45 zile.
Chit cu Supliment de creștere (care conține acid oleic, serum albumină bovină, dextroză, catalază și polyoxyethylen stearat) și Supliment antibiotic PANTA(care să conțină Polymyxina B, Amphotericina B, Acid Nalidixic, Trimethoprim, Azlocillina). Amestecul antibiotic să fie liofilizat,condiționat în chituri a 6 tuburi, pentru 100 de teste, cu valabilitate de 5 zile după rehidratare.
Mycoprep: chit pentru decontaminarea produselor în vederea cultivării, care conține amestecul de decontaminare: 20 g NaOH și 14,5 g Citrat trisodic în 500 ml apă purificată; fiecare
ambalaj
pentru
decontaminare
să
aibă
inclusă
fiolă
cu
0,375
g
NALC (C5H9NO3S). Tampon fosfat: 2,37 g Na2HPO4 și 2,27 g KH2PO4
în 500 ml apă purificată, cu pH final de 6,8.
Prezentare : chit cu 10 flacoane care conțin fiecare câte 75 ml reactiv (NALC-NaOH în soluție) și 5 ambalaje cu tampon fosfat.
Respingere:
Dacă tuburile nu sunt compatibile cu sistemul MGIT 960, nu au piesa de silicon la bază, care să poată emite fluorescență.
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
14.
Medii și reactivi pentru antibiograma substanțelor de linia întâi în sistem MGIT 960
Utilizare:
testarea sensibilității
M tuberculosis
în mediul lichid, în sistem automat de cultivare MGIT 960, față de streptomicina, izoniazidă, rifampicina, etambutol.
Caracteristici
Flacoane cu mediul Middlebrook 7H9 compatibile cu sistemul BACTEC MGIT 960, 100 flacoane a 7 ml /ambalaj (vezi 13 a).
Chit
SIRE,
cu
supliment
de
creștere
(OADC)
și
flacoane
cu
substanțe antituberculoase liofilizate (streptomicina, izoniazidă, rifampicina, etambutol), 40 teste/chit.
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
15.
Medii și reactivi pentru antibiograma substanțelor de linia a doua în sistem MGIT 960
Utilizare:
testarea sensibilității
M tuberculosis
în mediul lichid, în sistem automat de cultivare MGIT 960, față de Kanamicină, Amikacină, Capreomicină, Ofloxacină, Moxifloxacină.
Caracteristici
Flacoane cu mediul Middlebrook 7H9 compatibile cu sistemul BACTEC MGIT 960, 100 flacoane a 7 ml /ambalaj (vezi 13 a).
Chit
pentru testarea substanțelor anti-tuberculoase de linia a doua, cu supliment de creștere (OADC) și flacoane cu substanțe antituberculoase liofilizate (Kanamicină, Amikacină, Capreomicină, Ofloxacină, Moxifloxacină), 40 teste/chit.
Comentariu:
Compoziția trusei de substanțe anti-tuberculoase poate varia în funcție de necesitățile PNPSCT la un moment dat și va fi anunțată din timp furnizorului.
16.
Medii și reactivi pentru antibiograma la pirazinamidă în sistem MGIT 960
Utilizare:
testarea sensibilității
M tuberculosis
în mediul lichid, în sistem automat de cultivare MGIT 960, față de Pirazinamidă.
Caracteristici
Flacoane cu mediul Middlebrook 7H9 compatibile cu sistemul BACTEC MGIT 960, 100 flacoane a 7 ml /ambalaj (vezi 13 a).
Chit
PZM, cu supliment de creștere (OADC) și flacoane cu PZM liofilizată (Pirazinamidă), 25 teste/chit.
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
17.
Medii și reactivi pentru cultivare în sistem automat VersaTREK
Utilizare : cultivarea rapidă a micobacteriilor în mediul lichid, în sistem automat de cultivare VersaTREK.
Caracteristici :
Flacoane cu mediul lichid Middlebrook 7H9, compatibil cu sistemul VersaTrek, etichetată și identificabilă cu cod de bare confecționate din material rezistent, capac înfiletat, cu structură spongioasă în interior, care imită structura alveolară. Să poată fi depozitate la temperatura camerei. Valabilitate cel puțin 6 luni de la data livrării. Să asigure timpul mediu de detecție a creșterii micobacteriilor în 7-14 zile. Rezultatul
negativ să fie raportat în maxim 45 zile de la însămânțare. Valabilitate cel puțin 6 luni de la data livrării. Să permită însămânțarea produselor prelucrate standard prin tehnica de decontaminare cu NaOH/acetilcisteina sau/și Petroff.
Supliment creștere. Compoziție: albumină bovină, dextroză, acid oleic, catalază, clorură de sodiu. Valabilitate cel puțin 6 luni de la data livrării.
Supliment antibiotice cu rol bactericid, fungicid asupra microbilor de asociere. Pulbere liofilizată care să conțină: Fosfomicină, Azlocilină, Polimixina B, Acid nalidixic, Amfotericina B.
Sistem Conector cu rol de detectare a variațiilor de presiune din flaconul de cultură. Să fie prevăzut cu membrană hidrofobă. Valabilitate cel puțin 3 ani
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
18.
Medii și reactivi pentru antibiograma substanțelor de linia întâi în sistem VersaTREK
Utilizare:
testarea sensibilității
M tuberculosis
în mediul lichid, în sistem automat de cultivare VersTREK, față de izoniazidă, rifampicină, etambutol.
Caracteristici:
Flacoane cu mediul Middlebrook 7H9, prevăzute cu sistem conector compatibil cu sistemul automat de cultivare Versatrek., cu sistem conector. Să permită obținerea de rezultate în 6-13 zile.
Să
conțină,
sub
formă
liofilizată,
substanțe
antituberculoase
pure:
Rifampicină, Izoniazidă, Etambutol. Valabilitate de cel puțin 6 luni de la livrare. Să permită folosirea ca inocul a culturilor de pe mediul lichid sau solid. Furnizorul să asigure condiții termice de transport care să nu influențeze calitățile mediului și ale suplimentelor necesare pentru teste. Fiecare transport/ lot să fie însoțit de certificat de calitate. Furnizorul să fie autorizat de MS să comercializeze produsul în România. Producătorul să fie certificat pentru sistemul de management al calității ISO 9001.
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
19.
Test pentru detecția simultană a micobacteriilor din complexul
M tuberculosis
și rezistența la rifampicină prin metodă genetică, în sistem GeneXpert MTB/Rif
Utilizare : identificarea simultană, în spută, a micobacteriilor din Complexul
M tuberculosis
și a rezistenței la rifampicină prin metoda genetică Real-Time PCR (RT-PCR).
Caracteristici :
Casete (cartușe) ambalate individual compatibile cu sistemul GeneXpert.
Sa permită detectarea simultană a micobacteriilor Complexului
M tuberculosis
și a rezistenței la Rifampicină în spută.
Casetă cu reactivi integrați pentru reacția PCR semicantitativă.
Reactiv pentru prelucrarea probei.
Să permită obținerea de rezultat rapid, în 2 ore.
Să aibă stabilitate 2 săptămâni după deschidere.
Valabilitate de cel puțin 6 luni de la livrare.
Furnizorul să asigure condiții termice de transport care să nu influențeze calitățile mediului și ale suplimentelor necesare pentru teste.
Fiecare transport/ lot sa fie însoțit de certificat de calitate.
Furnizorul să fie autorizat de MS să comercializeze produsul în România.
Producătorul să fie certificat pentru sistemul de management al calității ISO 9001.
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
20.
Test pentru detecția simultană a micobacteriilor din complexul M tuberculosis și rezistența la rifampicină și izoniazidă prin metodă genetică, în sistem GenoType.
Utilizare : identificarea simultană, în spută sau în culturi a micobacteriilor din Complexul
M tuberculosis
și a rezistenței la rifampicină și izoniazidă prin metoda genetică de hibridizare pe suport, în sistemul GenoType-HAIN.
Caracteristici :
Ultima versiune realizată și furnizată de către producător pentru:
Chit
de
detectie
GenoType
MTBDRplus,
96
teste/chit
(stripuri/bandelete
de nitroceluloză).
Chit GenoLyse pentru extracția ADN, pentru 96 teste/chit inclus.
Chit pentru amplificare inclus (soluții de nucleotide pentru testul MTBDRplus și Hot StarTaq polimeraza AND dependentă).
Soluții de tampoane necesare reacțiilor (denaturare, hibridizare, conjugare, spălare, soluții substrat, soluții pentru fixare).
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
21.
Test pentru detecția simultană a micobacteriilor din complexul M tuberculosis și rezistența la fluorochinolone și aminoglicozide prin metodă genetică, în sistem GenoType.
Utilizare:
identificarea simultană, în spută sau în culturi a micobacteriilor din Complexul
M tuberculosis
și a rezistenței la fluorochinolone și aminoglicozide prin metoda genetică de hibridizare pe suport, în sistemul GenoType-HAIN.
Caracteristici :
Ultima versiune realizată și furnizată de către producător pentru:
Chit de detectie GenoType MTBDRsl, 96 teste/chit (stripuri/bandelete de nitroceluloză).
Chit GenoLyse inclus.
Chit pentru amplificare inclus (soluții de nucleotide pentru testul MTBDRsl și Hot StarTaq polimeraza AND dependentă).
Soluții de tampoane necesare reacțiilor (denaturare, hibridizare, conjugare, spălare, soluții substrat, soluții pentru fixare).
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
22.
Test
pentru
diferențierea
între
speciile
de
micobacterii
din
Complexul
M tuberculosis prin metodă genetică, în sistem GenoType.
Utilizare:
diferențierea în culturi între speciile de micobacterii din Complexul
M tuberculosis
prin metoda genetică de hibridizare pe suport, în sistemul GenoType-HAIN.
Caracteristici:
Ultima versiune realizată și furnizată de către producător pentru:
Să poată face diferențierea speciilor în cadrul complexului
M. tuberculosis :
M. tuberculosis/M. canetti, M. africanum, M. microti, M. bovis
subsp. bovis , M. bovis subsp. caprae si M. bovis BCG.
Chit de detectie GenoType Mycobacterium MTBC, 96 teste/chit (stripuri /bandelete de nitroceluloză).
GenoLyse : chit pentru extracția ADN din cultura bacteriană pentru 96 teste/chit
Chit pentru amplificare inclus (soluții de nucleotide pentru testul Mycobacterium MTBC și Hot StarTaq polimeraza AND dependentă).
Soluții de tampoane necesare reacțiilor (denaturare, hibridizare, conjugare, spălare, soluții substrat, soluții pentru fixare).
Valabilitate:
cel puțin 6 luni de la data livrării.
23.
Test pentru identificarea speciilor comune de micobacterii netuberculoase prin metodă genetică, în sistem GenoType.
Utilizare:
identificarea în culturi a speciilor comune de micobacterii netuberculoase prin metoda genetică de hibridizare pe suport, în sistemul GenoType-HAIN.
Caracteristici :
Ultima versiune realizată și furnizată de către producător pentru speciile comune.
Să poată identifica următoarele specii de mycobacterii din cultură:
M. avium ssp., M. chelonae, M. abscessus, M. fortuitum, M. gordonae, M. intracellulare, M. scrofulaceum,
M. interjectum, M. kansasii, M. malmoense, M. peregrinum, M. marinum/M. ulcerans Complexul M. tuberculosis, M. xenopi (sau specii suplimentare, conform ultimei versiuni.
GenoLyse: chit pentru extracția ADN din cultura bacteriană pentru 96 teste/chit
Polimeraza tip HotStar Taq DNA, 5U/µl, 250 U, dacă nu este deja inclusă în chit.
Valabilitate : cel puțin 6 luni de la data livrării.
Pentru testele de biologie moleculară (genetice) se va livra ultima versiune oferită de producător.
Bibliografie
1.
Ghid metodologic de implementare a Programului național de prevenire, supraveghere și control al tuberculozei. București, 2015. ISBN 978 - 973 - 139 - 325 - 4.
2.
Strategia Națională de Control al Tuberculozei în România 2015-2020. Guvernul României Hotărâre nr. 121 din 25 februarie 2015.
3.
Review of the national tuberculosis programme in Romania, 10-21 March 2014. Pierpaolo de Colombani, Vahur Hollo, Niesje Jansen, Kristin Kremer, Soleil Labelle, Mavluda Makhmudova, Oriol Ramis, Andreas Sandgren, Jonathan Stillo, Nestan Tukvadze, AskarYedilbayev (Edited by: Pierpaolo de Colombani). WHO-Regional office for Europe/ ECDC.
4.
WHO (2012)
Green Light Committee Mission Report 2012 . (
http://stop-tb.raa.ro .)
5.
WHO/HTM/TB/2011.19 -Guidance for countries on the specifications for managing TB laboratory equipments and supplies.
6.
D.Homorodean, O.Moldovan, M.Stoian, M.Brojboiu, G.Chiriac, I.S.Muntean, D.I.Chiotan, I.Nicolae, C.Marica, N.Galie. Organizarea și managementul laboratorului de micobacteriologie, București, 2008
7.
Rieder HL, Chonde TM, Myking H, Urbanczik R, Laszlo A, Kim SJ, Van Deun A, Trebuck A- The public Health service national tuberculosis reference laboratory and the national laboratory network, IUATLD, 1998.
8.
Ord. MS 1.292 /18.12.2012, Privind aprobarea Normelor metodologice pentru achiziția publică centralizată, la nivel național, de medicamente, materiale sanitare, echipamente medicale, echipamente de protecție, servicii, combustibili și lubrifianți pentru parcul auto.
9.
Ord. MS. 109/17.02.2005. Proceduri prealabile de organizare a licitațiilor.
10.
OUG nr. 34 din 19 aprilie 2006 (*actualizată*) privind atribuirea contractelor de achizitie publica, a contractelor de concesiune de lucrari publice si a contractelor de concesiune de servicii (actualizată până la data de 4 octombrie 2007*)
11.
www.nema.org/standards/ComplimentaryDocuments/ANSI-IEC 60529.
12.
TC 66/Publication 61010-1 (2010), Third edition/I-SH 01. Safety requirements for electrical equipment for measurement, control, and laboratory use.
www.webstore.iec.ch/corrigenda/iec/61010-1.
13.
http://ec.europa.eu. Electromagnetic compatibility.
14.
www.osram.com.Technical application guide. IP codes in accordance with IEC 60529.
15.
IN De Kantor, SJ Kim, T Frieden, Alaszlo, F Luelmo, P-Y Norval, H Rieder, P Valenzuela, K Weber. Laboratory services in tuberculosis control. Part III-Culture. WHO/HTM/TB/98.258.
16.
EN 12469. European Standard :Biotechnology- Performance criteria for microbiological safety cabinets.
17.
Tuberculosis laboratory biosafety manual. WHO/HTM/TB/2012.11
18.
Kent PT, Kubica GP. Public Health Mycobacteriology. A guide for the level III laboratory, 1985, Atlanta Georgia.
19.
I.Coker, E.Nardell, B.Fourie, P.Brickner, S.Parsons, N.Bhagwandin, P.Onyebujoh: Guidelines for the utilisation of Ultraviolet germicidal irradiation (UVGI). Technology in controlling transmission of Tuberculosis in health care facilities in South Africa)
20.
WHO Policy Framework for Implementing New Tuberculosis Diagnostics, 2010
21.
WHO/HTM/TB/2011.8- Fluorescent light-emitting diode (LED) microscopy for diagnosis of tuberculosis: policy statement.
22.
European Centre for Disease Prevention and Control. Mastering the basics of TB control: Development of a handbook on TB diagnostic methods. Stockholm: ECDC; 2011
23.
Daniela Homorodean, Olga Moldovan, Daniela Diculencu, Grațiela Chiriac, Ionela Muntean, coord I.M.Popa. Îndrumar de tehnici de laborator de bacteriologie BK- București 2005, ISBN 973-0-04173-3
ANEXA VI PROCEDURA DE EVALUARE A STANDARDELOR ȘI A CRITERIILOR DE
PERFORMANȚĂ ÎNDEPLINITE DE LABORATOARELE DE MICOBACTERIOLOGIE
2017
Autori:
Daniela HOMORODEAN , medic primar microbiologie, doctor în științe medicale, coordonator al rețelei naționale a laboratoarelor de micobacteriologie, șef Laboratorul Național de Referință Cluj Napoca, Spitalul Clinic de Pneumoftiziologie Leon Daniello Cluj Napoca.
Roxana MÎNDRU , medic primar medicină de laborator, Laboratorul Național de Referință București, Institutul Național de Pneumoftiziologie Marius Nasta București.
Abrevieri:
ABG: Antibiogramă
ATCC: American Type Culture Collection CC: controlul calității
CEC: Controlul Extern al Calității CIC: Controlul Intern al Calității
CIC-C: Controlul Intern al Calității pentru Cultură
CIC-M: Controlul Intern al Calității pentru examenul Microscopic C-LJ: cultura în mediul Lowenstein Jensen
CN: bolnav caz nou
CPM: Cabinet de Protecție Microbiologică FRC: forță relativă de centrifugare
HEPA: High Efficient Particulate Air, (tip de filtre cu mare putere de reținere a particulelor) LJ: mediul de cultură Lowenstein Jensen
L2: substanțe anti-tuberculoase de linia a doua LNR: Laborator Național de Referință
LRR: Laborator Regional de Referință M: examen microscopic
MTB:
Mycobacterium tuberculosis
NTM: Non Tuberculous Mycobacteria, micobacterii netuberculoase PC: computer
PNPSCT: Programul Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberculozei S / R: sensibil / rezistent TB: tuberculoză
UV: ultra-violet, radiații
Introducere
Laboratoarele de micobacteriologie ale rețelei nationale ar trebui să ofere rezultate cu calitate asigurată și comparabile, astfel încât să nu existe diferențe calitative în privința susținerii de către acestea a programului național de control al TB. Este necesar să existe un sistem care să ne permită să apreciem în ce măsură performanțele realizate de laboratoare se conformează așteptărilor noastre. În modul de formulare și stabilire a indicatorilor, dar și a criteriilor de evaluare, trebuie să ținem seama de interesele domeniului în care își desfășoară laboratorul activitatea și deciziile care vor fi formulate în urma analizei. Ponderea indicatorilor de performanță în luarea deciziilor nu este egală, dar se ține seama de toate aspectele pentru armonizarea activităților. Impactul fiecărui indicator este diferit și din perspectiva din care este evaluat
(laborator,
beneficiarul
serviciilor
oferite
de
laborator,
finanțator,
organizatorul serviciilor de sănătate) 1, 2 .
Lucrarea își propune să ofere informații atât pentru autoevaluarea performanțelor laboratorului, să constituie un instrument de lucru în ajutorul laboratorului, dar și al PNPSCT pentru identificarea deficiențelor și corectarea lor, stabilirea priorităților în luarea deciziilor pentru îmbunătățirea activităților la nivel local și național.
Indicatorii, care pot fi calitativi sau cantitativi, trebuie să acopere toate ariile de interes, începând cu recoltarea probelor de la pacienți, prelucrarea lor în laborator - cu toate activitățile necesare susținerii acesteia, până la eliberarea rezultatelor 3 .
Indicatorii reprezintă măsurarea specifică a performanțelor PNPSCT, urmărite în timp. Ei trebuie să reflecte obiectivele Programului și să permită managerilor să urmărească progresul, raportat la referință.
Trebuie selectați și folosiți acei indicatori care sunt
specifici
(măsoară numai anumite condiții sau evenimente),
fiabili
(oferă același rezultat când sunt folosiți de mai multe ori pentru măsurarea
acelorași
condiții
sau
activități),
sensibili
(reflectă
schimbările
parametrilor observați),
operaționali
(măsurabili cu definițiile dezvoltate la nivel de program),
accesibili
(costuri de măsurare accesibile),
fezabili
(permit colectarea datelor propuse),
comparabili
(în timp și între laboratoarele de niveluri diferite, la un moment dat) 4 .
Înregistrările constau în chestionare pentru autoevaluare 5 , tabele (fișiere Excel) cu date care se analizează periodic (lunar la nivel local). Cu ocazia vizitelor de îndrumare (supervizare) se completează, de asemenea, chestionare de evaluare similare celor folosite pentru autoevaluare. Totodată se verifică imparțialitatea și obiectivitatea autoevaluării.
Pe baza datelor înregistrate pe parcursul anului în fiecare laborator, se întocmește raportul anual de activitate care se trimite, după centralizare, la laboratorul supraordonat, respectiv județean, apoi LRR, care centralizează la rândul său datele din județele arondate și le trimite la LNR în formatul solicitat de către acesta.
Criterii de evaluare a laboratorulul de micobacteriologie Chestionar pentru autoevaluarea laboratorului de micobacteriologie
Se completează cel puțin anual (dar se poate completa și la fiecare 6 luni pentru aprecierea progresului), de către șeful de laborator și se trimite la LRR, care centralizează informația din județe și o trimite la LNR coordonator pentru monitorizarea și evaluarea situației 6 .
Dacă la aspectele care se referă la
biosiguranță
(marcat cu B în tabel) există răspunsuri negative (NU), aceasta semnifică deficiențe care
obligă la remedierea imediată sau suspendarea activității până la remediere
5 .
Aspectele care se referă la
asigurarea calității
(marcat cu C în ultima coloană din tabel)
necesită remediere urgentă
dacă răspunsul este NU sau doar parțial realizat
5,7 . (Fișa 1).
Fișa 1. Autoevaluarea laboratorului de micobacteriologie
Laboratorul............................................Data autoevaluării.....................Perioada evaluată.............
Nr crt
Aspect analizat
Detaliere
DA
NU
Comentarii (x=detaliere)
B/C
1
Funcțiile si responsabilitățile laboratorului
Microscopie și cultură
Microscopie, cultură, ABG
Numai pentru TB
2
Laboratorul deservește..
DAT
x
Spital PNF / secție PNF
x
Sanatoriul
x
Alte unități sanitare
x
3
Programul de activitate
Expus la loc vizibil
Produse prelucrate zilnic
x
C
4
Numărul încăperilor și destinația lor
Spațiu: recepția produselor
x
B
Spațiu numai pentru TB
B
Cameră pentru personal
B
Vestiar
x
Magazie chimicale
Magazie consumabile
C
Grup sanitar propriu
x
5
Personalul instruit în ultimele 12 luni, implicat în activitatea TB
(nr total/nr instruit)
Medici
nr
C
Biologi/chimiști/biotehnologi
nr
C
Asistenți
nr
C
Necesar personal, calificare
x
Îngrijitor curațenie
nr
6
Registrul de laborator
Tipizat: PNPSCT revizia recentă
x
C
Unic, pt toate prelevatele
C
Completare registru
Corect
C
7
Biletele de trimitere, solicitare examinare
Tipizate: PNPSCT ultima revizuire
x
C
Completate corect de solicitant
C
Completate corect de laborator
C
8
Sistemul de notare pentru microscopie
Pozitiv BAAR 1-3 +, Negativ
Nr exact de bacili (ex: 7 BAAR/100c) ?
C
9
Sistemul de notare pentru culturi în registru și în buletinul de rezultat
Pozitiv 1-3 +, Negativ,
Numărul exact de colonii , cultura contaminată
x
C
Se scrie explicit
M.tuberculosis
C
Nr crt
Aspect analizat
Detaliere
DA
NU
Comentarii (x=detaliere)
B/C
10
Sistem de notare a rezultatelor ABG în registru și în
buletinul de analiză
S / R
x
C
11
Volum de lucru anul anterior / cu rata de pozitivitate. Exclusiv pentru ce s-a lucrat în laborator
M pozitiv /total
x
C
C LJ pozitiv/ total
x
C
Contaminare culturi LJ (nr tuburi contaminate/ nr total tuburi folosite pentru cultivare)
x
C
Cultura mediul lichid poz/total
C
Contaminare culturi în mediul lichid (nr tuburi contaminate/ nr total tuburi folosite pentru
cultivare)
C
ABG LJ RH total
x
C
ABG linia 1 mediul lichid
C
Tulpini MDR trimise pt L2 la LNR
Lab: Nr
C
12
Examen microscopic
Frotiu direct
x
C
Centrifugare după omogenizare
x
Prelucrează 2 spute pt diagnostic și 2 spute pt monitorizare
C
13
Frotiu- colorația
pentru evidențierea BAAR
Ziehl- Neelsen
Auramina O
Alte colorații
C
14
Cultura- metoda de omogenizare / decontaminare
NaOH 4% + HCl 8%
NaOH 4%+ KH2PO4 15 %
NAOH/NALC
Altă metodă
x
C
Însămânțează pe 2 sau pe 3 tuburi LJ (exclusiv cultura LJ)
x
Însămânțează pe 2 tuburi LJ și 1 tub mediul lichid
15
Cultura- tehnica
Cu picătura
x
C
După centrifugare/concentrare
16
Mediul de cultură
Solid, Lowenstein -Jensen
Furnizor
Lichid Middlebrook 7H9
Furnizor
17
Sistem automat de cultivare a micobacteriilor,
funcțional
BACTEC MGIT 960
VersaTrek
Alt sistem :
x
18
Teste de biologie moleculară efectuate
GenoType (LPA)
MTBDR plus
x
MTBDR sl
x
Nr crt
Aspect analizat
Detaliere
DA
NU
Comentarii (x=detaliere)
B/C
CM
x
MTBC
x
GeneXpert MTB/ Rif
x
19
Ghidurile naționale
pentru metodele stadardizate
Disponibile în laborator
C
20
Procedurile de lucru standardizate, recomandate de
PNPSCT
Expuse la punctele de lucru
C
21
Controlul intern al calității - microscopie
Neconformități la recepția prod.
x
C
Lame corect identificate
C
Soluții etichetate: substanță, conc, data prepar/expir
C
Pot fi identificate persoanele care au efectuat/ colorat/citit frotiurile?
C
Evidenta CIC pt Microscopie
x
C
22
Controlul intern al calității- cultura
Evidența CC pentru mediile de cultură folosite (LJ, lichid)
C
Evidența loturilor de mediu pt culturi
C
Controlul creșterii în mediul solid și în mediul lichid
C
Tulpina
M .
tuberculosis
ATCC
C
23
Controlul intern al calității-
antibiograma
CIC ABG
C
Etalon de turbiditate
Tip:
C
Tulpina
M. tuberculosis
ATCC
C
24
Controlul intern al
calității teste moleculare
GeneXpert
GenoType MTBDRplus/MTBDRsl
GenoType MTBC/CM
25
Controlul extern al calității
CEC microscopie
C
CEC cultură LJ
C
CEC cultură mediul lichid
C
Participare la CEC ABG LJ-anul curent
C
Participare la CEC ABG mediul lichid. Anul curent
C
CEC teste de biologie moleculară. Anul curent.
C
26
APARATURA
(folosită exclusiv pentru TB)
Microscop optic
Nr. buc
Microscop LED-UV
Nr. buc
Microscop UV cu lampă de mercur
Nr. buc
Nr crt
Aspect analizat
Detaliere
DA
NU
Comentarii (x=detaliere)
B/C
Centrifugă conformă, cu răcire, (FRC realizată: 3000 x g), cu
protecție anti-aerosoli
Nr tuburi.........
vol tub.
ml
B,C
Autoclav vertical
x
B
Termostat 37 0
C (capacitate mc) cu
temperatura verificată metrologic și termometru etalonat
C
Balanța analitică sau tehnică
x
C
Distilator pentru apă
Vortex-agitator
C
Plită cu termostatare 65-75 0 C pentru uscarea/fixarea frotiurilor
C
Lămpi UV (fixă/mobilă, nr)
B
CPM clasa II, sau clasa I
B
Frigider - pt medii de cultură-
x
C
Frigider- pt pelevate-capacitate
C
Service pentru aparatură
B,C
Centrifuga verificată metrologic
C
Etalonare termostat, termometre, balanță, greutate, turbidimetru
C
27
Monitorizarea condițiilor de mediu
Temperaturi
C
Umiditate
C
Lămpi UV
B
Încărcătura microbiană suprafețe
B
Aeromicroflora
B,C
28
Evidența scrisă a controlului sterilizării
Autoclav: Test chimic / biologic
B
Etuva cu aer cald (pupinel)
Testul:
B,C
Teste de eficiență a sterilizării disponibile în laborator
x
B
29
APROVIZIONARE
Continuă, fără întreruperi
Materiale pentru microscopie
C
Materiale pentru cultură, stocuri Mediul solid
Mediul lichid
C
Teste de identificare pt cultură (test AgMPT64 disponibil?)
C
Materiale pentru antibiogramă Mediul solid
Mediul lichid
Stoc medii x
x
C
Chituri pentru testele genetice
C
Materiale pentru protecția
personalului- echipament (măști- FFP2, mănuși, halate)
B
Substanțe dezinfectante (ce?)
B,C
Nr crt
Aspect analizat
Detaliere
DA
NU
Comentarii (x=detaliere)
B/C
30
Decontaminarea materialului infecțios
În laborator
B
În afara laboratorului, dar în același spital, aceeași adresă
B
Transportul materialului infecțios la alt laborator (cum, ritm, cine?)
B
31
Condiții de protecție a personalului din laborator
Cabinet protecție microbiologică cu flux de aer laminar și filtru HEPA
B,C
Lămpi UV funcționale
B
Măști HEPA, FFP2, cu supapă
B
Halate cu mâneci lungi
B
Mănuși de protecție
B
Norme de biosiguranță respectate
B
Nici un fel de protecție
32
Evidența scrisă a accidentelor și a intervențiilor tehnice
Accidente cu risc de contaminare
B
Întreruperi de curent , apă, gaz
C
33
Evidența dezinfecției
încăperilor, suprafețelor
Substanțe folosite
Suprafețe:
Aer:
B
34
Monitorizarea stării
de sănătate a personalului
B
Nr persoanelor din laborator bolnave de
TBC
în ultimul an / în ultimii 3 ani
/
35
Circuitul informațional
PC cu imprimantă în lab
C
Transmit rezultatele și în baza națională de date prin pagina WEB
C
Transmit rezultate pe biletul de trimitere
C
Transmit rezultatele prin fax sau telefon direct la medicul solicitant
36
Timp de eliberare a rezultatelor microscopiei
aceeași zi
C
după 24 ore
C
după 48 ore
37
Biosiguranță/ biosecuritate
Acces controlat în laborator
B
Posibilitate de transport autorizat al probelor de la bolnavi sau al culturilor
B
Culturile pozitive sunt în spații încuiate cu cheie
B și
/bio- securita te
Nr crt
Aspect analizat
Detaliere
DA
NU
Comentarii (x=detaliere)
B/C
38
Autorizare
Autorizație de funcționare a laboratorului valabilă, eliberată fără nici o condiționare pentru
activitatea de diagnostic a TB
B,C
39
Acreditare
Laborator acreditat conform ISO 15189
Data:
C
Note:
Rândul 18 . Accesul la teste de biologie moleculară se poate realiza local sau prin trimiterea probelor la alt laborator. În evaluare se va face referire doar la testele care se efectuează în laborator, iar dacă nu există dotarea necesară realizării locale, se va menționa
laboratorul cu care se colaborează pentru efectuarea acestora.
Rândul 24 și 25 . Se va face referire doar la analizele pentru care există dotarea necesară în laborator.
Asigurarea calității Controlul intern al calității
CIC este un proces complex de monitorizare internă efectivă și sistematică a performanțelor, care garantează că rezultatele oferite de laborator sunt corecte, de încredere și reproductibile 3,8,9,10 .
Folosirea probelor de spută simulată este o metodă simplă pentru obținerea de informații referitoare la erorile posibile în timpul prelucrării probelor pentru examen microscopic și cultivare. Apreciem contaminarea încrucișată în laborator prin includerea de probe de spută artificială între probele de la pacienți, identificate/numerotate ca și când ar aparține unor pacienți. Probele vor fi prelucrate conform procedurilor de laborator. Se vor analiza rezultatele și se calculează proporția de probe fals pozitive pentru examen microscopic și pentru culturi.
Sputa simulată se prepară astfel : la un litru de soluție 1% de metilceluloză (folosește apă distilată sterilă) se adaugă un ou emulsionat. Soluția se autoclavează și se repartizează câte 25 ml în tuburi sterile pentru centrifugă. Acestea se păstrează la frigider și din fiecare se distribuie în câte 5 recipiente pentru colectarea sputei, identificate cu date fictive. Recipientele cu această
„spută" se intercalează în zile succesive printre probele de la pacienți 11 .
A.
Examenul microscopic
Controlul intern al calității examenului microscopic (CIC-M) trebuie să cuprindă toate aspectele care ar putea influența calitatea rezultatelor finale. Este necesar să existe înregistrări care să ateste această activitate, cu rezultatele și măsurile corective dacă acestea au fost necesare, și să poată fi identificată participarea fiecărei persoane din laborator la etapele de lucru 2,8 . Se realizează prin:
aprecierea calității produselor patologice prelevate de la bolnavi, la recepția în laborator
monitorizarea performanțelor tehnicii de colorare
monitorizarea calității reactivilor
monitorizarea performanțelor echipamentului
monitorizarea tehnicii de citire și a corectitudinii rezultatelor.
Deși CIC-M nu se limitează doar la recitirea frotiurilor și verificarea colorației (a se vedea și F1- fișa de autoevaluare), prezentăm mai jos un model de fișă pentru consemnarea rezultatelor CIC pentru microscopie. (Fișa 2).
Fișa 2. Controlul intern al calității pentru examenul microscopic
Nr crt
Prima citire
Recitire
Observații
Data
Colorați a
Nr frotiu
Rezultat
Inițiale cititor
Data
Coloraț ia
Rezulta t
Inițiale cititor
1
2
3
4
5
La recitire se va completa dacă frotiul a fost recolorat ZN în situația în care colorația inițială a fost cu auramină O sau auramină-rodamină (F=fluorescentă). În coloana pentru numărul frotiului se scrie numărul din registru sau Control pozitiv/Control negativ, în funcție de situație. Semestrial se face analiza rezultatelor CIC-M cu încadrarea lor în categoriile de mai jos (Fișa 3).
Fișa 3. Clasificarea erorilor pentru examenul microscopic 12
REZULTATE ORIGINALE
REZULTATELE RECITIRII
Negativ
1-9 BAAR/
100 câmpuri microscopice
1+
2+
3+
Negativ
CORECT
SFN
IFN
IFN
IFN
1-9 BAAR/100
câmpuri microscopice
SFP
CORECT
CORECT
EN
EN
1+
IFP
CORECT
CORECT
CORECT
EN
2+
IFP
EN
CORECT
CORECT
CORECT
3+
IFP
EN
EN
CORECT
CORECT
CORECT = rezultat identic, sau diferențe la limita de încadrare în categoria de rezultat, care țin de inomogenitatea sputei, situație care se întâlnește mai ales în cazul examenului direct. Exemplu: prima citire 8 BAAR/100 câmpuri microscopice, iar la recitire 1+, prin vizualizarea a 12 BAAR/ 100 câmpuri microscopice; în aceste situații se scrie numărul exact de bacili
sau unitați formatoare de colonii (UFC) vizualizate. În același exemplu, dacă la recitire se vizualizează însă peste 50 BAAR/100 câmpuri microscopice, este neceară atenționarea primului cititor deoarece în timp se poate ajunge la erori de numărare prin citirea unui număr insuficient de câmpuri.
Greșeli minore
(atrag atenția asupra unui examen superficial și necesită reinstruire pentru corectarea la timp).
EN = eroare de numărare a BAAR SFP = slab fals pozitiv
SFN = slab fals negativ
Este necesară recitirea de către un alt evaluator pentru identificarea cauzei diferenței de citire. De cele mai multe ori este vorba de citirea unui număr insuficient de câmpuri microscopice sau examinator neexperimentat.
Greșeli
majore
(necesită
corectare
imediată,
prin
reinstruire
practică
în
laboratorul supraordonat).
IFP
= înalt fals pozitiv
IFN
= înalt fals negativ
Necesară recitirea de către alt evaluator pentru identificarea cauzei diferenței de citire.
Scorul calității pentru microscopie 12
1.
Se calculează acordând 10 puncte pentru fiecare rezultat
corect, 0 puncte pentru rezultatele greșite și câte 5 puncte pentru erorile de numărare. La recitirea a 10 frotiuri, scorul acceptat este de cel puțin 90. De obicei acest mod de apreciere se folosește pentru CEC atunci când se recitesc 10 frotiuri.
2.
Dacă în intervalul de evaluare (6 luni) se recitesc mai mult de 50 frotiuri, se calculează procentul de concordanță a rezultatelor: (total rezultate concordante pozitive și negative x100)/ total frotiuri examinate. Concordanța trebuie să fie mai mare de 90% 12 . Concordanța mai mică de 90% impune analiza situației și aplicarea de măsuri corective, de cele mai multe ori fiind necesară reinstruirea personalului.
Indiferent de modul de calcul al scorului, se menționează erorile minore pentru aprecierea îmbunătățirii în timp a calității examenului microscopic.
Prepararea frotiurilor pentru CIC-M
Frotiurile pentru CIC se prepară în laborator, astfel
8 :
Frotiuri BAAR pozitiv
Se rețin eșantioane de spută (se pot amesteca mai multe spute cu rezultat intens pozitiv BAAR) în care au fost evidentiați BAAR și se prepară după cum urmează, frotiuri pozitive pentru control, care se vor păstra după fixare în cutii închise, la intuneric, la temperatura camerei
La 1 ml spută se adaugă 1 picătură (0,05 ml) formol 40%, se amestecă, se lasă 1 oră la temperatura camerei
Se adaugă 1 ml NaOH 4%, se agită
După 5 minute se adaugă apa distilată până la 20 ml
Se amestecă
Se incubează timp de o oră la 55-60 0
C pe plita termostatată, într-un vas cu apă
Se adaugă apă distilată până la 40 ml, se agită
Se centrifughează timp de 20 minute la 3000xg
Se înlătură supernatantul
Sedimentul se resuspendă în 3-5 ml apă distilată
Se fac frotiuri subțiri, uniforme ca grosime și dimensiune, care se usucă și se fixează.
Se marchează lamele: Control Pozitiv BAAR.
Se păstrează la întuneric, în cutii speciale, marcate: Frotiuri BAAR pozitiv pentru CIC- M.
Frotiuri BAAR negativ
Se procedează ca mai sus, prelucrând spute pentru care s-au obținut rezultate negativ BAAR.
Singura diferență: incubarea la 55-60 0
C este de 10 minute pentru produsul negativ, față de 1 oră pentru cel pozitiv BAAR.
Se marchează lamele : Control Negativ BAAR. Se păstrează la întuneric, în cutii speciale, marcate: Frotiuri BAAR negativ pentru CIC-M.
Note:
Dată fiind sensibilitatea mică a examenului microscopic și a faptului că frotiurile de control sunt preparate din spută în care nu au fost vizualizați BAAR, nu este exclus ca
unele frotiuri negative de control să conțină câțiva BAAR. În astfel de situații se va examina imediat câmpul respectiv și de alt examinator. Prezența unui BAAR pe un frotiu de control negativ la un moment dat nu semnifică neaparat deficiențe de tehnică. Rezultatele se analizează critic.
Chiar dacă sputele sunt inactivate iar frotiurile fixate, nu se poate garanta lipsa infectiozității acestora, motiv pentru care lamele cu frotiurile de control, ca de altfel și lamele cu frotiurile preparate din produsele recoltate de la bolnavi, se vor mânui cu atenție.
B.
Cultura
Este necesar să existe proceduri și înregistrări care să documenteze realizarea CIC pentru culturi 3 . Trebuie verificate atât mediile de cultură solide cât și cele lichide folosite în laborator. Vor fi prezentate în continuare modele (Fișa 4, Fișa 5) pentru acestea 8 .
a.
Calitatea mediilor de cultură
Se ține evidența datei intrării în laborator a mediilor de cultură
Până la folosire, mediile solide se păstrează la frigider (4-8 0 C)
Mediile lichide se păstrează la temperatura camerei sau respectând recomandările producătorului.
Se notează pentru fiecare zi de lucru lotul de mediu folosit
Înainte de numerotarea tuburilor se verifică aspectul macroscopic al mediului (culoare, aspect, grad de hidratare pentru mediul solid, respectiv prezența suspensiilor sau aspectul tulbure al mediilor lichide), consemnând rezultatul în
caietul de CIC- culturi
Se vor elimina tuburile care au mediul deshidratat, cu pete de culoare galbenă sau verde închis, cu aspect spongios, suprafața pantei anfractuoasă, respectiv tuburile fisurate sau cu mediul lichid tulbure. Toate aspectele menționate se scriu în caietul de CIC-C.
În momentul ridicării tuburilor LJ însămânțate în poziție verticală se va face programarea citirii culturilor, cu fixarea unei etichete pe stativul cu tuburi. După terminarea perioadei de incubare toate aceste etichete se păstrează în ordine, îndosariate, iar pe baza lor se completează datele în Fișa 4, prezentată mai jos.
b.
Controlul prelucrării probei
se face la schimbarea lotului de soluții folosite pentru decontaminare (NaOH 4 %, HCl 8% sau fosfat monopotasic 15 %, albastru de bromtimol; sau NaOH-NALC, tampon fosfat). Din produsul omogenizat rezultat după decontaminarea a 10 spute alese la întâmplare, după însămânțarea obișnuită pe tuburile cu mediu Lowenstein Jensen sau și în mediul lichid, se însămânțează câte 10 microlitri pe mediul geloză - sânge (cu câte o ansă de unică folosință). După incubare la 37 0
C, a doua zi se numără coloniile crescute.
Este acceptabil să crească 1-3 colonii. Se notează rezultatul în caietul de CIC-C, cu numărul culturii.
Rezultatele furnizate din analiza calității mediului se vor corela cu rezultatele citirii culturilor și cu rezultatele controlului decontaminării.
Fișa 4. Controlul intern al calității mediului de cultură Lowenstein Jensen
LUNA............anul....ziua inițierii controlului.......
Lot de mediu.........produs data........expiră data........... Producător.................................................................................................................................
Data recepției în laborator..........................
Data intrării în lucru a lotului..........................Data epuizării lotului.........
a.
Controlul sterilității mediului Lowenstein Jense n
Număr total de tuburi
verificate înainte
de folosire în luna în curs
Număr tuburi corespunzătoare la verificarea preliminară
Nr tuburi infectate
Mediu spongios, deshidratat, dezlipit de pereții tubului
Înainte de folosire
După incubare, pentru verificarea sterilității
100%
%
%
%
%
b.
Controlul calității nutritive a mediului
Control Zile
Nr.colonii crescute pe fiecare tub, câte 0.2 ml ATCC
M.tuberculosis
din diluțiile:
10 -4
10 -4
10 -4
10 -4
10 -4
10 -6
10 -6
10 -6
10 -6
10 -6
21 zile
30 zile
Se folosește tulpina
M tuberculosis
ATCC 25177, suspensie de 1 mg/ml, în diluții de 10 -4
și 10 -6 , cu însămânțarea a câte 0,2 ml în 4-5 tuburi din fiecare diluție.
c.
Timpul de creștere și contaminarea culturilor 8
. Luna:.................................................................Lotul de mediu................................
Total Nr culturi
LJ
Total Nr tuburi
LJ
Culturi pozitive la
Culturi Contam la
Tuburi Contam la
21
30
45
60
72h
21z
>30z
72h
21z
>30z
100 %
100%
%
%
%
%
%
%
%
%
%
%
Note: h: ore; z: zile
Se va completa câte o astfel de fișă pentru fiecare lună, indiferent cât timp se folosește un lot de mediu. Dacă în aceeași lună se folosesc mai multe medii de cultură, se va completa cîte o fișă pentru fiecare lot, cu menționarea intervalului de timp. Controlul calității nutritive a mediului se verifică o singură dată pentru un lot de mediu, la începutul folosirii lui și doar suplimentar dacă este în apropierea perioadei de expirare.
Datele se pot înregistra în bază de date Excel, fiind posibilă analiza tendinței rezultatelor în timp.
d.
Controlul intern al calității mediului de cultură Middlebrook 7H9 Fișa 5. Controlul intern al calității mediului de cultură Middlebrook 7H9
Sistemul automat de cultivare.......................Data inițierii controlului.................
Timp
de
pozitivare Zile
0.5 ml ATCC
M.tuberculosis
din diluțiile:
Lot vechi.......
Lot nou.........
Lot vechi.......
Lot nou.........
10 -4
10 -4
10 -4
10 -4
10 -4
10 -4
10 -5
10 -5
10 -5
10 -5
10 -5
10 -5
<7
7-14
14-21
>21 zile
Media timpului realizat
Se însămânțează câte 0,5 ml din diluțiile zecimale ale tulpinii de referință ATCC
M.tuberculosis
25177 la schimbarea lotului de mediu, însămânțând câte 3 tuburi din lotul vechi și câte 3 tuburi din lotul nou din diluțiile 10 -4
și 10 -5
a suspensiei bacteriene etalonate la turbiditate de 1 unitate McFarland. Se vor compara rezultatele care se obțin pentru același lot de mediu la începutul folosirii și la terminarea lui. Rezultatele ar trebui să nu se modifice semnificativ statistic atâta timp cât mediul este în termen de valabilitate și a fost păstrat în condițiile recomandate de producător, iar controlul a fost efectuat de executant experimentat.
Datele se pot înregistra în bază de date Excel, fiind posibilă analiza tendinței rezultatelor în timp.
Controlul extern al calității (CEC)
Permite verificarea obiectivă a performanțelor laboratorului prin compararea rezultatelor proprii cu cele obținute în alte laboratoare. Evaluarea rezultatelor se poate face pentru o singură rundă de participare sau pentru mai multe participări, cu aprecierea evoluției în timp. Este parte indispensabilă a sistemului de management al laboratorului deoarece certifică rezultatele de calitate pe care acesta le oferă pentru analizele efectuate 3 . Evaluarea performanțelor (scorul) pentru rezultatele calitative, cum sunt cele oferite de laboratoarele de micobacteriologie, se face prin transformarea rezultatelor în date cuantificabile, conform unor criterii prestabilite 13 . Analiza rezultatelor CEC se poate face pentru o rundă de participare sau se poate face analiza evoluției rezultatelor în timp; în primul caz pot fi identificate probleme serioase de validare a metodelor sau în realizarea CIC; în timp ce analiza în timp identifică probleme potențiale datorate erorilor umane sau erorilor sistematice 17 . Participarea la scheme de CEC ajută la îmbunătățirea continuă a performanțelor laboratoarului, care trebuie să păstreze înregistrările respective.
Concordanța rezultatelor trebuie să fie mai mare de 90% pentru examenul microscopic 12 .
Se consideră rezultate acceptabile ale antibiogramei în cadrul CEC atunci când concordanța rezulatelor este de cel puțin 90% pentru toate substanțele testate. Rezultate cu valori mai mici decât acestea necesită acțiuni corective imediate. Sunt inacceptabile valori ale concordanței mai mici de 80%.
14,14b . La aprecierea concordanței rezultatelor obținute trebuie să se țină seama și de
metoda de testare folosită în fiecare laborator, concentrațiile critice ale substanțelor anti-TB față de care s-a testat panelul de tulpini, criteriul de definire a rezistenței/sensibilității, substanțele anti-TB pentru care se face compararea rezultatelor. 14a, 14b
Fișa 6. Participarea la scheme de comparări interlaboratoare 3,6, 9,10
Data
Organizatorul
de schemă de control
Procedura evaluată
Rezultate
Comentarii
Primirii probei
Primirii evaluării
De referință
Raportate de laborator
Tabelul se completează pe măsura primirii rezultatelor de la organizatorul de schemă de comparare interlaboratoare. Întocmirea unui fișier Excel permite menținerea la zi a situației evaluărilor, cu tipărirea după fiecare înregistrare nouă. La comentarii se va nota succint dacă au fost necesare măsuri corective și în ce au constat.
Monitorizarea tendințelor
Este necesară în cadrul sistemului de asigurare a calității pentru a face posibilă evidențierea deviațiilor de la limitele stabilite și orientează aplicarea acțiunilor corective 3,6,15 . (Fișele 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14). Populația deservită și nivelul endemiei în zonă determină nivelul de bază în jurul căruia vor varia rezultatele. Centralizarea datelor se face la sfârșitul anului și se comunică la LNR coordonator în formatul solicitat de către acesta.
Fiecare laborator își analizează lunar datele pentru volumul de lucru:
Nr. total de probe procesate prin fiecare metodă
Nr. total și % de probe pozitive pentru fiecare metodă folosită
Nr. total și % de probe negative pentru fiecare metodă folosită
Nr. total și % de contaminare bacteriană a tuburilor de cultură Pentru culturile pozitive:
Nr. total și % de culturi pozitive pentru Complex TB
Numărul total și % de probe pozitive pentru Complex TB la cazurile noi
Nr. total și % de culturi pozitive pentru NTM
Durata medie de detectare Complex TB
Monitorizarea modificărilor sau devierilor de la modelul stabilit 3 :
Tendințe în scădere : pot indica probleme de proceduri. Este necesară analiza și aplicarea de măsuri corective. Scăderea ratei pozitivității microscopiei poate indica erori la prelucrarea produsului, erori de colorare sau citire; scăderea ratei pozitivității culturilor se poate datora deficiențelor de prelucrare (decontaminare agresivă), calității mediului de cultură sau deficiențelor în instruirea personalului, cu nerespectarea procedurii de lucru.
Constante:
Uniformitate în procedurile de laborator. Nu necesită acțiuni.
Tendințe în creștere : procedura s-a îmbunătățit. Stabilirea de noi standarde/indicatori țintă. Interpretarea trebuie să fie prudentă deoarece creșterea proporției rezultatelor
pozitive pentru microscopie se poate datora unor rezultate fals pozitive prin contaminarea reactivilor, contaminarea încrucișată a lamelor, erori la citirea frotiurilor 11 ; creșterea ratei pozitivității culturilor poate să fie datorată contaminării încrucișate 11
(rezultat fals pozitiv), a contaminării reactivilor sau contaminare în timpul recoltării. Creșterea ratei contaminării culturilor semnifică deficiențe de tehnică sau calitate necorespunzătoare a mediului, fiind necesară corelarea cu rezultatele CIC efectuate pentru mediul de cultură.
Trebuie să existe concordanță între rata de pozitivitate a examenului microscopic și a culturilor.
În cazul rezistenței detectate prin ABG, modificările de tendință pot indica deficiențe de tehnică, defecțiuni ale echipamentului folosit, calitatea necorespunzătoare a mediului folosit, erori de interpretare a rezultatelor.
Datele se pot centraliza în fișier Excel, fiind astfel ușurată analiza lor și reprezentarea grafică.
Volumul de lucru
Aprecierea necesarului de personal, a instruirilor necesare pe categorii de investigații, dar și calcularea cantităților de materiale de laborator necesare sunt posibile prin centralizarea datelor completate în Fișa 7 și, acolo unde este cazul, în fișa 8.
320
Fișa 7. Volumul de lucru și rezultatele pentru examenul microscopic și culturi în mediul Lowenstein Jensen
Total M
Total rezultate Pozitiv BAAR
%
rezultate BAAR
pozitiv
Total bolnavi Cazuri noi (Suspect
TB)
Total CN cu rezultat pozitiv BAAR
Total Cult LJ
Total rezultate Poz cult LJ
%
rezultate pozitive Cult LJ
%
tuburi LJ
conta- minate
Total boln Cazuri noi cu Cult
LJ
Total boln CN
Cult LJ
poz
%
rezultate MTB
pozitiv la CN
Ian
Feb
Mart
Apr
Mai
Iun
Iul
Aug
Sept
Oct
Nov
Dec
TOTAL
Deaorece toate laboratoarele sunt obligate să continue efectuarea de examinări microscopice și culturi în mediul LJ la toți bolnavii, vor completa datele în Fișa 7.
Fișa 8. Volumul de lucru și rezultatele pentru examenul microscopic și culturi în mediul lichid Middlebrook 7H9*
Total M
Total rezultate Pozitiv BAAR
%
rezultate BAAR
pozitiv
Total bolnavi Cazuri noi (Suspect TB)
Total CN cu rezultat pozitiv BAAR
Total Cult lichid
Total rezul- tate Poz cult lichid
%
rezultate pozitive MTB
Cult lichid
%
rezultate NTM
pozitiv în mediul lichid
%
tuburi lichid conta- minate
Total boln Cazuri noi cu Cult lichid
Total boln CN
Cult lichid poz
%
rezultate MTB
pozitiv în mediul lichid la
CN
Ian
Feb
Mart
Apr
Mai
Iun
Iul
Aug
Sept
Oct
Nov
Dec
TOTAL
321
*Fiecare laborator care efectuează cultivare în mediul lichid va completa datele pentru sistemul de cultivare pe care îl deține.
În Fișa 8 vor fi completate rezultatele pentru microscopie doar pentru cazurile și produsele care au efectuată cultura în mediul lichid. Dacă se folosesc mai multe sisteme de cultivare, se vor completa fișe diferite cu datele pentru fiecare sistem în parte.
La numărul de cazuri pozitive la examenul microscopic sau cultură se consideră
caz pozitiv
indiferent dacă același pacient are rezultat pozitiv la unul sau mai multe eșantioane recoltate, indiferent de tipul de produs prelucrat.
CN: caz nou, examinat ca suspect de TB.
Rata (%) de pozitivitate a examenului microscopic al sputei pentru suspecții de TB (examinați în categoria CN) ar trebui să fie în jur de 10% 16 .
Se va face analiza lunară separată pe tipuri de produse patologice prelucrate. Vor exista diferențe de confirmări bacteriologice prin microscopie și cultură atât pentru spută, dar mai ales pentru produsele patologice extrapulmonare.
Indicatori pentru înregistrări și relații cu clienții
Laboratorul trebuie să-și monitorizeze performanțele realizate și pentru activitățle pre și post examinare, să le exprime ca indicatori ai calității, să facă analiza periodică a lor și să aplice măsuri corective dacă este necesar 3 .
Fișa 9. Indicatori pentru înregistrări. Relații cu clienții. Anul. ......
Luna
I
II
III
IV
V
VI
VII
VIII
IX
X
XI
XII
TOTAL
Indicator realizat/
ținta
Număr probe acceptate și prelucrate
Probe respinse/
Max. 1%
/ an
Erori la înregistrări preexaminare /
Maxim
1% / an
Erori la înregistrări la procese postexaminare/ maxim
1%/an
Număr buletine de
analiză retrase/
Max 3 / an
Număr reclamații/
< 10
/an
Satisfacția clienților/
> 95% multumiți
Indicatorii consemnați în înregistrări ne ajută să apreciem necesitățile de instruire a personalului (clinic și de laborator) și atenția sa la completarea documentelor, la recepția probelor și în timpul înregistrărilor. Ținta este orientativă și va fi stabilită de fiecare laborator în parte după o perioadă de observare.
Timpul de diagnostic
Fișa 10. Timpul de eliberare a rezultatelor pentru examenul microscopic 17
și rata de detecție a cazurilor noi prin microscopie și cultură
Luna
I
II
III
IV
V
VI
VII
VIII
IX
X
XI
XII
TOTAL
Indicator realizat/
ținta
Timpul de eliberare rezultat microscopie/
<= 24 h de la
recepția probei , 85%
Rata de pozitivitate pentru spută în microscopie la
cazurile noi /
>6%
Rata de pozitivitate în
culturi LJ la cazuri noi / > 8%
Este de dorit ca produsele recoltate de la pacienți să ajungă la laborator în aceeași zi, pentru a putea fi prelucrate.
Pentru
timpul de eliberare a rezultatelor microscopiei
(fișa 10) se calculează media timpului de la recepția probelor în laborator până la eliberearea rezultatelor, pentru toate probele prelucrate într-o lună.
Trebuie ca laboratorul să ofere rezultatul examenului microscopic cât mai repede posibil, chiar în aceeași zi 17 . Dezideratul este realizabil doar pentru probele care intră în laborator în intervalul de timp care permite prelucrarea lor în cadrul programului de activitate. Prelungirea intervalului datorită transportului întârziat la laborator necesită corectare prin colaborarea mai bună între clienți și laborator.
Fișa 11. Timpul de diagnostic pentru cultura în mediul Lowenstein Jensen. Ținte.
Luna
I
II
III
IV
V
VI
VII
VIII
IX
X
XI
XII
TOTAL
Indicator realizat/
ținta
Total culturi pozitive
la 21 zile/ >65%
la 22-30 zile/ >15%
la 45 zile/ <10%
la 60 zile/ < 10%
Rata de contaminare (tuburi)/
2-6%
Ratele de pozitivitate, respectiv procentul de depistare a cazurilor pozitive între suspecții de TB, ne ajută la calcularea necesarului de materiale de laborator. Ele sunt diferite în zone geografice diferite, cu variații largi 16
, fiind necesar să cunoaștem rata pentru țara noastră.
Timpul de eliberare a rezultatelor pentru cultură (fișa 11) se extrage din fișa 4, punctul c.
Rata de contaminare calculată pe număr de tuburi cu mediul LJ însămânțate ar trebui să fie cuprinsă între 2-6%. Totuși, dacă produsele nu sunt prelucrate în aceeași zi, chiar dacă sunt transportate și păstrate în condiții corespunzătoare, rata de contaminare poate ajunge până la 10% 18 . Valori < 2% indică decontaminare agresivă prin prelungirea timpului de contact a sputei cu substanțele folosite pentru decontaminare, folosirea de reactivi reci (luați din frigider, fără echilibrare termică prealabilă), centrifuga fără răcire.
Fișa
12.
Timpul
de
diagnostic
pentru
cultura
în
mediul
Middlebrook
7H9
în sistemul...................
Luna
I
II
III
IV
V
VI
VII
VIII
IX
X
XI
XII
TOTAL
Indicator
realizat/
ținta
Total tuburi
însămânțate
Total tuburi
pozitive MTB
Pozitiv la 1- 7
zile
Pozitiv la 8-14
zile
Pozitiv la 15-21
zile
Pozitiv la 22-30
zile
Pozitiv la 31-42
zile
Tuburi
contaminate
Pozitiv NTM
Media timpului de pozitivitate a culturilor pe mediul lichid ar trebui să se situeze în jurul a 17 zile 19 .
Rata de contaminare, calculată ca: (număr de tuburi contaminate x100) împărțit la totalul tuburilor însămânțate, ar trebui să se situeze între 3-10% 16 . Valori > 10% semnifică prelucrarea incompletă a specimenului, mediu sau reactivi contaminați, prelungirea intervalului dintre recoltare și prelucrare, păstrarea sau /și transportul probei la temperatură mai mare de 10 ° C. Valori < 3% indică decontaminare agresivă prin prelungirea timpului de contact al sputei cu substanțele folosite pentru decontaminare, folosirea de reactivi reci (luați din frigider, fără echilibrare termică prealabilă), centrifuga fără răcire.
Indicatori de performanță pentru PNPSCT
Aprecierea
performanțelor
PNPSCT
este
posibilă
prin
analiza
indicatorilor
din
Ghidul metodologic de implementare a programului național de prevenire, supraveghere și control al tuberculozei 20 . Se va completa la nivel județean, cu trimitere trimestrială la LNR atât Fișa 13, cât și fișa 14, pentru cazurile suspecte TB examinate, respectiv pentru pacienții examinați pentru monitorizarea tratamenului.
326
Fișa 13. Numărul persoanelor suspecte de TB cărora li s-au efectuat examene bacteriologice pentru diagnostic
Indicatorul
Luna
A. Suspecți de TB
I
II
II
IV
V
VI
VII
VIII
IX
X
XI
XII
Total anual
1.1.Nr persoane cărora li s-au efectuat examinări prin met convențională (microscopie și
cultură LJ)
1.2.Nr persoane cărora li s-a efectuat examen prin met convențională ABG-LJ linia I
1.2.1. Număr personae cu ABG linia I depistate MDR
1.3.Nr persoane cărora li s-au efectuat examinări prin met convențională ABG LJ linia I+
linia II
1.3.1. Număr persoane cu ABG linia I+ linia II depistate MDR
1.3.2. Număr persoane cu ABG linia I+ linia II depistate XDR
2. Nr persoane cărora li s-au efectuat cultura și ABG folosind medii lichide
2.1. Nr persoane cărora li s-a efectuat cultura folosind medii lichide
2.2. Nr persoane cărora li s-a
efectuat ABG folosind medii lichide
Indicatorul
Luna
A. Suspecți de TB
I
II
II
IV
V
VI
VII
VIII
IX
X
XI
XII
Total anual
2.3. Nr persoane depistate MDR prin ABG folosind medii lichide
3. Număr persoane cărora li s-au efectuat teste de biologie moleculară pentru diagnostic de
TB
3.1.Număr pers examinate prin metoda GeneXpert MTB/Rif
3.1.1.Număr persoane examinate prin metoda GeneXpert MTB/Rif depistate cu MTBC
3.1.2.Număr persoane examinate
prin metoda GeneXpert MTB/Rif depistate cu rezistență RMP
3.2.Număr persoane examinate prin metoda LPA (GenoType)
3.2.1. Număr personae examinate
prin LPA MTBDRplus, depistate MDR
327
328
Fișa 14. Numărul persoanelor cu TB cărora li s-au efectuat examene bacteriologice pentru monitorizarea tratamentului
Indicatorul
Luna
B. Monitorizare
I
II
II
IV
V
VI
VII
VIII
IX
X
XI
XII
Total anual
1.1.Nr persoane cărora li s-au efectuat examinări prin met convențională (microscopie și
cultură LJ)
1.2.Nr persoane carora li s-a efectuat examen prin met convențională ABG-LJ linia I
1.2.1. Număr persoane cu ABG linia I depistate MDR
1.3.Nr persoane cărora li s-au efectuat examinări prin met convențională ABG LJ linia I+
linia II
1.3.1. Număr persoane cu ABG linia I+ linia II depistate MDR
1.3.2. Număr persoane cu ABG linia I+ linia II depistate XDR
2. Nr persoane cărora li s-au efectuat cultura și ABG folosind medii lichide
2.1. Nr persoane cărora li s-a efectuat cultura folosind medii lichide
2.2. Nr persoane cărora li s-a
efectuat ABG folosind medii lichide
Indicatorul
Luna
B. Monitorizare
I
II
II
IV
V
VI
VII
VIII
IX
X
XI
XII
Total anual
2.3. Nr persoane depistate MDR prin ABG folosind medii lichide
3. Număr persoane cărora li s-au efectuat teste de biologie moleculară
indirecte
pentru
diagnostic de TB
(din culturi)
3.1.Număr persoane examinate prin metoda LPA (GenoType)
3.1.1. Număr persoane examinate prin LPA GenoType MTBDRplus, depistate MDR
APRECIEREA PERFORMANȚELOR TESTELOR DE DIAGNOSTIC
La introducerea de metode noi în practica de rutină, dar și pentru evaluarea periodică a impactului rezultatelor testelor diagnostice folosite în mod curent este utilă calcularea unor indicatori de performanță, cel puțin la nivelul laboratoarelor de referință.
Compararea rezultatelor examenului microscopic și al culturilor, la cazurile noi, investigate pentru diagnostic
Analiza se va face separat pentru cultura în mediul solid și în mediul lichid, pentru fiecare sistem de cultivare.
Se vor analiza exclusiv rezultatele obținute pentru sputa emisă spontan, trimisă în scop diagnostic, la T0, de la pacienții adulți.
a.
Frotiu BAAR pozitiv- cultură pozitivă
b.
Frotiu BAAR pozitiv - cultură neefectuată
c.
Frotiu BAAR negativ- cultură pozitivă
d.
Frotiu BAAR pozitiv- cultură negativă
e.
Frotiu BAAR pozitiv- cultură contaminată
329
f.
Frotiu neefectuat și cultură pozitivă
Cultura este mai sensibilă decât microscopia și este de așteptat să contribuie cu cel puțin 20% la confirmarea bacteriologică a cazurilor de TB pulmonară la adulți.
330
Din datele colectate se calculează următorii indicatori:
Contribuția culturii la diagnostic: (c+f) x 100: (a + b + c + d + e + f)
Contribuția culturii la diagnostic, în plus față de microscopie: c x 100 : (a + c + d + e)
Procentul rezultatelor frotiu pozitiv BAAR și cultură negativă la momentul diagnostic (T0): d x 100: (a + c + d + e)
Acest procent ar trebui să fie extrem de scăzut, de până la 2-3 %. Pacienți cu rezultate persistente de frotiu pozitiv BAAR și cultură negativă la diagnostic sunt de obicei cazuri tratate deja, dar cu formulare de solicitare incorect completate, de aceea este necesară clarificarea situației pacientului. Procentul mai mare se poate datora procedurii agresive de decontaminare sau transportului necorespunzător, întârziat al produselor la laborator.
Semnale de alarmă
Indicatorii care urmează (fișa 15 și fișa 16) se aplică sputelor provenite de la cazurile suspecte de TB pulmonară la adulți, investigate pentru diagnostic, și nu se aplică pentru examinările din perioada de monitorizare.
Fișa 15. Indicatori de performanță pentru culturi
Indicator
Valori acceptate (%)
Valori mai mari, se verifică a :
Valori mai mici, se verifică a :
Contribuția culturii la diagnosticul bacteriologic al TB
20
A
B și C
Procentul rezultatelor frotiu pozitiv BAAR și cultură negativă
2-3
C și D
Nici o acțiune necesară
Procentul tuburilor cu contaminare
2-10
E
F
a: vezi explicațiile în Fișa 16.
Fișa 16. Activități care trebuie investigate în funcție de valorile indicatorilor de performanță pentru culturi
A
Erori la citirea frotiurilor: fals negativ BAAR
Procent mare a cazurilor de TB pulmonară în fază incipientă sau spute de la copii
B
Folosirea inadecvată a cultivării: examinarea unor pacienți care nu sunt suspecți de TB, mai degrabă decât forme incipiente de TB.
C
Întârziere excesivă între colectarea sputei și prelucrarea ei,
Decontaminare agresivă (concentrație prea mare sau contact prelungit cu agentul decontaminant)
Forță relative de centrifugare prea mica sau supraâncălzirea rotorului centrifugii.
Mediu de cultură cu calitate inadecvată (LJ inomogen, coagulat la temperature prea mare, concentrație prea mare a verdelui malachit, pH prea acid), perioadă de expirare depășită.
Incubare la temperature prea mare sau variații ale temperaturii în cursul incubării.
Încadrarea greșită a pacientului în categoria de caz (monitorizare trimisă ca T0)
D
Erori la citirea frotiurilor: fals pozitiv BAAR
E
Păstrarea sputelor la temperatură neadecvată
Întârziere excesivă între colectarea și prelucrarea sputelor
Concentrație mică a substanței decontaminante
Timp de contact prea scurt între sputa și substanța decontaminantă
Deficiențe în procedura de sterilizare
Spațiu aglomerat, cu miscarea persoanelor în zona de lucru, generarea de curenți de aer prin fantele de aerisire sau siatemul de aer condiționat
F
Concentrație prea mare a substanței decontaminante
Timp de contact prea lung între sputa și substanța decontaminantă
Neutralizare incorectă a produsului decontaminat
Concentrație prea mare a verdelui malachit în mediul LJ
Incubare la temperature prea mare sau variații ale temperaturii în cursul incubării.
331
Indicatorii sunt colectați la nivelul LNR și contribuie la evaluarea întregii rețele de laboratoare sub aspectul eficienței, acurateței activității de diagnostic și al cercetării operaționale.
Bibliografie
1.
J. Zinn, A Zalokowski, L. Hunter. Identifying indicators of laboratory management performance: a multiple constituency approach. Health Care Manage Rev, 2001,26(1), 40-53.
2.
TB laboratory quality management systems toward accreditation harmonized checklist. FIND. TB SLMTA/v1.0/00/ Introduction/ TB LQMS.
3.
SR EN ISO 15189: 2013. Laboratoare medicale- cerințe pentru calitate și competență, ASRO.
4.
Compendium of Indicators for Monitoring and Evaluating National Tuberculosis Programs.WHO/HTM/TB/2004.344
5.
Phyllis Della-Latta , Ken Jost,
Glenn D. Roberts, Dale Schwabb, Anthony Tran, Gail Woods, Loretta Gjeltena, Beverly Metchock, Max Salfinger, Julie Tans-Kersten, David Warshauer,
Kelly
Wroblewski.
Mycobacterium
Tuberculosis:
Assessing
Your Laboratory, 2009 Edition
6.
A practical handbook for national TB laboratory strategic plan development. Febr.2014. TB care, USAID, KNCV, IUATLD, CDC, MSH, GLI.
7.
TB CARE I -EQA Package
http://www.tbcare1.org/publications/tools EQA Overview Module
8.
Daniela Homorodean, Olga Moldovan, Daniela Diculencu, Grațiela Chiriac, Ionela Muntean, coord I.M.Popa. Îndrumar de tehnici de laborator de bacteriologie BK- București 2005, ISBN 973-0-04173-3
9.
CLSI. 2007. GP27-A2 Using Proficiency Testing to Improve the Clinical Laboratory; Approved Guideline - Second Edition. In M. Daniel W. Tholen (ed.). American Association for Laboratory Accreditation
10.
CLSI.
2010.
GP35-A
Development
and
Use
of
Quality
Indicators
for
Process Improvement and Monitoring of Laboratory Quality; Approved Guideline Clinical Laboratory Standards Institute, First Edition ed. University of British Columbia
11.
A-M. Demers, A. Boulle, R. Warren, S. Verver, P. van Helden, M. A. Behr, D. Coetzee. Use of simulated sputum specimens to estimate the specifi city of laboratory-diagnosed tuberculosis. Int J Tuberc Lung Dis 2010,14(8):1016-1023
12.
John Ridderhof, Rosemary Humes, Fadila Boulahbal. External quality assessment for AFB smear microscopy. 2000. PHL, CDC, IUATLD, KNCV, RIT, WHO.
13.
Eurachem: Selection, use and interpretation of proficiency testing (PT) schemes. Second edition 2011.
14.
A. Laszlo, M. Rahman, M. Espinal, M. Raviglione. Quality assurance programme for drug
susceptibility
testing
of
Mycobacterium
tuberculosis
in
the
WHO/IUATLD Supranational Reference Laboratory Network: five rounds of proficiency testing, 1994- 1998. Int J Tuberc Lung Dis 202, 6(9):748-756
14a. Sayera Banu, S. M. Mazidur Rahman, M. Siddiqur Rahman Khan, Sara Sabrina Ferdous, Shahriar Ahmed, Jean Gratz, Suzanne Stroup, Suporn Pholwat, Scott K. Heysell, Eric R. Houptb. Discordance across Several Methods for Drug Susceptibility Testing of Drug-Resistant
Mycobacterium tuberculosis
Isolates in a Single Laboratory. Journal of Clinical Microbiology, January 2014 Volume 52( 1), 156-163 .
14b. David J.Horne, Lancelot M. Pinto, Matthew Arentz, S.Y. Grace Lin, Edward Desmond, Laura L. Flores, Karen R Steingart, Jessica Minion. Diagnostic accuracy and
reproducibility of WHO endorsed phenotypic susceptibility testing methods for first-line and second line antituberculosis drugs. JCM, Febr 2013: 51(2), 393-401.
15.
McCarthy, K., Metchock B., et al. 2008. Monitoring the performance of mycobacteriology laboratories: a proposal for standardized indicators. Int J Tuberc Lung Dis Sept 12:1015-1020.
16.
Rieder HL, Chonde TM, Myking H, Urbanczik R, Laszlo A, Kim SJ, Van Deun A, Trebuck A- The public Health service national tuberculosis reference laboratory and the national laboratory network, IUATLD, 1998.
17.
World Health Organization, 2011. Same-day diagnosis of tuberculosis by microscopy: policy statement. ISBN 978 92 4 150160 6
18.
Concepcion F. Ang, RMT, Myrna T. Mendoza, MD, Heidi R. Santos, Regina Celada- Ong, Carmela P. Enrile, Wilma C. Bulatao and Aileen M. Aguila. Isolation Rates of Mycobacterium tuberculosis from Smear-negative and Smear-positive Sputum Specimen Using the Ogawa Culture Technique and the Standard Lowenstein Jensen Culture Technique.www.researchga te.net, Sept 2014.
19.
Frances C. Tyrrell, Gary E. Budnick, Thor Elliott, Laura Gillim-Ross, Mary V. Hildred, Peggy Mahlmeister, Nicole Parrish, Michael Pentella, Jolene Vanneste, Yun F. (Wayne) Wang, Angela M. Starks . Probability of Negative Mycobacterium tuberculosis Complex Cultures Based on Time to Detection of Positive Cultures: a Multicenter Evaluation of Commercial-Broth-Based Culture Systems. Journal of Clinical Microbiol. October 2012 Volume 50(10): 3275-3282
20.
Ghid metodologic de implementare a programului național de prevenire, supraveghere și control al tuberculozei. București, 2015. ISBN 978 - 973 - 139 - 325 - 4.
ANEXA VII
STANDARDE PENTRU LABORATOARELE TB
CONDIȚII MINIME PENTRU ASIGURAREA SIGURANȚEI ȘI EFICIENȚEI ACTIVITĂȚILOR DIN LABORATOR
2017
Autori:
Daniela HOMORODEAN , medic primar microbiologie, doctor în științe medicale, coordonator al rețelei naționale a laboratoarelor de micobacteriologie, șef Laboratorul Național de Referință Cluj Napoca, Spitalul Clinic de Pneumoftiziologie Leon Daniello Cluj Napoca.
Adriana MOISOIU , medic primar medicină de laborator, doctor în științe medicale, șef Laboratorul Național de Referință București, Institutul Național de Pneumoftiziologie Marius Nasta București.
Abrevieri
ABG: Antibiograma
BAAR: Bacilli acido-alcoolo rezistenți
C-LJ: Cultura în mediul Lowenstein Jensen CEC: Control Extern al Calității
CIC: Control Intern al Calității
CPM: Cabinet de Protecție Microbiologică INH: Izoniazidă
LJ: Mediul Lowenstein Jensen
LNR: Laborator Național de Referință LPA: Line Probe Assay
LRR: Laborator Regional de Referință M: Examen microscopic
MGIT: Mycobacterium Growth Indicator Tubes MDR: Multidrug rezistență
MTB:
Mycobacterium tuberculosis
NTM: Micobacterii netuberculoase PZM: Pirazinamidă
PNPSCT: Programul Național de Prevenire, Supraveghere și Control a Tuberculozei RMP: Rifampicină
SIRE: Streptomicină, Izoniazidă, Rifampicină, Etambutol TB: Tuberculoză
ZN: Ziehl Neelsen
Introducere
Diagnosticul tuberculozei (TB) a cunoscut în ultimii ani progrese remarcabile prin folosirea în practica de rutină a metodelor rapide de diagnostic fenotipic și de biologie moleculară 1, 2, 3 .
Îngrijirea pacienților cu TB începe cu un diagnostic de laborator cu calitate asigurată. Diagnosticul neadecvat, cauzat de unele laboratoare care nu au capacitatea să ofere rezultate cu calitate controlată, poate constitui o barieră în controlul TB 3,4
.
Tehnicile și metodele recomandate pentru folosire în rețeaua națională a laboratoarelor TB trebuie să țină seama de necesitățile PNPSCT și de Strategia națională pentru controlulTB, astfel încât contribuția laboratorului la realizarea obiectivelor să se situeze la nivelul așteptărilor 5,6
.
Introducerea de metode noi în practica de rutină generează situații complexe, fiind necesar să se țină seama de infrastructura laboratoarelor, de posibilitatea realizării condițiilor de biosiguranță corespunzătoare gradului de risc, validarea echipamentelor și asigurarea întreținerii acestora, asigurarea
furnizării
neîntrerupte
a
reactivilor
și
materialelor
consumabile
necesare, managementul fiecărui laborator în parte și a rețelei de laboratoare ca un întreg, cu realizarea unui sistem de asigurare a calității la toate nivelurile. De asemenea, este necesară asigurarea resurselor umane adecvate pentru situația nou creată 3 .
1.
Structura și funcțiile rețelei laboratoarelor de micobacteriologie
Pornind de la obiectivele Strategiei naționale pentru controlul TB 6 , față de 105 laboratoare funcționale în rețeaua de laboratoare în anul 2014, până în anul 2020 vor trebui să ofere rezultate cu calitate asigurată, la nivelul necesităților PNPSCT, un număr de 40 - 45 laboratoare (fig 1).
Figura 1. Structura actuală și cea de perspectivă a rețelei de laboratoare TB.
Existența rețelei laboratoarelor permite 5 :
a.
aplicarea tehnicilor recomandate de PNPSCT la nivelul întregii țări, cu rezultate comparabile între laboratoare;
b.
asigurarea unor investigații speciale disponibile numai în laboratoarele specializate (ex. testarea sensibilității tulpinilor, teste de biologie moleculară, identificarea speciilor de micobacterii);
c.
obținerea informațiilor necesare planificării și evaluării activității la toate nivelurile;
d.
obținerea informațiilor privind activitatea de diagnostic și identificarea eventualelor deficiențe, cu aplicarea de măsuri corective;
e.
aprecierea tendințelor (ex: a confirmărilor bacteriologice, care este unul din indicatorii de performanță pentru programul de control al TB)
f.
asigurarea controlului intern și extern al calității diagnosticului bacteriologic al TB. Categoriile de analize și activitățile care trebuie să fie asigurate de laboratoarele rețelei sunt 5 :
Laboratoare de nivel II :
examenul microscopic
pentru evidențierea bacililor acido-alcoolo-rezistenți (BAAR) și
cultura micobacteriilor în mediul solid Lowenstein Jensen , cu
identificarea obligatorie
a germenilor
din
complexul
M.
tuberculosis.
Dacă
există
condiții
realizate
pentru asigurarea cultivării în mediul lichid în sistem automat, aceste laboratoare pot folosi
suplimentar și această metodă, la cazurile suspecte de TB-MDR sau pentru monitorizarea tratamentului acestora, conform algoritmului de diagnostic 5 .
trimit culturile izolate de la toate cazurile noi și de la cele din cursul monitorizării tratamentului la laboratorul de nivel III, pentru efectuarea antibiogramei (a se vedea algoritmul de diagnostic) (ABG).
trimit la laboratorul de referință, pentru identificare genetică, toate tulpinile de micobacterii netuberculoase (test imunocromatografic Ag MPT64 negativ).
pot trimite spută recoltată de la pacienții suspecți de TB-MDR la laboratorul de arondare teritorială (LRR, LNR), în vederea efectuării de teste de biologie moleculară pentru diagnosticul rapid al TB-MDR.
în zonele cu prevalență mare a TB-MDR sau/și a infecției HIV, a TB la copii, dacă există dotarea (GeneXpert MTB/Rif) și condițiile locale asigurate, pot efectua testarea rapidă pentru evidențierea TB/TB-MDR.
Laboratoare de nivel III -
Laboratoare Regionale de Referință (LRR)
examenul microscopic
pentru evidențierea bacililor BAAR și
cultura micobacteriilor în mediul solid Lowenstein Jensen , cu
identificarea obligatorie
a
bacililor din complexul
M. tuberculosis.
asigură cultivarea în mediul lichid în sistem automat la cazurile suspecte de TB -MDR sau pentru monitorizarea tratamentului acestora, conform algoritmului de diagnostic (pag16).
efectuează ABG MT pentru Rifampicină (RMP) și Izoniazidă (INH) prin metoda concentrațiilor absolute sau prin metoda proporțiilor modificată - în mediul lichid Middlebrook 7H9, în sistemul automat de cultivare disponibil.
efectuează teste de biologie moleculară pentru identificarea complexului MTB și a rezistenței la RMP (GeneXpert MTB/Rif) sau RMP și INH (GenoType MTBDRplus)
coordonează activitatea a 3 - 7 laboratoare județene arondate și din municipiul București;
desfășoară activitate de supervizare, asigurare a calității rezultatelor pentru examenul microscopic pentru laboratoarele arondate.
colaborează cu LNR pentru toate activitățile desfășurate.
Laboratoarele Naționale de Referință
(LNR), din cadrul Institutului de Pneumoftiziologie
„Marius Nasta" și din cadrul Spitalului Clinic de Pneumoftiziologie „Leon Danielo" - Cluj- Napoca:
constituie
nivelul
la
care
se
realizează
coordonarea,
planificarea,
organizarea, monitorizarea și evaluarea rețelei, instruirea personalului cu studii superioare din laboratoarele rețelei.
în plus față de LRR, testează sensibilitatea pentru substanțele anti-TB de linia a II-a prin metode
fenotipice
(metoda
proporțiilor
în
mediul
Lowenstein
Jensen
și
metoda proporțiilor modificată în mediul Middlebrook 7H9 în sistem MGIT 960) și prin teste de biologie moleculară (GenoType MTBDR sl ).
identifică prin metode de biologie moleculară speciile din cadrul complexului
M. tuberculosis , speciile de micobacterii netuberculoase (NTM) comune și efectuează teste de epidemiologie moleculară;
desfășoară activitate de supervizare, asigurare a calității rezultatelor, informare, educare - instruire, management al resurselor și cercetare.Toate laboratoarele, indiferent de nivelul lor, pot participa la activitatea de cercetare științifică.
2.
Tehnici și metode
Toate laboratoarele vor respecta algoritmul de diagnostic recomandat de PNPSCT 5 .
În tabelul I sunt prezentate metodele care sunt folosite în diferite niveluri de laboratoare:
Tabel I.
Metodele care sunt folosite în diferite niveluri de laboratoare
Nivel ul lab
Nr lab
M
C-LJ
C- mediul lichid
AB G
Lini a 1
ABG
linia 1+2
GeneXpert MTB/Rif
GenoType LPA
Epidemio- logie molecula-
ră
LNR
2
x
x
MGIT 960
VersaTrek
x
MP
x
MTBDRplus MTBDR sl
x
LRR
8
x
x
MGIT 960
x
x
MTBDR plus
II
30-
35
x
x
MGIT 960
sau VersaTrek
x
Examenul microscopic
constituie prima etapă în identificarea cazurilor suspecte de TB, prin examinarea a 2 eșantioane de spută 5 .
Cazul de TB este definit dacă se obține rezultat pozitiv BAAR pentru cel puțin unul dintre eșantioanele examinate. Pentru monitorizarea tratamentului se examinează, de asemenea, câte 2 eșantioane de spută la intervalele de timp recomandate de PNPSCT pentru fiecare categorie de caz.
Microscopia convențională (optică) 7
Folosește colorația Ziehl Neelsen (ZN), cu examinare la microscopul optic, cu mărire de 1000x (obiectiv cu imersie) pentru evidențierea BAAR.
Poate să fie realizată direct, prin prelucrarea sputei sau, dacă există dotarea cu centrifugă conformă, după decontaminare/concentrare, prin colorarea frotiului efectuat din sediment.
Microscopia fluorescentă convențională
Folosește lampă cu vapori de mercur ca sursă de lumină. Față de microscopia optică, are avantajul examinării unui câmp microscopic mai larg, folosind obiective de 20x și 40-60x, permițând scurtarea timpului necesar examinării.
Necesită pregătire/instruire specială a personalului de laborator. De asemenea, costul este mai ridicat, comparativ cu microscopia optică.
Este recomandată pentru laboratoare care efectuează zilnic un număr mare de examinări (35- 100) 8,9 .
Poate să fie realizată direct, prin prelucrarea sputei sau, dacă există dotarea cu centrifugă conformă, după decontaminare/concentrare, prin colorarea frotiului efectuat din sediment.
Microscopia fluorescentă cu microscop LED-UV 10
Spre deosebire de microscopia fluorescentă convențională, acest tip de microscop folosește ca sursă de lumină o diodă emițătoare de lumină (LED: Light-Emitting Diode), mai ieftină decât
lampa cu vapori de mercur, nu necesită timp pentru încălzirea lămpii, iar în cazul spargerii nu generează vapori toxici. Performanțele sunt similare cu ale microscopului cu fluorescență convențională, dar are avantajul că examinarea se face în încăpere luminată.
Cultivarea micobacteriilor
Se realizează prin însămânțarea produselor prelucrate în mediul solid Lowenstein Jensen (LJ) și, acolo unde există dotarea și se realizează condițiile de calitate și biosiguranță necesare, în mediul lichid Middlebrook 7H9.
Cultivarea în mediul lichid
va fi folosită în mod special pentru cazurile noi, suspecte de TB- MDR, dar și pentru cultivarea probelor în cursul monitorizării terapiei, pentru obținerea rapidă a culturii în vederea testării sensibilității prin metodă fenotipică sau genetică. Trebuie reținut că se obțin doar rezultate calitative (pozitiv/negativ), spre deosebire de cultivarea în mediul solid LJ, care oferă informații cantitative (număr de colonii) utile pentru monitorizarea evoluției sub tratament. Pentru cazurile aflate la monitorizarea tratamentului, la controlul de la 4 luni este recomandabil ca sputa prelucrată să fie însămânțată și pe mediul lichid ca să avem mai repede informația referitoare la rezistența dobândită, prin testare genetică și fenotipică a culturii obținute.
Examenul microscopic și cultura în mediul LJ rămân obligatorii pentru toate laboratoarele rețelei, indiferent de nivelul laboratorului și de alte tipuri de teste folosite.
Pentru decontaminarea produselor potențial contaminate în momentul recoltării, se folosesc exclusiv metodele recomandate de PNPSCT și numai după ce personalul a fost instruit asupra tehnicii corecte. Introducerea în practica laboratorului a unei metode noi de decontaminare trebuie să fie precedată de instruirea personalului și de validarea metodei. Dacă nu se obțin rezultatele scontate (cel puțin cu calitate similară metodei anterior folosite), ori se renuntă la metodă, ori se reia instruirea personalului. Se solicită asistența tehnică a LNR.
Identificarea microbilor crescuți în mediul solid sau lichid se va face pentru toate culturile care, la verificarea microscopică în colorația ZN, evidențiază prezența de BAAR (indiferent de așezarea acestora în frotiu), folosind testul rapid imunocromatografic Ag MPT64, cu rezultat în 15 minute 11 . Identificarea genetică este rezervată situațiilor în care testul imunocromatografic Ag MPT64 este cu rezultat negativ.
Indiferent de mediul de cultivare folosit și de nivelul laboratorului, este obligatorie identificarea apartenenței bacteriilor izolate la
complexul M. tuberculosis .
Antibiograma
ABG
pentru substanțele anti-TB de linia I în mediul solid LJ se va limita la INH și RMP, folosind metoda concentrațiilor absolute. Testarea în mediul lichid Middlebrook 7H9 în sistem automat se va face față de SIRE și eventual la PZM în LNR în sistem Bactec MGIT 960 și la RIE
în cazul sistemului VersaTREK. LNR vor testa și substanțele anti-TB de linia a doua, atât în mediul solid, cât și în mediul lichid (în sistem MGIT 960).
Este de reținut că reproductibilitatea rezultatelor este foarte bună pentru RMP și INH, dar mai slabă pentru SM și EMB, de aceea mono-rezistența izolată doar la acestea din urmă trebuie interpretată cu prudență 12,12a .
Toate laboratoarele care efectuează ABG trebuie să participle la scheme de control extern al calității/comparare între laboratoare, pentru a dovedi și a putea menține calitatea rezultatelor 12 .
Metodele de biologie moleculară
Metodele moleculare
de diagnostic pot fi folosite ca
test direct
(din proba recoltată de la bolnav)
exclusiv pentru cazurile noi,
care nu au început tratamentul anti-TB sau sunt în primele 3 zile de tratament, deoarece se bazează pe detectarea ADN-ului bacterian și nu se poate face distincție între bacteriile vii (viabile) și cele moarte (neviabile) 13 .
Pentru cazurile aflate în cursul terapiei specifice și care necesită un rezultat rapid referitor la profilul de rezistență se va efectua
test molecular indirect
folosind cultura obținută în mediul lichid sau solid.
Se vor folosi metode de identificare simultană a complexului
M . tuberculosis
și a rezistenței la RMP sau și a rezistenței la RMP și INH. La nivelul LNR se va testa genetic rezistența la substanțele anti-TB de linia a doua, și se identifică speciile de micobacterii în cadrul complexului
M . tuberculosis
sau speciile comune de NTM 14 .
Metodele de epidemiologie moleculară
vor fi folosite în LNR pentru stabilirea filiației cazurilor din focarele de TB.
Indiferent de nivelul laboratoarelor, tehnicile și metodele recomandate trebuie să fie folosite de personal calificat, suficient numeric pentru sarcinile și responsabilitățile pe care le are de îndeplinit, instruit și verificat pentru calitatea rezultatelor obținute.
3.
Conditii minime pentru asigurarea siguranței și eficienței activităților din laborator
BiosiguranJa
Deoarece
Mycobacterium tuberculosis
este încadrat în grupul 3 de bacterii patogene din cauza riscului pe care îl reprezintă pentru persoanele care sunt expuse profesional sau accidental, este necesar ca toate activitățile de laborator să se realizeze în condiții controlate, cu nivel de biosiguranță adecvat (1, 2 sau 3), care asigură protecția personalului și a mediului.
Spațiul laboratorului trebuie să fie astfel dimensionat și structurat încât să asigure realizarea de analize de calitate, activitatea să se desfășoare în mod fluent și să prevină riscul contaminării încrucișate a probelor, contaminarea mediului sau a personalului. Trebuie să se asigure circuite funcționale pentru clienți/solicitanți, probe, personal și deșeurile provenite din prelucrarea probelor 15 . Compartimentul pentru diagnosticul TB trebuie să fie separat de bacteriologia non- TB, dotat cu echipament care să poată susține toate activitățile în condiții de biosiguranță 16 .
În timpul activităților de diagnostic se generează cantități diferite de aerosoli infecțioși în funcție de metoda folosită dar, mai ales, în funcție de cantitatea de micobacterii conținută în materialul prelucrat.
Fiecare laborator trebuie să-și evalueze activitățile prin prisma riscului pe care îl prezintă pentru transmiterea TB, cu identificarea zonelor care necesită, în afară de accesul restricționat, echipament pentru protecția personală.
În aprecierea riscului se ține seama de cantitatea de micobacterii conținută în materialul prelucrat (spută, fluid al corpului sau suspensie bacteriană din cultură), manopera care trebuie efectuată și gradul în care aceasta poate fi generatoare de aerosoli, numărul manevrelor generatoare de aerosoli pentru fiecare metodă, volumul de lucru al laboratorului, profilul epidemiologic al pacienților pentru care se efectuează testele și starea de sănătate a personalului din laborator.
Trebuie să existe plan pentru controlul infecției, cu reguli pentru realizarea programului de curățenie, dezinfecție, colectarea, neutralizarea și eliminarea deșeurilor în funcție de natura
lor 17,18a,19,20 .
Cerințe minime:
Trebuie ca laboratorul de micobacterilogie să
fie dotat
cu
cabinet
de protecție microbiologică (CPM) de clasa II sau I și toate activitățile care presupun mânuirea de material cu conținut de micobacterii să se realizeze în interiorul acestuia.
Dacă este folosită centrifuga pentru concentrarea probelor, aceasta trebuie să aibă sistem de protecție anti aerosoli.
Accesul în laborator trebuie să fie controlat.
Personalul trebuie să fie instruit asupra riscului de infecție și a manoperelor corecte, să lucreze cu calm, să reducă la minim cantitatea de aerosoli generați în timpul lucrului.
Personalul trebuie să poarte echipamentul de protecție individuală recomandat pentru fiecare tip de activitate.
Cabinetele de protecție microbiologică (CPM)
sunt concepute pentru a proteja personalul, mediul înconjurăor sau/și produsele prelucrate
folosesc filtre de mare eficiență în sistemul de exhaustare sau recirculare a aerului.
filtrele HEPA (sau filtre ULPA) rețin particulele cu diametrul > 0.3µm (respectiv >0,1 µm), cu o eficiență de 99,97 % (respectiv 99.99%). Pentru activitatea de rutină din laboratorul TB sunt recomandate CPM cu filtre tip HEPA.
în bacteriologia TB se folosesc cabinetele de clasa II și I 2,14
necesită întreținere și verificarea vitezei fluxului de aer pentru asigurarea funcționării în parametri optimi
este necesară verificare și certificare anuală a funcționării în paramentri de protecție
este necesară schimbarea filtrelor conform recomadării producătorului
așezare - departe de căile de acces, centrifugi; nu se lucrează cu fereastra deschisă; nu se deschide ușa în timpul lucrului; nu se circulă prin spatele celui care lucrează deoarece perdeaua protectoare de aer este fragilă
în interior se pun numai lucruri strict necesare; nu se amestecă în aceeași zonă materiale curate, sterile, cu deșeurile infecțioase: stânga-zonă curată, în față- zona de lucru; la dereapta -zona cu deșeuri infecțioase.
flacăra de gaz crează turbulențe în interior, deci este preferabil lucrul cu materiale de unică folosință
materialul infecțios se ține la mai mult de 15 cm de deschiderea frontală, cu flacoanele în poziție oblică, nu vertical
nu se țin deschise în același timp mai multe recipiente, iar cele cu material infecțios sunt închise cât mai repede.
Pentru toate laboratoarele:
La pregătirea frotiurilor, este preferabilă utilizarea anselor de unică folosință în locul anselor metalice reutilizabele care ar trebui sterilizate prin flambare.
Dacă totuși nu există posibilitatea folosirii acestora, flambarea anselor metalice trebuie să se facă într-un microincinerator sau la flacăra unui bec Bunsen protejat, iar bucla ansei metalice reutilizabile se descarcă înainte de sterilizare prin rotire într-un amestec de nisip și alcool.
Nu este permisă încălzirea sau fixarea la flacără a frotiurilor înainte ca ele să se fi uscat complet la aer.
Factori care cresc riscul infecției în laborator:
Lucrul în arii cu ventilație necorespunzătoare.
Iluminare slabă a zonei de lucru.
Utilizarea unor CPM necertificate, întreținute necorespunzător.
Echipament pentru protecție personală neconform (halat cu mâneci scurte, închis în față, mască chirurgicală)
Mediu cu mult praf care poate bloca filtrele CPM.
Manevrare defectuoasă, neglijentă, a probelor, cu formare de aerosoli.
Nu sunt luate toate măsurile de siguranță la vortexarea/agitarea probelor.
Spargerea în timpul centrifugării a tuburilor conținând prelevate clinice.
Formarea de aerosoli la deschiderea capacului blocat al unei centrifugi.
Funcționarea defectuoasă a sistemelor de răcire sau de încălzile.
Folosirea tehnicilor microbiologice corecte este esențială pentru reducerea la minim a riscului de formare a aerosolilor infecțioși.
Pentru laboratoarele cu risc mediu și mare de infecție (efectuarea culturilor, identificarea culturilor, efectuarea ABG):
Este interzisă eliminarea forțată a lichidului din pipetă.
Este interzisă barbotarea (suflarea forțată a aerului într-un lichid cu conținut potențial infecțios).
La pipetarea unui reactiv într-un lichid potențial infecțios, pipeta se plasează în apropierea peretelui intern al marginii superioare a recipientului și lichidul se împinge ușor pentru a se prelinge în interior.
Centrifugarea unei probe sau a unei culturi trebuie făcută într-un rotor cu capac de siguranță pentru a preveni împrăștierea aerosolilor din centrifugă în incinta laboratorului. Capacele cuvelor rotorului trebuie deschise în interiorul CPM.
După manevrele de centrifugare, vortexare sau după agitarea manuală a probelor, recipientele care le conțin trebuie să fie plasate în interiorul CPM și lăsate în repaos pentru cca 10 minute pentru a permite depunerea aerosolilor înainte de deschiderea recipientelor.
Niciodată nu se vortexează sau agită manual un tub deschis; trebuie întotdeauna să ne asigurăm că filetul capacului este bine strâns. Niciodată nu se vortexează sau agită manual recipiente cu dop de vată sau cu dop de cauciuc.
Trebuie să ne asigurăm că la decantarea lichidelor tuburile sunt ținute înclinat, astfel încât lichidul să se poată scurge, iar la depunerea recipientului în vasul colector al deșeurilor nu se formează stropi.
Zonele de lucru : Laboratorul trebuie să fie împărțit în arii curate și arii potențial contaminate.
Ariile
curate
sunt
destinate
activităților
administrative
și
preparării materialelor necesare pentru procedurile de lucru.
Laboratorul trebuie să fie curat și liber de materiale și echipamente care nu sunt necesare activității de rutină.
Suprafețele de lucru trebuie decontaminate după orice manevră formatoare de stropi potențial infecțioși și la terminarea lucrului.
Personalul de laborator
Erorile umane și slaba pregătire tehnică a personalului pot compromite măsurile de biosiguranță.
Tot personalul trebuie să fie instruit pentru respectarea atât a bunelor practici de laborator, cât și a procedurilor operaționale din manualul de control al infecțiilor în laborator.
Instruirile pentru controlul infecțiilor trebuie să cuprindă informații referitoare la practicile de biosiguranță pentru a reduce la minim riscul de inhalare, ingerare sau inoculare, precum și informații privitoare la colectarea, decontaminarea, depozitarea materialului infecțios și eliminarea deșeurilor din laborator 17,18, 18a.
Trebuie reținut că:
existența reguluilor și a procedurilor nu conferă protecție prin ele însele, acestea trebuind să fie însușite și aplicate corect în activitatea de rutină.
este necesară verificarea periodică a nivelului de cunoștințe teoretice și practice referitoare la tehnicile corecte de lucru și aplicarea de rutină a măsurilor de biosiguranță prin folosirea de chestionare și observarea directă.
folosirea incorectă a CPM expune operatorul la risc.
Dezinfecția și curățenia
Dezinfectanții recomandați pentru laboratorul de micobacteriologie sunt cei care conțin fenol, clor și alcool.
Pentru că
fenolul
este iritant pentru ochi, piele și mucoase, în locul lui se folosesc derivații fenolici în soluții apoase de 5%.
Clorul
(hipocloriții) se folosește în soluție cu concentrație de 5%, care poate fi diluată în
apă pentru a obține soluții finale de lucru de 1%. Soluția concentrată de clor poate fi păstrată într-un loc bine aerisit și la întuneric pentru o perioadă de 3 luni.
În soluțiile de lucru, diluate, clorul este instabil, deci se prepară zilnic; cantitatea nefolosită din ziua precedentă se îndepărtează la deșeuri chimice; nu se amestecă soluție veche cu soluție proaspătă . Fiind foarte corozive, soluțiile de clor nu sunt indicate pentru dezinfecția componentelor metalice. Soluția de lucru de hipoclorit de sodiu cu concentrație de 1% se prepară amestecând 20 ml din soluția cu concentrație de 5%
cu 80 ml apă distilată; sau 4 ml din soluția de hipoclorit de sodiu în concentrație de 25% cu 96 ml apă distilată.
Alcoolii, etanolul sau izopropil alcoolul
trebuie folosiți în soluție de 70°. Alcoolii sunt volatili și inflamabili și este interzisă folosirea lor în apropierea flăcării. Soluțiile de alcooli se păstrează în recipiente
bine
închise
spre
a
preveni
evaporarea.
Aceste
recipiente
trebuie
etichetate corespunzător și nu se autoclavează.
Alcoolul de 70° se utilizează pentru dezinfecția curentă a CPM.
Soluția de formalină
pentru folosirea în vaporizatorul CPM se prepară astfel: 130 ml formalină 38-40% se amestecă cu 260 ml apă distilată. Rezultă 390 ml soluție apoasă de lucru pentru vaporizator.
Colectarea deșeurilor rezultate din activitățile laboratorului trebuie să se facă urmând procedurile scrise care se conformează reglementărilor referitoare la curățenie, dezinfecție și colectarea deșeurilor medicale
17,18 .
Fiecare laborator trebuie să aibă proceduri scrise referitoare la conduita în caz de accident cu potential infecțios.
Asigurarea calităJii
Activitatea de asigurare a calității și îmbunătățire a ei are ca scop motivarea personalului din laborator și ajută laboratorul în relațiile sale externe (factori de decizie, finanțatori, organizații de certificare/acreditare) 21,22 . Numărul laboratoarelor care implementează standardul de calitate pentru laboratoare ISO 15189 este un indicator al calității pentru rețeaua de laboratoare 21 .
Indiferent dacă sunt sau nu acreditate conform ISO 15189, toate laboratoarele rețelei trebuie să efectueze CIC pentru toate testele și metodele aplicate și să păstreze documente doveditoare. De asemenea, este obligatorie participarea la scheme de comparare interlaboratoare (CEC), cu documentarea corespunzătoare.
Pentru a lua în considerare rezultatele oferite de un laborator, acesta trebuie să obțină la CEC concordanță de cel puțin 90% a rezultatelor pentru examenul microscopic și cultură. Pentru ABG fenotipică la RMP concordanța trebuie să fie de cel puțin 95%, iar pentru INH cel puțin 90%. 12,12a
Concordanța rezultatelor testelor genetice cu cele fenotipice trebuie să depășească 90%.
Rezultate concordante între 80-90% denotă deficiențe de tehnică și necesită corectare imediată prin instruirea/reinstruirea personalului în LNR. Concordanța sub 80% nu este acceptabilă pentru nicio metodă sau tehnică și este necesară verificarea imediată a condițiilor de lucru din laborator și pregătirea teoretică și practică a personalului.
Timpul de diagnostic
TB, boală infecțioasă pentru care există tratament specific, are șanse maxime de vindecare dacă este diagnosticată precoce și tratată corect. Timpul de diagnostic include, pe de o parte, intervalul de timp de la apariția simptomelor până la prezentarea la consult medical, iar pe de altă parte, intervalul de timp dintre recoltarea produselor patologice și obținerea rezultatelor testelor de laborator
3,23,24,25 . Timpul de diagnostic, din perspectiva laboratorului, este calculat de la data recepției probelor de la pacienți în laborator (tabelul II).
Tabel II.
Timpul de diagnostic
Testul
Limite de timp acceptabile
Examenul microscopic pentru evidențierea BAAR
24 de ore
Cultura în mediul LJ
3-8 săptămâni
Cultura în mediul lichid
1-3 săptămâni (6 săptămâni pentru rezultatele negative)
Identificarea culturii pozitive
Imediat după pozitivare
ABG mediul lichid
14 zile de la data culturii pozitive
ABG linia întâi, mediul solid
30 zile de la data culturii pozitive
ABG linia a doua
4 săptămâni de la data culturii pozitive
Testele de biologie moleculară pentru diagnostic
48 ore
Rezultatele testelor trebuie comunicate clinicianului (telefonic, intranet) imediat după validarea lor, în mod special pentru cele pozitive la examenul microscopic, cultură, test genetic sau fenotipic de sensibilitate. Se eliberează imediat și buletinul semnat de către șeful de laborator care a validat rezultatele.
Rezultatele trebuie, de asemenea, să fie înregistrate imediat și în baza națională de date a PNPSCT pentru cunoașterea în timp real a situației din țară.
Întârzierea diagnosticului are impact în dinamica transmiterii, a măsurilor de prevenire și în controlul infecțieiTB, putând fi unul dintre factorii decisivi în controlul TB, de aceea sunt necesare măsuri pentru scurtarea timpului de diagnostic în ansamblu.
Resursele umane
Corectitudinea rezultatelor analizelor efectuate de un laborator poate fi influențată de mai mulți factori, dintre care cel mai important este factorul uman 15 .
Calificarea și numărul personalului necesar în fiecare laborator sunt dependente de funcțiile și responsabilitățile care îi revin în cadrul laboratorului, dar și al rețelei de micobacteriologie.
Pentru realizarea obiectivelor PNPSCT în condiții de diagnostic cu calitate asigurată, este necesară încadrarea corespunzătoare cu personal calificat, în acord cu volumul de lucru realizat și estimat.
Particularitatea activității în laboratoarele de micobacteriologie constă în faptul că 15 :
numărul de examene bacteriologice/pacient este standardizat,
necesarul de examene bacteriologice se poate estima pentru perioade îndelungate de timp,
cantitatea de muncă poate fi echitabil repartizată în cadrul laboratorului,
personalul acestor laboratoare este instruit special pentru folosirea tehnicilor standardizate de lucru pentru diagnosticul bacteriologic al TB,
personalul este instruit pentru a înțelege semnificația și consecințele rezultatelor eronate,
personalul lucrează în concordanță cu sistemul de management al calității implementat în cadrul rețelei laboratoarelor de micobacteriologie.
Numărul frotiurilor colorate ZN examinate zilnic de către un microscopist nu trebuie să depășească 20 3 , datorită oboselii care se instalează și a riscului de deteriorare a calității rezultatelor. Totuși, calitatea poate fi menținută doar dacă microscopistul examinează săptămânal cel puțin 10-15 frotiuri 3 .
Activitatea de diagnostic trebuie să fie asigurată fară întrerupere, motiv pentru care este necesar ca într-un laborator să existe mai multe persoane instruite și implicate în activitatea zilnică pentru tehnicile de lucru folosite.
La stabilirea necesarului de instruire trebuie avute în vedere 9 :
deficiențele în stăpânirea tehnicilor de lucru (apreciate prin participarea la scheme de comparare interlaboratoare, CIC - cu evaluarea periodică a indicatorilor realizați, observarea directă),
personal nou angajat, care necesită instruire referitoare la normele de biosiguranță și pregatire teoretică și practică pentru metodele pe care le va efectua,
introducerea de metode noi în practica de rutină,
achiziția de echipament nou,
modificări în situația epidemiologică locală,
modificarea statutului și responsabilităților laboratorului.
Atragerea de personal spre laboratoarele de micobacteriologie se poate realiza prin introducerea unui modul dedicat diagnosticului TB în curricula de învătământ a medicilor rezidenți, a biologilor/chimiștilor și asistenților de laborator.
4.
Algoritmul de diagnostic al tuberculozei
În activitatea de diagnostic trebuie să se țină seama de algoritmul de diagnostic recomandat de PNPSCT
5
(fig. 2).
În funcție de dotarea laboratorului, experiența personalului și solicitarea clinicianului, ținând seama de categoria de caz, se va selecta calea de urmat pentru fiecare situație:
a.
Produsele
provenite
de
la
toate
cazurile
(cazuri
noi,
recidive,
monitorizare)
se
prelucrează obligatoriu pentru examen microscopic și cultură pe mediul LJ , indiferent
ce
alte
metode
se
pot
folosi
într-un
laborator.
Se
prelucrează
și
se însămânțează pe mediul LJ toate tipurile de produse patologice, cu excepția sângelui pentru hemoculturi, care necesită sistem special de cultivare (centrifugare-liză).
b.
Este
obligatorie
folosirea
testului
imunocromatografic
Ag
MPT64
pentru confirmarea apartenenței culturilor la
complexul M. tuberculosis,
atât pentru culturile pozitive din mediul lichid, cât și pentru cele din mediul solid . Culturile cu rezultat negativ la acest test se trimit la LNR de arondare pentru identificare, cu această mențiune. Se va menționa și produsul patologic pentru care s-a facut cultura și rezultatul semicantitativ al examenului microscopic și al culturii din mediul solid sau dacă este pozitiv doar în mediul lichid .
c.
Dacă este un caz
eligibil pentru cultivare în mediul lichid , respectiv
suspect de tuberculoză
cu
rezistență
( contact
cu
un
caz
MDR,
abandon
repetat,
recidivă, colectivitate supraaglomerată, persoană fără adăpost),
pacient infectat HIV suspect de TB, copil suspect de TB
,
cel puțin unul dintre produsele prelucrate se va însămânța atât pe două tuburi cu mediul LJ cât și un tub cu mediul lichid în sistem automat (celălalt produs însămânțându-se doar pe mediul LJ).
d.
Se exclud
de la însămânțarea în mediul lichid în sistem MGIT 960 urina și sângele (pentru acesta din urmă se folosesc sisteme speciale).
e.
Produsele pozitiv BAAR se pot testa genetic prin test direct
pentru confirmarea MTB și evidențierea modificărilor indicatoare de rezistență la RMP sau RMP/INH (GeneXpert MTB/Rif, respectiv GenoType-MTBDRplus).
Cazurile eligibile:
suspect de TB cu rezistență
14
(
contact
cu
un
caz
MDR,
abandon
repetat,
recidivă,
colectivitate supraaglomerată, persoană fără adăpost),
pacient infectat HIV suspect de TB, copil suspect de TB.
f.
În cazurile HIV pozitiv sau spută de la copii, se pot testa genetic
(folosind GeneXpert MTB/Rif)
și cazuri negative BAAR la microscopie.
g.
Culturile pozitive după 4 luni de la începerea tratamentului și toate culturile izolate după fiecare 6 luni de la ABG anterioară
se testează genetic pentru detectarea rezistenței RMP/INH și prin metodă fenotipică rapidă folosind mediul lichid în sistem automat, urmată de metodă convențională (metoda proporțiilor în mediul Lowenstein Jensen), față de substanțele anti-TB de linia I și linia II. Testarea folosind cele două metode se va menține până la câștigarea experienței necesare obținerii unor rezultate de încredere la testarea în mediul lichid.
h.
Nu se face test genetic direct
pentru produsele recoltate în cursul monitorizării, indiferent de rezultatul examenului microscopic, rezultatele nefiind concludente. Pentru aceste cazuri
se poate face test genetic indirect
(i)
folosind cultura din mediul lichid sau mediul solid , urmat de testele fenotipice pentru confirmarea rezistențelor.
BAAR POZITIV
MTB pozitiv
Sensibil
Mono-rezistență R/H , MDR
LPA- linia 2
ABG- linia (1+2)- MP
LPA/Xpert
Cultura: mediul solid sau /și lichid: identificare obligatorie cu test
rapid Ag MPT64
Testare HIV
Examen microscopic
BAAR NEGATIV
MTB negativ
Se asigură măsuri de control al infecției la recoltare si transport la laborator
Pacient suspect TB Sputa
Sensibil
ABG-LJ/lichid- RH LPA-RH
Figura 2. Algoritm de selectare a cazurilor pentru teste rapide fenotipice și de biologie moleculară
LEGENDĂ: LPA
= Geno Type, line prabe assay,
Xpert
= GeneXpertMTB/Rif,
LJ=
cultură pe mediul solid Lowenstein Jensen,
MGIT =
sistem automat de cultivare în mediul lichid, MGIT 960 sau VersaTrek;
Linia 1 = medicamente antit-TB de linia I-a,
Linia 2=
medicamente anti-TB de linia a II-a; MP= metoda proporțiilor.
i.
Cultura pozitivă de la T 0
pentru c azul nou microscopic negativ, contact cu un caz TB -
MDR
se trimite la un laborator care are în dotare echipament GenoType-LPA sau GeneXpert pentru examinare preliminară. Dacă se evidențiază modificări sugestive pentru rezistență la RMP sau/și INH, laboratorul respectiv trimite imediat cultura respectivă la LNR de arondare pentru a fi testat prin metodă rapidă (GenoType MTBDRsl) și metodă convențională față de substanțele anti-TB de linia I și linia II.
j.
Pentru pacienții cu rezistență confirmată la RMP (GeneXpert) sau TB-MDR (GenoType MTBDRplus) prin test direct, trebuie efectuată imediat testarea moleculară pentru linia a doua (GenoType MTBDRsl) ca test initial, pentru orientarea rapidă a terapiei, în loc de testarea fenotipică pentru detectarea rezistenței la fluoroquinolone. 14a
Culturile de la
pacienții TB-MDR cunoscuți se trimit imediat după izolare la LNR de arondare și se
efectuează
test
genetic
indirect
pentru
detectarea
rezistenței
la aminoglicozide/polipeptide și fluoroquinolone
(pentru orientarea rapidă a terapiei)
și se face ABG pentru substanțe de linia I și linia a II-a prin metodă fenotipică rapidă (mediul lichid) și prin metodă convențională (mediul solid). ( Rugăm revedeți și punctul g, referitor la intervalul de timp între testări)
.
k.
Orice
cultură
pozitivă
(mai
mult
de
10
colonii)
crescută
după
conversia bacteriologică
se va testa prin
metodă genetică indirectă
(GenoType-LPA) și
metodă fenotipică rapidă - mediul lichid, pentru substanțe de linia I;
l.
Pentru
supravegherea dinamicii prevalenței MDR se
vor efectua teste fenotipice de sensibilitate la
INH și RMP la
toate culturile pozitive cu mai mult de 10 colonii, obținute din produsul recoltat înainte de începerea tratamentului ,
chiar dacă testul genetic direct efectuat nu a pus în evidență modificări sugestive de rezistență. ABG se efectuează în laboratoarele de nivel III care au implementat sistemul de management al calității, care au obținut rezultate excelente și foarte bune la controlul extern al calității cel puțin pentru RMP și INH.
Este posibil să fie semnalate situații epidemiologice noi, particulare pentru o anumită zonă, de aceea se vor lua în considerare recomandările referitoare la triajul pacienților, metodele folosite, a relațiilor dintre clinică și laborator, care vor fi comunicate de către PNPSCT.
5.
Înregistrări. Formulare de solicitare. Registre.
Pentru solicitarea examinărilor vor fi folosite formularele recomandate de PNPST, anexele 8, 9 și 11 din Ghid metodologic de implementare a Programului Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberculozei. București, 2015
5 ., sau ultima revizie a sa, recomandată de PNPSCT
Bibliografie
1.
F. Drobniewski, V. Nikolayevskyy, Y. Balabanova, D. Bang, D. Papaventsis. Diagnosis of tuberculosis and drug resistance: what can new tools bring us? INT J TUBERC LUNG DIS 16(7):860-870.
2.
Karin Weyer. Review of WHO TB diagnostics policy development. GLI Meeting: Les Pensierees, Annecy, France : 17 -19 April 2012.
3.
WHO.Policy Framework for Implementing New Tuberculosis Diagnostics, 2011, March.
4.
A Roadmap for Ensuring Quality Tuberculosis Diagnostics Services within National Laboratory Strategic Plans Prepared by The Global Laboratory Initiative Advancing TB Diagnosis. First Issue 20th January 2010, World Health Organization 2010.
5.
Ghid metodologic de implementare a Programului Național de Prevenire, Supraveghere și Control
al
Tuberculozei.
București,
2015.
ISBN
978□973□139□325□4.
Ordinul Ministerului Sănătății nr. 1171/21.09.2015
6.
Strategia Națională de Control al Tuberculozei în România 2015-2020. Guvernul României Hotărâre nr. 121 din 25 februarie 2015.
7.
De Kantor IN, Kim SJ, Frieden T, and col. Laboratory services in tuberculosis control, part II: Microscopy, WHO/TB/98.258, 1998
8.
Rieder HL, Chonde TM, Myking H, Urbanczik R, Laszlo A, Kim SJ, Van Deun A, Trebuck A- The public Health service national tuberculosis reference laboratory and the national laboratory network, IUATLD, 1998.
9.
American Thoracic
Society/Centers
for Disease Control
and
Prevention/Infectious Diseases Society of America: Controlling Tuberculosis in the United States. Am J Respir Crit Care Med Vol 172. pp 1169-1227, 2005 DOI: 10.1164/rccm.2508001, Internet address:
www.atsjournals.org
10.
WHO. Policy statement on fluorescent light-emitting diode (LED) microscopy for diagnosis of tuberculosis. Geneva, 2010.
http://www.who.int/tb/laboratory/
11.
Andrew J. Brent, Daisy Mugo, Robert Musyimi, Agnes Mutiso, Susan Morpeth Michael Levin, J. Anthony G. Scott1. Performance of the MGIT TBc Identification Test and Meta-Analysis of MPT64 Assays for Identification of the Mycobacterium tuberculosis Complex in Liquid Culture. J.Clin.Microbiol, Dec. 2011, p. 4343-4346 Vol. 49, No. 12;
0095-1137.
12.
Guidelines for surveillance of drug resistance in tuberculosis - 4th ed. WHO/HTM/TB/2009.422
12a. David J.Horne, Lancelot M. Pinto, Matthew Arentz, S.Y. Grace Lin, Edward Desmond, Laura
L.
Flores,
Karen
R
Steingart,
Jessica
Minion.
Diagnostic
accuracy
and reproducibility of WHO endorsed phenotypic susceptibility testing methods for first-line and second line antituberculosis drugs. JCM, Febr 2013: 51(2), 393-401.
13.
Dominguez J, EC Boetger, D Cirillo, F Cobelens, KD Eisenach, S Gagneaux, D Hilleman, R Horsburgh, B Molina-Moya, S Nieman, E Tortoli, A Whitelaw, C Lange. Clinical
implications
of
molecular
drug
resistance
testing
for
Mycobacterium tuberculosis: a TBNET/RESIST TB consensus statement. Int J Tuberc Lung Dis. 2015, 20(1):24-42.
14.
World Health Organization. Policy statement. Molecular line probe assay for rapid screening of patients at risk of multidrug-resistant (MDR) TB. Geneva, 2008.
14a. The use of molecular line probe assays for the detection of mutations associated with resistance to fluoroquinolones (FQs) and second-line injectable drugs (SLIDs). Policy guidance. WHO/HTM/TB/2016.07
15.
Daniela Homorodean, Olga Moldovan, Mihaela Stoian, Mihaela Brojboiu,Grațiela Chiriac, Ionela Sorina Muntean, Domnica Ioana Chiotan, Iuliana Nicolae, Constantin Marica,Nicolae Galie. Organizarea si managementul laboratorului de micobacteriologie, Bucuresti 2008, Ed Totem, ISBN:978-973-0-05558-0.
16.
ORDIN MS nr. 1.301 din 20 iulie 2007 (*actualizat*) pentru aprobarea Normelor privind funcționarea laboratoarelor de analize medicale (actualizat până la data de 2 aprilie 2008*).
17.
HG 856/2002. Clasificarea deșeurilor medicale
18.
Ord MS 261/ 2007. Curățenia Dezinfecția. Sterilizarea.
18a. Ordinul nr. 961/2016 pentru aprobarea Normelor tehnice privind curățarea, dezinfecția și sterilizarea în unitățile sanitare publice și private, tehnicii de lucru și interpretare pentru testele de evaluare a eficienței procedurii de curățenie și dezinfecție, procedurilor recomandate pentru dezinfecția mâinilor, în funcție de nivelul de risc, metodelor de aplicare a dezinfectantelor chimice în funcție de suportul care urmează să fie tratat și a metodelor de evaluare a derulării și eficienței procesului de sterilizare
19.
Tuberculosis Laboratory Biosafety Manual, WHO, 2012.
20.
Friedman C. Newsom W. Basic Concepts of Infection Control. International Federation of Infection Control, 2007.
21.
Linda Oskam, Tjeerd Datema, Paul Klatser..TB laboratory performance indicators to measure the effect of ISO 15189 QMS implementation. KIT Biomedical Research, Amsterdam, The Netherlands,
www.kit.nl
22.
TB Microscopy Network Accreditation. An assessment tool. First English Edition, October 2013. A publication of the Global Laboratory Initiative a Working Group of the Stop TB Partnership.
23.
Chandrashekhar T Sreeramareddy, Kishore V Panduru, Joris Menten, J Van den Ende. Time delays in diagnosis of pulmonary tuberculosis: a systematic review of literature. BMC Infectious Diseases 2009, 9:91 doi:10.1186/1471-2334-9-91
24.
WHO. Noncommercial culture and drug-susceptibility testing methods for screening patients
at
risk
for
multidrugresistant
tuberculosis.
Policy
statement. WHO/HTM/TB/2011.9
25.
S.R.
Ritchie,
A.C.
Harrison,
R.H.
Vaughan,
L.
Calder"
and
A.J.
Morris.
New recommendations
for
duration
of
respiratory
isolation
based
on
time
to
detect Mycobacterium tuberculosis in liquid culture. Eur Respir J 2007; 30: 501-507
ANEXA VIII CONTROLUL TRANSMITERII TUBERCULOZEI ÎN UNITĂȚILE SANITARE DE
PNEUMOFTIZIOLOGIE ȘI ÎN ALTE INSTITUȚII CU RISC DIN ROMÂNIA 2017
Autorii edițiilor anterioare:
Dr. Casandra Butu Dr. Cristian Popa Dr. Cristina Popa Dr. Elmira Ibrahim
Dr. Gilda Georgeta Popescu Dr. Odette Popovici
Dr. Mădălina Dragoș Dr. Valeriu Crudu
Ediție revizuită și adăugită de:
Dr. Grigory Volchenkov Dr. Mădălina Dragoș Dr. Cristian Popa
Dr. Amalia Șerban
Anexa 1 Roluri și responsabilități ale personalului medical în controlul transmiterii TB Anexa 2 Calcularea numărului de schimburi de aer
Anexa 3 Formule de calcul utile și valori de referință în cazul utilizării radiației UV
Anexa 4 Roluri și responsabilități în instalarea, exploatarea și întreținerea dispozitivelor de radiație UV
Anexa 5 Fișa tehnică de întreținere a dispozitivului de radiație ultravioletă (lampă UV) Anexa 6 Metodologia utilizării corecte a măștilor de protecția respirației; teste de etanșeitate Anexa 7 Igiena tusei (materiale informative și educaționale)
Lista abrevierilor:
ABG = antibiogramă
ACH = schimburi de aer per oră (airchanges per hour) ACSM = advocacy, comunicare și mobilizare socială BCG = Bacilul Calmette-Guerin
BK = Bacilul Koch
CE = Comunitatea Europeană CI = controlul infecției
CNAS = Casa Națională de Asigurăril de Sănătate
CNEPSS = Centrul Național de Evaluare si Promovare a Stării de Sănătate CT TB =Controlul transmiterii tuberculozei
DOT = Tratament Direct Observat (Directly Observed Treatment) GFATM = The Global Fund to Fight AIDS, Tuberculosis and Malaria HEPA= High efficiency particulate air
HIV = Human Immunodeficiency Virus INH = isoniazidă
IDR = intradermoreacție (test cutanat) IEC = Informare-Educare-Comunicare
INSP = Institutul Național de Sănătate Publică IGRA = interferon gamma release assay
LNR = Laborator National de Referință
MDR = multi-drog-resistență (resistență la isoniazidă și rifampicină) MS = Ministerul Sănătății
OMS, WHO = Organizația Mondială a Sănătății, World Health Organization PNPSCT = Programul Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberculozei PPD= purified protein derivative (derivat proteic purificat)
PPE=personal protective equipment (Echipament de protecție individual) TB = Tuberculoză
TB MDR = Tuberculoză multidrog-rezistentă TNF = tumor necrosis factor
UIR= unități de izolare respiratorie
UVGI = Ultraviolet germicidal irradiation (radiație ultravioletă cu efect germicid) XDR=Tuberculoză cu rezistență extremă (rezistență la isoniazidă, rifampicină, fluoroquinolonă, injectabil (aminoglicozid)
I.
SCOP
România este țara cu cel mai mare număr de cazuri de TB din Uniunea Europeană, având incidența globală de aproximativ 70% 000 . Chiar dacă procentul de cazuri de TB MDR este de doar 2,5% din cazurile noi de TB, respectiv 10,9% din cazurile TB la retratament, rezervorul de aproximativ 1200 cazuri de TB MDR din prevalență ne încadrează între țările cu cel mai mare număr de cazuri cu TB rezistentă din Europa.
Transmiterea TB este importantă în comunitate, dar și în unitățile medicale; datele disponibile arată că riscul relativ de îmbolnăvire prin
tuberculoză este de 2,8 ori mai mare în rândul personalului din unitățile sanitare față de populația generală.
Scopul acestui material este de a conștientiza asupra riscului de transmitere a TB și de a face recomandări pentru reducerea acestuia în unitățile sanitare și în alte locații cu aglomerări umane din România.
Măsurile de control al transmiterii tuberculozei sunt clasificate în următoarele tipuri: manageriale, administrative, inginerești și de protecție respiratorie.
Prima în ierarhia de control este utilizarea
măsurilor manageriale și administrative
pentru a reduce riscul de expunere a persoanelor la infecția TB. Acest material include politici și proceduri pentru a asigura detecția rapidă, evaluare diagnostică și tratament eficient al persoanelor cu risc de a avea TB.
Al doilea nivel ierarhic este utilizarea
măsurilor inginerești de control
care sunt menite să prevină răspândirea și să reducă concentrarea de nuclee de picături infecțioase (
droplet nuclei)
.
Al treilea nivel ierarhic este utilizarea echipamentului personal de protecție respiratorie în situații de risc mare.
Materialul este în mod expres creat pentru TB, dar are numeroase aplicații comune cu orice altă boală cu transmitere aerogenă.
În România există reglementări legale generale cu privire la supravegherea, prevenția și controlul infecțiilor asociate asistenței medicale, aprobate prin Ordin al Ministrului Sănătății nr. 1101 /2016, dar acesta nu include toate aspectele specfice referitoare la TB, care sunt prezentate în documentul de față.
Documentul de față este destinat managerilor de la toate nivelurile sistemului sanitar, personalului care lucrează în domeniul TB și în alte unități medicale, administratorilor și agențiilor
internaționale,
și
poate
fi
util
pentru
căminele
rezidențiale
pentru
vârstnici, adăposturile sociale, centrele de reabilitate, unitățile de corecție, penitenciare etc.
II.
OBIECTIVE
Cunoașterea măsurilor de controlul al infecției tuberculoase în unitățile medicale și în comunitățile cu risc crescut.
Clasificarea unităților sanitare în funcție de riscul transmiterii tuberculozei.
Implementarea în toate unitățile TB a triajului, separării și izolării pacienților cu risc mare de transmitere a TB;
Introducerea ca regulă de bună practică a măsurilor inginerești (ventilație, lămpi fixe UV), în conformitate cu factorul de risc.
Implementarea programului de protecție respiratorie în toate unitățile cu risc mediu și mare de transmitere a TB.
Creșterea cunoștințelor privind măsurile de control al TB în rândul personalului medical, al celui tehnic și administrativ din unitățile medicale cu risc mare.
Elaborarea de materiale de informare, educare și comunicare pentru pacienți și familiile acestora, cu privire la riscul transmiterii TB și la igiena tusei.
Armonizarea legislației în ceea ce privește prevenția și controlul infecțiilor asociate asistenței medicale.
Reducerea
riscului
transmiterii
nosocomiale
a
tuberculozei
în
rândul
pacienților
și vizitatorilor, precum și a numărului de îmbolnăviri cu TB în rândul personalului medical.
III.
INFORMAȚII GENERALE CU PRIVIRE LA TRANSMITEREA TUBERCULOZEI
Căi prin care se transmite Mycobacterium tuberculosis
Tuberculoza este o infecție cauzată de
Mycobacterium tuberculosis,
microb ce se transmite pe cale aeriană. Când tușesc sau vorbesc, oamenii care au în plămâni leziuni de tuberculoză pot elibera în aer aerosoli cu particule minuscule ce conțin
Mycobacterium tuberculosis . Aceste particule se numesc nuclei de picătură ( droplet nuclei).
Majoritatea au diametrul mai mic de 10 microni, așa încât nu se pot vedea cu ochiul liber.
Nucleii de picătură
pot rămâne în aer timp de multe ore, până când sunt eliminați (prin mișcarea aerului, produsă de ventilația naturală sau mecanică). Există mai multe mecanisme imune naturale care pot proteja eficient căile respiratorii de infecția cu M. tuberculosis: bariera și clearence-ul muco-ciliar, leucocitele, lizozimul, imunoglobinele. Doar particulele de aerosoli de 1 - 10 microni pot ajunge în alveolele pulmonare, particulele mai mari sau mai mici fiind oprite prin forțe aerodinamice în tractul respirator superior. Macrofagele colectează în mod activ aceste particule în alveole, pentru a le omorî și distruge datorită proprietăților specifice ale membranei peretelui celular al M. tuberculosis, acesta poate supraviețui ani de zile în macrofagele alveolare, cauzând infecția latentă sau activă cu tuberculoză. De aceea tuberculoza este numită "infecția macrofagelor alveolare".
Pentru ca TB să se răspândească, trebuie să existe o sursă, o persoană cu tuberculoză activă nediagnosticată și/sau netratată, care produce aerosoli de
Mycobacterium tuberculosis , și o persoană expusă care să inhaleze aerosolii cu d roplet nuceli
care conțin bacterii. Deși de obicei TB nu se răspândește prin contact de scurtă durată, oricine respiră același aer cu o persoană cu TB pulmonară în stadiul în care aceasta este contagioasă este la risc.
Singura cale semnificativă din punct de vedere epidemiologic de transmitere a TB este prin aerul care conține aerosoli de
nucleii de picătură;
orice altă modalitate de transmitere a infecției TB (pe cale digestivă, prin contact direct al mucoaselor sau tegumentelor) este excepțională.
Factori de risc pentru îmbolnăvirea prin tuberculoză (TB)
Unele persoane fac tuberculoză la scurt timp după ce se infectează (în câteva săptămâni), înainte ca sistemul lor imunitar să „învețe" să lupte cu bacilii de tuberculoză. Alți oameni se pot îmbolnăvi după ani de zile, când sistemul lor imunitar este slăbit din alt motiv.
În general, aproximativ 5-10% din persoanele infectate care nu primesc tratament pentru infecția TB latentă vor face tuberculoză la un moment dat în viața lor.
Pentru persoanele cu sistemul imunitar slăbit, în special cele cu infecție HIV, riscul de a face tuberculoză este mult mai mare în comparație cu persoanele cu sistem imunitar normal. Alte cauze care compromit sistemul imun sunt:
ႛ
Abuzul de substanțe (droguri injectabile, alcool)
ႛ
Silicoza
ႛ
Diabetul zaharat
ႛ
Boală renală gravă, dializa renală
ႛ
Greutate corporală scăzută
ႛ
Transplantul de organe
ႛ
Cancerul, boli hematologice maligne
ႛ
Tratamente medicale care deprimă imunitatea, cum ar fi corticosteroizi,medicația anti- TNF alfa sau tratament imunosupresor pentru transplantul de organe
ႛ
Malnutriția de orice fel, inclusiv afecțiuni după gastrectomie, bypass jejuno-ileal etc.
Când este tuberculoza contagioasă ?
TB poate fi contagioasă când este localizată în plămâni sau laringe. Din aceste localizări, generarea de aerosoli infecțioși este mult mai probabilă. Prezența de cavități în plămâni și formele extinse de tuberculoză pulmonară sau laringiană cresc contagiozitatea pacientului. Identificarea
Mycobacterium tuberculosis
prin examen microscopic în sputa pacienților netratați dovedește riscul de transmitere. Formele în care se elimină
bacili prin spută sunt încadrate în clasificarea OMS în categoria de TB pulmonară indiferent dacă sunt localizate în plămân sau căi aeriene superioare.
Tratamentul eficient al TB reduce foarte mult gradul de contagiozitate al pacientului chiar din primele zile după începerea acestuia. Medicamentele antituberculoase se concentrează în spută după primele doze administrate, concentrația lor fiind și mai mare în aerosolii expirați datorită deshidratării acestora.
Tratamentul eficient este tratamentul inițiat rapid după punerea diagnosticului, bazat pe testarea susceptibilității/rezistenței la medicamente. În România, încă nu toți pacienții cu tuberculoză au acces la teste genotipice - GeneXpert și antibiograme fenotipice ce pot evidenția precoce rezistențele medicamentoase.
Dat fiind impactul dramatic al tratamentului eficient asupra contagiozității pacientului, riscul de transmitere a TB este prezent la suspecții de TB, bolnavii nedetectați, nediagnosticați, netratați sau tratați ineficient. În consecință, cea mai mare parte a transmiterii TB în comunitate sau în unitățile medicale apare înainte de inițierea tratamentului.
În general, o persoană cu TB pulmonară sau laringeană nu mai este considerată contagioasă
dacă:
ႛ
a urmat câteva zile de tratament sub directă observație, pe baza rezultatului unui test rapid de identificare a sensibilității / rezistențelor (ex GeneXpert) și
ႛ
prezintă ameliorarea simptomelor (reducerea febrei, creșterea în greutate, diminuarea tusei, etc).
Indicatorul de eficiență al unui tratament antituberculos este negativarea bacteriologică (microbiologică) în microscopie și cultură din sputa colectată în 2 zile diferite, cu una dintre probe recoltate dimineață. Din păcate, acest indicator nu reflectă contagiozitatea după inițierea tratamentului, pentru a fi util pentru întreruperea izolării pacienților: examenul microscopic poate fi uneori pozitiv la pacienți necontagioși (bacili neviabili pot apărea în spută în prima parte a tratamentului) iar intervalul până la obținerea rezultatului culturilor durează o perioadă mult prea mare de timp.
Date fiind dovezile conform cărora contagiozitatea scade după inițierea tratamentului eficient pentru TB, conform spectrului de sensibilitate identificat de testele genetice, acesta poate fi utilizat ca indicator pentru întreruperea izolării.
Un suspect TB trebuie considerat contagios până la finalizarea investigației diagnostice în urma căreia fie se stabilește un alt diagnostic, fie se începe tratamentul antituberculos eficient, conform indicațiilor antibiogramei (genotipice sau fenotipice).
Prevenirea tuberculozei
Vaccinarea BCG și tratamentul tuberculozei latente sunt principalele măsuri care scad evoluția infecției tuberculoase în boală. Aceste subiecte sunt discutate pe larg în Ghidul Metodologic pentru
Implementarea
Programului
Național
de
Prevenire,
Supraveghere
și
Control
al Tuberculozei, aprobat prin Ordinul MS nr. 1171/21.09.2015 cu modificările ulterioare și nu fac obiectul materialului de față.
IV.
EVALUAREA RISCULUI
Evaluarea riscului de transmitere a
Mycobacterium tuberculosis
este primul pas în realizarea planului de control al infecției și dezvoltarea unui program eficient de control al transmiterii TB. Riscul nu este egal în toate unitățile și secțiile. Nivelul de risc variază în funcție de populația deservită, de algoritmul de diagnostic implementat, de eficiența tratamentului pentru TB, tipul clădirii, procedurile efectuate și alți factori. Este important de menționat că un program eficient de control al transmiterii TB, dacă este implementat și este sustenabil, poate reduce substanțial riscul. Prin urmare, transmiterea TB poate fi controlată în mod eficient, chiar dacă riscul este mare.
Este nevoie să existe o persoană responsabilizată pentru realizarea unei evaluări inițiate a riscului în întreaga secție medicală și pentru zone specifice din cadrul unității. În plus, evaluările riscului trebuie făcute pentru categorii de lucrători medicali din fiecare secție.
Clasificarea riscului pentru o unitate medicală, zonă specifică și grup ocupațional specific trebuie să fie bazată pe numărul de pacienți cu TB contagioși la care personalul medical poate fi expus.
Toate programele de control al transmiterii TB trebuie să includă reevaluări continue ale riscului de transmitere, care să aibă ca rezultat cel puțin o actualizare anuală a planului. Frecvența evaluărilor riscului trebuie să se bazeze pe rezultatele evaluărilor anterioare ale riscului și pe evenimentele epidemiologice nou apărute.
Tuberculoza ocupațională (asociată asistenței medicale) în rândul personalului medical este un indicator util al riscului transmiterii TB și al programului de control al transmiterii TB.
Colectarea
și
monitorizarea
datelor
referitoare
la
îmbolnăvirile
la
personal
permit identificarea zonelor și procedurilor cu risc crescut unde trebuie implementate intervenții de control al transmiterii TB menite să reducă riscul și să ducă la evitarea posibilelor eșecuri ale programului.
Pentru monitorizarea TB la personal sunt recomandați doi indicatori: incidența TB ocupațională în rândul personalului medical și riscul relativ. Deoarece numărul absolut de cazuri TB în grupuri mici de referință fluctuează, iar incidența TB ocupațională este relativ redusă, indicatorii trebuie calculați pentru o perioadă de cel puțin 5 ani, conform formulei următoare:
Număr de cazuri noi de TB activă în N ani x 100 000 Incidența TB ocupațională = -----------------------------------------------------------------
# de angajați x N ani
De exemplu, în ultimii 5 ani, dintre 40 de angajați în sănătate, au fost notificate 2 cazuri de TB. Media calculată a incidenței TB ocupaționale va fi de 2000 la 100000:
(2 x 100000) / (40 x 5) = 1000 per 100000.
Pentru a calcula riscul relativ (RR) al TB ocupaționale pentru personalul medical (sau alt grup profesional), se poate folosi următoarea formulă:
Incidența TB ocupațională
RR = ----------------------------------------------------------------------------
Incidența TB în populația rezidentă a județului
De exemplu, dacă incidența TB în județul X este de 50 la 100000, Riscul Relativ de TB ocupațională pentru personalul mai sus menționat va fi
RR = 1000 / 50 = 20.
Înseamnă că riscul de îmbolnăvire cu TB activă pentru angajații din unitatea sanitară este de 20 de ori mai mare față de riscul celorlalți locuitori ai județului X.
Categorii la risc
Clasificarea zonelor sau procedurilor în conformitate cu riscul transmiterii infecției TB se bazează pe probabilitatea de producere de aerosoli care conțin
Mycobacterium tuberculosis
în zonă sau în timpul procedurii. Riscul de infecție depinde și de măsurile de control al transmiterii TB în vigoare. Organizația Mondială a Sănătății propune următoarea clasificare a riscului:
Risc mic
O zonă sau o procedură în cadrul unității sanitare în care probabilitatea expunerii personalului, pacienților sau vizitatorilor la suspecți TB sau la particule infecțioase eliminate sau probe biologice recoltate de la pacienți cu TB este limitată.
Riscul principal în această zonă îl reprezintă expunerea rară și ocazională la un angajat, pacient sau vizitator cu TB.
Risc mediu
O zonă sau procedură din unitatea sanitară în care probabilitatea de expunere a personalului, pacienților și vizitatorilor la suspecți TB sau la particule infecțioase eliminate sau probe biologice recoltate de la pacienți cu TB este moderată.
Cazuri de TB sau procedurile cu risc mediu de TB pot fi prezente în aceste locuri, dar pentru perioade scurte de timp sau din cauze accidentale.
Risc mare
O zonă sau o procedură în unitatea sanitară în care probabilitate de expunere a personalului, pacienților sau vizitatorilor la suspecți TB sau la particule infecțioase eliminate sau probe biologice recoltate de la pacienți cu TB este mare.
Zonele, spațiile și procedurile cu risc crescut sunt acelea în care pot fi prezenți mulți suspecți cu TB sau mulți pacienți cunoscuți cu TB sau se practică proceduri cu risc crescut de
elminare de aerosoli infectanți. Aceste locuri pot avea și un număr mare de suspecți sau pacienți cu TB MDR/ XDR.
Risc foarte mare
O zonă sau o procedură din unitatea sanitară în care probabilitatea de expunere
a personalului, pacienților și vizitatorilor la suspecți TB sau la particule infecțioase eliminate sau probe biologice recoltate de la pacienți cu TB este foarte mare.
Zonele și procedurile cu risc foarte mare sunt acelea unde pot fi prezenți sau supuși unor proceduri cu risc crescut mulți
suspecți infecțioși cu TB (nedetectați) sau mulți pacienți infecțioși cu TB fără tratament eficient anti-TB. Aceste zone pot avea și un număr mare de suspecți sau pacienți cu TB-XDR și TB-MDR.
Deoarece persoanele imunocompromise au un risc foarte crescut de a dezvolta TB activă după infecție, prezența lor în uitatea sanitară crește, de fapt, riscul transmiterii TB.
Nivelul actual de transmitere TB într-o anume unitate sau secție depinde de riscul și de eficiența măsurilor de control al transmiterii TB implementate.
Tabel I: Clasificarea unităților sanitare / secțiilor în funcție de categoriile de risc.
Zone din unitatea sanitară
Risc mic
Risc mediu
Risc mare
Risc foarte mare
Zone administrative
(nu există contact cu pacienți su suspecți - de ex. clădiri separate de cele pentru pacienți)
Zone administrative
(contact limitat cu pacienți sau suspecți sau schimb de aer de la pacienți)
Maternități, secții pediatrice
Unități / servicii HIV
Dispensare, policlinici, ambulatorii
(camere de așteptare și camere de consultații)
Camere de gardă
Secții de terapie intensivă sau secții de medicină internă
Dispensare TB
Secții spitalizare TB
Secții de tratament TB MDR
Secții asistență paliativă TB (pacienți netratați)
Tabel II: Clasificarea procedurilor pe bază de categorie de risc
Procedură realizată în unitatea sanitară
Risc mic
Risc mediu
Risc mare
Risc foarte mare
Microscopie spută
Test molecular direct din spută (GeneXpert)
Chirurgie
(pacienți non-TB)
Radiologie
Spirometrie, terapie respiratorie
Intubare oro-traheală
Proceduri de bronhologie
Cultură pentru Mycobacterium tuberculosis
ABG din specimene concentrate (culturi) pentru Mycobacterium tuberculosis
Testare moleculară din probe vii, concentrate de Mycobacterium tuberculosis
Colectarea sputei
Inducția sputei
V.
ACTIVITĂȚI MANAGERIALE - COORDONARE ȘI ORGANIZARE LA NIVEL NAȚIONAL
1.
Coordonarea activităților de control al tuberculozei (CT TB)
este responsabilitatea:
Ministerului Sănătății - Direcția Generală de Asistență Medicală și Sănătate Publică, Agenția Națională pentru Programe de Sănătate
Institutului Național de Sănătate Publică
Programului Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberculozei (PNPSCT)
Grupului de lucru pentru laboratoare TB
Termenii de referință ai Departamenului de Control al Transmiterii Infecției TB (nivel PNPSCT)
Dezvoltarea și revizuirea anuală a planului de CT TB
Dezvoltarea sau revizuirea ghidurilor tehnice, standardelor și politicilor de CT TB
Monitorizarea implementării planului de CT TB prin stabilirea și monitorizarea indicatorilor de performanță
Medierea integrării activităților de control al infecției TB în activitățile generale de control al infecțiilor
Estimarea bugetului necesar pentru implementarea planului
Dezvoltarea unui plan de formare privind controlul transmiterii TB
Elaborarea de ghiduri pentru menținerea controlului transmiterii TB
Dezvoltarea unui sistem pentru înregistrarea și raportarea cazurilor TB în rândul personalului medical
Integrarea aspectelor specifice de control al infecției TB în reglementările generale cu privire la controlul infecțiilor.
2.
Dezvoltarea resurselor umane și creșterea capacității pentru activitățile de control al infecției
Activitățile specifice de control al transmiterii TB trebuie incluse în fișa postului pentru fiecare angajat medical din domeniul TB. Pentru dezvoltarea abilităților specifice și pentru dobândirea cunoștințelor specifice este nevoie de organizarea unor sesiuni de formare pentru personalul tehnic și cel medical, precum și pentru epidemiologi, manageri și alte categorii de personal. Persoanele-cheie implicate în activitățile de control al transmiterii TB vor participa la cursuri de formare internaționale specifice.
3.
Dezvoltarea/revizuirea standardelor tehnice cu privire la planificarea, construcția și renovarea spațiilor destinate diagnosticului și asistenței medicale pentru pacienții cu TB
Legislația română actuală prevede norme cu privire la condițiile care trebuie îndeplinite de un spital pentru a obține autorizația sanitară de funcționare aprobate prin Ordin al Ministrului Sănătății nr. 914/26.07.2006, cu modificările și completările uterioare ( Ord. MS nr. 1096/2016),
care sunt aplicabile și în cazul unităților pentru TB. Pentru specificațiile cu privire la ventilația naturală și mecanică și a radiației UV, care nu sunt specificate în mod particular în legislația în vigoare (Normativul NP 015-97 privind proiectarea și verificarea construcțiilor spitalicești și a instalațiilor aferente acestora), se aplică recomandările internaționale ale OMS.
4.
Dezvoltarea unei strategii de ACSM (advocacy, comunicare, mobilizare socială) în domeniul controlului infecției TB
Implicarea persoanelor cheie din sfera politică, societatea civilă și ai altor lideri de opinie din activitățile medicale reprezintă o componentă esențială a programelor moderne de sănătate. Acest lucru este valabil în special în activități precum control infecției TB, care uneori poate duce la conflicte între nevoile societății și drepturile individuale și percepțiile pacientului. Mobilizarea factorilor de decizie din diverse zone de activități pentru a asigura adoptarea și implementarea politicilor de control al infecției TB pot duce la reducerea transmiterii TB în populație. Mesajele transmise vor fi clare, corecte și bazate pe informații reale.
În România există o strategie națională de informare - educare - comunicare (IEC) în domeniul TB, elaborată în cadrul proiectelor finanțate de GFATM.
5.
Realizarea de studii operaționale în domeniul controlului transmiterii TB
Rezultatele studiilor operaționale oferă dovezile științifice pentru dezvoltarea și implementarea planului național. Temele studiilor operaționale trebuie adaptate la contextul particular din România și la solicitările programului de control al TB. Acestea includ transmiterea nosocomială a tuberculozei, tuberculoza ca boală ocupațională și alte subiecte conexe.
6.
Revizuirea politicii în ceea ce privește screeningul personalului din domeniul TB la angajare și periodic
Evaluarea îmbolnăvirilor TB la personalul medical din serviciile de pneumoftiziologie (număr absolut de cazuri, incidența TB ocupaționale, departamente în care lucrează acești angajați) trebuie să fie o activitate permanentă. Rezultatele acestei activități trebuie să constituie o bază pentru intervențiile de prevenire din unitățile medicale. Datele cu privire la cazurile de TB activă din rândul personalului medical, specialitatea medicală a acestora, secția în care lucrează trebuie colectate în cadrul registrului național de TB pentru calcularea incidenței TB ocupaționale și a riscului relativ, și analizate în mod specific pentru evaluarea programelor de control al TB și a intervențiilor în unități, secții și grupuri profesionale specifice.
7.
Examenul medical al angajaților
este în prezent reglementat prin Hotărârea de Guvern nr. 1169/2011, care completează HG 355/2007. Examenul radiologic pentru screeningul TB al angajaților este reglementat de Ordinul MS 888/2006.
În conformitate cu recomandările OMS, stabilirea investigațiilor specifice pentru screeningul TB și controlul periodic al personalului în secțiile de pneumoftiziologie trebuie să includă:
o
Examen clinic
o
Radiografie toracică
o
Examen bacteriologic (microscopie și cultură) la cei cu radiografie cu leziuni sugestive
o
IDR la PPD - se va efectua pentru orice persoană angajată pentru prima oară într-
o secție de pneumoftiziologie, dacă acea persoană nu este cunoscută a avea rezultat pozitiv IGRA sau la IDR la PPD.
Periodicitatea controlului medical al personalului este stabilit în funcție de risc; în unitățile TB cu risc mediu și mare, examenul clinic și radiografia toracică se efectuează în fiecare an. Dacă este identificat un caz de TB activă în rândul personalului, fiecare angajat din secție este monitorizat activ pentru simptome, semne clinice și radiografie toracică timp de cel puțin 6 luni.
VI.
ACTIVITĂȚI DE TIP MANAGERIAL - ORGANIZARE ȘI COORDONARE LA NIVELUL UNITĂȚII SANITARE
1.
Nominalizarea unui responsabil pentru controlul transmiterii tuberculozei în fiecare unitate sanitară
În unitățile sanitare cu paturi, responsabilitățile privind transmiterea tuberculozei vor intra în atribuțiile serviciului/compartimentului de prevenire a infecțiilor asociate asistenței medicale.
Se recomandă instruirea în fiecare unitate sanitară a cel puțin două persoane în ceea ce privește controlul transmiterii tuberculozei
Implicarea în activitățile de control al transmiterii TB nu trebuie să se limiteze la personalul medical: se recomandă implicarea în activitatea de coordonare a transmiterii tuberculozei a personalului tehnic, administrativ și financiar-contabil.
Fișa postului fiecărui angajat va include responsabilitățile acestuia privind controlul transmiterii tuberculozei.
2.
Evaluarea riscului de transmitere a tuberculozei în unitatea sanitară și separat în fiecare serviciu/departament
La evaluarea inițială a transmiterii tuberculozei în unitatea sanitară se va lua în considerare apelarea la servicii specializate de consultanță (din cadrul PNPSCT,
directia de sănătate publică județeană/a mun.București sau organisme internaționale - OMS, CDC, etc.).
Reevaluarea riscului se va face: periodic (anual), în situația modificării activităților derulate (implementarea unor proceduri cu risc)
sau în cazul apariției de cazuri de TB în unitatea sanitară.
3.
Elaborarea planului de control al transmiterii tuberculozei (CT TB) în unitatea sanitară
Elaborarea planului de control al transmiterii tuberculozei se face pe baza rezultatelor evaluării riscului. Elaborarea planului sau integrarea măsurilor de control al transmiterii tuberculozei în planul general de control al infecțiilor asociate asistenței medicale, deja existent este una dintre responsabilitățile comisiei de control al infecțiilor nosocomiale ce funcționează în unitatea sanitară.
4.
Reorganizarea sau dacă este cazul reabilitarea serviciilor și circuitelor epidemiologice
se va face în acord cu riscul de transmitere a tuberculozei și cu legislația în vigoare, la recomandarea direcției de sănătate publica județeană/a mun.București.
5.
Calculul bugetului necesar pentru activități de control al transmiterii tuberculozei în unitatea sanitară.
Estimarea bugetului va lua în considerare toate activitățile de control al tuberculozei ce se impun în unitatea sanitară. Acestea vor fi prioritizate într-un tabel ce va include costurile separate și
totalul acestora. Sumele rezultate și justificarea lor vor fi aduse la cunoștiința serviciului financiar contabil și managerului unității.
6.
Elaborarea planului de instruire în controlul transmiterii tuberculozei
Planul de instruire este responsabilitatea conducerii unității și a coordonatorului activităților de control al transmiterii tuberculozei din unitatea sanitară. Instruirile se vor desfășura periodic și vor include toate categoriile de personal. Tematica abordată va fi în acord cu materialele elaborate de Programul Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberclozei și de INSP - CNEPPS..
7.
Colaborarea cu Serviciul de Sănătate Publică și alte instituții pentru activități de comunicare și mobilizare socială.
În
afară de activități medicale specifice (diagnostic și tratament), controlul transmiterii tuberculozei necesită o serie de acțiuni menite să crească nivelul de cunoștiințe și aderența populației la măsurile recomandate. Acest lucru se poate realiza prin implicarea serviciilor de sănătate publică, organizațiilor neguvernamentale sau a factorilor de decizie din comunitate.
8.
Colaborarea cu serviciul de medicina muncii pentru supravegherea transmiterii tuberculozei la personalul medical
Screeningul personalului medical pentru tuberculoză în unitățile cu risc se va face cu periodicitate anuală.
În cazul identificării de cazuri de tuberculoză în rândul personalului medical, angajații vor fi monitorizați activ și screeningul se va repeta după 6 luni.
Screeningul se va face prin chestionare ce urmăresc simptomele bolii, examen radiologic și examen de sputa la simptomatici.
VII.
ACTIVITĂȚI DE TIP ADMINISTRATIV DE CONTROL AL TRANSMITERII TUBERCULOZEI ÎN UNITĂȚILE SANITARE
1.
Triajul pacienților cu semne sugestive pentru tuberculoză
Personalul care lucrează la recepție în ambulatorii sau unități cu paturi sau la camerele de primiri urgențe va fi instruit pentru triajul pacienților cu simptome sugestive pentru tuberculoză (tuse mai mult de trei săptămâni, febră, transpirații, scădere în greutate).
Suspecții de tuberculoză și cazurile cunoscute cu tuberculoză (forme contagioase) vor petrece cât mai puțin timp în spațiile de așteptare. Ei vor fi plasați în spații bine ventilate, separat de potențial receptori.
2.
Educația pentru igiena tusei
Instruirea pacienților cu tuberculoză privind modul corect de protejare cu un șervețel sau cu fața interioară a antebrațului în timpul tusei (igiena tusei)
Plasarea la loc vizibil de materiale educative privind igiena tusei
Asigurarea mijloacelor de contenție pentru aerosoli infectanți (măști chirurgicale, șervețele de hârtie) și punerea lor la dispoziția tușitorilor
3.
Stabilirea circuitului pacientului contagios în unitatea sanitară
Suspectul TB sau pacientul cu tuberculoză pulmonară netratată, incorect sau incomplet tratată
(potențial
contagios)
va
purta
mască
chirurgicală
pe
parcursul
încheierii formalităților de spitalizare, transportului între departamente sau investigațiilor.
Mișcarea pacienților potențial contagioși va fi limitată, evitând spațiile aglomerate sau populate cu persoane receptive pentru tuberculoză. Investigațiile care nu sunt urgente vor fi temporizate până după scăderea contagiozității.
Cazurile de tuberculoză cu potențial de contagiozitate vor fi spitalizate separat în camera de izolare.
4.
Reducerea întârzierii diagnosticului de tuberculoză
Investigațiile pentru diagnostic se vor face în paralel și nu secvențial.
Timpul necesar pentru obținerea rezultatelor bacteriologice va trebui scăzut la minimum (rezultatul microscopiei va fi comunicat în aceeași zi sau în maxim 24 ore)
Este de preferat să se cunoască rezultatul microscopiei înainte de spitalizarea pacientului
Se recomandă utilizarea metodelor rapide de diagnostic - teste genetice (moleculare), culturi pe mediu lichid, implementând algoritmul de diagnostic prin teste rapide:
Pentru fiecare suspect TB se va efectua din sputa examen microscopic, test molecular rapid (GeneXpert MTB/Rif) și cultură pe mediu solid și/sau lichid. Dacă se identifică rezistență la rifampicină, se va efectua test LPA cu testarea sensibilității pentru linia a II a, pentru inițierea precoce a tratamentului eficient și ajustarea schemei de tratament conform cu spectrul de rezistență identificat.
5.
Colectarea sputei
Procedura de colectare a sputei se va face numai în camere special destinate, bine ventilate sau în afara clădirilor (curte, balcon, terase)
Procedurile de colectare a sputei trebuie afișate în spațiile de recoltare
Personalul care supervizează colectarea va fi instruit și va respecta măsurile de protecție respiratorie
Se recomandă limitarea procedurilor de inducere a sputei (datorită producerii de aerosoli infectanți și persistenței tusei după procedură); dacă nu pot fi evitate, vor fi efectuate doar în spații special amenajate, bine ventilate, cu respectarea măsurilor de control a tuberculozei (protecția respirației, radiație UV)
Recipientele pentru colectarea sputei vor fi de unică folosință, vor avea capacul înfiletat și gura suficient de largă pentru a asigura colectarea.
Depozitarea probelor și transportul lor în laborator se va face în containere speciale, cu capac, ușor de dezinfectat și manevrat.
6.
Izolarea și separarea pacienților spitalizați
Pacienții cu suspiciune de tuberculoză ce necesită spitalizare vor fi plasați în unitatea de izolare respiratorie până la stabilirea statusului bacteriologic; fiecare secție de pneumoftiziologie va avea cel puțin un spațiu de acest tip, de preferat cu un singur pat.
Unitatea de izolare respiratorie
Secțiile de pneumoftiziologie trebuie să asigure condiții sigure și confortabile pentru pacienții spitalizați și lucrătorii sanitari. Tratamentul eficient reduce foarte rapid riscul de transmitere a TB, așa încât pericolul cel mai mare de transmitere intraspitalicească în aceste unități îl prezintă suspecții TB noi admiși, care nu au încă teste moleculare efectuate și pacienții cu tuberculoză înainte de inițierea tratamentului antituberculos.
Întrucât pacienții cu tuberculoză sensibilă nu mai au risc de transmitere a bolii după câteva zile de tratament standard de linia I, eforturile trebuie îndreptate spre reducerea riscului de la cele două categorii de pacienți menționate mai sus, pentru o perioadă limitată de timp.
Se recomandă asigurarea izolării temporare în unități special amenajate, cu un singur pat și cu grup sanitar propriu. Pacienții admiși în aceste unități trebuie să petreacă cel puțin 1-2 zile în izolare, înainte de transferul în altă secție/salon (tuberculoză sensibilă, tuberculoză rezistentă, paliație). Transferul se va face după obținerea rezultatelor testării rapide pentru identificarea M. tuberculosis și a spectrului de rezistență (GeneXpert MTB/Rif și/sau LPA) pe baza căruia s-a început tratamentul eficient.
Limitarea în timp a izolării în aceste unități va fi bazată de următoarele:
Criterii de admisie în unitățile de izolare respiratorie (UIR):
►
Suspecți TB, fără confirmare bacteriologică
►
Pacienți cu tuberculoză care nu au început tratament eficient din diferite motive
Criterii de întrerupere a izolării în unitățile de izolare respiratorie:
►
Cazuri confirmate de tuberculoză sensibilă după cel puțin două zile de tratament de linia I
►
Cazurile confirmate de tuberculoză MDR/XDR trebuie să înceapă tratament individualizat eficient și să fie transferate cât mai curând în secții de TB MDR sau externați pentru a urma tratament direct observat la domiciliu, dacă se poate asigura izolarea.
►
Suspecții TB cu rezultate negative la microscopie și testele moleculare (GeneXpert) vor fi
transferați în secții de tuberculoză pentru pacienți cu risc scăzut, servicii de pneumologie sau medicină internă sau externați, urmând să beneficieze de investigații suplimentare sau tratament în ambulatoriu.
►
Pacienții cu TB contagioși care nu sunt candidați pentru tratament eficient din orice motiv, ar
trebui transferați în servicii paliative de izolare, care nu sunt disponibile pentru moment în țară, sau izolați la domiciliu.
Întrucât probabilitatea de multidrug rezistență între cazurile noi este relativ scăzută (2.5%) se recomandă inițierea tratamentului standard de linia I imediat după admisie, la toate cazurile.
Pacienții vor fi informați asupra probabilității ridicate de contagiune (risc de transmisie către persoanele din proximitate) și necesității de izolare temporară.
Unitățile de izolare trebuie să fie etanșe, echipate cu sisteme automate de închidere a ușilor, ce vor fi închise tot timpul, pentru a nu permite pacienților să părăsească unitatea.
La intrare și în interiorul unității de izolare respiratorie vor fi plasate semne speciale de avertizare asupra riscului crescut de infecție cu transmitere aeriană, acces limitat autorizat și necesitatea utilizării echipamentelor de protectie respiratorie (măști de protecție a respirației pentru personal, măști chirurgicale pentru pacienți).
Camerele de izolare respiratorie vor fi prevăzute cu grup sanitar individual, duș, chiuvetă, TV; mesele vor fi servite în salon.
Vizitatorii nu vor fi admiși în unitatea de izolare respiratorie decât echipați cu măști FFP2 etanșe.
Se va lua în considerare instalarea de ventilatoare de geam (exhaustoare) pentru evacuarea aerului din camera de izolare, în scopul menținerii presiunii negative. Dacă instalarea și menținerea ventilației mecanice nu este fezabilă în unitate, se vor depune eforturi pentru maximizarea ventilației naturale dacă vremea/sezonul permit.
Pacienții pot avea acces la balcoane deschise, separate pentru fiecare unitate de izolare.
În camera vor fi montate și întreținute profesionist lămpi UV cu putere nominală de 30W pentru iradierea părții superioare a încăperii.
În secții, cazurile de TB vor fi cazate separat de pacienții cu alte patologii.
Cazurile de TB extrapulmonară și cele cu rezultate negative la examenele bacteriologice nu necesită izolare.
Cazurile suspecte sau confirmate a avea rezistențe (TB mono sau polirezistentă, MDR, XDR) vor fi spitalizate separat, în spații speciale conform spectrului de rezistență, pentru a se evita transmiterea încrucișată a tulpinilor bacteriene. Camerele respective vor avea cât mai puține paturi, unele studii arătând că numărul redus de paturi reprezintă cea mai eficientă măsură administrativă de scădere a transmiterii spitalicești.
7.
Separarea pacienților cu coinfecție HIV /TB
Pacienții cu coinfecțtie TB / HIV contagioși și pacienții HIV pozitivi suspecți de tuberculoză trebuie izolați pentru a preveni transmiterea TB la alți pacienți vulnerabili.
Serviciile de boli infecțioase trebuie să dispună de unități de izolare respiratorie pentru suspecții TB, care să respecte criteriile prezentate mai sus. Pe parcursul izolării, trebuie efectuată testarea bacteriologică a sputei pentru TB și alți oportuniști, inclusiv teste moleculare. Pacienții trebuie consultați de un pneumolog pentru a stabili diagnosticul de tuberculoză și planul de tratament. Dacă se confirmă diagnosticul de tuberculoză și se inițiază tratamentul eficient în unitățile de izolare respiratorie din serviciul de boli infecțioase, pacienții stabili clinic pot fi externați pentru a primi tratament antituberculos direct observat în ambulatoriu sau pot fi transferați în serviciu de pneumoftiziologie până condiția lor se stabilizează.
Pacienții TB/HIV care nu sunt contagioși nu necesită izolare și pot fi tratați în ambulatoriu sau spitalizați în orice departament dacă este necesar.
8.
Transportul pacienților contagioși
Transportul pacienților cu tuberculoză care sunt contagioși (pozitivi în microscopie, nu s-a inițiat tratament eficient antituberculos) sau al suspecților TB se face cu ambulanțe echipate cu măsuri adecvate de control al transmiterii tuberculozei:
ventilație intensificată prin deschiderea ferestrelor,
compartimente separate pentru șofer și pasager,
mască de protecția respirației pentru personalul care asigură transportul (inclusiv la deschiderea din exterior a ușii de la compartimentul pacientului)
mască chirurgicală pentru pacient
Ventilația mecanică este permisă pe parcursul transportului, dar nu pe modul recirculare Pacienții contagioși cu tuberculoză vor fi transportați individual și nu împreună cu alți
pacienți (cu tuberculoză sau alte afecțiuni).
Personalul care asigură transportul, ca și personalul din serviciul unde ajunge pacientul pentru investigații sau consult interdisciplinar trebuie informat asupra riscului de contagiozitate și necesității utilizării protecției respiraotrii.
Se va permite deplasarea pacienților contagioși în afara unității de izolare respiratorie doar dacă este neapărat nevoie și doar purtând o mască chirurgicală.
9.
Inițierea rapidă a tratamentului adecvat
Este de preferat ca pacientul cu TB să aibă rezultatul bacteriologic la momentul spitalizării. Pentru orice suspect TB, clinicianul trebuie să urmeze algoritmul de diagnostic aprobat de Ministerul Sănătății în ghidurile Programului Național de Prevenire, Supraveghere și Control al Tuberculozei (Vezi p4 - Reducerea întârzierii diagnosticului de tuberculoză).
Tratamentul va fi inițiat în ambulatoriu pentru pacienții care nu necesită îngrijiri de terapie intensivă, monitorizare specială și nu pun probleme speciale privind riscul de transmitere.
Tratamentul
antituberculos
trebuie
să
înceapă
cât
de
rapid
după
confirmarea diagnosticului. Pentru pacienții spitalizați, tratamentul se va începe de preferat în prima zi.
Regimul de tratament trebuie să fie eficient pentru a opri contagiozitatea.
Spectrul de rezistență trebuie obținut cât de curând posibil după inițierea investigațiilor.
În cazul rezistențelor medicamentoase cunoscute din investigații anterioare, tratamentul va fi inițiat pe baza ultimului spectru de sensibilitate cunoscut până la obținerea unui nou rezultat al testării sensibilității.
Pentru cazurile cunoscute cu multidrug rezistență, va fi consultată Comisia MDR înainte de admiterea pacientului în tratament.
10.
Reducerea timpului petrecut de către pacient în spital
Indicațiile de spitalizare pentru pacientul cu tuberculoză sunt:
o
Indicații clinice, constând în nevoia de terapie intensivă și/sau de monitorizare intensivă -pacienți gravi, cu comorbidițăți, reacții adverse severe
o
Contagiozitate (risc de transmitere a TB).
Dacă pacientul este considerat contagios, trebuie să i se asigure izolare de la începutul spitalizării, conform cu cerințele privind structura și funcționarea unității de izolare respiratorie, menționate anterior.
Se recomandă tratarea în ambulatoriu a tuturor pacienților necontagioși dacă li se poate asigura tratamentul direct observat în ambulatoriu. În acest grup sunt incluși pacienții cu microscopie negativă și cazurile de tuberculoză extrapulmonară.
Durata spitalizării la copii va fi limitată la perioada necesară pentru stabilirea diagnosticului și inițierea tratamentului.
Datorită vulnerabilității pacienților HIV pozitivi la infecția tuberculoasă, spitalizarea lor în servicii de pneumoftiziologie trebuie scurtată sau chiar evitată pe cât posibil. Se recomandă asigurarea posibilității consulturilor pentru diagnostic și alte proceduri pe cât posibil în ambulatoriu sau în alte unități decât cele din rețeaua de pneumoftiziologie.
Reducerea spitalizărilor trebuie compensată prin organizarea optima a tratamentului în ambulatoriu (tratament direct observat)
11.
Elaborarea unei politici pentru cazurile contagioase de tuberculoză fără resurse terapeutice (îngrijiri paliative pentru pacientul cu tuberculoză)
Acest grup de pacienți are risc maxim de transmitere a tuberculozei. Ei nu trebuie plasați împreună cu alți pacienți cu tuberculoză care primesc tratament adecvat.
Pacienții
TB
cu
resurse
terapeutice
limitate
(spectru
de
rezistență
prea
extins), comorbidități severe, cazuri cronice care nu se negativează sub tratament vor fi de preferat izolați la domiciliu și educați pentru a respecta măsuri de control al transmiterii tuberculozei în familie.
În cazul în care la domiciliul pacientului locuiesc contacți cu receptivitate crescută (copii, imunosupresați, infectați HIV) și izolarea la locul de rezidență nu poate fi asigurat, se recomandă spitalizarea pacientului, cu asigurarea condițiilor de izolare.
Se recomandă identificarea unor unități sanitare cu paturi care să îndeplinească condiții pentru asigurarea izolării respiratorii și să aibă implementate măsuri de control al transmiterii tuberculozei, pentru amenajarea de centre de paliație pentru cazurile fără resurse terapeutice.
12.
Politica privind accesul vizitatorilor în secții cu pacienți cu tuberculoză
Accesul vizitatorilor trebuie limitat în secțiile cu pacienți contagioși cu TB și MDR TB.
Se interzice accesul copiilor și al persoanelor imunodeprimate ca vizitatori în secțiile care îngrijesc pacienți cu tuberculoză.
Dacă accesul vizitatorilor în secții de pneumoftiziologie este absolut necesar, aceștia trebuie informați asupra modului de transmitere a tuberculozei și să poarte măști de protecția respirației; fereastra camerei va fi deschisă și pacientul va purta mască chirurgicală.
Vizitele se vor face în programul alocat și vor fi organizate de preferat în spații special amenajate afară sau în spații foarte bine ventilate.
Vizitatorii vor fi informați despre riscul de a contacta boala, ariile unde nu au acces și măsurile de protecție respiratorie, prin semne plasate la locuri vizibile
13.
Considerații
privind
rolul
curățării
și
dezinfecției
suprafețelor
în
controlul transmiterii tuberculozei
Curățarea și dezinfecția suprafețelor, ca și alte intervenții generale de control al transmiterii tuberculozei vor fi implementate pentru a scădea infecțiile transmite prin contact. Aceste măsuri nu au însă impact asupra transmiterii tuberculozei pe cale aeriană.
Pentru programul de dezinfecție în zonele cu risc mare vor fi selectate și utilizate dezinfectante cu eficacitate demonstrate asupra
Mycobacterium tuberculosis
VIII.
ACTIVITĂȚI DE CONTROL AL MEDIULUI (INGINEREȘTI)
1.
Sisteme de ventilație
Ventilația este mișcarea aerului; este de preferat ca ea să se facă în mod controlat. Asigurarea ventilației încăperilor este esențială pentru prevenirea infecțiilor transmise pe cale aeriană. OMS recomandă implementarea ventilației ca măsură de control al transmiterii tuberculozei cu eficacitate dovedită.
Staționarea aerului sau o rată scăzută a schimburilor de aer cresc riscul de transmitere a tuberculozei dacă în mediu este prezentă o sursă de aerosoli infectanți. Este absolut necesară introducerea aerului proaspăt și evacuarea aerului contaminat. Acest lucru poate fi obținut prin utilizarea de factori naturali sau de mijloace mecanice.
Cerințele arhitecturale pentru designul, construcția, întreținerea și operarea clădirilor destinate unităților sanitare ventilate natural sunt descrise în Ghidul OMS
"Natural ventilation for infection control in health-care settings - 2009", ce va fi aplicat pentru clădirile noi sau existente. Ghidurile internaționale destinate unităților sanitare ventilate natural unde există risc crescut de tuberculoză se bazează pe acest document. În România, construcția structurilor sanitare se face conform Normativului NP 015-97 privind proiectarea și verificarea construcțiilor spitalicești și a instalațiilor aferente acestora.
Ventilația naturală implică costuri mici, fiind cea mai la îndemână măsură de prevenire a infecțiilor transmise aerian, dar depinde de factori naturali - vânt și diferențe de temperatură - care nu sunt stabili și sunt independenți de controlul uman. De exemplu pe vreme rece, eficiența este scăzută din cauza folosirii limitate. OMS recomandă ventilarea mecanică a spațiilor cu risc mare și foarte mare, cum ar fi laboratoarele cu nivel 3 de biosecuritate (pentru efectuarea culturilor și testelor de sensibilitate), a camerelor de izolare cu risc foarte înalt, a serviciilor de bronhoscopie, a spațiilor de colectare a sputei sau pentru inducerea sputei, săli de autopsie, etc. Sistemele de ventilație mecanică proiectate, construite și întreținute corespunzător asigură atât controlul direcției fluxului de aer pentru diluarea și îndepărtarea aerosolilor infectanți, cât și optimizarea temperaturii și umidității (confortul termic). Dezavantajele majore ale ventilației mecanice sunt costurile relativ mari de instalare și întreținere și nevoia permanentă de întreținere specializată. Lipsa asigurării finanțării dedicate întreținerii pentru întreaga perioadă de operare duce adeseori la eșecul funcționării sistemului și risipirea resurselor și așa limitate ale sistemului sanitar. Pentru a fi cost-eficiente, sistemele de ventilație mecanică vor fi implementate alături de alte măsuri de tip adminstrativ în spații limitate, atent alese dintre zonele cu cel mai mare risc de transmitere a tuberculozei. După instalarea sistemelor de ventilație, acestea trebuie echilibrate si verificate regulat (lunar, trimestrial și anual). Obișnuit, costul anual necesar pentru întreținerea unui sistem de ventilație reprezintă 5-10% din costurile de capital; aceste fonduri trebuie alocate din bugetul unității sanitare dacă aceasta este dotată cu ventilație mecanică.
Obiective : Să asigure o rată suficientă a schimburilor de aer și controlul direcției fluxului de aer, pentru a reduce riscul de expunere la tuberculoză.
În practica medicală se folosesc următoarele tipuri de ventilație:
ventilația naturală
ventilația de tip mixt
ventilația mecanică
Calculul ratei ventilației (număr schimburi de aer per oră – ACH)
ACH = <J / V
Unde:
ACH - Numărul de schimburi de aer per oră (Air changes per hour,
h
-1)
<J – Fluxul de aer, m 3 /h V- Volumul încăperii, m 3
În alegerea tipului de sistem de ventilație se vor lua în considerare condițiile locale: structura clădirii, climă, legislația locală în construcții și amenajări de structuri medicale, cultură, costuri, calitatea aerului atmosferic. Orice sistem de ventilație trebuie să aibă asigurat un sistem regulat de mentenanță și să fie
monitorizat periodic. Este
importantă asigurarea de resurse adecvate pentru întreținere. Standardele OMS actuale prevăd o rată a ventilației de 12 schimburi de aer pe oră (12 ACH) pentru camera de izolare respiratorie.
Pentru estimarea ratei ventilației într-o încăpere, se calculează fluxurile de aer la nivelul fiecărei grille de ventilație (deschidere) prin următoarea formula:
Calculul fluxului de aer
<J
= Vi x S x 3600,
Unde:
<J – fluxul de aer, m 3 /h,
Vi –viteza medie a aerului prin grilă (deschidere), m/sec, S – suprafața (aria) grilei/deschiderii, m 2 ,
3600 – pentru convertirea secundelor în ore.
Fluxul total de aer este suma tuturor fluxurilor măsurate la grilele de evacuare (în încăperile cu presiune negativă) sau a grilelor de admisie (în încăperile cu presiune pozitivă). Pentru a determina presiunea relativă din cameră față de exterior, se poate utiliza un test simplu, ce se bazează pe deplasarea unei coloane de fum produs în cameră. Fumul, împreună cu aerul din camera, se deplasează întotdeauna de la presiune mare la presiune mica, astfel încăt, observat la nivelul deschiderilor, el părăsește camera cu presiune pozitivă sau se deplasează spre interiorul camerei cu presiune negativă.
a.
Ventilația naturală
Reprezintă ventilația produsă prin intervenția condițiilor naturale (vânt, temperatură); se produce prin deschiderea ușilor, ferestrelor sau altor orificii de ventilație.
Ventilația naturală poate asigura un număr mare de schimburi de aer pe oră și o diluție eficientă a particulelor infectante cu costuri scăzute.
Ca dezavantaje, fluxul natural de aer este dificil de controlat ca intensitate și direcție, acest tip de ventilație fiind puțin eficientă în sezonul rece.
În unitățile sanitare ce se bazează pe ventilația naturală, pentru a asigura eficiența acesteia se va ține seama de următoarele:
Creșteți la maxim ventilația naturală prin mărirea pe cât posibil a dimensiunilor ferestrelor și plasarea lor pe pereți opuși. Suprafața operabilă a ferestrelor (suprafața care se poate deschide) trebuie să reprezinte cel puțin 20% din suprafața podelei încăperii.
Folosiți ventilația naturală cât de mult posibil în toate unitățile sanitare ce nu sunt prevăzute cu ventilație mecanică.
Pentru a produce fluxuri de aer, se recomandă montarea de grille de ventilație pe pereții opuși ferestrelor (pe ușă sau sub ușă).
Dacă se folosesc ferestre termopane, acestea vor fi astfel proiectate încât să se asigure suprafață maxima a deschiderii. Se recomandă proiectarea unor ochiuri ce se pot deschide în totalitate sau batant, plasate la partea superioară a ferestrelor.
Ventilația fiecărui spațiu trebuie monitorizată și evaluată periodic; pentru măsurarea ventilației, este nevoie de echipament special: kit de fum (urmărind coloana de fum, se poate stabili directia fluxului de aer), vaneometru (instrument ce măsoară viteza aerului), metru (pentru măsurarea suprafeței încăperii și suprafeței deschiderilor).
Un spațiu bine ventilat este definit prin:
o
Un număr de 12 schimburi de aer pe oră (12 ACH)
o
160l/s/pacient pentru camerele de izolare sau de proceduri
o
60l/s/ pacient pentru saloanele din secții și ambulatorii
o
2,5l/s/m 2
pentru coridoare și alte spații de trecere fără număr fix de pacienți.
Unele clădiri sunt prevăzute din faza de proiectare cu sisteme de ventilație pasivă (conducte de ventilație prin pereți până pe acoperișul clădirii), care asigură ventilație suplimentară. Aceste sisteme pot fi periculoase dacă sunt interconectate, putând deplasa
aerul contaminat dintr-un spațiu către altul, de aceea se recomandă să asigure evacuarea pe acoperiș, independent pentru fiecare cameră.
b.
Ventilația de tip mixt
Ventilația de tip mixt constă din îmbunățățirea ventilației naturale prin folosirea unor ventilatoare plasate de obicei pe fereastră.
Utilizarea ventilației de tip mixt este recomandată:
În unități sanitare unde ventilația naturală nu poate atinge numărul optim de schimburi de aer pe oră (12 ACH);
În spațiile cu risc crescut de transmitere a tuberculozei: camera de primiri urgențe, camera de izolare pentru suspecții TB sau pentru cazurile contagioase, saloanele pacienților sau suspecților cu TB MDR, săli pentru proceduri în cursul cărora se pot produce aerosoli la suspecții/pacienții TB - camera de colectarea sputei, săli de bronhologie, spirometrie.
Plasarea ventilatoarelor va lua în considerare destinația spațiilor în care sunt plasate, putând produce presiune negativă (elimină aerul din spațiile "contaminate" prin prezența de pacienți sau produse biologice) sau pozitivă (introduce aer proaspăt în spațiile "curate" destinate personalului sau altor persoane ce trebuie protejate de aerosoli infectanți).
Ventilatoarele se utilizează atunci când ferestrele sunt închise (în timpul nopții sau sezonului rece), în spații aglomerate sau cu surse multiple de infecție.
c.
Ventilația mecanică
Sistemele de ventilație mecanică sunt concepute să miște aerul din spațiile cu risc scăzut ("zone curate") către spațiile cu risc înalt ("zone murdare"). Ca să realizeze acest lucru, sistemul de ventilație scoate aer din zonele cu risc crescut (producând aici presiune negativă) și introduce aer curat în zonele cu risc scăzut, unde produce presiune pozitivă. Aerul se mișcă din zonele cu presiune pozitivă către zonele cu presiune negativă.
Designul sistemelor de ventilație mecanică se bazează pe delimitarea administrativă a zonelor de risc. Ca să funcționeze eficient și să prevină transmiterea infecțiilor aerogene, sistemele de ventilație mecanică trebuie concepute, instalate și testate în mod profesional. Exploatarea corectă, întreținerea și monitorizarea funcționării sistemelor de ventilație sunt de asemenea esențiale.
Ventilația mecanică implică utilizarea unor sisteme complexe (unități de tratare a aerului - sisteme de încălzire/răcire, motoare, filtre, umidificatoare, conducte, vane, grile difuzoare) ce controlează mișcarea aerului în clădire sau în diferite zone ale acesteia.
Ventilația
mecanică
este
recomandată
în
zonele
cu
risc
crescut
de
transmitere
a tuberculozei, dacă ventilația naturală sau de tip mixt nu asigură suficiente schimburi de aer: camere de izolare respiratorie, saloane pentru pacienții cu TB MDR/XDR, laboratoare unde se efectuează culturi pentru
Mycobacterium tuberculosis .
Avantajele ventilației mecanice constau din controlul eficient al direcției aerului și temperaturii în interiorul camerei; poate fi folosită în orice tip de climă și poate asigura un număr constant de schimburi de aer.
Dezavantajele
ventilației
mecanice
derivă
din
costurile
crescute
de
construcție
și exploatare, necesitatea unei expertize tehnice înalte din faza de proiectare până la întreținere, precum și din faptul că este greu acceptată de pacienți datorită disconfortului dat de fluxurile mari de aer în interiorul încăperilor ventilate.
Curenții externi de aer pot produce presiune negativă sau pozitivă la nivelul suprafeței clădirilor și indirect în interiorul acesteia, perturbând fluxul de aer produs de sistemele de ventilație. Pentru a evita acest efect, este obligatorie închiderea tuturor deschiderilor (uși și ferestre) în clădirile ventilate mecanic.
Dacă sistemul de ventilație nu este conceput să răcească aerul, funcționalitatea sa poate fi afectată pe timpul sezonului cald, când este necesară deschiderea geamurilor; în aceste condiții este obligatorie asocierea altor tipuri de măsuri de control la transmiterii tuberculozei (protecție respiratorie, radiație UV, etc.) în zonele de risc mediu și mare.
2.
Radiația ultravioletă cu efect germicid (UV-c)
Radiația
ultravioletă
UV-c
cu
lungime
de
undă
de
254nm
are
acțiune
bactericidă
pe microorganisme, inclusiv
Mycobacterium tuberculosis . Ea este folosită ca măsură de mediu adițională atunci când ventilația nu este suficientă pentru controlul transmiterii tuberculozei.
Tipuri de dispozitive ce produc radiație UV-c
Echipamentele medicale ce generează acest tip de radiație sunt cunoscute sub numele generic de lămpi UV sau lămpi cu radiație ultravioletă (UV) bactericidă. Există mai multe tipuri de lămpi UV ce pot fi folosite pentru dezinfecția aerului sau suprafețelor.
a)
Lămpi UV neprotejate (fără scut), ce iradiază întreg spațiul în care sunt plasate
-pot fi fixe, montate pe perete sau pe tavan sau mobile.
-sunt folosite pentru dezinfecția aerului numai în absența persoanelor în încăpere; din această cauză, utilizarea lor este limitată după programul de lucru sau între consultații/proceduri, după generarea masivă de aerosoli infectanți (de exemplu în camerele de recoltare a sputei)
-lămpile mobile pot fi deplasate la nevoie în orice punct al încăperii sau în orice spațiu cu risc
-lămpi UV neprotejate pot fi instalate în cabinele de biosecuritate pentru dezinfecția suprafețelor la încheierea lucrului sau în conducte de ventilație pentru dezinfecția aerului, acțiune similară cu cea a unor filtre
b)
Lămpi UV protejate (cu scut), ce iradiază partea superioară a încăperii.
-prin mișcarea naturală a aerului din partea inferioară a camerei spre tavan, acesta trece prin zona de acțiune a lămpii UV și este dezinfectat.
-au avantajul de a putea fi utilizate în prezența persoanelor în cameră, nivelul radiației UV fiind scăzut în partea inferioară, locuită a acesteia.
Tipuri de Lămpi UV protejate (cu scut) pentru partea superioară a încăperii:
"
lămpi cu flux orizontal de radiație UV”
sunt prevăzute cu un sistem de fante ce direcționează radiația UV în planul orizontal al lămpii, paralel cu tavanul; stratul de radiație UV bactericidă astfel format dezinfectează aerul în timpul pasajului ascendent al acestuia spre tavan.
"
lămpi UV cu scut (protejate) ce iradiază întreaga parte superioară a camerei
" datorită unui scut protector ce dirijează radiația UV către tavan.
c)
"Purificatoare de aer", ce utilizează radiația UV în interiorul unui sistem închis ("UV in a box"); nu sunt recomandate în controlul transmiterii tuberculozei din cauza ineficienței lor prin capacitatea limitată de a mixa aerul din cameră.
Siguranța utilizării radiației UV
Sistemele de radiație UV bine concepute și întreținute s-au dovedit a fi sigure în exploatare în unități sanitare sau alte spații cu risc (adăposturi pentru persoane fără locuință) unde
au
fost
testate
extensiv;
dacă
dispozitivele
UV
sunt
inadecvate
sau
instalate necorespunzător poate apărea supraexpunerea ce produce temporar inflamație și durere la nivelul ochiului (fotocheratită) și inflamație a pielii (eritem), efecte ce se remit și singure după 24 - 48 de ore. Nu au fost înregistrate efecte adverse ireversibile.
Doza maximă acceptabilă pentru radiația UV cu lungime de undă 254 nm este de 6000µJ/cm 2
pentru 8 ore, adică un nivel de radiație instantanee de 0,2 µW/cm 2 /s în spațiile cu grad mare de ocupare în timp; în spațiile cu grad redus de ocupare (ex. coridoare), unde persoanele petrec un timp scurt, fiind doar în trecere, pot fi acceptate valori ale intensitătii radiației instantanee (pe secundă) de peste 0,4 µW/cm 2
(dar nu mai mult de 0,6 µW/cm 2)
. Măsurând cu un UVc-metru intensitatea instantanee, se poate determina, prin împărțirea acesteia la 0,2 µW/cm 2
timpul maxim ce poate fi petrecut în spațiul respectiv pentru a nu depăși limita de expunere de 6000 µJ/cm 2
pentru 8 ore.
Eficacitatea radiației UV
Iradierea părții superioare a camerei cu lămpi UV protejate cu scut este indicată în spații cu risc înalt de transmitere a TB (săli de așteptare, camere de primiri urgențe, holuri aglomerate, camere cu pacienți contagioși, camere de proceduri cu risc de producere de aerosoli infectanți, spații cu ventilație insuficientă) și este eficientă atunci când este utilizată permanent (24/24 ore).
Pentru
estimarea
numărului
optim de
lămpi
UV
necesare
pentru
iradierea
părții superioare a camerei se poate lua în considerare suprafața camerei. O lampă UV cu putere nominală de 30W este necesară pentru acoperirea unei suprafețe de 18 - 20 m 2 .
Dacă producătorul lămpilor pune la dispoziție valoarea emisiei totale de radiație UV-c pentru modelul respectiv de lampă (măsurată în mW), numărul de lămpi UV necesare într-un spațiu poate fi estimat în acord cu recomanarea actuală OMS/CDC, care ia în considerare un necesar de cel puțin 10 - 15 mW / m 3
din volumul camerei. Producătorii de lămpi UV trebuie să pună la dispoziție emisia totală de radiație UV.
Eficacitatea radiației UV crește prin creșterea ventilației spațiului în care este utilizată (prin mixarea aerului) și scade în codiții de umiditate crescută (peste 80%). În cazul utilizării permanente a radiației UV, în prezența omului în încăpere, este obligatorie măsurarea nivelului radiației UV cu un UV-c metru. Utilizarea în condiții de eficiență și sigurnață a radiației UV impune măsurarea acesteia la momentul instalării și periodic pe durata funcționării. Pentru măsurare este necesară expertiză tehnică și achiziția unui dispozitiv special de măsurare pentru radiația UV-c cu senzor pentru lungimea de undă de 254nm, capabil să măsoare în intervalul 0,1
- 500 µW/cm 2 .
Întreținerea lămpilor UV
Întreținerea lămpilor UV se face conform unui plan scris, care trebuie să includă informații privind momentul și locația instalării lămpilor, tipul de dispozitive folosite, verificarea periodică și întreținerea acesora, responsabilii pentru montare și întreținere.
Intensitatea radiației UV-c se măsoară cu UV-c metrul. Fiecare unitate sanitară care folosește radiație UV trebuie să aibă acces la un UV-c metru. O lampă eficientă va emite o intensitate a radiației UV de cel puțin 100 µW/cm 2
la distanța de un metru de la sursă.
Măsurarea radiației UV se face:
o
La instalarea inițială
o
După fiecare curățare a lămpilor / tuburilor UV
o
După instalarea unor tuburi noi
o
Oricând se modifică plasarea lămpilor UV în cameră
Curățarea tuburilor ce emit radiația UV se face cu soluție de alcool 70% cel puțin odată la 2- 3 luni; curățarea cu apă și detergent nu este recomandată, întrucât poate forma o peliculă pe suprafața tubului, scăzandu-I eficiența
Înlocuirea tubului ce emite radiația UV se face după atingerea timpului de funcționare recomandat de producător; dacă se folosește un UV-metru pentru monitorizare, lămpile pot fi folosite până când intensitatea radiației UV emise la distanța de 1 m scade sub valoarea de 100 µW/cm 2 .
Distrugerea lămpilor care nu mai sunt funcționale se face respectând legislația actuală (Ordonanța de Urgență a Guvernului României nr 5/ 2 Aprilie 2015 și Directiva Consiliului și Parlamentului European 2012/19/UE privind distrugerea echipamentelor electronice).
Monitorizarea lămpilor cu radiație UV deschisă (fără scut, neprotejate) va fi documentată într-un grafic în care se înregistrează timpul zilnic de înregistrare și data curățării lămpii.
Este important să se asigure service-ul lămpilor UV și disponibilitatea consumabilelor prin includerea acestora în contracte de mentenanță.
IX.
PROTECȚIA RESPIRATORIE
Obiective:
Scăderea la maximum a pătrunderii particulelor cu potențial infecțios în căile respiratorii, prin utilizarea de bariere mecanice în calea fluxului de aer.
Protecția respiratorie este una din cele mai eficiente măsuri individuale de control al transmiterii tuberculozei la personalul medical. Mijloacele de protecție respiratorie constau în:
1.
Utilizarea măștilor pentru protecția respirației de tip FFP2 sau FFP3 de către persoanele ce intră în mediul cu potențial infectant. Acest tip de dispozitiv protejează persoana care îl utilizează de aerosolii infectanți.
2.
Utilizarea măștilor chirurgicale de către pacienții contagioși limitează împrăștierea aerosolilor infectanți în mediu, protejând eventualii contacți: familia, prietenii, alți pacienți, personalul medical, etc.
Planul de protecție respiratorie este parte a planului de control al transmiterii tuberculozei.
El include măsuri specifice, adaptate gradului de risc.
Indicațiile utilizărilor măștilor de protecția respiratorie (FFP2 sau FFP3):
o
Personalul
medical
(asistente
medicale,
medici),
personalul
de
îngrijire, personalul tehnic, șoferii de ambulanță, vizitatorii ce pătrund în zone cu risc
pentru transmiterea tuberculozei trebuie să poarte masca de protecție respiratorie pe durata șederii în spațiul cu risc.
o
Spațiile în care este obligatorie purtarea măștilor de protecție respiratorie trebuie marcate prin semne de atenționare. Aceste spații sunt:
•
unitățile de izolare respiratorie, saloanele pentru pacienți sau suspecți de tuberculoză contagioși, servicii de îngrijire a pacienților cu tuberculoză rezistentă, servicii de bronhoscopie.
•
unitățile de primiri urgențe, cabinete de consultații, servicii de radiologie,
explorări funcționale, în prezența pacienților potențial contagioși.
•
în zonele cu risc mare din laboratorul de bacteriologie pentru TB (efectuarea
culturilor,
antibiogramelor,
inactivarea
ADN-ului)
se recomandă utilizarea măștilor pentru protecția respiratorie
“dacă nu sunt împlementate alte măsuri de control al tuberculozei”
Specificațiile tehnice ale echipamentelor de protecție respiratorie:
o
Clasificarea măștilor pentru protecția respiratorie se face în funcție de capacitatea lor de a filtra eficient particule cu dimensiunea de
0,3 microni (particulele cu această dimensiune având cea mai mare capacitate de a penetra un filtru).
o
Eficiența
măștilor
de
protecție
respiratorie
pentru
controlul
transmiterii tuberculozei este atestată de îndeplinirea standardelor europene FFP2 sau FFP3, echivalente cu standardele americane N95, respectiv N98. Măștile de protecție respiratorie care îndeplinesc standarde inferioare (FFP1 sau N90) nu sunt eficiente pentru protecția împotriva transmiterii tuberculozei.
Modul de utilizare:
o
Aplicarea și utilizarea măștilor de protecție respiratorie se face în acord cu recomandările producătorului
o
Este important să se asigure etanșarea măștii pe față, pătrunderea aerului pe lângă mască ducând la ineficiența sa
Verificarea eficienței măștii de protecție respiratorie:
o
Verificarea eficienței măștii de protecție respiratorie se face prin măsurarea etanșeității pe care o asigură la nivelul feței.
o
Testul de etanșeitate se poate face prin metode cantitative (dificil de efectuat, necesitând echipamente speciale - numărător de particule) sau prin teste calitative al căror principiu constă din perceperea gustului amar (testul cu bitrex) sau dulce (testul cu zaharină/sucroză) în cazul ineficienței măștii
o
Factorii ce pot influența etanșeitatea măștii și implicit eficiența sa sunt: aplicarea incorectă, formă și dimensiuni necorespunzătoare, particularități ale feței (barbă, cicatrici, machiaj în exces).
o
Testul de etanșeitate trebuie efectuat de fiecare persoană care poartă masca de protecție respiratorie înainte de prima utilizare, apoi periodic (anual) sau după modificarea trăsăturilor feței sau schimbarea tipului de mască folosit.
Durata de utilizare:
o
Deși specificațiile tehnice ale producătorului precizează că măștile de protecție respiratorie sunt "de unică folosință", acestea pot fi reutilizate pentru protecția împotriva
tuberculozei
de
către
aceeași
persoană
atâta
timp
cât
asigură etanșeitatea și nu sunt contaminate cu fluide ale organismului sau cu agenți biologici ce se transmit prin contact.
o
Eficacitatea filtrului nu este afectată de numărul de utilizări, scăderea etanșeității măștii la nivelul feței fiind factorul ce le limitează folosirea.
Depozitarea măștilor de protecție respiratorie:
o
Păstrarea măștilor de protecție respiratorie după desigilare în spații curate, bine ventilate, în condiții de umiditate scăzută împreună cu restul echipamentului medical (halate).
o
Pe durata transportului, măștile de protecție respiratorie, vor fi ținute într-un șervețel de hârtie. Nu se recomandă păstrarea sau transportul măștilor învelite în material impermeabil (de ex. ambalajul original).
Distrugerea măștilor utilizate:
o
Măștile utilizate sunt distruse în acord cu legislația în vigoare privind distrugerea materialului potențial infecțios. Măștile de protecția respiratorie nu implică risc de transmitere a tuberculozei, generarea de pe mască a particulelor fine în aerosoli conținând
M
tuberculosis
fiind
foarte
improbabilă.
Totuși,
este
posiblă contaminarea măștilor cu fluide ale organismului ce poate implica risc de transmitere prin contact.
Durata de utilizare a măștii de protecție respiratorie.
o
În mod normal se acceptă o medie de utilizare a măștii de protecție respiratorie de una - două săptămâni, dar în caz de utilizare intensivă aceasta poate fi mai mică. Atâta timp cât masca de protecție respiratorie nu este contaminată, alterată fizic, deformată, nu crează rezistența excesivă la respirație și asigură etanșeitate bună, ea poate fi reutilizată.
Utilizarea măștilor chirurgicale:
o
Măștile chirurgicale se utilizează de către suspecții de tuberculoză, pacienții cu tuberculoză pozitivi microscopic, pacienții cu MDR/XDR contagioși, în spații închise, în prezența altor persoane (pacienți, personal medical, vizitatori)
o
În afara clădirii nu este obligatorie purtarea măștii chirurgicale cu exceptia duratei transportului cu ambulanța sau cu alte mijloace.
Instruirea pentru protecția respiratorie
o
Lucrătorii sanitari, dar și pacienții necesită instruire pentru utilizarea corectă a echipamentului de protecție respiratorie
o
Pacienților li se va explica rațiunea utilizării echipamentului de protectie
o
Inainte de aplicarea măștii și la dezechipare se vor spăla corect mâinile
Achiziția măștilor de protecție respiratorie:
o
Pentru protecția respiratorie în zone cu risc pentru tuberculoză se vor achiziționa numai măști de tip FFP2 sau FFP3 certificate conform standardelor EN 149:2001+A1:2009
o
Selecția modelului și dimensiunilor trebuie bazată pe rezultatele testelor de etanșeitate aplicate lucrătorilor
o
Fiecare lucrător sanitar implicat în activități cu risc de transmitere a tuberculozei trebuie să aibă oportunitatea și să fie obligat să folosească modelul și dimensiunea de mască de protecția respiratorie care i se potrivește (cu care a trecut cu succes testul de etanșeitate)
Se recomandă monitorizarea permanentă a implementării programului de protecție respiratorie în fiecare unitate sanitară.
X.
CONSIDERAȚII SPECIALE PENTRU ALTE COMUNITĂȚI CU RISC MARE DE TRANSMITERE A TUBERCULOZEI
În afară de unitățile medicale, există și alte tipuri de structuri unde riscul de transmitere a TB poate fi prezent:
o
Sistemul penitenciar
o
Centrele pentru vârstnici
o
Unități psihiatrice
o
Adăposturi de noapte
o
Tabere de refugiați
o
Tabere de muncitori
o
Cantine sociale
o
Reședințele pacienților cu TB M/XDR care urmează tratament acasă
o
Centre paliative pentru pacienții cu TB M/XDR
o
Alte structuri (cămine școlare etc.)
În aceste unități, în cazul prezenței unei surse de infecție în comunitate, există riscul transmiterii TB generate de aglomerare și de prezența persoanelor vulnerabile în spații închise.
Aceste unități trebuie să dezvolte și să implementeze propriul plan de control al transmiterii
TB.
În România, cu excepția sistemului penitenciar, în momentul elaborării prezentului
document, nu există o evaluare inițială a riscului de transmitere a TB în aceste unități. Evaluarea riscului în aceste unități trebuie să permită dezvoltarea de recomandări și acțiuni specifice. Activitățile de informare, educare și comunicare trebuie să aibă în vedere și aceste tipuri de unități (igiena tusei, informații generale despre transmiterea TB și alte măsuri de prevenire a infecției TB).
Educarea contacților pacienților cu TB:
Pacienții TB și contacții lor de la domiciliu vor fi informați despre:
o
Modalitățile de transmitere a TB (aeriană);
o
Nevoia de izolare a sursei;
o
Măsuri de igiena tusei;
o
Nevoia de ventilare adecvată în încăpere;
o
Nevoia de a limita contactul cu pacientul, prin evitarea spațiilor comune și a utilizării mijloacelor de transport în comun;
o
Nevoia de atenție specială pentru copiii cu vârsta mai mică de 5 ani; contactul lor cu pacientul sursă trebuie limitat cât de mult posibil.
Referințe bibliografice
1.
Implementing the WHO Policy on TB Infection Control in Health-Care Facilities, Congregate Settings and Households; A framework to plan, implement and scale-up TB infection control activities at country, facility and community level - dezvoltat de the Tuberculosis Coalition for Technical Assistance (TBCTA) sub auspiciile TB-Infection Control Sub-group of the Stop TB Partnership, World Health Organization, 2010
2.
Guidelines for Preventing the Transmission of Mycobacterium tuberculosis in Health Care Settings, 2005 - MMWR 2005; 54 (No. RR-17, 1-141)
3.
Natural Ventilation for Infection Control in Health-Care Settings - edited by: James Atkinson, Yves Chartier, Carmen Lucia Pessoa-Silva, Paul Jensen, Yuguo Li and Wing- Hong Seto - World Health Organization, 2009
4.
WHO policy on TB infection control in health-care facilities, congregate settings and households - World Health Organization, 2009
5.
Upper-room ultraviolet light and negative air ionization to prevent tuberculosis transmission. PLoS Medicine, 2009, 6(3):e43. Escombe AR, et al.
6.
Strategia Națională de Informare-Educare-Comunicare pentru Controlul Tuberculozei, Bucuresti 2008
7.
Strategia Națională de Control al Tuberculozei în România 2015-2020, aprobată prin HG nr 121/2015
8.
Ghid metodologic de implementare a Programului national de prevenire, supraveghere si control al tuberculozei, aprobat prin Odinul MS nr 1171/21.09.2015
9.
Tuberculosis infection control in the era of expanding HIV care and treatment addendum World Health Organization (WHO). Geneva, WHO, 2006.
10.
Infection prevention and control of epidemic and pandemic-prone acute respiratory diseases
in
health
care:
WHO
interim
guidelines,
Geneva,
WHO,
2007 (WHO/CDS/EPR/2007.6).
11.
Tuberculosis infection control - a practical manual for preventing TB - Francis J Curry, National Tuberculosis Center, 2007
12.
Tuberculosis
laboratory
biosafety
manual.
World
Health
Organization,
2013, http://www.who.int/tb/publications/2012/tb
biosafety/en/
13.
ORDIN Nr. 1.101/2016 privind aprobarea Normelor de supraveghere, prevenire si limitare a infectiilor asociate asistentei medicale in unitatile sanitare
14.
ORDIN□961/2016 pentru aprobarea Normelor tehnice privind curățarea, dezinfecția și sterilizarea în unitățile sanitare
ANEXA 1
ROLURI ȘI RESPONSABILITĂȚI ALE PERSONALULUI MEDICAL ÎN CONTROLUL INFECȚIEI TB
Rolul medicului de familie:
Identificarea suspecților TB (persoane care tușesc de peste 3 săptămâni, cu febră, pierderea greutății, hemoptizie, antecedente TB)
Trimiterea suspecților TB la specialistul TB pentru confirmarea diagnosticului
Educarea suspecților TB cu privire la transmiterea TB, igiena tusei
Administrarea tratamentului direct observat
Asigurarea tratamentului adjuvant, în cazul în care apar reacții adverse la tratamentului TB
Participarea la ancheta epidemiologică după diagnosticarea unui caz TB
Participare la recuperarea cazurilor de abandon (pacienți care abandonează tratamentul)
Verificarea timpurie a pacienților cu evoluție clinică negativă la tratamentul TB, suspecți de eșec terapeutic, care vor fi trimiși la pneumolog.
Rolul medicului pneumolog:
Asigurarea diagnosticului rapid (cele mai bune proceduri și practici disponibile pentru diagnosticul bacteriologic, aflarea rapidă a rezultatelor)
Inițierea cât mai curând posibil a tratamentului adecvat
Amplasarea pacienților TB infecțioși în zone separate pentru suspecți TB, cu risc mare de transmitere a TB (pacienți și suspecți în triaj)
Educarea pacientului cu privire la TB (transmitere, tratament, complicații)
Instruirea personalului (asistenți medicali, alte tipuri de personal medical) cu privire la activități de controlul infecției TB
Informarea familiei pacientului cu privire la transmiterea TB
Respectarea măsurilor de control al infecției (administrative, de mediu și de protecție respiratorie) impuse în unitatea sanitară
Utilizarea măștii de protecție respiratore în timpul contactului cu pacienți infecțioși cu TB, MDR sau XDR sau în timpul procedurilor cu risc mare de transmitere efectuate supecților sau pacienților cu TB.
Rolul asistenților medicali în unitățile medicale generale:
Screeningul tușitorilor cu simptome TB (pierderea greutății, febră, hemoptizie, antecedente TB)
Izolarea tușitorilor cu suspiciune mare TB în spații bine ventilate ale sălii de așteptare; așezarea suspecților TB cu prioritate în programul de consultații (pentru a reduce timpul petrecut în zonele de așteptare aglomerate)
Educarea tușitorilor cu privire la igiena tusei
Asigurarea unei ventilații naturale adecvate a spațiilor (deschiderea ferestrelor în zonele de așteptare și în camerele de consultație).
Rolul asistenților medicali în unitățile de diagnostic și tratament TB:
Identificarea pacienților cu suspiciune crescută de TB în zonele de așteptare, izolarea acestora de ceilalți pacienți (în special copii), amplasarea acestora prioritar pe lista de consultații
Participare la izolarea pacienților TB infecțioși în zonele dedicate
Educarea pacienților în ceea ce privește igiena tusei
Asigurarea unei cât mai mici împrăștieri de bacili pentru pacienții infecțioși (oferirea de măști de protecție respiratorie în timpul transportului sau celor care așteaptă în zone interioare închise)
Asigurarea unei ventilații naturale bune a saloanelor pacienților, camerelor de consultare, zonelor de așteptare, camerelor de proceduri
Utilizarea de măști de protecție respiratorie în timpul contactului cu pacienții TB, MDR sau XDR infecțioși în timpul procedurilor cu risc mare de transmitere efectuate suspecților sau pacienților cu TB
Participarea la sesiunile de training ogranizate în domeniul controlului infecției TB
Respectarea practicilor de CI impuse în unitate.
Rolul altor categorii de personal medical din unități sanitare care au legătură cu TB:
Rolul personalului de curățenie, al personalului auxiliar:
Să cunoască și să respecte practicile de CI din unitate
Să sigure o ventilație adecvată a spațiilor, și deschiderea ferestrelor ori de câte ori este posibil
Să folosească măști de protecție respiratorie în timpul contactului sau transportului pacienților TB, MDR sau XDR infecțioși
Să folosească măști chirugicale pentru pacienți în timpul transportului în afara salonului, în spații închise
Rolul personalului administrativ:
Minimizarea expunerii la aerosoli infectanți, evitarea accesului în spații cu pacienți TB
Dacă este absolut necesar, utilizarea de măști de protecție respiratorie în timpul accesului în spații cu potențial de transmitere a TB.
Rolul personalului tehnic:
Să cunoască și să respecte practicile de CI ale unității
Să evalueze periodic și să asigure o bună întreținere a dispozitivelor legate de controlul infecției (ferestre, sisteme de ventilație mecanică, dispozitive UV, purificatoare de aer)
Să folosească măști de protecție respiratorie în timpul accesului în spații cu potențial de transmitere a TB.
Rolul epidemiologului din spital în controlul infecției TB:
Epidemiologul spitalului va fi responsabil cu dezvoltarea și monitorizarea implementării planului de control al infecției
Implementarea izolării pacienților TB infecțioși
Participarea la cursurile de control al infecției pentru personal și educarea pacienților și vizitatorilor
Raportarea cazurilor TB din rândul personalului medical către echipa națională de control al infecției TB.
ANEXA 2
CALCULAREA NUMĂRULUI DE SCHIMBURI DE AER
Mod de calcul:
Etapa 1: Cu ajutorul unei rulete, măsurați suprafața deschiderii (ferestrei) = A (m 2 )
Etapa 2: Cu ajutorul unui velocimetru sau a unui vaneometru, măsurați viteza medie a aerului care trece prin fereastra = v (m/s)
Etapa 3: Calculați fluxul de aer prin fereastră (?) multiplicând suprafața cu viteza (determinată anterior):
? (m 2 /s) = A(m 2 ) x v(m/s)
Transformați fluxul calculat din m?/s în m?/h multiplicând valoarea anterioară cu 3600, obținând valoarea ? (m?/oră)
Etapa 4: Măsurați volumul camerei =V (m?)
Etapa 5: Calculați numărul de schimburi de aer (ACH) împărțind fluxul de aer calculat la etapa 3 la volumul camerei, calculat în etapa 4
ACH = ? (m?/h) / V (m?)
Exemplu:
Calculați numărul de schimburi de aer pe oră (ACH) într-o încăpere cu următoarele dimensiuni: lungime
= 10m, lățime = 3m, înălțime = 3m, ventilată printr-o fereastră cu laturile de 1 m, prin care viteza aerului măsurată cu un velocimetru este de 0,5m/s.
Etapa 1:
Suprafața ferestrei (A)=1m x 1m =1m 2
Etapa 2:
Viteza aerului prin fereastră este deja cunoscută, v = 0,5m/s
Etapa 3:
Valoarea fluxului de aer prin fereastră? = A x v =1m 2
x 0,5m/s=0,5 m 3 /s Transformată în m 3 /h, valoarea fluxului de aer este 0,5 m?/s x 3600s = 1800 m 3 /h
Etapa 4:
Volumul încăperii (V) = lungime x lățime x înălțime = 10m x 3m x 3m = 90 m 3
Etapa 5:
Numărul de schimburi de aer pe oră (ACH) = ? (m 3 /h) / V (m 3 ) - 1800 m 3 /h / 90 m 3
= 20
Dispozitive necesare:
Ruletă
Vaneometru / velocimetru
calculator
ANEXA 3
FORMULE DE CALCUL UTILE ȘI VALORI DE REFERINȚĂ ÎN CAZUL UTILIZĂRII RADIAȚIEI UV
1.
Care este doza variației UV necesară pentru inactivarea Mycobacterium tuberculosis?
DOZA RADIAȚIEI UV
PROCENT DE Mycobacterium tuberculosis INACTIVAT
6 200 μJ/cm 2
90%
10 000 μJ/cm 2
99%
13 800 μJ/cm 2
99.9%
17 600 μJ/cm 2
99.99%
2.
Care este doza maximă admisă pentu 8 ore (limita de expunere ocupațională)?
Doza maximă admisă pentru o persoană expusă la radiația UV (254nm) este 6 000 μJ/cm 2
pentru expunere de 8 ore of (echivalentul unei expuneri medii permanente de 8 ore cu radiație UV (254 nm) cu intensitatea radiației de 0,2 μW/ cm 3 )
Durată expunere
Iradiație (254 nm)
Limită de expunere ocupațională (254 nm, timp de 8 ore)
(ore, minute, secunde)
( □ W/cm 2 )
□ J/cm 2
( □ W x sec/cm 2 )
8 ore
0.21
6 000
4 ore
0.42
6 000
1 oră
1.7
6 000
30 minute
3.3
6 000
15 minute
6.7
6 000
1 minut
100
6 000
15 secunde
400
6 000
3.
Când este eficientă o lampă UV?
În caz că nu există UV-metru disponibil, lampa UV este considerată eficientă atât timp cât nu depășește numărul de ore de funcționare recomandat de producător. În cazul în care este disponibil un UV-metru, lampa UV este eficientă atât timp cât radiația UV la 1 m distanță de lampă are valoarea de cel puțin 100 μW/ cm 2 .
ANEXA 4
ROLURI ȘI RESPONSABILITĂȚI ÎN INSTALAREA, EXPLOATAREA ȘI ÎNTREȚINEREA DISPOZITIVELOR DE RADIAȚIE UV
Coordonatorul departamentului de control al transmiterii infecție tuberculoase din cadrul Comisiei de prevenire a infecției nosocomiale
►
Analizează necesarul de dispozitive de radiație UV în funcție de harta riscului de transmitere a
tuberculozei
►
Propune includerea de dispozitive în planul de achiziții, pentru a asigura câte o lampă de 30W pentru fiecare 20m2 suprafață a planșeului din fiecare spațiu cu risc crescut de transmitere a tuberculozei.
►
Decide tipul de dispozitive necesare, numărul de dispozitive și locul de plasare al fiecărui
dispozitiv UV (locație, amplasarea dispozitivului)
►
Elaborează și revizuiește periodic planul de implementare al dezinfecției aerului folosind radiația UV
►
Elaborează materiale informative privind radiația UV
Directorul de îngrijiri medicale
►
Organizează sesiuni de instruire a personalului și pacienților
privind utilizarea radiației UV (incluzând
noțiuni
de
bază
privind
dezinfecția
aerului,
eficacitate,
siguranță,
efectele supraexpunerii)
►
Participă la revizuirea anuală a inventarului prin actualizarea listei și locațiilor fiecărui
dispozitiv instalat
►
Se asigură că există aprovizionare corespunzătoare cu soluție pentru curățarea lămpilor (alcool etilic 70%, 2ml alcool pentru fiecare lampă/an) și cu piese de schimb (tuburi cu radiație UV cu putere nominală de 30W, drossere).
►
Elaborează în colaborare cu coordonatorul departamentului CT TB materiale informative
privind radiația UV, instrucțiuni de utilizare și protecție pentru supraexpunere și decide locul de plasare al acestora
Asistenta Șefă din fiecare secție sau compartiment unde se utilizează radiație UV
►
Organizează și supervizează curățarea periodică (la fiecare 2 luni sau după orice procedură ce produce praf) a fiecărei lămpi
►
Instruiește personalul din subordine cu privire la funcționarea, utilizarea și întreținerea lămpilor
UV
►
Informează în cel mult 24 ore, în scris, compartimentul tehnic despre orice disfuncționalitate constatată la dispozitivele UV
►
Informează în cel mult 24 ore de la debutul oricărui simptom compatibil cu supraexpunerea la
radiație UV constatat la personalul medical, pacienți sau aparținătorii acestora care s-au expus la radiație UV
Personana desemnată pentru curățarea dispozitivelor UV (îngrijitoare de curățenie, infirmieră)
►
Curăță periodic (la fiecare 2 luni) fiecare dispozitiv de radiație UV, respectând instrucțiunile privind întreținerea acestuia:
o
Întrerupe alimentarea cu tensiune a dispozitivului
o
Își asigură o poziție sigură (pe scară sau suprafață plană stabilă) în timpul procedurii
o
Demontează scutul de protecție al dispozitivului (în cazul dispozitivelor cu fante, care produc flux orizontal de radiație UV, care au fost prevăzute cu sisteme facile de demnotare - nu necesită instrumente adiționale sau prezența personalului tehnic)
o
Curăță suprafața tubului UV și suprafața de reflexie (oglinda) cu soluție alcoolică (70%)
o
Curăță suprafața metalică a dispozitivului cu o cârpă de praf și în funcție de gradul de murdărie cu o cârpă cu apă și detergente
o
Aspiră (sau în lipsa aspiratorului curăță cu cârpă uscată) blocul de fante
o
Montează scutul de protecție și repune în funcțiune dispozitivul
►
Notează în graficul de curățenie al dispozitivului data la care a efectuat operațiunea
►
Informează asistenta șefă cu privire la orice disfuncționalitate sau problema apărută pe parcursul procedurii de curățare
Șeful serviciului tehnic
►
Desemnează un tehnician (și
încă o persoană de referință în absența titularului) responsabilă pentru montarea și întreținerea dispozitivelor UV
►
Participă la instruirea personalului din unitate cu privire la utilizarea radiației UV
Tehnicianul/tehnicienii desemnați de serviciul tehnic pentru întreținerea dispozitivelor UV
►
Verifică periodic (la instalare, apoi la fiecare 6 luni) funcționarea dispozitivelor UV instalate prin măsurarea radiației UVc cu ajutorul unui UV metru; măsurătorile se vor face:
o
la 1 m de la lampă, în planul horizontal al lămpii (o intensitate a radiației de peste 100uW/cm 2 /s indica eficiența tubului)
o
la 1,8m înălțime de la planul podelei, în diferite puncte din cameră (o intensitate a radiației UV mai mică de 0,2uW/cm2/s în spațiile locuite permanente sau de 0,4- 0,6uW/cm2/s în spațiile de tranzit sau pupulate intermitent indica siguranța în utilizarea radiației UV și exclude riscul de supraexpunere)
o
pe parcursul efectuării măsurătorilor tehnicianul va purta ochelari de protecție (cu lentila de sticlă sau plexiglas); măsurătorile se vor face după 10 minute de la pornirea lămpii și alte persoane vor fi evacuate din cameră
►
Răspunde prompt (în maxim 12 ore dela solicitare) la sesizările asistentelor șefe cu privire la
disfuncționalități constatate sau bănuite ale sistemelor UV
►
Înlocuiește tubul UV în cazul în care intensitatea radiației UV este sub valoarea de 100uW/cm2/s la 1 m în planul lămpii
►
Ajustează sistemul de fante sau poziția lămpii în cazul în care constată risc de supraexpunere
►
Anunță Seful Serviciului tehnic cu privire la disfuncționalități constatate sau remediate
Șeful Serviciului Financiar Contabil
►
Asigura fondurile necesare pentru achizitia de dispozitive UV si piese de schimb
Seful Serviciiului Achizitii
►
Asigură achiziția la timp a dispozitivelor UV și pieselor de schimb de calitate, conform solicitărilor
serviciului
tehnic,
directorului
de
îngrijiri
medicale
și
coordonatorului departamentului de control al transmiterii tuberculozei
ANNEX 5
FIȘA TEHNICĂ DE ÎNTREȚINERE A DISPOZITIVULUI DE RADIAȚIE ULTRAVIOLETĂ (LAMPĂ UV)
Locația lămpii UV
►
locația ...........................................................................................
►
gradul de risc al zonei deservite:
mare
□
mediu
□
scăzut
□
►
suprafața zonei deservite (mp)...........................
►
amplasarea lămpii UV:
o
pe tavan
□
o
pe peretele lateral
□
•
distanță de la tavan .............
•
distanța de la podea.............
Tipul lămpii UV
►
cu radiație deschisă (neprotejată)
□
►
cu scut, iradiind întreaga suprafață superioară a încăperii
□
►
cu scut, cu flux orizontal de radiație
□
►
fixă
□
mobilă
□
Timpul mediu de utilizare zilnică ................. / interval orar ....................................
Data instalării .....................................
Data ultimei schimbări a tubului de radiație UV .....................................................
Periodicitatea curățării lămpii UV (ștergere cu soluție alcoolică) ............................
Rezultatele măsurării intensității radiației UV (uJ/cm 2 ) în încăpere
Data verificării
Intensitate la 1m de la tub
Intensitate maximă la înălțimea de1,80 m de
la podea
Intensitate minimă la înălțimea de1,80 m de
la podea
Concluzie: corespunz ătoare / necorespu
nzătoare
Observații
Responsabil verificare lampă ........................................
Responsabil întreținere lampă .......................................
Data curatarii
Semnatura
Data curatarii
Semnatura
Data curatarii
Semnatura
ANEXA 6 METODOLOGIA UTILIZĂRII CORECTE A MĂȘTILOR DE PROTECȚIA RESPIRAȚIEI;
TESTE DE ETANȘEITATE
InstrucJiuni de fixare pe faJă a măștii de protecJie a respiraJiei:
1.
Îndoiți la mijloc banda metalică, creând o incizură corespunzătoare poziției nasului
2.
Țineți masca într-o mână, cu clema metalică situată la vârful degetelor, lăsând benzile elastice libere pe dosul mâinii
3.
Poziționați masca sub bărbie, având clema de fixare in zona nasului orientată în sus
4.
Plasați banda elastică superioară pe coroana capului, iar banda elastică inferioară imediat sub urechi
5.
Benzile elastice pentru fixarea pe cap trebuie să fie nerăsucite
6.
Utilizând ambele mâini, modelați clema de fixare în zona nasului, asigurându-vă că este fixată bine, etanș; utilizarea unei singure mâini pentru modelarea clemei poate reduce performanța protecției
7.
Înainte de intrarea în mediul de lucru trebuie testată fixarea etanșă pe față
Verificarea rapidă a etanșeităJii
1.
Acoperiți masca de protecție cu ambele palme, astfel încât să nu deranjați fixarea măștii pe față
2.
a) FĂRĂ SUPAPĂ: EXPIRAȚI puternic
b) CU SUPAPA: INSPIRAȚI puternic
3.
Dacă aerul pătrunde / iese în zona nasului, reajustați clema de fixare pe nas. Repetați testul de verificare a etanșeității de mai sus
4.
Dacă aerul pătrunde / iese între suprafața de etanșare a măștii și față, reajustați benzile de fixare pe cap pentru eliminarea acestora. Repetați testul de verificare a etanșeității.
În cazul în care nu reușiți să obțineți o etanșare corespunzătoare, nu intrați în zona periculoasă. Aveți nevoie de un alt model sau o altă mărime a măștii de protecția respirației
Verificarea etanșeităJii prin testul de adaptare calitativ:
Testul calitativ de verificare a etanșeității măștilor de protecție a respirației folosește agenți chimici (zaharină sau bitrex). Pulverizați în interiorul unei hote (cagule) sub care persoana testată respiră și se bazeaza pe capacitatea acesteia de a percepe gustul dulce sau amar al vaporilor respectivi, care au dimensiuni de peste 2µm.
Pașii necesari testării:
1.
Se testează capacitatea subiectului de a percepe gustul dulce/amar pulverizând în cagulă o soluție diluată 1/100, fără mască de protecție a respirației
2.
Se aplică masca de protecție a respirației; subiectul este din nou poziționat sub cagulă
3.
Se pulverizează sub hotă 10 puffuri de substanță concentrată, subiectul respirând normal timp de 30 secunde; dacă nu simte gustul se trece la pasul următor
4.
Se mai pulverizează 10 puffuri de substanță, subiectul respirând adânc 30 secunde; dacă nu simte gustul se trece la pasul următor
5.
Se mai pulverizează 10 puffuri de substanță subiectul mișcând capul de la dreapta la stânga, 30 de secunde; dacă nu simte gustul se trece la pasul următor
6.
Se mai pulverizează 10 puffuri de substanță, subiectul mișcând capul în sus și jos, 30 secunde; dacă nu simte gustul se trece la pasul următor
7.
Se mai pulverizează 10 puffuri de substanță, în timp ce subiectul vorbește 30 secunde ; dacă nu simte gustul se trece la pasul următor
8.
Se mai pulverizează 10 puffuri de substanță în timp ce subiectul merge pe loc; dacă nu simte gustul se trece la pasul următor
9.
Se pulverizează sub hotă 10 puffuri de substanță, subiectul respirând normal timp de 30 secunde; dacă nu simte gustul, subiectul a trecut proba
Pașii de urmat în procedura de testare calitativă a etanșeității dispozitivelor de protecție a repirației
Timpul trecut (minute)
#de "Puffuri"
în funcție de testarea sesibilității (înaltă/medie/joasă)
Exercțiul
0:00
10 / 20 / 30
Respirație normală
0:30
5 / 10 / 15
1:00
5 / 10 / 15
Respirație profundă
1:30
5 / 10 / 15
2:00
5 / 10 / 15
Mișcare laterală a capului
2:30
5 / 10 / 15
3:00
5 / 10 / 15
Mișcare sus - jos a capului
3:30
5 / 10 / 15
4:00
5 / 10 / 15
Vorbit fără întrerupere
4:30
5 / 10 / 15
5:00
5 / 10 / 15
Mers pe loc
5:30
5 / 10 / 15
6:00
5 / 10 / 15
Respirație normală
6:30
7:00
5 / 10 / 15
Stop
Test încheiat!
Conținul kitului de testare a etanșeității dispozitivelor de protecție respiratorie: Nebulizator. Hotă/cagulă de testare; Guler: soluție de testare a sensibilității (dulce & amar), Soluție de testare (dulce & amar)
Soluția de testare a sensibilității la bitrex poate fi preparată prin adăugarea a 13,5miligrame de benzoat dentatonium (Bitrex) la 100 ml soluție salină (NaCl 5%). Soluția de testare se prepară prin adăugarea a 337,5mg Bitrex la 200ml soluție salină 5%.
ANEXA 7
IGIENA TUSEI (MATERIALE INFORMATIVE ȘI EDUCAȚIONALE)
Opriți răspândirea microbilor către cei din jur !
Purtați masca dacă vi se cere de către personalul medical!
Acoperiți nasul și gura cu o batistă de hârtie când tușiți sau strănutați! Aruncați-o apoi la coșul de gunoi!
Spălați-vă mâinile cu apă și săpun !
Sau curățați-le cu soluție dezinfectantă pentru mâini pe bază de alcool!
Aprobate prin
Textul este prelucrat automat din sursa indicată; numerotarea și legăturile pot conține erori. Referințele subliniate duc la actele citate, așa cum au fost identificate de noi.